王 吉, 張 鑫, 胡靜榮, 于智慧, 朱迎春
(山西農(nóng)業(yè)大學食品科學與工程學院,晉中 030800)
發(fā)酵肉制品是指將禽畜肉或水產(chǎn)品等原料按照一定的肥瘦比例進行絞碎,與鹽、糖、亞硝酸鈉、發(fā)酵劑和香辛料等混合均勻后,在特定條件下利用微生物發(fā)酵制成的一種具有特殊發(fā)酵風味、營養(yǎng)豐富、易于保存的肉制品[1]。
脂質(zhì)是發(fā)酵肉制品的重要成分之一,肉制品在發(fā)酵成熟過程中,脂質(zhì)降解產(chǎn)生游離脂肪酸,尤其是多不飽和脂肪酸,極大提高了發(fā)酵香腸的營養(yǎng)價值[2]。脂肪降解產(chǎn)生的游離脂肪酸經(jīng)過氧化作用生成羰基化合物,從而產(chǎn)生了醇類、酮類、醛類等風味物質(zhì)[3]。有研究表明[4, 5],脂肪酶通過催化肉制品中脂質(zhì)的分解,提高了游離脂肪酸的含量,從而促進風味前體物質(zhì)的產(chǎn)生。在發(fā)酵過程中,微生物對脂質(zhì)的水解起著重要的作用。李想等[6]發(fā)現(xiàn)腐生葡萄球菌可以促進發(fā)酵肉中脂質(zhì)的水解。劉英麗等[7]報道了乳酸菌在薩米拉發(fā)酵香腸中的作用,指出乳酸菌可以促進香腸中脂質(zhì)的降解。Xiao等[8]報道接種植物乳桿菌和木糖葡萄球菌可以促進游離脂肪酸的釋放。脂質(zhì)適度的氧化,有助于發(fā)酵肉制品風味的形成[9]。然而,脂質(zhì)的過度氧化會導致產(chǎn)品酸敗、質(zhì)地和顏色的改變、微生物的生長、食用品質(zhì)的降低和保質(zhì)期的縮短[10]。有研究人員通過在制作發(fā)酵肉制品中添加一些抗氧化劑來抑制脂質(zhì)的過度氧化[11]。也有研究人員采用具有抗氧化性的菌株作為發(fā)酵劑來抑制脂質(zhì)的過度氧化,如韓飛云等[12]報道,在發(fā)酵羊肉香腸中接種復配發(fā)酵劑(木糖葡萄球菌和植物乳桿菌)可以顯著降低TBARS值。
本實驗從實驗室保藏的12株發(fā)酵菌株中篩選具有產(chǎn)脂肪酶的菌株,對菌株表達脂肪酶的基因進行定性和定量分析,研究培養(yǎng)基初始pH、培養(yǎng)溫度、時間、接菌量對油脂降解率的影響,并對菌株進行抗氧化分析,旨在篩選出同時具備脂解能力和抗氧化活性的菌株,為提高發(fā)酵香腸的營養(yǎng)價值和改善發(fā)酵香腸的風味提供技術支持,為開發(fā)具有我國自主知識產(chǎn)權的新型發(fā)酵劑提供參考。
1.1.1 材料與試劑
山西農(nóng)業(yè)大學食品科學與工程學院畜產(chǎn)品實驗室保藏的12株菌株,前期經(jīng)過分離、純化和16S rDNA鑒定,種屬關系明確,分別為:2株戊糖片球菌(Pediococcuspentosaceus)MGC2、MSZ1, 3株巨球菌(Macrococcuscaseolyticus)YZC2、YZC3、YXN2,2株木糖葡萄球菌(Staphylococcusxylosus)YSZ11、YCC3,1株植物乳桿菌(Lactobacillusplantarum)MSZ2,1株表皮葡萄球菌(Staphylococcusepidermidis)MYJC2,2株腐生葡萄球菌(Staphylococcussaprophyticus)YCC2、YRC1,1株屎腸球菌(Enterococcusfaecium)MRC2。
無水乙醇、硫酸亞鐵、鐵氰化鉀、三氯化鐵、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉,1,1-二苯基-2-三硝基苯肼自由基、沒食子酸、水楊酸均為分析純;RNA試劑盒、TB GreenTM Premix Ex TaqTMⅡ定量試劑盒、反轉(zhuǎn)錄試劑盒。
1.1.2 培養(yǎng)基
中性紅油脂培養(yǎng)基(g/L):NaCl 5 g,蛋白胨10 g,大豆油10 g,牛肉膏5 g,1.6%中性紅1 mL;MRS培養(yǎng)基、三丁酸甘油酯培養(yǎng)基、營養(yǎng)肉湯培養(yǎng)基、牛肉膏、蛋白胨、瓊脂粉。
1.1.3 設備與儀器
5804R高速冷凍離心機,HPP-9272電熱恒溫培養(yǎng)箱,ST2100 pH計,UV-1100分光光度計,SW-CJ-2FD雙人單面超凈化工作臺,LDZX-50KBS立式高壓蒸汽滅菌器,LC96實時定量 PCR 儀,NanoDrop2000核酸蛋白分析儀。
1.2.1 菌株產(chǎn)脂肪酶能力篩選
參照Griebeler等[13]的方法,利用中性紅油脂平板法和三丁酸甘油酯平板法篩選具有產(chǎn)脂肪酶能力的菌株。
1.2.2 菌株脂肪酶基因相關基因表達量的檢測
用細菌RNA提取試劑盒提取菌株RNA,并用核酸蛋白分析儀對RNA濃度和純度進行檢測。將所提取的RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA,保存于-20 ℃?zhèn)溆谩=?jīng)過NCBI查詢,葡萄球菌和巨球菌編碼脂肪酶的相關基因為FJ979867.1、FJ979868.1、AY551101.1。進行設計并合成相應的引物,實時定量PCR引物見表1。3個基因為實驗基因,18S為內(nèi)參基因,cDNA作為模板進行定量PCR擴增,反應體系為: 25 μL TB GreenTMPremix Ex TaqTMⅡ,2 μL上游引物,2 μL下游引物,2 μL cDNA,R Nase Free dH2O 19 μL[14];PCR反應條件見表2。采用2-ΔΔCt計算基因的相對表達量。
表1 實時定量PCR引物
表2 PCR反應條件
1.2.3 初始pH對菌株產(chǎn)脂肪酶的影響
篩選出的菌株在營養(yǎng)肉湯中培養(yǎng)48 h,將菌株稀釋到8 log10CFU/mL后接種到pH分別為5、6、7的三丁酸甘油酯平板中,在37 ℃下培養(yǎng)48 h。測量透明圈的大小來判定pH對菌株產(chǎn)脂肪酶能力的影響。
1.2.4 菌株培養(yǎng)溫度對油脂降解率的影響
篩選出的菌株在營養(yǎng)肉湯中培養(yǎng)48 h,稀釋到8 log10CFU/mL后按體積分數(shù)為0.2%分別接種到含有質(zhì)量分數(shù)為2%油脂的營養(yǎng)肉湯中,在不同溫度(27、32、37、42 ℃)下培養(yǎng)48 h,然后用25 mL石油醚對油脂萃取3次,收集有機相并且用無水硫酸鈉吸取殘留的水分,用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀去除有機溶劑,然后置于(60±2)℃的烘箱中烘干,稱量剩余油脂的質(zhì)量。計算公式為:
1.2.5 菌株培養(yǎng)時間對油脂降解率的影響
篩選出的菌株在營養(yǎng)肉湯中培養(yǎng)48 h,將其稀釋到8 log10CFU/mL后按體積分數(shù)為0.2%分別接種到含有質(zhì)量分數(shù)為2%油脂的營養(yǎng)肉湯中,在37 ℃下培養(yǎng),分別在24、36、48、60 h測定油脂的降解率。
1.2.6 接菌量對油脂降解率的影響
篩選出的菌株在營養(yǎng)肉湯中培養(yǎng)48 h,稀釋到8 log10CFU/mL后分別按照按體積分數(shù)為0.10%、0.15%、0.20%、0.25%的接種量接種到含有質(zhì)量分數(shù)為2%油脂的液體培養(yǎng)基中,在37 ℃下培養(yǎng)48 h測定油脂的降解率。
1.2.7 菌株發(fā)酵液抗氧化性分析
參照李權威等[15]的方法進行測定。在營養(yǎng)肉湯中接種體積分數(shù)為2%篩選出的菌株,37 ℃培養(yǎng)48 h后離心(10 000 g,15 min)得到上清液,進行抗氧化指標測定。DPPH自由基清除率參照馮美琴等[16]的方法測定。羥自由基清除率參照王靜等[17]的方法測定。超氧陰離子自由基清除率參照Fonagy等[18]的方法測定。總還原力測定參照馮艷鈺等[19]的方法測定。
1.2.8 數(shù)據(jù)處理與分析
所有實驗均做3個平行,結(jié)果以平均數(shù)值±標準差表示。通過Statistix 8.1 進行顯著性差異分析(顯著水平為P<0.05);通過Origin 9.0軟件繪制圖片。
通過油脂中性紅平板顏色的變化可定性分析菌株是否具有產(chǎn)脂肪酶的能力[20]。如果平板顏色未發(fā)生變化,說明菌株產(chǎn)酶能力弱或者不具備產(chǎn)酶能力;如果平板顏色發(fā)生變化,說明該菌可以分泌脂肪酶,油脂在脂肪酶的作用下分解成脂肪酸,使平板顏色變?yōu)榧t色。產(chǎn)脂肪酶定性實驗結(jié)果見表3。菌株YZC2、YSZ11、YCC3、YZC3、YCC2可以使中性紅平板變?yōu)榧t色,說明這5株菌株具有分泌脂肪酶的能力;菌株MGC2、MRC2、YXN2、MSZ1、MSZ2、YRC1、YMJC2未使中性紅平板變色,說明這7株菌分泌脂肪酶的能力弱或不具備分泌能力。
表3 產(chǎn)脂肪酶定性實驗結(jié)果
菌株產(chǎn)脂肪酶能力實驗見表4,5株菌株均能夠分解三丁酸甘油酯產(chǎn)生透明圈,5株菌株的透明圈直徑與菌落直徑比值(D/d)為1.78~2.29,其中菌株YCC3、YZC2、YCC2D/d值>2,說明脂肪酶活力較強,特別是菌株YCC3的D/d值最高,達到2.29。故選取YCC3、YZC2、YSZ11、YZC3、YCC2這5株菌株進行后續(xù)實驗。
表4 菌株產(chǎn)脂肪酶能力實驗
從NCBI上查閱到葡萄球菌和巨球菌編碼脂肪酶的基因并對菌株DNA進行了擴增,只對FJ979867.1、 AY551101.1、FJ979868.1這3種基因擴增成功。由表5可見,含有編碼脂肪酶基因FJ979867.1的菌株有YCC2、YCC3;含有編碼脂肪酶基因 AY551101.1的菌株有YSZ11、YCC2、YCC3、YZC3;含有編碼脂肪酶基因FJ979868.1的菌株有YSZ11、YCC2、YCC3、YZC2、YZC3。
表5 5株菌株編碼脂肪酶相關基因的定性結(jié)果
菌株脂肪酶基因的相對表達量如圖1所示,F(xiàn)J979867.1的相對表達量在菌株YCC2中最高,顯著高于菌株YCC3(P<0.05),但是在其他3株菌株中均無表達。FJ979868.1在菌株YCC2、YCC3、YSZ11、YZC3中相對表達量在0.309~0.570之間,在菌株YZC2中無表達。AX551101.1在5株菌株中均有所表達,且YCC2和YSZ11的表達量顯著高于其他3株菌株(P<0.05)。5株菌株比較,菌株YCC2的3種脂肪酶基因均有所表達,尤其是FJ979867.1和AX551101.1的相對表達量顯著高于其他菌株(P<0.05)。
注:不同大寫字母表示不同菌株對FJ979867.1 的表達量差異顯著(P<0.05);不同小寫字母不同菌株對FJ979868.1的表達量差異顯著(P<0.05);*、**分別表示不同菌株對AX551101.1 的表達量差異顯著(P<0.05)和極顯著(P<0.01);NS表示沒有檢出該基因。圖1 菌株脂肪酶基因的相對表達量
不同pH對菌株產(chǎn)脂肪酶能力的影響如圖2所示,5株菌株脂肪酶活力隨著pH的下降而降低。pH為7時,菌株YZC3、YCC3、YCC2、YSZ11、YZC2D/d值分別1.88、2.18、2.18、1.51、1.55,說明5株菌株在pH為7時具有較高的脂肪酶活性;pH為6時,5株菌株D/d值降低為1.34(YZC3)、1.53(YCC3)、1.81(YCC2)、1.35(YSZ11)、1.36(YZC2),顯著低于(P<0.05)pH為7時的D/d,說明在此條件下,菌株分泌脂肪酶的能力降低且酶活性降低;當pH為5時,僅有菌株YCC2出現(xiàn)透明圈,D/d值為1.57,而菌株YZC3、YZC2、YCC3、YSZ11均未出現(xiàn)透明圈,說明YCC2耐酸性較強,在pH為5時仍舊能夠分泌脂肪酶且表現(xiàn)出較高的活力;而其余4株菌株在pH為6~7時,生長代謝較為活躍,產(chǎn)酶量較高,并且所產(chǎn)脂肪酶有較高活性,但是當pH降低為5時,菌株生長代謝能力減弱,產(chǎn)酶量降低或消失。
注:不同大寫字母表示相同pH不同菌株之間D/d差異顯著(P<0.05);不同小寫字母表示菌株在不同pH D/d差異顯著(P<0.05)。圖2 不同pH對菌株產(chǎn)脂肪酶能力的影響
培養(yǎng)溫度對油脂降解率的影響如圖3所示。5株菌株隨著培養(yǎng)溫度的升高油脂降解率均呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢。溫度對菌株YCC2、YCC3的油脂降解率影響顯著(P<0.05),并且在37 ℃時油脂降解率達到最高,分別為57.34%(YCC2)和49.71%(YCC3)。培養(yǎng)溫度為32~37 ℃時,YZC3、YSZ11油脂降解率維持在較高水平,而菌株YZC2在32 ℃下培養(yǎng)油脂降解率最高,達到16.12%。
注:不同大寫字母表示相同培養(yǎng)條件不同菌株之間油脂降解率差異顯著(P<0.05);不同小寫字母表示菌株在不同培養(yǎng)條件油脂降解率差異顯著(P<0.05),下同。圖3 培養(yǎng)溫度對油脂降解率的影響
培養(yǎng)時間對油脂降解率的影響如圖4所示,隨著培養(yǎng)時間的延長,油脂的降解率呈現(xiàn)先顯著上升后趨于平緩的趨勢。除菌株YZC2外,其余4株菌株油脂降解率培養(yǎng)48 h與60 h時無顯著性差異(P<0.05),說明此時酶活力較弱,油脂降解能力低。5株菌株在培養(yǎng)60 h時,油脂降解率排序為:YCC2>YCC3>YZC3>YSZ11>YZC2。
圖4 培養(yǎng)時間對油脂降解率的影響
如圖5所示,隨著接菌量的增加,油脂降解率不斷提高,當接菌量為0.20%時,5株菌株對油脂的降解率均達到最高,YZC3、YCC3、YCC2、YSZ11、YZC2降解率范圍為14.57%~56.57%。當繼續(xù)加大接種量時,油脂的降解率開始下降。
圖5 接菌量對油脂降解率的影響
注:不同大寫字母(A~E)表示差異顯著(P<0.05)。圖6 5株菌株的抗氧化能力
5株菌株的抗氧化能力如圖6所示。如圖6a可見,5株菌株對DPPH自由基均具有清除能力,不同菌株對DPPH自由基清除能力存在差異,菌株YCC3對DPPH自由基清除率最高,為74.96%,其次為菌株YSZ11,DPPH自由基清除率達到66.84%,YZC3的清除率最低為25.04%,僅達到菌株YCC3清除率的33.40%。由圖6b可知,5株菌株對羥自由基均具有清除能力,清除率在19.06%~50.17%之間。其中YCC3對羥自由基清除能力最強,為50.17%,顯著高于其他菌株(P<0.05),YZC2對羥自由基清除能力最弱,為19.06%。由圖6c可知,5株菌株均對超氧陰離子均具有清除能力,且不同菌株之間清除率存在顯著性差異(P<0.05)。YCC3對超氧陰離子自由基清除率最高,為51.79%,顯著高于其他菌株(P<0.05)。圖6d為5株菌株的總還原力測定。可以看出5株菌株均具有還原性,不同菌株總還原力有顯著性差異??傔€原力大小依次是YCC3>YZC3>YZC2>YSZ11>YCC2。綜合發(fā)現(xiàn)5株菌株均具有抗氧化性,且不同菌株抗氧化能力有所差異??傮w而言,菌株YCC3的抗氧化能力最強,菌株YSZ11和YCC2的抗氧化能力次之。
脂肪酶對于發(fā)酵肉制品的營養(yǎng)價值和風味的形成具有十分重要的作用,在發(fā)酵過程中不僅對游離脂肪酸的釋放起主導作用,而且可以在短時間內(nèi)積累大量的風味前體物質(zhì),加速發(fā)酵肉制品的成熟。發(fā)酵肉制品中脂肪酶的來源有兩個途徑:肉組織中的內(nèi)源性脂肪酶和在發(fā)酵過程中微生物分泌的脂肪酶。國內(nèi)外許多研究人員研究了不同源菌株對發(fā)酵肉制品脂質(zhì)分解的影響,發(fā)現(xiàn)葡萄球菌、乳酸菌、微球菌均具有較強的脂質(zhì)降解能力。Kenneally等[21]報道木糖葡萄球可以促進發(fā)酵香腸中游離脂肪酸的釋放,提供更加豐富的風味前體物質(zhì)。Lorenzo等[22]采用商業(yè)發(fā)酵劑制作發(fā)酵香腸,發(fā)現(xiàn)添加發(fā)酵劑(清酒乳桿菌和木糖葡萄球菌)香腸中脂肪酸含量顯著高于對照組(P<0.05)。
菌株是否具有脂解能力與其是否含有編碼脂肪酶的基因緊密相關。根據(jù)NCBI官網(wǎng)查詢,葡萄球菌和巨球菌編碼脂肪酶的相關基因為FJ979867.1、FJ979868.1、AY551101.1,本實驗5株菌株中均發(fā)現(xiàn)了這3種基因,這也是菌株具有脂解能力的原因所在。編碼基因不同,則生成的脂肪酶作用機制不同。如華根霉中基因pro27RCL編碼的脂肪酶對C6-C8中鏈脂肪酸具有分解作用,而基因mRCL編碼的脂肪酶則分解短鏈脂肪酸[23]。此外,有的菌株雖含有相同的編碼基因,但表達量也存在差異。張開屏等[20]對6株具有產(chǎn)脂肪酶性能的乳酸菌進行研究,發(fā)現(xiàn)6株菌株中均具有編碼脂肪酶的基因Lip0069、Lip0893,但不同菌株表達量存在顯著差異(P<0.05),這也是降脂能力存在差異的原因所在。
不僅編碼脂肪酶的基因表達量決定菌株的脂質(zhì)降解能力,培養(yǎng)條件(pH、溫度、時間、接菌量)也對菌株的降脂能力有重要影響。肉制品在發(fā)酵過程中利用微生物分解碳水化合物,產(chǎn)生大量乳酸[24],導致肉中pH降低,因此,菌株和所產(chǎn)脂肪酶的耐酸性需引起重視。本實驗的5株菌株在pH為7時酶活性均較高,但隨著pH的下降,酶活性也隨之下降,只有菌株YCC2表現(xiàn)出較強的耐酸性。Kamarudin等[25]研究報道,表皮葡萄球菌分泌的脂肪酶在中性條件時表現(xiàn)出較高的酶活,隨著pH的降低,其酶活也顯著降低。劉元利等[26]的研究也表明pH為7時沙雷氏菌脂肪酶活性最高。培養(yǎng)溫度也對發(fā)酵菌株的降脂能力有重要影響。本實驗中的5株菌株均在32~37 ℃時油脂降解處于一個較高水平,李曉楠等[27]報道35 ℃是脂肪酶活力較高的溫度,趙興秀等[28]則研究發(fā)現(xiàn)所分離純化的菌株在30 ℃培養(yǎng)時具有最高的酶活力。培養(yǎng)時間和接菌量也顯著影響脂肪酶活性,本實驗中油脂降解率在48 h與60 h無顯著變化,原因可能是培養(yǎng)48 h時,脂肪酶活性已達到最高水平,再增加培養(yǎng)時間反而會使酶活力降低。鄧永平等[29]研究報道顯示酶活力在在72 h時最高,延長至96 h呈下降趨勢。接菌量過高油脂降解率也呈下降趨勢,其原因可能是過高的接種量,使培養(yǎng)基營養(yǎng)物質(zhì)提前耗盡,并且培養(yǎng)基中的氧氣含量不足,菌株提前進入衰亡期,不利于菌株的產(chǎn)酶[30];也可能是接種量過高時,菌株產(chǎn)酸速度加快,較低的pH抑制了脂肪酶的活力。
肉制品發(fā)酵過程中伴隨著脂質(zhì)的水解也會發(fā)生脂質(zhì)的氧化反應。適度的脂質(zhì)氧化,有助于發(fā)酵肉制品風味的形成。然而,脂質(zhì)的過度氧化會降低產(chǎn)品品質(zhì)。因此,具有抗氧化性也是篩選發(fā)酵菌株的一個重要指標。菌株的抗氧化能力來自于兩個方面:其一為菌株本身的抗氧化性,其二為菌株的代謝產(chǎn)物具有抗氧化性。目前對乳酸菌的抗氧化性進行了較多研究,Chen等[31]和Ren等[32]的研究表明乳酸菌上清發(fā)酵液具有抗氧化性,推斷乳酸菌的抗氧化性主要由代謝產(chǎn)物產(chǎn)生。Monica等[33]也報道乳酸菌株在發(fā)酵過程中可以產(chǎn)生過氧化氫酶、超氧化物歧化酶等抗氧化酶,這些抗氧化酶可將過氧化氫物分解為水,從而體現(xiàn)其抗氧化性[34]。此外,有研究表明利用葡萄球菌、微球菌作為發(fā)酵劑生產(chǎn)發(fā)酵肉制品時,脂質(zhì)氧化程度顯著低于不接種的空白組[35,36]。但是對葡萄球菌、微球菌等發(fā)酵菌株抗氧化性機制的研究較少。本實驗通過體外抗氧化性指標測定,發(fā)現(xiàn)菌株的抗氧化性來源于具有較強的DPPH自由基、羥自由基、超氧陰離子自由基清除能力和具有較高的總還原力,從機制上解釋了菌株抗氧化性高的原因。
利用中性紅油脂平板和三丁酸甘油酯平板從12株菌株中篩選出5株具有產(chǎn)脂肪酶的能力,分別為2株木糖葡萄球菌(Staphylococcusxylosus)YSZ11和YCC3、1株腐生葡萄球菌(Staphylococcussaprophyticus)YCC2、和2株巨球菌(Macrococcuscaseolyticus)YZC2、YZC3。對菌株編碼脂肪酶的基因進行了檢測,發(fā)現(xiàn)不同菌株編碼脂肪酶的基因不同,且表達量也存在顯著差異。5株菌株均在培養(yǎng)溫度為32~37 ℃,接種量為0.2%,培養(yǎng)48~60 h時具有較高的脂質(zhì)降解率。通過對發(fā)酵上清液DPPH自由基、羥自由基、超氧陰離子自由基的清除率和總還原力的測定表明5株菌株均具有抗氧化性。綜合考察,5株菌株中腐生葡萄球菌YCC2和木糖葡萄球菌YCC3油脂降解能力和抗氧化性較為突出,可作為備選菌株應用于發(fā)酵香腸生產(chǎn)中,以促進發(fā)酵香腸中脂質(zhì)分解并抑制脂質(zhì)的過度氧化。