許靜靜,李思琪,任夢圓, 薛雨欣,李永強(qiáng)
(西北農(nóng)林科技大學(xué) 植物保護(hù)學(xué)院, 農(nóng)業(yè)部西北黃土高原作物有害生物綜合治理重點實驗室, 陜西 楊凌 712100)
幾丁質(zhì)是昆蟲體內(nèi)一種天然含量僅次于纖維素的氨基多糖[1],主要存在于昆蟲表皮、氣管和圍食膜中,起支撐和滲透屏障的作用,使蟲體減少或免于機(jī)械損傷和毒素及病原菌的侵染[2~3],因此對昆蟲的正常生長發(fā)育有著至關(guān)重要的作用[3]。由于植物和脊椎動物體內(nèi)不含幾丁質(zhì),調(diào)控幾丁質(zhì)合成與代謝相關(guān)酶便為新型高效殺蟲劑的設(shè)計和開發(fā)提供了潛在的優(yōu)良靶標(biāo)。針對這些關(guān)鍵酶的化學(xué)抑制劑以及基于RNA干擾(RNA interference, RNAi)技術(shù)的害蟲防控新途徑的研究和開發(fā),一直是近些年農(nóng)業(yè)害蟲防治領(lǐng)域的研究前沿和熱點[2,4]。苯甲?;孱愂巧蟼€世紀(jì)70年代初研究最早、最具代表性的一種昆蟲幾丁質(zhì)合成抑制劑,通過結(jié)構(gòu)的不斷修飾,已有多個品種實現(xiàn)了商品化[5]。近年隨著RNAi技術(shù)介導(dǎo)的害蟲防治策略的提出[6],憑借其專一性強(qiáng)、潛在靶標(biāo)多、環(huán)境安全等諸多優(yōu)點,其在害蟲防控方面的研究和應(yīng)用不斷取得進(jìn)展。本文對近些年利用RNAi技術(shù)針對幾丁質(zhì)合成關(guān)鍵酶在害蟲防控研究及應(yīng)用中的重要進(jìn)展、存在問題及潛在的解決途徑進(jìn)行了較為系統(tǒng)的總結(jié)和歸納,期望為利用RNAi技術(shù)進(jìn)行害蟲防治研究提供有價值的理論指導(dǎo)。
幾丁質(zhì)是N-乙酰氨基葡萄糖組成的線性聚合物,其化學(xué)結(jié)構(gòu)與植物纖維素相似,因此也被稱為動物纖維素[7]。通過X射線分析發(fā)現(xiàn),幾丁質(zhì)具有α、β和γ三種晶體類型,α晶型中幾丁質(zhì)鏈以反向平行的方式排列,β晶型中以平行的方式排列,γ晶型則以平行和反向平行交替的方式排列。由于幾丁質(zhì)鏈反向平行排列產(chǎn)生了大量的氫鍵,形成的緊密微纖維有助于提高機(jī)械強(qiáng)度和穩(wěn)定性,因此α晶型主要存在于昆蟲的體壁中。相比之下,β晶型和γ晶型鏈間氫鍵較少、緊密度較低,但二者能與水形成大量氫鍵,使形成的微纖維更具有可塑性和柔軟性,因此其主要存在于昆蟲圍食膜等中[8]。
幾丁質(zhì)主要與蛋白質(zhì)等共同形成昆蟲的表皮及圍食膜,從而起到保持昆蟲形態(tài)和滲透屏障的作用[3]。但幾丁質(zhì)形成的堅硬體壁在阻礙外源物侵害的同時,也阻礙了昆蟲的生長發(fā)育。因此,昆蟲必須進(jìn)行幾丁質(zhì)有規(guī)律的合成與代謝,保證周期性的正常蛻皮,以適應(yīng)正常生長發(fā)育的需求[9]。在研究果蠅的幾丁質(zhì)合成酶1突變中發(fā)現(xiàn),幾丁質(zhì)的正常合成對表皮的完整性、形態(tài)的維持至關(guān)重要,同時還發(fā)現(xiàn)幾丁質(zhì)合成酶1還參與了角質(zhì)層色素的沉著過程[10]。而有些昆蟲在饑餓或蛻皮時,圍食膜可能完全停止形成,直至昆蟲再次取食時,并排出舊的圍食膜或重吸收產(chǎn)生新的圍食膜[3],因此昆蟲的生長發(fā)育嚴(yán)格依賴于體內(nèi)幾丁質(zhì)的含量。有研究表明,昆蟲蛻皮的干物質(zhì)中幾丁質(zhì)含量高達(dá)40%,而圍食膜中的幾丁質(zhì)含量通常在3%~13%之間[3]。
海藻糖酶(Trehalase,Tre)是幾丁質(zhì)生物合成的第一個催化酶,也是昆蟲體內(nèi)唯一一類水解海藻糖的非還原性酶[11],參與昆蟲的幾丁質(zhì)的合成和能量代謝過程[12]。昆蟲Tre屬于糖苷水解酶家族,理論分子量約為63.4~74.2 kD,理論等電點為酸性(4.66~6.23),含有兩個氨基酸標(biāo)簽序列:“PGGRFREFYYWDSY”和“QWDYPNAWPP”,以及一個甘氨酸富集區(qū)“GGGGEY”。昆蟲含有兩種海藻糖酶,即可溶性海藻糖酶(Tre1)和膜結(jié)合型海藻糖酶(Tre2)。將部分已知昆蟲Tre的氨基酸序列利用MEGA6軟件中的Align功能進(jìn)行比對,再通過Neighbor-Joining進(jìn)行系統(tǒng)進(jìn)化分析,可以得到已知的昆蟲Tre基因的系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖1)。從該系統(tǒng)發(fā)育樹可以看出,不同目昆蟲的Tre基因均聚為兩大類,即Tre1和Tre2。同一種昆蟲中二者之間氨基酸序列相似性較低,但二者在不同昆蟲中卻分別存在較高的相似性。例如鱗翅目昆蟲的Tre1和Tre2在系統(tǒng)發(fā)育樹上各聚為一大類,表明二者之間同源性較低;而同屬鱗翅目昆蟲的草地貪夜蛾、斜紋夜蛾和甜菜夜蛾的Tre1在系統(tǒng)發(fā)育樹上所處的位置卻較近,表明序列同源性較高(圖1)。
通過RNAi技術(shù)對海藻糖酶功能進(jìn)行研究,結(jié)果表明Tre1主要與昆蟲表皮中幾丁質(zhì)含量高低有關(guān),而Tre 2主要與昆蟲圍食膜幾丁質(zhì)含量高低有關(guān)[13-14],二者的基因沉默會直接影響昆蟲的正常生長發(fā)育。Chen等[14]通過顯微注射法對甜菜夜蛾海藻糖酶SeTre1和SeTre2進(jìn)行RNAi研究發(fā)現(xiàn),基因轉(zhuǎn)錄水平降低60%和80%,且注射dsSeTre1的昆蟲角質(zhì)層幾丁質(zhì)含量顯著下降約30%,注射dsSeTre2的昆蟲中腸幾丁質(zhì)含量下降約25%。張倩等[13]通過飼喂法干擾灰飛虱海藻糖酶LSTre1和LSTre2,基因轉(zhuǎn)錄水平分別降低49%和41%,并導(dǎo)致昆蟲體重減輕、死亡率顯著升高。由此可見,通過dsRNA干擾海藻糖酶,打破了幾丁質(zhì)合成的平衡可能是導(dǎo)致昆蟲蛻皮困難甚至死亡的主要原因[15]。
圖1 部分已知昆蟲海藻糖酶的系統(tǒng)進(jìn)化樹
幾丁質(zhì)合成酶(Chitin synthetase,CHS)是幾丁質(zhì)生物合成的最后一個催化酶。大多數(shù)昆蟲含有兩種幾丁質(zhì)合成酶,即幾丁質(zhì)合成酶1(CHS1)和幾丁質(zhì)合成酶2(CHS2)[16],但在褐飛虱、豌豆蚜和大豆蚜等半翅目昆蟲中,只發(fā)現(xiàn)了CHS1。將部分已知昆蟲CHS的氨基酸序列使用MEGA6軟件進(jìn)行同源比對,再使用Neighbor-Joining法進(jìn)行系統(tǒng)進(jìn)化分析,從而得到昆蟲CHS基因的系統(tǒng)進(jìn)化樹(圖2)。從CHS系統(tǒng)發(fā)育樹可以看出,昆蟲的CHS基因也被分成了兩大類,即CHS1和CHS2。例如,所有的半翅目昆蟲的CHS1形成了一個亞分支,其中桔蚜、大豆蚜和豌豆蚜CHS1同源性較近(圖2)。幾丁質(zhì)合成酶是高度保守的大分子跨膜蛋白,屬于糖基轉(zhuǎn)移酶家族,理論分子量約為160 ~180 kD,具有約14 ~17個跨膜螺旋,理論等電點偏酸性(5.43~7.08)。CHS含有3個結(jié)構(gòu)域,分別為A、B、C結(jié)構(gòu)域。其中位于中心的結(jié)構(gòu)域B相對較為保守,含有兩個特有的識別序列“EDR”和“QRRRW”。
通過RNAi技術(shù)對幾丁質(zhì)合成酶的功能進(jìn)行研究,結(jié)果表明CHS1主要負(fù)責(zé)昆蟲的表皮中幾丁質(zhì)的合成,而CHS2主要負(fù)責(zé)圍食膜的幾丁質(zhì)形成[3]。Zhang等[17]對東亞飛蝗幾丁質(zhì)合成酶LmCHS1進(jìn)行基因沉默后,發(fā)現(xiàn)LmCHS1的轉(zhuǎn)錄水平降低了約80%;若蟲表現(xiàn)為發(fā)育遲緩、身體扭曲,無法完成正常的蛻皮,即使完成了蛻皮,新形成的體壁顏色較淺且后足因彎曲而無法正常行走。余志濤等[18]對中華稻蝗OcCHS1進(jìn)行基因沉默后,若蟲齡期普遍增長,多數(shù)試蟲由于無法完成蛻皮而死亡,少數(shù)進(jìn)入下一齡期的若蟲也因無法羽化為成蟲而死亡,死亡率高達(dá)85%。劉曉健等[19]對東亞飛蝗若蟲幾丁質(zhì)合成酶LmCHS2進(jìn)行基因沉默后,中腸幾丁質(zhì)含量的降低使圍食膜殘缺不全,進(jìn)食難以消化和吸收,最終因為饑餓而死亡。此外還發(fā)現(xiàn),CHS2基因在昆蟲進(jìn)食期間高表達(dá),而蛹等非進(jìn)食期間低表達(dá)[20]。這些實驗結(jié)果均表明兩種幾丁質(zhì)合成酶分布和功能的差異性。
圖2 部分已知昆蟲幾丁質(zhì)合成酶的系統(tǒng)進(jìn)化樹
除此之外,許多昆蟲CHS1基因具有的可變剪接已經(jīng)被報道,包括褐飛虱[21]、東亞飛蝗[17]和赤擬谷盜[22]等。值得注意的是,迄今尚未發(fā)現(xiàn)CHS2有可變剪切機(jī)制[22]。CHS1的兩個交替外顯子編碼的多肽長度均為59個氨基酸,且各編碼一個高度保守的跨膜結(jié)構(gòu)域。CHS1a主要負(fù)責(zé)昆蟲表皮幾丁質(zhì)的合成,而CHS1b主要負(fù)責(zé)氣管幾丁質(zhì)的合成[12,21]。例如,張傳溪等[21]對稻褐飛虱幾丁質(zhì)合成酶NlCHS1基因研究結(jié)果表明,使用dsNlCHS1處理的五齡若蟲在羽化前全部死亡,而dsNlCHS1a處理的五齡若蟲,45%在羽化前死亡,42%的個體在轉(zhuǎn)化成成蟲后死亡,僅有13%的個體存活;但NlCHS1b卻有高達(dá)73%的成蟲存活率,表明dsRNA能夠降低特定序列表達(dá)從而產(chǎn)生特定的效應(yīng)。在東亞飛蝗中,干擾LmCHS1和其兩個可變剪接,也得到了相似的結(jié)果[17]。
幾丁質(zhì)的生物合成是一類高度復(fù)雜的生理生化過程,由一系列的酶催化完成,該過程共涉及8種酶,目前幾丁質(zhì)合成通路中研究較多的是Tre和CHS,這兩類酶在多種昆蟲中已經(jīng)完成了基因克隆和功能分析。相對而言,與幾丁質(zhì)合成有關(guān)的其它酶,例如果糖-6-磷酸轉(zhuǎn)氨酶(Gructose-6-phosphate aminotransferase,Gfat)、葡糖胺-6-磷酸-N-乙酰轉(zhuǎn)移酶(Glucosamine-6-phosphate N-acetyltransferase,GNA)和UDP-N-乙酰葡糖胺焦磷酸化酶(UDP-N-acetylglucosamine pyrophosphorylase,UAP)等酶研究的則相對較少。
Gfat研究主要集中在酵母菌等的重要生物學(xué)功能和蛋白修飾方式方面,Gfat在昆蟲幾丁質(zhì)合成途徑中的作用方面研究較少[23]。張歡歡等[23]研究表明飛蝗的果糖-6-磷酸轉(zhuǎn)氨酶基因LmGfat在蟲體表皮高表達(dá),且LmGfat基因沉默后,試蟲主要因蛻皮失敗而死亡,推測飛蝗LmGfat與幾丁質(zhì)的合成密切相關(guān)。而飛蝗的葡糖胺-6-磷酸-N-乙酰轉(zhuǎn)移酶LmGNA在蝗蟲各個組織均有表達(dá)且干擾后未出現(xiàn)特殊表型,通過與CHS1相似的表達(dá)模式,推測可能與幾丁質(zhì)的合成有關(guān)。陳潔等[24]對5齡甜菜夜蛾UDP-N-乙酰葡糖胺焦磷酸化酶SeUAP進(jìn)行干擾,甜菜夜蛾幾丁質(zhì)合成酶SeCHS2表達(dá)水平明顯的下調(diào),并出現(xiàn)了畸形蛹和死亡的現(xiàn)象。陸承聰?shù)萚25]對西花薊馬UDP-N-乙酰葡糖胺焦磷酸化酶FoccUAP進(jìn)行了基因沉默,西花薊馬的羽化率和存活率均顯著降低,并出現(xiàn)了翅膀和腹部等畸形現(xiàn)象。這些試驗結(jié)果表明幾丁質(zhì)合成相關(guān)酶的基因沉默會對昆蟲的生長發(fā)育產(chǎn)生顯著的影響,但這些酶的具體功能還有待進(jìn)一步研究和闡明。
幾丁質(zhì)合成抑制劑的作用相當(dāng)于生長調(diào)節(jié)劑,通過對昆蟲的幾丁質(zhì)合成關(guān)鍵酶活性產(chǎn)生重要影響,或通過和底物競爭性與Tre或CHS結(jié)合,阻斷昆蟲幾丁質(zhì)的正常合成,從而導(dǎo)致蟲體出現(xiàn)畸形和死亡[3]。幾丁質(zhì)合成酶最具代表性的化學(xué)抑制劑是苯甲酰基脲類和肽基核苷類化合物(表1),其中苯甲?;孱愔饕种评ハx的生長發(fā)育,是幾丁質(zhì)合成抑制劑中商品種類最多的一類[26],其致毒方式特別,具有選擇性強(qiáng)、作用范圍大和殘留少等特點,已在害蟲防治中得到廣泛應(yīng)用[7]。苯甲?;孱悮⑾x劑主要包括除蟲脲、氟蟲脲、噻嗪酮和抑食肼等。另一類肽基核苷類化合物,例如多樣霉素和尼可霉素,其結(jié)構(gòu)類似于UDP-GlcNAc,作用于CHS的催化部位,具有極高的殺菌活性[27],被認(rèn)為是有效的殺菌劑。雖然,目前并不認(rèn)為核苷肽類化合物是殺蟲劑,但有研究發(fā)現(xiàn),多氧霉素使蝗蟲在羽化時出現(xiàn)死亡,還導(dǎo)致紅頭麗蠅的圍食膜重量減輕[28]。此外,研究還發(fā)現(xiàn),由于這類化合物均是極性分子,較難通過昆蟲體壁或取食后被降解,但通過注射,具有顯著的抑制效果[26]。
目前,尚未見專門針對昆蟲海藻糖酶的化學(xué)抑制劑正式登記。不過,有研究發(fā)現(xiàn)井岡霉素和海藻唑啉等均被發(fā)現(xiàn)具有顯著抑制昆蟲Tre活性的作用,因此被認(rèn)為是潛在、有效的海藻糖酶抑制劑型殺蟲劑[29-30]。研究發(fā)現(xiàn)使用含有井岡羥胺A(Validoxylamine A)的飼料飼喂棉鈴蟲,試蟲表現(xiàn)為取食量減少,體重減輕,繁殖率與存活率下降等癥狀,表明對棉鈴蟲的生長發(fā)育產(chǎn)生了明顯的抑制作用[31]。此外,研究還發(fā)現(xiàn)注射了海藻唑啉的蝗蟲,首先試蟲活動減少,隨后取食量減少[29]。盡管作為有效的殺菌劑的井岡霉素和海藻唑啉,對昆蟲的Tre離體活性很高,但進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)對昆蟲活體致死效果很差。因而,研究人員希望通過對Tre抑制劑結(jié)構(gòu)的改造來保證其應(yīng)用效果,從而開發(fā)出具有實際應(yīng)用意義的產(chǎn)品[32]。昆蟲生長調(diào)節(jié)劑的適當(dāng)應(yīng)用有利于減少環(huán)境污染,促進(jìn)綠色食品生產(chǎn),在農(nóng)業(yè)害蟲防治中具有重要意義。
RNAi是指利用雙鏈RNA(doubled-stranded RNA, dsRNA)或者小干擾RNA(small interfering RNA, siRNA)特異性地高效誘導(dǎo)害蟲體內(nèi)重要功能基因的mRNA降解碎片化,而導(dǎo)致該靶基因表達(dá)沉默(即后續(xù)的翻譯表達(dá)無法正常進(jìn)行),產(chǎn)生相應(yīng)的生理功能缺失,最終導(dǎo)致害蟲生長發(fā)育受阻甚至致死的一種技術(shù)。該現(xiàn)象包含的機(jī)制最早于1998年在秀麗隱桿線蟲中得以闡明[33]。在2001年,RNAi技術(shù)被《Science》雜志評為十大科學(xué)進(jìn)展之一,并位于2002年十大科學(xué)進(jìn)展之首。隨后,RNAi成為了昆蟲基因功能研究的熱點和前沿,越來越多昆蟲的功能基因被克隆和鑒定,Mao等[34]在2007年提出將RNAi技術(shù)應(yīng)用于害蟲防治中,而Price等[6]在2008年提出將RNAi技術(shù)作為新型害蟲防治策略,并將之視為第四代殺蟲劑。
RNAi介導(dǎo)的害蟲靶基因沉默途徑具有特異、高效的優(yōu)點,以及技術(shù)過程的簡便性,現(xiàn)已被廣泛用于重要農(nóng)業(yè)害蟲綠色防控新技術(shù)研究和開發(fā)中。已有研究表明,通過注射或飼喂的方法,均可降低昆蟲幾丁質(zhì)的含量,產(chǎn)生預(yù)期的效果(表2)。鑒于幾丁質(zhì)合成關(guān)鍵酶的環(huán)境安全性和靶標(biāo)專一性,其做為潛在的開發(fā)新型高效綠色殺蟲劑的靶標(biāo)具有巨大的應(yīng)用潛力。
表1 針對幾丁質(zhì)合成的化學(xué)抑制劑對昆蟲生長發(fā)育的影響
3.2.1 植物介導(dǎo)的RNAi(表達(dá)dsRNA的轉(zhuǎn)基因抗蟲作物)在害蟲防治中的應(yīng)用 RNAi技術(shù)應(yīng)用于害蟲防治的研究已取得較大進(jìn)展。寄主誘導(dǎo)的基因沉默(host-induced gene silencing,HIGS)技術(shù)已在稻縱卷葉螟[44~47]、甜菜夜蛾[48]和蚜蟲[49~50]等害蟲中取得了較大進(jìn)展(表2)。例如,Tian等[48]在甜菜夜蛾中報道通過飼喂在體壁和氣管特異性表達(dá)的SeCHS1的dsRNA后,顯著抑制甜菜夜蛾的生長發(fā)育,并導(dǎo)致昆蟲死亡。Zhao等[50]構(gòu)建了含麥長管蚜幾丁質(zhì)合成酶CHS1基因片段的轉(zhuǎn)基因抗蚜小麥品系,研究發(fā)現(xiàn)取食第三代(T3)小麥品系的試蟲,其CHS1基因表達(dá)水平下降了50%左右,存活和羽化的試蟲數(shù)量均顯著下降。Ye等[51]對豌豆蚜幾丁質(zhì)合成酶ApisCHS進(jìn)行RNAi研究發(fā)現(xiàn),取食dsApisCHS7 2 h后導(dǎo)致44.7%的試蟲死亡,只有51.3%的試蟲成功蛻皮。王爽[52]構(gòu)建了含稻縱卷葉螟海藻糖酶CmTre基因片段的轉(zhuǎn)基因水稻品種,室外活體實驗結(jié)果發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)基因水稻的卷葉率和白葉率均明顯降低,表明含有CmTre的轉(zhuǎn)基因水稻對稻縱卷葉螟具有一定的防治效果。
3.2.2 dsRNA核酸農(nóng)藥 上述研究表明,通過在植物中表達(dá)來增強(qiáng)抗蟲性是害蟲防治的重要手段。但相對于植物轉(zhuǎn)基因技術(shù),直接體外噴灑dsRNA的方法更為簡便、快捷。大田噴施核酸用藥能夠針對不同害蟲、不同的發(fā)育時期設(shè)計特定的dsRNA,而且也能夠同時以多個基因為靶標(biāo),混合應(yīng)用或者交替應(yīng)用提高基因干擾和致死效率[53]。結(jié)合實際應(yīng)用,噴灑及灌根是最為簡單、通用的方式。雖然,截止目前尚未有dsRNA在大田噴灑使用的報道,但室內(nèi)已有用dsRNA重組菌株的菌液涂在蘿卜葉片上飼喂小菜蛾,造成其幼蟲的死亡、產(chǎn)卵量降低等現(xiàn)象,表明菌液確實對小菜蛾產(chǎn)生了干擾效應(yīng)[57]。Hunter等[58]通過浸根和注射樹干的方式處理果樹,在7周后仍能在樹苗中檢測到dsRNA。Li等[59]通過浸根的方式處理水稻和玉米,飼喂飛虱和玉米螟,昆蟲的死亡率明顯提高。這些研究結(jié)果表明,基于RNAi技術(shù),開發(fā)直接噴灑外用的核酸農(nóng)藥(dsRNA)具有很大潛力。
表2 針對幾丁質(zhì)合成途徑關(guān)鍵酶的RNAi對昆蟲生長發(fā)育的影響
基于害蟲體內(nèi)關(guān)鍵基因的RNAi技術(shù)開發(fā)dsRNA作為外用殺蟲劑,是新型綠色殺蟲劑創(chuàng)制的一個重要方向。核酸農(nóng)藥(dsRNA)用于農(nóng)業(yè)害蟲的防治具有以下優(yōu)點:第一,dsRNA能高效專一控制目標(biāo)害蟲,對天敵昆蟲無危害;其次,dsRNA的使用,能有效阻止或減緩害蟲抗藥性發(fā)生;第三,能顯著降低化學(xué)農(nóng)藥的施用量,保證食品安全;此外,dsRNA屬于核酸,對環(huán)境無任何污染,是一種真正環(huán)境友好型農(nóng)藥,這對減少農(nóng)殘和環(huán)境污均具有重要的意義。但是,目前在研究中發(fā)現(xiàn)要提高RNAi效率,還有一些瓶頸問題尚需深入研究。
首先,RNAi在不同種類昆蟲中基因沉默效率存在差異性,例如研究發(fā)現(xiàn)赤擬谷盜等鞘翅目害蟲、蝗蟲等直翅目害蟲,以及蟑螂等蜚蠊目害蟲對RNAi較為敏感,RNAi后靶基因沉默效率較高;而棉鈴蟲、小菜蛾、草地貪夜蛾等鱗翅目害蟲,以及蚜蟲等半翅目害蟲對RNAi較不敏感,對靶基因沉默效率較低[60]。隨后研究發(fā)現(xiàn),這可能是與昆蟲腸道內(nèi)含有一種雙鏈RNA酶(dsRNA-specific ribonucleases , dsRNases)有關(guān),因為其可以降解外來的dsRNA。其次,dsRNA進(jìn)入昆蟲體內(nèi)后的吸收、轉(zhuǎn)運和擴(kuò)散機(jī)制目前還不十分清楚隨,這會影響進(jìn)入昆蟲體內(nèi)的dsRNA/siRNA的有效到達(dá)靶標(biāo)位置,從而影響基因沉默效果[61]。此外,目前實驗室中通常制備dsRNA是采用商用試劑盒微量合成,而要作為核酸外施噴灑藥劑,則需要制備大量的dsRNA。因此,如何規(guī)?;凸S化生產(chǎn)合成dsRNA,是限制dsRNA作為核酸農(nóng)藥能否最終得到應(yīng)用的另一重要因素。綜上,針對害蟲體內(nèi)的靶標(biāo)基因的RNAi效率的提高以及如何工廠化大量合成dsRNA還有許多深層問題需要闡明和解決。
4.2.1 高效基因的篩選 昆蟲體內(nèi)重要靶標(biāo)基因篩選和鑒定是RNAi技術(shù)應(yīng)用于害蟲防治的先決要素。不是害蟲體內(nèi)所有的基因都能有效沉默基因,也不是所有的基因干擾(沉默)都能殺死害蟲。根據(jù)RNAi作用的基本原理,要做為新一代高效農(nóng)藥,只有那些對于昆蟲生長發(fā)育特別重要的基因才有可能作為潛在的殺蟲靶標(biāo)基因。因此,在重要害蟲中篩選具有致死作用的靶標(biāo)基因是將RNAi 技術(shù)應(yīng)用于害蟲控制的關(guān)鍵之一[62]。目前普遍認(rèn)為,作為綠色殺蟲劑設(shè)計的靶標(biāo)生物分子(基因)至少要同時具備如下兩個特征:①對靶標(biāo)生物的生長發(fā)育至關(guān)重要,以保證基于靶標(biāo)設(shè)計的dsRNA殺蟲劑具有高效性;②在高等動植物體內(nèi)不存在或顯著區(qū)別于高等動植物體內(nèi)的同源分子,以保證殺蟲劑的特異性和安全性[63]。
目前主要是從害蟲消化系統(tǒng)(例如唾液腺、消化酶)、生長發(fā)育系統(tǒng)(例如幾丁質(zhì)合成和代謝途徑、昆蟲蛻皮變態(tài)過程),以及繁殖系統(tǒng)和免疫系統(tǒng)(例如致育因子、卵黃蛋白)中分離鑒定具有重要功能的靶標(biāo)基因[64]。通過在蝗蟲、蚜蟲、棉鈴蟲、東方粘蟲等一些昆蟲中的研究,發(fā)現(xiàn)除過CHS外,唾液腺蛋白[65](C002)、V-ATP酶[66](V-ATPase)和蛻皮激素受體[67](EcR)等一系列功能蛋白對昆蟲的生長發(fā)育、繁殖也起著重要的作用。昆蟲唾液相關(guān)蛋白C002是一種水溶性唾液蛋白,在取食過程中發(fā)揮著重要作用。例如,通過對麥長管蚜唾液蛋白C002基因的RNAi研究,發(fā)現(xiàn)蚜蟲在取食dsRNA后的第八天,死亡率達(dá)到64%[65]。Baum等[66]對V-ATPase基因有干擾作用的基因序列(WCR dsRNAs)導(dǎo)入玉米植株中,玉米根葉甲取食轉(zhuǎn)基因玉米植株后導(dǎo)致幼蟲發(fā)育延緩,明顯降低了害蟲取食對玉米生長的影響。Shen等[67]近年對棉花紅蜘蛛的蛻皮激素受體進(jìn)行基因沉默(RNAi)后,發(fā)現(xiàn)若蟲發(fā)育為成蟲的過程明顯受阻,并導(dǎo)致試蟲死亡。
有上述可見,隨著今后越來越多的昆蟲基因組、轉(zhuǎn)錄組、蛋白組等數(shù)據(jù)被公布,更多的重要功能基因也會被鑒定和挖掘出來,所以將會有數(shù)量眾多的高效靶標(biāo)基因可通過RNAi技術(shù)應(yīng)用于害蟲防治中,這將會加速實現(xiàn)RNAi技術(shù)在害蟲防治中的真正應(yīng)用。
4.2.2 促進(jìn)RNAi應(yīng)用的有效途徑 在實際應(yīng)用中,許多研究發(fā)現(xiàn)無論哪種傳遞方式,單個關(guān)鍵基因的dsRNA都很難較快達(dá)到致死的劑量[62],只能通過調(diào)節(jié)昆蟲的生長發(fā)育使其緩慢死亡。因此,多方面的措施聯(lián)用,可增強(qiáng)防控效果。有助于RNAi在害蟲防治中應(yīng)用的聯(lián)用措施主要有以下途徑。
首先是RNAi技術(shù)與現(xiàn)有的殺蟲劑聯(lián)用。RNAi技術(shù)通過靶基因的沉默,打破了昆蟲的正常生長發(fā)育,協(xié)助化學(xué)或生物殺蟲劑突破昆蟲體壁或圍食膜的阻擋,增強(qiáng)殺蟲劑的殺蟲效果。通過dsRNA干擾來沉默非洲瘧蚊幾丁質(zhì)合成酶AgCHS1基因,使得AgCHS1基因的轉(zhuǎn)錄水平和幾丁質(zhì)含量分別降低了62.8%和33.8%,增加了其幼蟲對除蟲脲的敏感性[68]。郭菊馨等[69]對淡色庫蚊海藻糖酶Tre1和幾丁質(zhì)合成酶CHS1進(jìn)行基因沉默,結(jié)果表明試蟲對溴氰菊酯的敏感性提高。另外研究發(fā)現(xiàn),RNAi技術(shù)與Bt農(nóng)藥聯(lián)用,可以累積兩種作用方式的效應(yīng)。對甜菜夜蛾3齡幼蟲的SeCHS2基因進(jìn)行沉默后,飼喂Bt毒素發(fā)現(xiàn)幼蟲對Cry毒素的敏感性顯著提高,甜菜夜蛾的高死亡率可能是靶基因SeCHS2的RNAi效應(yīng)和Cry毒性的協(xié)同作用的結(jié)果[70]。
其次是多靶基因RNAi。利用多個目標(biāo)基因同時沉默可進(jìn)一步提高RNAi效率。趙鳳通過農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化法獲得轉(zhuǎn)CmTre和CmCHS基因dsRNA的水稻,以其葉片飼喂稻縱卷葉螟,發(fā)現(xiàn)CmTre1、CmTre2、CmCHS1和CmCHS2基因表達(dá)量均顯著下降,幼蟲體型較小,畸形甚至死亡[71]。Tzin等[72]人對蚜蟲多個滲透調(diào)節(jié)基因(水通道蛋白、蔗糖酶、糖轉(zhuǎn)運蛋白)進(jìn)行組合,聯(lián)合RNAi對血淋巴滲透壓的影響明顯大于單個基因的功能。由此可見,同時干擾多個具有相關(guān)作用的靶標(biāo)基因更能導(dǎo)致害蟲生物功能的改變和有助于殺死害蟲。與現(xiàn)有農(nóng)藥或多靶標(biāo)的聯(lián)用,不僅能夠減少害蟲防治中對dsRNA濃度的要求,同時能夠減少殺蟲劑的使用劑量,有效防止農(nóng)藥過量使用對環(huán)境和人的危害并延緩抗藥性的產(chǎn)生。
此外,還有納米粒子與dsRNA偶聯(lián),制備納米dsRNA農(nóng)藥。納米材料具有可修飾性強(qiáng)、水溶液分散性好和光催化降解等特點為dsRNA的傳遞提供了新的思路[73]。為了增強(qiáng)dsRNA在應(yīng)用中的穩(wěn)定性,已經(jīng)研發(fā)出了無毒并可降解的納米材料,dsRNA搭載后穩(wěn)定性明顯提高,噴灑在葉面上不僅耐雨水沖刷且穩(wěn)定期達(dá)30 d[74]。納米材料的應(yīng)用,使dsRNA不僅可以通過昆蟲取食進(jìn)入昆蟲體內(nèi),還可以直接通過體壁滲透。比如,沈杰教授團(tuán)隊開發(fā)出利用納米材料介導(dǎo)dsRNA從蚜蟲體壁進(jìn)入體內(nèi)的方式,從而達(dá)到干擾昆蟲生長發(fā)育的目的[75]。與通過納米粒子包被增加dsRNA吸收、傳遞效率類似的策略,還有脂質(zhì)體修飾。研究表明,脂質(zhì)體修飾的dsRNA在德國小蠊、斑翅果蠅等昆蟲中RNAi能明顯提高靶標(biāo)基因的沉默效率[76~77]。
4.2.3 利用微生物發(fā)酵工程工廠化大規(guī)模合成生產(chǎn)dsRNA 利用商用試劑盒合成dsRNA雖然可以得到純度較高的dsRNA,但是成本太高,而且合成量極為有限,且操作復(fù)雜,無法滿足田間應(yīng)用的需求。因此,可以利用大腸桿菌HT115(DE3) 合成多個目的基因的重組dsRNA,這樣可以極大降低合成成本,簡化合成步驟。策略是設(shè)計帶有害蟲靶標(biāo)基因序列的RNAi 載體,再將載體轉(zhuǎn)入大腸桿菌感受態(tài)細(xì)胞中,就可以不斷的得到大量目的基因的dsRNA[48,62,78~79]。馬中正[78]通過基因工程菌高效合成了靶向異色瓢蟲基因的dsRNA。Vatanparast[79]通過大腸桿菌(HT115)合成了甜菜夜蛾胰凝乳蛋白酶SeCHY2基因的dsRNA,并通過超聲預(yù)處理菌液,從而提高甜菜夜蛾幼蟲口服的死亡率。
RNAi介導(dǎo)的靶基因沉默途徑具有特異、高效的優(yōu)點,以及技術(shù)過程的簡便性,現(xiàn)已被廣泛用于重要農(nóng)業(yè)害蟲綠色防控新技術(shù)開發(fā)中。昆蟲幾丁質(zhì)合成酶,是昆蟲幾丁質(zhì)代謝過程中的關(guān)鍵酶之一,由于高等動物及植物體內(nèi)不存在該酶,而被認(rèn)為是理想的殺蟲劑靶標(biāo)[3]。目前已有眾多Tre、CHS等幾丁質(zhì)合成相關(guān)的關(guān)鍵酶基因被鑒定和研究?;趲锥≠|(zhì)合成關(guān)鍵酶等的RNAi技術(shù)在害蟲防治中的應(yīng)用可通過兩種策略實現(xiàn):一是植物介導(dǎo)的RNAi; 二是直接體外噴灑dsRNA(核酸農(nóng)藥)。雖然基于害蟲體內(nèi)重要基因為靶標(biāo)的RNAi技術(shù)應(yīng)用于農(nóng)業(yè)害蟲潛力巨大、前景誘人,但是目前還面臨一些瓶頸問題,比如不同昆蟲靶基因的RNAi效率的差異性、dsRNA合成的高成本等問題尚需進(jìn)一步闡明和解決。此外,納米材料偶聯(lián)包被、脂質(zhì)體修飾、與BT等殺蟲劑聯(lián)用,以及多標(biāo)靶聯(lián)用等都需要系統(tǒng)深入開展,以促進(jìn)RNAi技術(shù)在防控害蟲中得到廣泛應(yīng)用。相信,隨著對幾丁質(zhì)合成途徑研究的不斷深入,基于該途徑的關(guān)鍵酶基因為靶標(biāo)的RNAi技術(shù)在今后害蟲綠色防治中將會發(fā)揮重要作用。