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    朱砂七多糖體外免疫增強活性研究

    2022-09-07 06:28:30呂一舟劉珍秀潘興學王文麗張為民宋曉平麻武仁劉迎秋范云鵬
    動物醫(yī)學進展 2022年8期
    關鍵詞:小鼠

    呂一舟,劉珍秀,潘興學,王文麗,張為民,宋曉平,麻武仁,劉迎秋,范云鵬

    (西北農林科技大學動物醫(yī)學院,陜西楊凌 712100)

    規(guī)?;B(yǎng)殖中動物免疫抑制性疾病已普遍存在[1-4],免疫抑制性疾病可破壞淋巴細胞、單核巨噬細胞等,使動物免疫系統(tǒng)受損、抗病能力降低,從而導致條件性致病菌感染,給養(yǎng)殖業(yè)帶來巨大損失。朱砂七是蓼科蓼屬植物毛脈蓼根的塊莖,味苦,微澀,性涼。有清熱解毒、止血止瀉功效[5-6],朱砂七多糖(Polygonumcillinervepolysaccharide,PCP)是其主要有效成分之一。中藥多糖具有抗氧化[7-8]、抗腫瘤[9]、抗病毒[10]、免疫調節(jié)[11-12]等多種生物活性。本課題組前期進行了PCP的提取純化、結構鑒定等,并初步證明朱砂七多糖具有抗氧化活性[6]。PCP對臨床分離的金黃色葡萄球菌、銅綠假單胞菌和沙門氏菌具有一定的抑制效果,但對其免疫活性的相關研究較少。本研究采用MTT法、ELISA等方法,分別檢測PCP對雞外周血淋巴細胞和小鼠脾淋巴細胞的毒性、細胞增殖及小鼠脾淋巴細胞分泌IL-2、IL-4、IL-10、IFN-γ細胞因子的影響,為朱砂七多糖免疫增強活性研究提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 主要試劑 朱砂七多糖(含量87.2%),西北農林科技大學中獸醫(yī)實驗室制備;肝素鈉、淋巴細胞分離液、1640培養(yǎng)液、四甲基偶氮唑藍(MTT)、刀豆蛋白(Con A)、脂多糖和青鏈霉素均為北京索萊寶科技有限公司產品;胎牛血清,浙江天杭生物科技有限公司產品;二甲基亞砜(DMSO),天津市科密歐化學試劑有限公司產品;ELISA(IL-2、IL-4、IL-10、IFN-γ)試劑盒,上海酶聯(lián)生物科技有限公司產品;200目細胞篩,美國Biologix公司產品。

    1.1.2 試驗用動物 成年公雞,西北農林科技大學動物實驗中心提供。SPF級昆明小鼠,20 g~25 g,雌雄各半,購自成都達碩實驗動物有限公司。

    1.1.3 主要儀器 MCO-18AC二氧化碳培養(yǎng)箱,普和系株式會社產品;CKX31SF倒置顯微鏡,日本OLYMPUS公司產品;YT-CJ-2N超凈臺,北京亞泰科隆儀器技術公司產品;TDL-80-2B離心機,上海安亭科學儀器公司產品;FC酶標儀,美國Thermo公司產品;LDZX-50KBS立式壓力滅菌器,上海申安醫(yī)療器械廠產品;DHG-9140A電熱鼓風干燥箱,上海中器實業(yè)有限公司產品。

    1.2 方法

    1.2.1 液體配制 Hank's液,先配制A液和B液。A液:稱取KCl 8 g、NaCl 160 g、MgCl2·6H2O 2 g、MgSO4·7H2O 2 g,溶解于800 mL雙蒸水中,與100 mL 2.8% CaCl2溶液混合,加水至1 000 mL,115℃滅菌15 min,4℃保存;B液:稱取KH2PO41.2 g、Na2HPO4·12H2O 3.04 g、葡萄糖 20 g,溶解到800 mL雙蒸水中,與100 mL 0.4%酚紅溶液混合,加水至1 000 mL 108℃滅菌15 min,4℃保存。取A液及B液各1份與18份雙蒸水混合即得Hank′s液,配好后108℃高壓滅菌15 min。臨用前用56 g/L NaHCO3調pH為7.2~7.4,加青霉素、鏈霉素各100 IU/mL。細胞培養(yǎng)液:在所用的1640培養(yǎng)基中添加100 mL/L胎牛血清。

    1.2.2 雞外周血淋巴細胞和小鼠脾淋巴細胞的制備 從雞心臟采血10 mL至含有肝素鈉(2 mg/mL)的注射器中,與Hank′s等比混勻,加入等體積淋巴細胞分離液至上層,2 500 r/min離心20 min。吸取中間的云霧層于另一離心管中,并與等體積的Hank′s液混勻,2 000 r/min離心15 min。棄去上清液,加入2 mL Hank′s液,2 000 r/min離心10 min。棄去上清,加入細胞培養(yǎng)液重懸細胞,得雞外周血淋巴細胞懸液。取小鼠脾臟置200目細胞篩上研磨,用Hank′s液沖洗。在離心管中提前加入4 mL的淋巴細胞分離液,取4 mL研磨好的脾臟組織懸液,緩慢地沿管壁加入到分離液的上層,2 500 r/min離心20 min。吸取中間的云霧層,后續(xù)步驟與上述方法一致,得小鼠脾淋巴細胞懸液。

    1.2.3 PCP對雞外周血淋巴細胞的毒性 將PCP用細胞培養(yǎng)液稀釋為31.25、15.63、7.81、3.91、1.95 μg/mL,后面的試驗均按此方法配藥。將雞外周血淋巴細胞(1×106個/mL),接種到96孔板中,100 μL/孔。試驗分2組,對照組每孔加細胞培養(yǎng)液100 μL;試驗組每孔各加不同濃度的PCP 100 μL,做4個重復。置37℃、體積分數(shù)為5%的二氧化碳培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h。提前4 h向每孔中加MTT 30 μL,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,棄去部分培養(yǎng)基,每孔加DMSO 100 μL,振蕩10 min,在570 nm處檢測OD值。

    1.2.4 MTT法檢測雞外周血T淋巴細胞增殖 將雞外周血淋巴細胞懸液以80 μL/孔 接種到96孔板中。設空白對照組每孔加細胞培養(yǎng)液120 μL,陽性對照組每孔加Con A(10 μg/mL)20 μL+細胞培養(yǎng)液100 μL,試驗組每孔加Con A 20 μL+各濃度PCP 100 μL,4個重復。置培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h。后續(xù)步驟與上述試驗一致,570 nm處檢測OD值。

    1.2.5 MTT法檢測PCP對小鼠脾淋巴細胞的毒性 將小鼠脾淋巴細胞接種到96孔板中,100 μL/孔。試驗分2組,對照組每孔加細胞培養(yǎng)液100 μL;試驗組每孔加各濃度的PCP 100 μL,做6個重復。置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h。后續(xù)步驟與上述試驗一致,在570 nm處檢測OD值。

    1.2.6 PCP對小鼠脾T淋巴細胞增殖的影響 將小鼠脾淋巴細胞接種到96孔板中,80 μL/孔。試驗分3組:空白對照組加細胞培養(yǎng)液120 μL;陽性對照組每孔加Con A 20 μL+細胞培養(yǎng)液100 μL;試驗組每孔加Con A 20 μL+各濃度PCP 100 μL,做4個重復。置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h。后續(xù)步驟與上述試驗一致,在570 nm處檢測OD值。

    1.2.7 PCP對小鼠脾B淋巴細胞增殖的影響 將小鼠脾淋巴細胞接種到96孔板中,80 μL/孔。試驗分3組:空白對照組加細胞培養(yǎng)液120 μL;陽性對照組每孔加LPS(10 μg/mL)20 μL+細胞培養(yǎng)液100 μL;試驗組每孔加LPS 20 μL+各濃度PCP 100 μL,做4個重復。置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h。后續(xù)步驟與上述試驗一致,在570 nm處檢測OD值。

    1.2.8 ELISA檢測IL-2、IL-4、IL-10、IFN-γ水平 將小鼠脾淋巴細胞接種到24孔板中,800 μL/孔。設3個組:空白對照組每孔加細胞培養(yǎng)液1.2 mL;陽性對照組每孔加Con A 200 μL+細胞培養(yǎng)液1 mL;試驗組每孔加Con A 200 μL+各濃度的PCP 1 mL。置37℃、體積分數(shù)為5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h,收集細胞上清,按IL-2、IL-4、IL-10、IFN-γ試劑盒說明進行操作,450 nm處檢測各OD值,計算IL-2、IL-4、IL-10、IFN-γ含量。

    1.2.9 數(shù)據(jù)分析 用統(tǒng)計學軟件SPSS 23.0分析數(shù)據(jù),數(shù)據(jù)以“平均數(shù)士標準差(Mean±SD)”表示,組間比較用單因素方差分析,以Duncan′s法進行顯著性檢驗。不同字母代表差異顯著(P<0.05)。

    2 結果

    2.1 PCP對雞外周血淋巴細胞的毒性

    PCP在15.63、7.81、1.95 μg/mL時,OD值均高于空白對照組,其中在7.81 μg/mL時差異顯著(P<0.05),在15.63 μg/mL和1.95 μg/mL差異不顯著(P>0.05)。31.25 μg/mL和3.91 μg/mL的OD值低于空白對照組,差異不顯著(P>0.05)。表明PCP在1.95 μg/mL~31.25 μg/mL對雞外周血淋巴細胞沒有毒性,且在7.81 μg/mL時可顯著促進雞外周血淋巴細胞的增殖(圖1)。

    圖1 PCP對雞外周血淋巴細胞的毒性試驗(n=4)

    2.2 MTT法檢測雞外周血T淋巴細胞的增殖

    PCP在31.25、7.81、3.91、1.95 μg/mL時OD值均顯著高于空白對照組(P<0.05)。 PCP在7.81 μg/mL時OD值顯著高于Con A單獨刺激組(P<0.05),31.25、3.91和1.95 μg/mL的OD值高于Con A單獨刺激組,但差異不顯著(P>0.05)。表明PCP能夠協(xié)同Con A促進雞外周血T淋巴細胞的增殖(圖2)。

    圖2 PCP對雞外周血T淋巴細胞增殖的影響(n=4)

    2.3 MTT法檢測PCP對小鼠脾淋巴細胞的毒性

    PCP在1.95 μg/mL~7.81 μg/mL時OD值均高于空白對照組,其中1.95 μg/mL時差異顯著(P<0.05)。表明PCP濃度在1.95~31.25 μg/mL范圍內對小鼠脾淋巴細胞無毒性(圖3)。

    圖3 PCP對小鼠脾淋巴細胞毒性試驗(n=6)

    2.4 PCP對小鼠脾T淋巴細胞增殖的影響

    不同濃度的PCP協(xié)同Con A時,PCP為1.95 μg/mL~31.25 μg/mL時的OD值與Con A單獨刺激相比,顯著升高(P<0.05)。表明在1.95 μg/mL~31.25 μg/mL范圍內,PCP協(xié)同Con A可以顯著促進小鼠脾臟T淋巴細胞的增殖(圖4)。

    圖4 PCP對小鼠脾T淋巴細胞增殖的影響(n=4)

    2.5 PCP對小鼠脾B淋巴細胞增殖的影響

    不同濃度的PCP與LPS共同刺激時,PCP在1.95 μg/mL~31.25 μg/mL范圍內的OD值與LPS單獨刺激相比,顯著升高(P<0.05)。表明PCP在1.95 μg/mL~31.25 μg/mL范圍內可以顯著促進小鼠脾臟B淋巴細胞的增殖(圖5)。

    圖5 PCP對小鼠脾B淋巴細胞增殖的影響(n=4)

    2.6 PCP對IL-2、IL-4、IL-10、IFN-γ分泌的影響

    PCP為1.95 μg/mL~31.25 μg/mL時,IL-2分泌量均高于Con A組和空白對照組,PCP為3.91、7.81、15.63、31.25 μg/mL時,IL-2分泌量顯著高于Con A單獨刺激組和空白對照組(P<0.05)。表明PCP在3.91 μg/mL~31.25 μg/mL范圍內可顯著促進小鼠脾臟淋巴細胞分泌IL-2(圖6A)。

    PCP濃度在7.81 μg/mL和31.25 μg/mL時,IL-4分泌量高于Con A組和空白對照組,但差異不顯著(P>0.05)。濃度在1.95、3.91、15.63 μg/mL時,IL-4分泌量低于Con A單獨刺激組和空白對照組,差異不顯著(P>0.05)。表明PCP在1.95 μg/mL~31.25 μg/mL時對IL-4的分泌無顯著促進作用(圖6B)。PCP在1.95 μg/mL~31.25 μg/mL時,IL-10分泌量與Con A組和空白對照組相比,均顯著增加(P<0.05)。表明PCP在上面濃度范圍內協(xié)同Con A可以促進小鼠脾淋巴細胞分泌IL-10(圖6C)。PCP在15.63 μg/mL時,IFN-γ高于空白對照,但差異不顯著(P>0.05)。與Con A組相比,PCP在1.95 μg/mL~31.25 μg/mL時,IFN-γ分泌量均顯著增加(P<0.05)。表明PCP在1.95 μg/mL~31.25 μg/mL范圍內對小鼠脾淋巴細胞分泌IFN-γ有明顯促進作用(圖6D)。

    A.PCP對IL-2分泌的影響(n=4);B.PCP對IL-4分泌的影響(n=4);C.PCP對IL-10分泌的影響(n=4);D.PCP對IFN-γ分泌的影響(n=6)

    3 討論

    T淋巴細胞的增殖常被用于研究藥物活性[13]。本文PCP濃度為1.95 μg/mL~31.25 μg/mL時,對雞外周血淋巴細胞無毒性,且在7.81 μg/mL時,可以促進淋巴細胞增殖。表明PCP對雞外周血淋巴細胞增殖有一定的促進作用。脾臟中有T和B兩種淋巴細胞,淋巴細胞在體外受到刺激物刺激后,會向淋巴母細胞轉化和增殖。刀豆蛋白(Con A)和植物血凝素(PHA)在體外可以刺激T淋巴細胞增殖,脂多糖(LPS)能夠刺激B淋巴細胞增殖[15]。淋巴細胞的轉化率和增殖水平反應機體的免疫功能強弱,可作為測定機體免疫功能的一個指標[14]。從雞骨草中提取的多糖在125 μg/mL~375 μg/mL可劑量依賴性的促進小鼠脾細胞增殖[15];將10 μg/mL濃度的苜蓿多糖作用于淋巴細胞,培養(yǎng)24 h,B淋巴細胞增殖效果最好[16]。本研究PCP濃度在1.95 μg/mL~31.25 μg/mL時,T淋巴細胞增殖顯著高于Con A組,B淋巴細胞的增殖顯著高于LPS組,表明PCP對脾淋巴細胞的增殖具有較好的促進作用。

    活化的T細胞可以產生IFN-γ多效性細胞因子,具有抗癌和抗感染的作用,在炎癥調節(jié)中具有促炎和抗炎的雙重作用[17],常以IFN-γ評估T細胞的活化程度。IL-2由活化的T淋巴細胞產生,具有免疫增強作用,促進IL-2的分泌可以有效控制受感染個體的病毒血癥[18]。從軟紫草根中提取的多糖在40 μg/mL和200 μg/mL能促進小鼠脾淋巴細胞分泌IFN-γ[19];蛹蟲草多糖和Con A協(xié)同可刺激小鼠脾臟中的淋巴細胞分泌IFN-γ和IL-2。本研究PCP濃度為1.95 μg/mL~31.25 μg/mL時能顯著促進IL-2的產生。

    Th2細胞可以分泌抗炎因子IL-10,其能有效抑制IL-2和IFN-γ的合成和T細胞增殖。IL-10可防止過度的免疫應答,能協(xié)同IL-4和TGF-β抑制LPS誘導巨噬細胞釋放NO。IL-10也能夠促進B細胞增殖和自身抗體的產生。紫草、魚腥草、柴胡和杜仲多糖在體外可以外周血單核細胞(PBMC)分泌IL-10。本研究PCP濃度為1.95 μg/mL~31.25 μg/mL時,對IL-10和IFN-γ的生成有明顯的促進作用,但對IL-4的生成無明顯促進作用。

    本研究表明,PCP為1.95 μg/mL~31.25 μg/mL時對雞外周血淋巴細胞和小鼠脾淋巴細胞沒有毒性,濃度為7.81 μg/mL時可顯著促進雞外周血淋巴細胞增殖。濃度為1.95 μg/mL~31.25 μg/mL時,能協(xié)同Con A促進小鼠T淋巴細胞增殖,協(xié)同LPS促進B淋巴細胞增殖,濃度為3.91 μg/mL~31.25 μg/mL時,可以顯著促進IL-2的分泌,在1.95 μg/mL~31.25 μg/mL可顯著促進細IL-10和IFN-γ的分泌,表明朱砂七多糖在體外具有較好的免疫增強活性。

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