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    基于Au@N-CDs納米復(fù)合材料電化學(xué)傳感器檢測(cè)左氧氟沙星

    2022-09-30 08:27:26曹功勛劉翠娥鄭鳳英劉鳳嬌黃永俊駱嘉燚黃昭景李順興
    分析科學(xué)學(xué)報(bào) 2022年4期
    關(guān)鍵詞:超純水電位電化學(xué)

    曹功勛, 劉翠娥, 滿 珊, 鄭鳳英,2, 劉鳳嬌,2, 黃永俊,駱嘉燚, 黃昭景, 李順興*,2

    (1.閩南師范大學(xué)化學(xué)化工與環(huán)境學(xué)院,閩南師范大學(xué),福建漳州 363000;2.現(xiàn)代分離分析科學(xué)與技術(shù)福建省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室&污染監(jiān)測(cè)與控制福建省高校重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,閩南師范大學(xué),福建漳州 363000)

    由于治療細(xì)菌感染的廣譜性,抗生素被過(guò)度使用,以致環(huán)境中其濃度水平不斷升高[1],對(duì)生態(tài)系統(tǒng)和人類(lèi)健康產(chǎn)生潛在危害,目前抗生素污染監(jiān)測(cè)已成為全球關(guān)注熱點(diǎn)[2]。我國(guó)是抗生素生產(chǎn)和使用大國(guó),抗生素已成為我國(guó)水環(huán)境優(yōu)先檢出新興污染物。據(jù)《中國(guó)抗菌藥物管理和細(xì)菌耐藥現(xiàn)狀報(bào)告(2018)》,左氧氟沙星(Levofloxacin,LEV)在2017年抗菌藥物消耗量(DDDs)排名前三位,是目前臨床常用喹諾酮類(lèi)抗菌藥物。因此,開(kāi)發(fā)有效、快捷、成本適宜的LEV檢測(cè)法至關(guān)重要。目前LEV常用檢測(cè)法有熒光光譜分析法[3]、核磁共振法[4]、液相色譜-質(zhì)譜(LC-MS)法[5]、高效液相色譜(HPLC)法[6]等。但這些方法設(shè)備昂貴,且存在樣品前處理復(fù)雜、成本高、分析時(shí)間長(zhǎng)等不足,而電化學(xué)方法具有快速,便捷,成本低[7,8]等優(yōu)點(diǎn)。

    碳納米材料作為新型催化劑或催化劑載體,具有優(yōu)異導(dǎo)電、化學(xué)穩(wěn)定性和大的比表面積等優(yōu)勢(shì);Au納米材料具有抗氧性和生物相容性等特點(diǎn)。由于金/碳納米復(fù)合物具有兩者雙重特性,單分散摻雜石墨烯量子點(diǎn)包覆金納米粒子兼具穩(wěn)定和優(yōu)異的生物相容性[9],Au納米簇/碳量子點(diǎn)骨架復(fù)合材料表現(xiàn)出過(guò)氧化物酶活性和單激發(fā)/雙重發(fā)射特性[10],親水型Au@CDs納米復(fù)合物可作為抗真菌劑[11],但基于Au/CDs納米復(fù)合材料電催化活性和底物親合性的傳感器研究迄今未見(jiàn)報(bào)道。

    本文利用氮摻雜碳點(diǎn)(N-CDs)的還原性原位合成Au納米粒子(AuNPs),制備Au@N-CDs納米復(fù)合材料,利用該材料對(duì)LEV的親合選擇性和電催化性能,定量測(cè)定LEV。

    1 實(shí)驗(yàn)部分

    1.1 主要儀器和試劑

    Dimension Edge原子力顯微鏡(德國(guó),布魯克);JEM-2100F場(chǎng)發(fā)射透射電子顯微鏡(日本,JEOL公司);ESCALAB 250 Xi型X射線光電子能譜儀(美國(guó),Thermo Fisher Scientific公司);Nicolet iS10傅立葉變換紅外光譜儀(美國(guó),Thermo Fisher Scientific公司);X射線粉末衍射儀(日本,Rigaku公司);SPECORD?200 PLUS型紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì)(德國(guó),耶拿分析儀器股份公司);Cary Eclipse熒光分光光度計(jì)(美國(guó),Agilent公司);Nano ZS90 Zeta電位分析儀(英國(guó),馬爾文儀器有限公司);CHI 660E電化學(xué)工作站(上海辰華儀器有限公司)。

    牛血清白蛋白(BSA)(≥98%,澳大利亞);NaOH、H3PO4、H3BO3、KCl、一水合檸檬酸、無(wú)水Na2HPO4、KH2PO4均購(gòu)買(mǎi)于西格瑪奧德里奇(上海)貿(mào)易有限公司;HAc(≥98%,色譜純)、利福平、羅紅霉素、左氧氟沙星、紅霉素均購(gòu)買(mǎi)于上海阿拉丁生化科技股份有限公司;實(shí)驗(yàn)用水為美國(guó)Millipore超純水儀器制備的超純水(18.2 MΩ·cm)。

    1.2 Au@N-CDs的制備

    參照文獻(xiàn)報(bào)道[12],對(duì)N-CDs合成方法稍作修改:將0.0300 g BSA溶于15 mL超純水,快速混合,加入15 mL無(wú)水乙醇,冰水浴中超聲30 min,轉(zhuǎn)至50 mL聚四氟乙烯內(nèi)襯中,于高壓釜中180 ℃恒溫加熱12 h,冷卻至室溫,0.22 μm濾膜過(guò)濾后,轉(zhuǎn)入3 500 D透析袋透析48 h,冷凍干燥,得固體粉末N-CDs。

    將5.0 mg N-CDs超聲溶于Britton-Robinson(B-R)緩沖溶液(pH=4.0,100.0 mL),逐滴加入HAuCl4(12 mmol/L,2.0 mL)溶液,將混合溶液在37 ℃水浴恒溫振蕩器上孵育12 h,再置于4 ℃環(huán)境中24 h,11 000 r/min離心20 min,經(jīng)超純水洗滌3次,冷凍干燥,得黑色粉末Au@N-CDs,置于4 ℃環(huán)境中保存?zhèn)溆?。制備流程?jiàn)圖1。

    圖1 制備Au@N-CDs的流程圖Fig.1 Preparation of Au@N-CDs with water bath incubation

    1.3 Au@N-CDs修飾電極制備

    N-CDs和Au@CDs修飾液:將1.5 mg的N-CDs或Au@N-CDs超聲分散于0.05% Nafion溶液中,分別得到1.5 mg/mL的淺褐色N-CDs修飾液和黑色Au@N-CDs修飾液。依次用超純水、無(wú)水乙醇和超純水超聲清洗用麂皮拋光的玻碳電極(GCE),用高純氮?dú)獯蹈?,分別滴涂10 μL修飾液,于常溫下自然干燥,分別制得N-CDs修飾電極(N-CDs/GCE)和Au@N-CDs修飾電極(Au@N-CDs/GCE)。

    1.4 左氧氟沙星的檢測(cè)

    在室溫下,分別以N-CDs/GCE(或Au@N-CDs/GCE)、Ag/AgCl電極、鉑絲電極為工作、參比和輔助電極,于含有不同濃度LEV的磷酸鹽緩沖液(PBS)或人體尿液(pH=6.0)樣品中,在電位0.4 V作用下,富集125 s,在0.6~1.3 V電位范圍內(nèi),通過(guò)微分脈沖伏安法繪制工作曲線。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 Au@N-CDs制備及其形貌與組成

    在N-CDs(0.05 mg/mL,5 mL)的不同pH值B-R緩沖溶液中,添加HAuCl4溶液(20 mmol/L,50 μL),用快速混勻器快速振蕩,于37 ℃孵化12 h,置于4 ℃條件下陳化24 h,當(dāng)pH=4.0時(shí),反應(yīng)液底部有一定量的黑色沉淀生成。由于N-CDs等電點(diǎn)在pH=4.0附近,在等電點(diǎn)時(shí),顆粒凈電荷為零,沒(méi)有相同電荷的排斥作用,分子間作用力弱,顆粒易碰撞而凝聚沉淀。N-CDs為淺褐色,而沉淀為黑色,對(duì)照組未生成黑色沉淀,這表明N-CDs和HAuCl4發(fā)生反應(yīng)。N-CDs可作為還原劑原位還原HAuCl4,并在合成過(guò)程中吸附包裹生成的AuNPs,從而形成Au@N-CDs。

    在pH=4.0,含N-CDs(0.05 mg/mL,5 mL)的B-R緩沖溶液中,添加不同濃度HAuCl4(0、6、8、10、12、14、16、18、20 mmol/L,100 μL)溶液,制備Au@N-CDs,通過(guò)紫外-可見(jiàn)和熒光發(fā)射光譜測(cè)試制備效果。紫外吸收在520~560 nm處均出現(xiàn)Au吸收峰,吸光強(qiáng)度先增后減,這是由于HAuCl4濃度過(guò)高,初生AuNPs較多,N-CDs不能及時(shí)還原,體系高比表面能使得AuNPs團(tuán)聚,因此在12 mmol/L的HAuCl4濃度時(shí),吸光值最大(圖2(a)),此時(shí)生成的AuNPs濃度最高,而N-CDs由于同AuNPs結(jié)合引起N-CDs熒光猝滅(圖2(b))。

    圖2 (a)HAuCl4不同濃度下Au@N-CDs紫外-可見(jiàn)吸收光譜;(b)Au@N-CDs的熒光發(fā)射光譜Fig.2 (a) Influence of HAuCl4 concentrations on ultraviolet-visible absorption spectra;(b) Fluorescence emission spectra of Au@N-CDs

    由高分辨透射電鏡(HR TEM)圖3(a)可知,熒光黃橢圓圈內(nèi)圖像具有0.20 nm晶格條紋間距與Au(200)晶面相吻合[13,14];晶格條紋間距0.32 nm與層間石墨烯(002)晶面相一致[15,16],這表明Au3+已被N-CDs還原。XRD(圖3(b))圖譜同檢索JCPDS no.1-1172對(duì)比,寬衍射峰2θ=23.16°對(duì)應(yīng)碳的石墨化結(jié)構(gòu)[17,18],2θ=38.04°、44.24°、64.53°、77.50°均為Au特征衍射峰[9],分別對(duì)應(yīng)晶面(111)、(200)、(220)、(311)[19]。上述結(jié)果證明成功合成Au@N-CDs。原子力顯微鏡(AFM)圖及3D模式圖3(c)表明,Au@N-CDs厚度約2 nm,AuNPs和N-CDs組裝在二維平面,第三維度超薄[20],便于負(fù)載于GCE。元素映射分析圖4中,材料由Au、C和N組成,N和C分布密實(shí),Au分散于C和N中,即AuNPs嵌套在N-CDs基質(zhì)中,構(gòu)成Au@N-CDs。

    圖3 (a)Au@N-CDs的透射電鏡(TEM)圖(插圖為HRTEM圖);(b) X射線衍射圖;(c)原子力顯微鏡圖和相應(yīng)粒子高度分布圖Fig.3 (a) HR TEM image of Au@N-CDs;(b) X-ray diffraction pattern of Au@N-CDs;(c) Atomic force microscope pattern and corresponding particle height distribution pattern of Au@N-CDs

    圖4 (a)Au@N-CDs的C、N、Au元素映射分析疊加圖;(b、c、d)C、N元素和Au元素的映射分析圖Fig.4 (a)Overlay of C,N,Au element mapping analysis of Au@N-CDs;(b,c,d)Mapping analysis diagram of C,N and Au

    傅立葉紅外(FTIR)光譜測(cè)試N-CDs和Au@N-CDs官能團(tuán),結(jié)果如圖5所示。N-CDs在3 290 cm-1、2 962 cm-1、1 664 cm-1和1 101 cm-1處有顯著的吸收峰,這與N-H[21],C-H[22],C=O[23,24]和C-O[25,26]振動(dòng)相關(guān);Au@N-CDs相應(yīng)紅外吸收峰發(fā)生移動(dòng),N-H、C-H、C=O、C-O分別移至3 421 cm-1、2 925 cm-1、1 647 cm-1和1 084 cm-1,說(shuō)明N-CDs和AuNPs間有交互作用。

    圖5 Au@N-CDs和N-CDs的傅立葉變換紅外光譜圖Fig.5 Fourier transform infrared spectra of Au@N-CDs and N-CDs

    X射線光電子能譜(XPS)表征Au@N-CDs全掃描圖譜表明,樣品由C、N、O、S和Au組成,元素含量分別為C 62.01%、N 12.4%、O 22.32%、S 0.63%及Au 2.64%。XPS高分辨C 1s譜(圖6(a))中3個(gè)峰結(jié)合能分別為283.93 eV、285.03 eV和286.88 eV,歸于C=C/C-C、C-C/C-S/C-N和C=O[17,18]。N 1s譜(圖6(b))在399.38 eV和401.33 eV處的峰歸于C-N、N-H[27]。O 1s譜(圖6(c))顯示兩個(gè)相對(duì)氧態(tài),COO-(530.98 eV)、C-OH或C-O-C(532.38 eV)[28]。Au 4f譜(圖6(d))分別在84.23eV和87.88eV處的兩峰為Au04f7/2和Au04f5/2的光電子作用[16]。

    圖6 Au@N-CDs的X射線光電子能譜(XPS)表征Fig.6 XPS of Au@N-CDs(a) C 1s spectrum;(b) N 1s spectrum;(c) O 1s spectrum;(d) Au 4f spectrum.

    2.2 Au@N-CDs/GCE的電化學(xué)表征

    在含0.1×10-3mol/L KCl的5.0×10-3mol/L [Fe(CN)6]3-/4-溶液中,電化學(xué)阻抗譜(EIS)測(cè)試結(jié)果如圖7(a)所示。結(jié)果表明,裸GCE、N-CDs/GCE、Au@N-CDs/GCE的EIS中R2的值分別為118.7 Ω、4 023 Ω和15 270 Ω,電荷轉(zhuǎn)移效率越來(lái)越低,同時(shí)低頻區(qū)斜線傾斜率減小,電極離子導(dǎo)電率越來(lái)越小。在[Fe(CN)6]3-/4-溶液中測(cè)試GCE、N-CDs/GCE和Au@N-CDs/GCE的循環(huán)伏安圖,得圖7(b)。GCE、N-CDs/GCE和Au@N-CDs/GCE的氧化還原峰電流依次減小,N-CDs和Au@N-CDs在GCE上修飾,降低了電極的電子轉(zhuǎn)移速率,這與EIS分析結(jié)果一致,表明材料成功修飾在電極上。

    圖7 (a)GCE、N-CDs /GCE和Au@ N-CDs /GCE的電化學(xué)阻抗譜(EIS);(b)GCE、N-CDs/GCE和Au@N-CDs/GCE的循環(huán)伏安圖Fig.7 (a) EIS of GCE,N-CDs/GCE and Au@N-CDs/GCE; (b) Cyclic voltammograms of GCE,N-CDs/GCE and Au@N-CDs/GCE

    2.3 Au@N-CDs/GCE測(cè)定LEV條件及性能

    在0.01 mol/L的PBS(pH=6.0)測(cè)試體系中,以循環(huán)伏安法檢測(cè)Au@N-CDs/GCE在10~300 mV/s掃描速率范圍內(nèi)對(duì)LEV的電化學(xué)響應(yīng),將不同掃描速率的CV曲線疊加,得圖8(a)。LEV氧化峰電流隨CV掃描速率增加而增大,Ip與掃速呈良好線性關(guān)系,如圖8(b),其線性回歸方程為:Ip=3.969×10-7v+2.078×10-5(R=0.9935),表明LEV在Au@N-CDs/GCE上的反應(yīng)為表面吸附控制的電極反應(yīng)過(guò)程。

    圖8 (a)不同掃速下1 mmol/L LEV在Au@CDs/GCE上的循環(huán)伏安圖;(b)不同循環(huán)伏安掃描速率和LEV氧化峰電流Ip之間的關(guān)系圖Fig.8 (a) Cyclic voltammogram of LEV(1 mmol/L) on Au@N-CDs/GCE under different scanning rate;(b) Relationship between different cyclic voltammetry scan rates and LEV oxidation peak current Ipscan rate:10,30,60,90,120,150,180,210,240,270,300 mV/s.

    在0.1~0.8 V富集電位范圍內(nèi),隨電位值增大,LEV的氧化峰電流Ip先增后減。當(dāng)富集電位為0.4 V時(shí),Ip最大(圖9(a))。隨富集時(shí)間增加,Ip增大,但當(dāng)富集時(shí)間超過(guò)125 s,Ip增幅微小且趨于穩(wěn)定(圖9(b)),可見(jiàn)電極對(duì)LEV的表面吸附富集已達(dá)飽和,因此選擇富集時(shí)間為125 s。

    圖9 (a)富集電位、(b)富集時(shí)間對(duì)Au@N-CDs/GCE測(cè)定LEV的影響Fig.9 (a)Influence of enrichment potential and (b)enrichment time on the determination of LEV with Au@N-CDs/GCE

    當(dāng)pH值從4.0增至7.0,電流Ip呈現(xiàn)先增后減(圖10(a)),在pH=6.0時(shí)Ip達(dá)到最高值。此外,Ep隨pH值增大而發(fā)生電位負(fù)移,與石墨烯/金納米復(fù)合材料修飾GCE結(jié)果相似[29],這主要是電極反應(yīng)過(guò)程有氫離子的參與因此發(fā)生移動(dòng),其具體反應(yīng)機(jī)理如圖10(b)所示。

    圖10 (a)不同pH的PBS中LEV在Au@N-CDs/GCE上的循環(huán)伏安圖;(b)檢測(cè)LEV的反應(yīng)機(jī)理圖Fig.10 (a)Cyclic voltammogram of LEV on Au@N-CDs/GCE in phosphate buffer solution with different pH;(b)Reaction mechanism for detecting LEV

    以Au@N-CDs/GCE為工作電極,以差分脈沖伏安法(DPV)測(cè)定LEV,結(jié)果如圖11(a)和11(b)。在2.5×10-6~1.0×10-4mol/L內(nèi),LEV的Ip值與濃度c呈良好的線性關(guān)系,線性回歸方程為:Ip(μA)=0.08455c(μmol/L)+4.102(R=0.9907),檢出限(3σ/k)為1.0×10-6mol/L。

    圖11 (a) Au@N-CDs/GCE測(cè)定2.5、3.5、6.0、8.0、10、16、20、30、40、60、80、100 μmol/L LEV的差分脈沖伏安法圖;(b)不同LEV濃度和LEV氧化峰電流Ip之間的關(guān)系圖Fig.11 (a) Differential pulse voltammogram of LEV(0.25 - 100 μmol/L) on Au@N-CDs/GCE;(b)Relationship between concentrations and oxidation peak current Ip for LEV

    同樣制備6根電極考察Au@N-CDs/GCE對(duì)LEV檢測(cè)的重現(xiàn)性,測(cè)定1.0×10-5mol/L的LEV,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為2.98%,因此Au@N-CDs/GCE對(duì)LEV檢測(cè)有較好的重現(xiàn)性。

    同時(shí)也研究了其他抗生素作為干擾物質(zhì)對(duì)于LEV電化學(xué)信號(hào)的影響。先檢測(cè)LEV濃度為5.0×10-5mol/L的氧化峰電流,后再向LEV溶液中加入相同含量的利福平、羅紅霉素、紅霉素。上述物質(zhì)對(duì)LEV電化學(xué)行為無(wú)明顯影響,這表明Au@CDs/GCE對(duì)檢測(cè)LEV具有一定的抗干擾能力。這可能是利福平電化學(xué)檢測(cè)氧化還原電位差較大[30],因此利福平不干擾左氧氟沙星的電化學(xué)信號(hào)。羅紅霉素、紅霉素因其無(wú)-COOH,故其吸附力較小,對(duì)LEV干擾也較小。

    2.4 人體尿液樣品分析

    LEV在血漿和尿液中的立體化學(xué)結(jié)構(gòu)穩(wěn)定,人體對(duì)LEV的代謝量很低,主要從尿中排出。因此,對(duì)稀釋處理后購(gòu)置的高濃度質(zhì)控人體尿液采用標(biāo)準(zhǔn)加入法,測(cè)試Au@N-CDs/GCE對(duì)LEV電化學(xué)檢測(cè)的實(shí)際應(yīng)用能力,計(jì)算LEV的回收率和相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)。實(shí)驗(yàn)結(jié)果如表1所示,所獲得的樣品回收率為93.0%~107.4%,且RSD在6.8%之內(nèi),因此Au@N-CDs/GCE具有應(yīng)用于人體尿樣和廢水中LEV測(cè)定的可行性。

    表1 樣品中LEV的檢測(cè)結(jié)果

    3 結(jié)論

    本研究制備的Au@N-CDs納米復(fù)合材料,在pH=6.0的PBS中測(cè)定LEV的含量,在電位0.4 V下富集125 s后測(cè)試效果較好,Au@N-CDs/GCE檢測(cè)LEV線性范圍為2.5×10-6~1.0×10-4mol/L,檢出限為1.0×10-6mol/L。Au@N-CDs/GCE檢測(cè)LEV同時(shí),對(duì)利福平,羅紅霉素、紅霉素有抗干擾作用,對(duì)人工尿液采用標(biāo)準(zhǔn)加入法,證明了Au@N-CDs/GCE在尿液和廢水中LEV檢測(cè)的可行性。

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