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    產(chǎn)紫丁香苷內(nèi)生真菌CJ7的鑒定及發(fā)酵條件研究

    2022-09-29 13:55:38尤夢(mèng)瑤閆佳佳劉松梅鄭春英
    中國農(nóng)學(xué)通報(bào) 2022年25期
    關(guān)鍵詞:紫丁香刺五加氮源

    張 赫,尤夢(mèng)瑤,萬 璐,閆佳佳,劉松梅,鄭春英

    (1黑龍江大學(xué)/農(nóng)業(yè)微生物技術(shù)教育部工程研究中心,哈爾濱 150500;2黑龍江大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院/黑龍江省普通高校微生物重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,哈爾濱 150080)

    0 引言

    刺五加為五加科植物刺五加(Acanthopanax senticosus)的干燥根及根莖或莖,具有益氣健脾、補(bǔ)腎安神的功效[1],是藥食兩用功能性保健食品。刺五加富含苷類[2]、黃酮[3]、多糖[4]、有機(jī)酸、木脂素、香豆素[5]等多種活性化學(xué)成分,具有抗疲勞[6]、抗炎[7]、抗腫瘤[8]、抗抑郁[9]、降壓[10]、保肝[11]、降糖[12]等作用,廣泛用于醫(yī)藥和食品行業(yè)。

    刺五加主產(chǎn)于黑龍江,寒地黑土造就了刺五加的特有品質(zhì),現(xiàn)已成為寒地龍藥的領(lǐng)軍品種,享譽(yù)國內(nèi)外。刺五加需求量上漲,森林面積逐漸減少以及盲目的采挖,使刺五加資源面臨考驗(yàn),目前刺五加是國家二級(jí)瀕危物種,三級(jí)重點(diǎn)保護(hù)品種[13]。盡管栽培種植在某種程度上緩解了刺五加的使用,但刺五加生長(zhǎng)周期長(zhǎng),種植戶資金回籠慢,尋找生產(chǎn)刺五加次生代謝產(chǎn)物的新方法已成為研究熱點(diǎn)。

    植物內(nèi)生菌可以產(chǎn)生與宿主植物相同或相似的次生代謝產(chǎn)物[14],將甘草內(nèi)生菌作為發(fā)酵菌株,采用微生物發(fā)酵法生產(chǎn)刺五加次生代謝產(chǎn)物,對(duì)開發(fā)新資源、生產(chǎn)新型保健食品及開發(fā)新藥具有重要意義。筆者以分離自刺五加根部的內(nèi)生真菌CJ7為研究對(duì)象,對(duì)其進(jìn)行次生代謝產(chǎn)物篩選及抑菌活性研究,并對(duì)其發(fā)酵工藝進(jìn)行優(yōu)化;同時(shí),對(duì)其進(jìn)行菌種鑒定,旨在為采用微生物發(fā)酵法生產(chǎn)刺五加次生代謝產(chǎn)物提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    供試菌為內(nèi)生真菌CJ7,分離自黑龍江省帽兒山區(qū)野生刺五加根部;NA、PDA培養(yǎng)基配制方法參閱文獻(xiàn)[15-16];金黃色葡萄球菌等11株受試菌購于黑龍江省微生物研究所;ITS序列通用引物ITS1、ITS4由上海生物工程有限公司合成;除液相用甲醇為色譜純級(jí)別,其他試劑均為分析純。

    1.2 儀器與設(shè)備

    FL2200型高效液相色譜儀(浙江溫嶺福立分析儀器有限公司),HZQ-C空氣浴振蕩器(哈爾濱市東明醫(yī)療儀器廠)。

    1.3 方法

    1.3.1 發(fā)酵液的制備 無菌條件下,取已活化的內(nèi)生真菌CJ7,加無菌水適量,制成1×107CFU/mL種子液;取CJ7種子液,以2%(v/v)接種至裝液量為50 mL PDA培養(yǎng)基后,置于空氣浴搖床中培養(yǎng)14天(28℃,140 r/min),終止發(fā)酵,抽濾,取濾液,作為發(fā)酵液供試品備用。

    1.3.2 內(nèi)生真菌CJ7發(fā)酵液活性成分分析 HPLC檢測(cè)條件:VenusilXBP-C18柱(4.6mm×250mm,5μm,USA),流動(dòng)相為甲醇-水-冰醋酸(15:85:1),流速1 mL/min,柱溫25℃,檢測(cè)波長(zhǎng)269 nm。

    (1)供試品液的制備。取“1.3.1”發(fā)酵液供試品10 mL,減壓回收至干(50℃,0.1 MPa),加1 mL甲醇溶解后,過濾(0.22 μm微孔濾膜過濾),取濾液作為供試品溶液。

    (2)對(duì)照品液的制備。精密稱取紫丁香苷對(duì)照品適量,加甲醇溶解后,使紫丁香苷形成1 mg/mL的對(duì)照品溶液備用。

    (3)空白對(duì)照品液的制備。取PDA培養(yǎng)基10 mL,同“1.3.2(1)”法制成空白對(duì)照品液。

    (4)分別取供試品液、對(duì)照品液及空白對(duì)照品液各10 μL注入HPLC儀器進(jìn)行分析。

    1.3.3 內(nèi)生真菌CJ7抑菌活性分析 取“1.3.1”發(fā)酵液,凍干,稱取適量,加甲醇溶解后制成0.1 mg/mL甲醇提取物,分別以100 μg/mL鏈霉素和制霉素作為陽性對(duì)照,以甲醇溶液為空白對(duì)照,參閱文獻(xiàn)[17],采用瓊脂擴(kuò)散法對(duì)內(nèi)生真菌CJ7發(fā)酵液進(jìn)行抗菌活性分析。

    1.3.4 內(nèi)生真菌CJ7發(fā)酵條件優(yōu)選

    (1)單因素實(shí)驗(yàn)。

    ①接種量對(duì)抑菌活性的影響。取“1.3.1”1×107CFU/mL種子液分別依次按1%、2%、3%、4%、5%(v/v)比例接種到50 mL初始pH 7.0的PDA培養(yǎng)基中,發(fā)酵培養(yǎng)8天(28℃,120 r/min),按“1.3.3”測(cè)定發(fā)酵液對(duì)鮑曼不動(dòng)桿菌(Acinetobacter baummanii)抑菌活性(n=3)。

    ②裝液量對(duì)抑菌活性的影響。將“1.3.1”1×107CFU/mL種子液以2%(v/v)的接種量分別接入到裝有20、30、40、50、60 mL初始pH 7.0的PDA培養(yǎng)基中,發(fā)酵培養(yǎng)8天,其他操作同“1.3.4(1)①”。

    ③初始pH對(duì)抑菌活性的影響。將“1.3.1”1×107CFU/mL種子液以2%(v/v)的接種量接入到裝有50mL初始pH分別為4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0的PDA培養(yǎng)基中,發(fā)酵培養(yǎng)8天,其他操作同“1.3.4(1)①”。

    ④發(fā)酵時(shí)間對(duì)抑菌活性的影響。將“1.3.1”1×107CFU/mL種子液以2%(v/v)的接種量接入到裝有50mL初始pH 7.0的PDA培養(yǎng)基中,分別發(fā)酵培養(yǎng)4、6、8、10、12天,其他操作同“1.3.4(1)①”。

    ⑤搖床轉(zhuǎn)數(shù)對(duì)抑菌活性的影響。將“1.3.1”1×107CFU/mL種子液以2%(v/v)的接種量接入到裝有50mL初始pH 7.0的PDA培養(yǎng)基中,分別發(fā)酵培養(yǎng)8天,搖床轉(zhuǎn)數(shù)分別為100、120、140、160、180、200 r/min,其他操作同“1.3.4(1)①”。

    ⑥發(fā)酵溫度對(duì)抑菌活性的影響。將“1.3.1”1×107CFU/mL種子液以2%(v/v)的接種量接入到裝有50mL初始pH 7.0的PDA培養(yǎng)基中,發(fā)酵培養(yǎng),搖床溫度分別設(shè)定為24、26、28、30、32℃,其他操作同“1.3.4(1)①”。

    ⑦碳源對(duì)抑菌活性的影響。分別選用2%(m/v)的葡萄糖、麥芽糖、蔗糖、乳糖、蔗糖做為碳源制備“1.1”PDA培養(yǎng)基,并將“1.3.1”1×107CFU/mL種子液以2%(v/v)的接種量分別接入到裝有50 mL初始pH 7.0的培養(yǎng)基中,發(fā)酵培養(yǎng)8天,其他操作同“1.3.4(1)①”。觀察不同質(zhì)量濃度的碳源對(duì)抑菌活性的影響(n=3)。

    ⑧氮源對(duì)抑菌活性的影響。分別選用牛肉膏、蛋白胨、酵母膏、豆粉、(NH4)2SO4為氮源,加入到“1.1”PDA培養(yǎng)基中,其他條件及發(fā)酵培養(yǎng)同“1.3.4(1)①”。觀察不同質(zhì)量濃度的氮源對(duì)抑菌活性的影響(n=3)。

    (2)正交實(shí)驗(yàn)。根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)篩選結(jié)果,選取碳源濃度、氮源濃度、接種量和發(fā)酵時(shí)間4個(gè)因素作為實(shí)驗(yàn)因素,采用[L9(34)]正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)優(yōu)化發(fā)酵條件,因素水平見表1。

    表1 正交實(shí)驗(yàn)因素和水平

    1.3.5 內(nèi)生真菌CJ7的鑒定

    (1)內(nèi)生真菌CJ7形態(tài)學(xué)觀察。參閱文獻(xiàn)[18],觀察CJ7于平板PDA培養(yǎng)基(28℃,8天)上菌落形狀、顏色、濃密程度、基內(nèi)菌絲形態(tài)及是否產(chǎn)色素等;同時(shí),取CJ7 PDA平板(培養(yǎng)3天),將無菌蓋玻片傾斜扦入該平板中,繼續(xù)培養(yǎng)5天后取出,鑷取蓋玻片,置顯微鏡下觀察,初步確定菌株的分類地位[19]。

    (2)內(nèi)生真菌CJ7 ITS序列分析。參閱文獻(xiàn)[20]的方法提取菌株CJ7 DNA,PCR產(chǎn)物純化,測(cè)序(委托上海生工生物工程股份有限公司完成)。所測(cè)得序列提交GenBank數(shù)據(jù)庫,利用MEGA7構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,確定CJ7菌株的分類地位。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 內(nèi)生真菌CJ7發(fā)酵液活性成分分析

    由圖1可知,在內(nèi)生真菌CJ7發(fā)酵液中,在與紫丁香苷對(duì)照品相應(yīng)的保留時(shí)間位置出現(xiàn)相同的色譜峰,而且色譜峰經(jīng)過對(duì)照品加入法得到了較好確認(rèn),且空白對(duì)照無干擾。由此說明,內(nèi)生真菌CJ7為紫丁香苷產(chǎn)生菌。

    圖1 CJ7發(fā)酵液活性成分分析結(jié)果

    2.2 內(nèi)生真菌CJ7抑菌活性分析結(jié)果

    由表2可以看出,刺五加內(nèi)生真菌CJ7對(duì)10株致病細(xì)菌均有一定的抑制作用,尤其對(duì)鮑曼不動(dòng)桿菌(Acinetobacter baummanii)抑制作用最強(qiáng)。

    表2 CJ7抑菌活性分析結(jié)果mm

    2.3 內(nèi)生真菌CJ7發(fā)酵條件優(yōu)選結(jié)果

    2.3.1 單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果

    (1)接種量對(duì)抑菌活性的影響結(jié)果。由圖2可知,隨著CJ7接種量的增加,其發(fā)酵液的抑菌活性逐漸增強(qiáng),當(dāng)接種量在2%時(shí),CJ7的抑菌活性達(dá)到最強(qiáng),此后抑菌活性開始減弱??赡苁怯捎贑J7接種量的增加使菌株生長(zhǎng)密度增大,不利于抑菌活性物質(zhì)的產(chǎn)生。

    圖2 接種量對(duì)抑菌活性影響

    (2)裝液量對(duì)抑菌活性的影響結(jié)果。由圖3可以看出,裝液量在20%~40%范圍變化時(shí),CJ7抑菌活性逐漸增強(qiáng),當(dāng)裝液量持續(xù)增加時(shí),抑菌活性開始減弱,這與溶氧量有關(guān),適度的溶氧量可以促進(jìn)抑菌活性的產(chǎn)生。

    圖3 裝液量對(duì)抑菌活性影響

    (3)初始pH對(duì)抑菌活性的影響結(jié)果。由圖4可以看出,當(dāng)發(fā)酵液初始由pH 4.0增至pH 8.0時(shí),CJ7抑菌活性出現(xiàn)先增強(qiáng)后減弱的趨勢(shì),當(dāng)初始pH 7.0時(shí),發(fā)酵液抑菌活性最強(qiáng),抑菌圈直徑為(23.32±0.04)mm左右,此后,隨著初始pH的增加,CJ7抑菌活性開始出現(xiàn)減弱。上述結(jié)果說明,CJ7最適初始為pH 7.0。

    圖4 初始pH對(duì)抑菌活性影響

    (4)培養(yǎng)時(shí)間對(duì)發(fā)酵液抑菌活性的影響。由圖5可知,在不同的發(fā)酵時(shí)間下,CJ7的抑菌活性表現(xiàn)出先增強(qiáng)后減弱的趨勢(shì),這可能是由于CJ7菌株在發(fā)酵時(shí)間內(nèi)處于不同生長(zhǎng)期,產(chǎn)生次生代謝產(chǎn)物的量有所不同。當(dāng)培養(yǎng)時(shí)間為8天時(shí),CJ7的抑菌活性最強(qiáng)。

    圖5 發(fā)酵時(shí)間對(duì)抑菌活性影響

    (5)搖床轉(zhuǎn)數(shù)對(duì)抑菌活性的影響結(jié)果。由圖6可知,CJ7的抑菌活性隨搖床轉(zhuǎn)數(shù)的增長(zhǎng)表現(xiàn)出先增強(qiáng)后減弱的趨勢(shì),當(dāng)搖床轉(zhuǎn)數(shù)為120 r/min時(shí)抑菌活性最強(qiáng),但搖床轉(zhuǎn)數(shù)過快也會(huì)影響CJ7菌株的正常生長(zhǎng),這與搖床轉(zhuǎn)速協(xié)同裝液量完成液態(tài)培養(yǎng)基中氧的溶解有關(guān)。

    圖6 搖床轉(zhuǎn)數(shù)對(duì)抑菌活性影響

    (6)發(fā)酵溫度對(duì)抑菌活性的影響結(jié)果。由圖7可以看出,CJ7的抑菌活性隨發(fā)酵培養(yǎng)的溫度增加而呈現(xiàn)先增強(qiáng)后減弱的趨勢(shì),但發(fā)酵溫度為28℃時(shí)其抑菌活性最強(qiáng)。由此說明,發(fā)酵溫度過低或過高都不利于CJ7抑菌活性物質(zhì)的產(chǎn)生。

    圖7 發(fā)酵溫度對(duì)抑菌活性的影響

    (7)碳源對(duì)抑菌活性的影響結(jié)果。由圖8可知,不同碳源對(duì)菌株CJ7抑菌活性不同,當(dāng)選取葡萄糖為碳源時(shí),CJ7菌株的抑菌活性最強(qiáng),因此選用葡萄糖作為培養(yǎng)基的碳源。

    圖8 碳源質(zhì)量濃度對(duì)發(fā)酵液抑菌活性影響

    (8)氮源對(duì)抑菌活性的影響結(jié)果。由圖9可知,CJ7的抑菌活性與氮源的選擇和濃度有關(guān),當(dāng)牛肉膏作為氮源時(shí),CJ7菌株發(fā)酵液的抑菌活性最強(qiáng),因此選用牛肉膏作為培養(yǎng)基的氮源。

    圖9 氮源對(duì)抑菌活性影響

    2.3.2 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果 由表3~4可知,影響CJ7抑菌活性的因素順序?yàn)樘荚促|(zhì)量濃度>氮源質(zhì)量濃度>接種量>發(fā)酵時(shí)間,其中碳源質(zhì)量濃度對(duì)CJ7抑菌活性的影響極顯著,氮源質(zhì)量濃度對(duì)抑菌活性影響顯著,接種量和發(fā)酵時(shí)間對(duì)抑菌活性無顯著影響,CJ7的最優(yōu)發(fā)酵條件為A2B3C2D2,即氮源(牛肉膏)質(zhì)量濃度2%,碳源(葡萄糖)質(zhì)量濃度2.5%,接種量為2%(v/v),培養(yǎng)8天。綜合單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,CJ7最佳發(fā)酵條件為2%牛肉膏,2.5%葡萄糖,接種量2%,裝液量40%,初始pH 7.0,培養(yǎng)8天,搖床轉(zhuǎn)數(shù)120 r/min。

    表3 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果

    表4 方差分析

    分別采用最佳發(fā)酵條件及“1.3.1”項(xiàng)發(fā)酵條件將內(nèi)生真菌CJ7發(fā)酵培養(yǎng)后進(jìn)行抑菌實(shí)驗(yàn),結(jié)果表明,采用最佳發(fā)酵工藝條件培養(yǎng)CJ7后,其抑菌活性為(30.83±0.15)mm,比未經(jīng)優(yōu)選發(fā)酵工藝組的抑菌活性高4.32 mm。

    2.4 內(nèi)生真菌CJ7的鑒定結(jié)果

    2.4.1 內(nèi)生真菌CJ7形態(tài)學(xué)觀察結(jié)果 CJ7菌落在培養(yǎng)7天后,菌落直徑為8 cm左右,白色,漸變成灰綠色,中心凸起,菌落致密,毯狀、全緣,無滲出物(圖10A);CJ7產(chǎn)分生孢子,頭呈圓柱狀,梗細(xì)長(zhǎng)、無分支,上部有膨大頂囊,其表面布滿放射狀的小梗,小梗著生單輪,上有球形分生孢子(圖10B)。

    圖10 內(nèi)生真菌CJ7形態(tài)學(xué)觀察結(jié)果

    2.4.2 內(nèi)生真菌CJ7 ITS序列分析結(jié)果 刺五加內(nèi)生真菌CJ7 DNA PCR擴(kuò)增后獲得1條550 bp的特異性條帶,將測(cè)序結(jié)果在GenBank中進(jìn)行Blast同源性比對(duì),然后用MEGA7軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(圖11),內(nèi)生真菌CJ7序列與曲霉屬煙曲霉(Aspergillus fumigatusFJ810102.1)的相似性達(dá)到98%,序列的同源相似性為99%。綜合CJ7形態(tài)學(xué)觀察結(jié)果,將刺五加內(nèi)生真菌CJ7鑒定為煙曲霉。

    圖11 內(nèi)生真菌CJ7系統(tǒng)發(fā)育樹

    3 結(jié)論與討論

    從刺五加根部分離得到1株可以產(chǎn)紫丁香苷的內(nèi)生真菌CJ7,紫丁香苷是刺五加的指標(biāo)性成分,具有抗炎[21]、抗腫瘤[22]及神經(jīng)保護(hù)[23]等多種活性。此外,該菌株具有較好的抑菌活性,其發(fā)酵工藝經(jīng)優(yōu)化后,最佳發(fā)酵條件為培養(yǎng)基中葡萄糖質(zhì)量濃度2.5%,牛肉膏質(zhì)量濃度2.0%,初始pH 7.0,裝液量40%,接種量2%,培養(yǎng)8天,搖床轉(zhuǎn)數(shù)120 r/min,發(fā)酵溫度為28℃。以抑菌圈的直徑作為抑菌作用指標(biāo),在上述條件下,CJ7抑菌活性比未優(yōu)化前提高了4.32 mm;內(nèi)生真菌CJ7鑒定為煙曲霉(Aspergillus fumigatus)。

    近年來,關(guān)于刺五加內(nèi)生菌的研究工作逐漸增多,但大多集中于刺五加內(nèi)生細(xì)菌[24]、內(nèi)生真菌[25]及內(nèi)生放線菌[26]的分離鑒定及抑菌[27]、抗氧化[28]等方面,且進(jìn)行刺五加內(nèi)生菌的分離鑒定工作時(shí)沒有明確的方向,所分離出的刺五加內(nèi)生菌僅邢朝斌等[29]將刺五加內(nèi)生菌株P(guān)312-1回接到刺五加植株,回接4個(gè)多月后發(fā)現(xiàn),刺五加根部和莖部中刺五加苷B含量出現(xiàn)顯著提高,說明刺五加內(nèi)生菌在其次生代謝產(chǎn)物生物合成過程中起重要的調(diào)控作用。

    筆者基于刺五加次生代謝產(chǎn)物紫丁香苷的生物合成,以紫丁香苷為對(duì)照,對(duì)刺五加內(nèi)生真菌CJ7進(jìn)行次生代謝產(chǎn)物篩選,并對(duì)其發(fā)酵工藝采用正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)進(jìn)行了優(yōu)化,正交實(shí)驗(yàn)以直觀的方式反映出工藝參數(shù)對(duì)內(nèi)生真菌CJ7次生代謝產(chǎn)物紫丁香苷的影響。在工藝篩選過程中,有學(xué)者采用響應(yīng)面法進(jìn)行優(yōu)化設(shè)計(jì)。在今后的研究中,本課題組將進(jìn)一步運(yùn)用響應(yīng)面法對(duì)刺五加內(nèi)生真菌CJ7的次生代謝產(chǎn)物篩選及發(fā)酵工藝進(jìn)行優(yōu)化,將為開發(fā)利用刺五加內(nèi)生真菌CJ7,并采用微生物發(fā)酵法生產(chǎn)紫丁香苷提供參考。

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