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    河南省牛病毒性腹瀉病毒分子流行病學調(diào)查與分析

    2022-09-07 06:30:24楊德新徐崢嶸王新莊朱小潔薛永康劉曉曼
    動物醫(yī)學進展 2022年8期
    關(guān)鍵詞:檢測

    楊德新,徐崢嶸,王新莊,閆 磊,朱小潔,薛永康,劉曉曼,張 震*

    (1.河南農(nóng)業(yè)大學動物醫(yī)學院,河南鄭州 450002;2.甘肅省動物疫病預(yù)防控制中心,甘肅蘭州 730046;3.河南省奶牛生產(chǎn)性能測定中心,河南鄭州 450046;4.河南省奶牛健康養(yǎng)殖國際聯(lián)合實驗室,河南鄭州 450046;5.河南省種牛遺傳性能測定中心,河南鄭州 450046;6.華中農(nóng)業(yè)大學動物科技學院動物醫(yī)學院,湖北武漢 430070)

    牛病毒性腹瀉(Bovine viral diarrhea,BVD)是由牛病毒性腹瀉病毒(Bovine viral diarrhea virus,BVDV)引起的一種接觸性傳染病,在全球的奶牛業(yè)和肉牛業(yè)都造成嚴重的經(jīng)濟損失[1]。BVDV感染后呈多種臨床表現(xiàn)類型,以體溫升高,食欲減少、口腔黏膜爛斑、腹瀉和發(fā)育異常為主。病毒引起的急性疾病稱為牛病毒性腹瀉,引起的慢性持續(xù)性感染稱為黏膜病[2]。BVDV是20世紀80年代該病傳入我國[3],隨著養(yǎng)牛業(yè)的發(fā)展,牛群感染BVDV的情況日益嚴重[4]。根據(jù)其抗原性的不同和5′-UTR的高度保守性,BVDV主要分為BVDV-1型和BVDV-2型兩種。BVDV-3型在牛和水牛中被確認[5],但我國無BVDV-3型感染牛的相關(guān)報道。BVDV-1型可進一步分為1a-1u亞型,BVDV-2型可進一步分為2a-2d亞型[6-8]。我國已分離和檢測到許多BVDV-1亞型,根據(jù)系統(tǒng)發(fā)育樹分析發(fā)現(xiàn)BVDV-1b和BVDV-1 m為主要的亞型[9-10]。采取ELISA方法對河南省規(guī)模化牛場進行BVDV抗原檢測,并用RT-PCR方法進行BVDV基因分型鑒定,以期掌握河南省規(guī)?;鯞VDV的流行情況和基因型,為該病防控和疫苗研發(fā)提供科學依據(jù)。

    1 材料和方法

    1.1 材料

    1.1.1 血樣 采集河南省14個市40個規(guī)模化奶牛場5 486份血樣,采集后靜置2 h,離心、分離血清,置-20℃凍存?zhèn)溆谩?/p>

    1.1.2 主要試劑與儀器 牛病毒性腹瀉抗原檢測試劑盒,西班牙英吉納(INGENASA)公司產(chǎn)品;異丙醇,天津市大茂化學試劑廠生產(chǎn);2×PCR Mix、ddH2O,廣州東盛生物科技有限公司產(chǎn)品;M5 First Strand cDNA合成試劑盒、Trizol試劑,北京聚合美生物科技有限公司產(chǎn)品;普通PCR儀,美國應(yīng)用生物系統(tǒng)公司產(chǎn)品。

    1.1.3 引物 參照文獻[11-12]中引物序列進行設(shè)計,用于擴增5′-UTR來進行BVDV分子基因型鑒定。所有引物均由生工生物工程(上海)股份有限公司合成(表1)。

    表1 引物序列、位置

    1.2 方法

    1.2.1 BVDV的抗原檢測 按照試劑盒說明書的操作方法與判定標準進行。

    1.2.2 總RNA的提取和反轉(zhuǎn)錄 取血清200 μL,加入400 μL Trizol振蕩混勻,室溫放置8 min。加入160 μL氯仿,劇烈振蕩15 s,室溫放置5 min,4℃、12 000 r/min離心10 min。將上清液移入1.5 mL離心管內(nèi),加入等體積的異丙醇,室溫放置10 min,4℃、12 000 r/min離心10 min,棄上清。沉淀用20 μL 750 mL/L乙醇沖洗后4℃、5 000 r/min離心5 min,吸棄乙醇,超凈臺上開蓋干燥5 min~10 min。用10 μL DEPC水溶解,置-80℃凍存?zhèn)溆没蛑苯佑梅崔D(zhuǎn)錄。利用M5 First Strand cDNA合成試劑盒將RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA并置于-20℃待用。

    1.2.3 BVDV-1的RT-PCR擴增與檢測 用外套引物BVDV-1F/BVDV-1R與內(nèi)套引物BVDV-1Fn/BVDV-1Rn進行套式PCR擴增BVDV-1 5′-UTR基因。以反轉(zhuǎn)錄后的cDNA為模板,進行PCR擴增反應(yīng)。反應(yīng)體系如下:cDNA模板1 μL,2×PCRTaqmix 12.5 μL,ddH2O 10.5 μL,外套引物(上游、下游引物,10 μmol/L)各0.5 μL。外套PCR反應(yīng)條件為:94℃ 5 min;94℃ 30 s,56℃ 30 s,72℃ 30 s,35個循環(huán);72℃ 10 min,4℃保存。反應(yīng)完成后取1 μL產(chǎn)物進行內(nèi)套PCR反應(yīng),其中外套引物PCR產(chǎn)物1 μL,2×PCRTaqmix 12.5 μL,ddH2O 10.5 μL,內(nèi)套引物(上游、下游引物,10 μmol/L)各0.5 μL。內(nèi)套PCR反應(yīng)條件為:94℃ 10 min;94℃ 30 s,56℃ 30 s,72℃ 30 s,35個循環(huán);72℃ 10 min。PCR結(jié)束后,取擴增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠核酸電泳和凝膠成像掃描儀進行檢測與分析,產(chǎn)物送由上海生工生物工程有限公司測序。

    1.2.4 BVDV-2 5′-UTR的擴增 將BVDV-1 5′-UTR擴增陰性樣品使用外套引物BVDV-F1/BVDV-R1與內(nèi)套引物BVDV P3/BVDV P4進行套式PCR擴增BVDV-2 5′-UTR基因,反應(yīng)體系為:cDNA模板1 μL,2×PCRTaqmix 12.5 μL,ddH2O 10.5 μL,外套引物(上游、下游引物,10 μmol/L)各0.5 μL。外套PCR反應(yīng)條件為:94℃ 5 min;95℃ 30 s,55℃ 30 s,72℃ 30 s,35個循環(huán);72℃ 10 min。反應(yīng)完成后取1 μL產(chǎn)物進行內(nèi)套PCR反應(yīng),其中,外套PCR產(chǎn)物1 μL,2×PCRTaqmix 12.5 μL,ddH2O 10.5 μL,內(nèi)套引物(上游、下游引物,10 μmol/L)各0.5 μL。內(nèi)套PCR反應(yīng)條件為:94℃ 5 min;95℃ 30 s,53℃ 30 s,72℃ 30 s,35個循環(huán);72℃ 10 min。PCR結(jié)束后,取擴增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠核酸電泳和凝膠成像掃描儀進行檢測與分析,產(chǎn)物送由上海生工生物工程有限公司測序。

    1.2.5 5′-UTR序列分析 應(yīng)用DNAStar軟件將測序樣本的序列與GenBank中已公布的BVDV參考序列進行多序列比較,使用MEGA-X軟件構(gòu)建系統(tǒng)進化樹。

    2 結(jié)果

    檢測牛病毒性腹瀉抗原共5 486份,陽性率為1.77%(97/5486)。A10奶牛場,BVDV抗原陽性率最高,為7.8%(11/141),A11、A17奶牛場BVDV抗原陽性率最低,為0.66 %(1/151)。40家規(guī)模化奶牛場共檢測到35家奶牛場有牛病毒性腹瀉,場陽性率為87.5%(35/40)(表2)。在駐馬店地區(qū),BVDV抗原陽性率最高,為6.18%(18/291);在鶴壁地區(qū),BVDV抗原陽性率為0(0/102)(表3)。造成這種地區(qū)陽性差異的因素可能是氣候、濕度、溫度的不同。

    表2 河南省不同奶牛場BVDV血清抗原檢測結(jié)果

    表3 河南省不同地區(qū)BVDV血清抗原檢測結(jié)果

    將97份ELISA檢測BVDV抗原陽性的樣品進行RT-PCR擴增,隨機選擇RT-PCR呈陽性的樣本11份進行測序,測序所得序列與GenBank中公布的8株BVDV進行同源性比較,根據(jù)5′-UTR基因測序所得11株測序株之間的同源性為84.0%~100%,參考株之間的同源性為82.7%~100%(表4、圖1)。

    圖1 BVDV核苷酸序列同源性分析

    表4 不同測序株名稱及GenBank登錄號

    系統(tǒng)進化樹表明,樣本PY8 (MZ063763)與BVDV-1 strain ZM-95 (AF526381.3)有密切關(guān)系,XY1033 (MZ063760)與BVDV-1 isolate SD0803 (JN400273.1)具有密切關(guān)系。陽性株BF55起源要早于其他的陽性株,而其他陽性株處于一個大的進化分支中,且都是由共同的祖先BF55發(fā)育而來。BF55 (MZ063761)與參考株BVDV-1 strain ZM-95 (AF526381.3)和BVDV-1 isolate SD0803 (JN400273.1)親緣關(guān)系稍遠(圖2)。結(jié)果說明河南地區(qū)牛病毒性腹瀉病毒與其他參考株由共同的祖先進化而來,并且與參考株之間存在一定的變異。

    圖2 基于5′-UTR序列的11株測序株的系統(tǒng)發(fā)育分析

    3 討論

    BVDV是導(dǎo)致奶牛腹瀉的重要病原,感染BVDV后可以導(dǎo)致奶牛產(chǎn)奶量下降,嚴重影響奶牛場的經(jīng)濟效益。據(jù)調(diào)查該病在我國大部分地區(qū)存在[13-15]。本研究中,河南省14個市BVDV的陽性率為1.77%,與調(diào)查結(jié)果相符合。此次調(diào)查40個奶牛場中,BVDV的場陽性率為87.5%,本研究與報道中的場陽性率也相符合。BVDV可在妊娠奶牛40 d~120 d傳遞給胎兒,并誘導(dǎo)胎兒對BVDV免疫耐受,導(dǎo)致持續(xù)性感染(PI)牛的分娩,PI牛一生都在排毒,是傳染源。因此,檢測和消除PI牛對預(yù)防和控制牛群病毒性腹瀉具有重要意義。

    BVDV-1型能引起一次性的臨床癥狀,而BVDV-2型所引起的臨床癥狀比BVDV-1型嚴重,病死率更高。本研究發(fā)現(xiàn)在河南地區(qū)流行的BVDV均為BVDV-1型,病死率也較低,但河南地區(qū)牛病毒性腹瀉病毒與參考株相比存在一定的變異。從系統(tǒng)進化樹上看出除了陽性株BF55外,其他陽性株都是從BVDV-1b參考株發(fā)育而來,這也和我國主要流行株為BVDV-1b和BVDV-1m相符合。雖然在河南地區(qū)BVDV的陽性率較低,也無死亡率較高的BVDV-2型,但對于BVDV的防控還是要重視,奶牛BVDV的綜合防控應(yīng)采取以疫苗接種為主,加強流行病學監(jiān)測,根據(jù)流行病學監(jiān)測結(jié)果逐步撲殺、淘汰陽性感染牛,早日實現(xiàn)牛群中BVDV的凈化[16]。

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