吳亞芳,亢崇仰,陳悅?cè)A,陸兆豐
創(chuàng)傷引起的出血性腦損傷在臨床上較為常見(jiàn),具有較高發(fā)病率、致死率,較多存活病人可遺留不同程度后遺癥,嚴(yán)重影響生活質(zhì)量[1]。出血性腦損傷的發(fā)生與腦血管病變密切相關(guān),且發(fā)病后易出現(xiàn)較多并發(fā)癥,其中血腦屏障通透性增加較嚴(yán)重[2]?,F(xiàn)代醫(yī)學(xué)治療出血性腦損傷多以藥物止血、降顱壓、血腫清除術(shù)為主,但仍無(wú)法直接解決大量神經(jīng)元壞死引發(fā)的神經(jīng)功能缺損[3]。沉默信息調(diào)節(jié)因子2(silent-mating information regulater 2,Sirt2)是一種NAD+依賴的蛋白去乙酰化酶類,在細(xì)胞周期控制、細(xì)胞分化、DNA修復(fù)等多重生物學(xué)調(diào)節(jié)過(guò)程中發(fā)揮重要作用[4]。研究發(fā)現(xiàn),Sirt2抑制劑具有神經(jīng)保護(hù)作用,可減輕神經(jīng)功能受損[5-6],但其對(duì)出血性腦損傷大鼠神經(jīng)功能改善及血腦屏障通透性影響方面的研究較少,作用機(jī)制不明確。基于此,本研究開(kāi)展動(dòng)物實(shí)驗(yàn),著重分析Sirt2抑制劑對(duì)出血性腦損傷大鼠的改善作用及對(duì)血腦屏障通透性的影響,并探討其機(jī)制。
1.1 實(shí)驗(yàn)材料
1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 選取45只健康SD雄性大鼠,8周齡,體質(zhì)量260~280 g,購(gòu)自北京科興生物制品有限公司,許可證號(hào)SYXK(京)2019-0053。實(shí)驗(yàn)前適應(yīng)性喂養(yǎng)7 d,環(huán)境溫度(22±2)℃,相對(duì)濕度45%~60%,光照周期12 h/12 h,自由獲得飲水、飼料。本研究經(jīng)動(dòng)物倫理委員會(huì)批準(zhǔn),動(dòng)物處置符合“3R”原則。
1.1.2 藥物、試劑和儀器 Sirt2抑制劑AK-7(美國(guó)Gene Operation公司),戊巴比妥鈉(美國(guó)Sigma公司),伊文思藍(lán)染料(美國(guó)Amerso公司),白細(xì)胞介素-6(interleukin-6,IL-6)、腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)酶聯(lián)免疫吸附實(shí)驗(yàn)(enzyme linked immunosorbent assay,ELISA)試劑盒(湖北武漢塞維爾公司),蘇木精-伊紅(hematoxylin-eosin staining,HE)試劑盒(美國(guó)Genmed公司),蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)試劑盒(美國(guó)KPL公司),二喹啉甲酸法(BCA)蛋白試劑盒(湖北武漢富鑫遠(yuǎn)科技有限公司),兔抗大鼠Sirt2、核轉(zhuǎn)錄因子-κB p65(nuclear factor-κB,NF-κB p65)、磷酸化NF-κB p65(phosphorylate-NF-κB p65,p-NF-κB p65)一抗及山羊抗兔IgG二抗(美國(guó)Santa Cruz公司)。HN550型冷凍切片機(jī)(德國(guó)Microtome Cryostat),XB51-32H01型病理圖像分析系統(tǒng)(日本奧林巴斯株式會(huì)社),XSZ-H-9507285顯微鏡(重慶光學(xué)儀器廠),DG5031酶聯(lián)免疫酶標(biāo)儀(華東電子醫(yī)療公司)。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 模型制備及分組 從45只大鼠中隨機(jī)取15只作為假手術(shù)組,另30只建立出血性腦損傷模型[7]:大鼠以2%戊巴比妥鈉50 mg/kg(0.25 mL/100 g)腹腔注射麻醉,仰臥位固定在手術(shù)臺(tái)上。頂毛剃除,75%乙醇消毒。于頭皮正中作1 cm切口,骨膜剪開(kāi),前囟暴露。鉆孔點(diǎn)為前囟前0.2 mm、中線旁開(kāi)2 mm處,用1 mL注射器沿鉆孔口緩慢進(jìn)針至尾狀核。以0.28 μL含0.5 U/μL的Ⅶ型膠原酶及6.25 U/μL肝素的生理鹽水緩慢注射,注射時(shí)間3 min,留針10 min后緩慢拔針,后骨蠟填充鉆孔,生理鹽水沖洗干凈,縫合皮膚。大鼠清醒后,采用神經(jīng)功能缺陷評(píng)分(Neurological Severity Scores,NSS)評(píng)估神經(jīng)功能損傷情況[8],神經(jīng)功能無(wú)異常,計(jì)0分;提尾時(shí)左前肢明顯屈曲,計(jì)1分;大鼠行走時(shí)不自主向左側(cè)轉(zhuǎn)圈,計(jì)2分;大鼠行走時(shí)不自主向左側(cè)傾斜,計(jì)3分;大鼠意識(shí)減退,無(wú)自發(fā)行走,計(jì)4分。以NSS評(píng)分1~3分為建模成功。30只大鼠建模成功24只,成功率為80%。24只大鼠隨機(jī)分為模型組與Sirt2抑制劑組,每組12只。假手術(shù)組術(shù)中僅注射等量生理鹽水,其余操作步驟同模型組、Sirt2抑制劑組,術(shù)后NSS評(píng)分0分入選,15只大鼠均納入研究。
1.2.2 干預(yù)方法 建模成功后立即給藥,Sirt2抑制劑組以25 mg/kg體質(zhì)量Sirt2抑制劑AK-7(用生理鹽水稀釋至0.25 mL)腹腔注射,假手術(shù)組、模型組以等體積生理鹽水腹腔注射,均給藥1次。
1.2.3 取材、處理 各組給藥后24 h,采用NSS評(píng)分法評(píng)估神經(jīng)功能損傷。完成評(píng)估后,以2%戊巴比妥鈉50 mg/kg(0.25 mL/100 g)腹腔注射麻醉,斷頭處死。各組分別選擇4只大鼠,取腦組織,分為3份,2份置于液氮保存,用于炎性因子、蛋白表達(dá)檢測(cè);1份置于4%多聚甲醛固定,用于HE染色。各組剩余大鼠中隨機(jī)選擇4只,剝?nèi)⊥暾X組織,置于干凈濾紙,表面滲液、血跡去除,稱重,記為濕重;置于60 ℃烘箱烘烤48 h,取出稱重,記為干重。以干濕法測(cè)定腦組織濕重/干重(wet/dry weight ratio,W/D)值。各組剩余大鼠取4只行血腦屏障通透性檢測(cè)。
1.2.4 炎性因子IL-6、TNF-α水平檢測(cè) 采用ELISA法檢測(cè)炎性因子IL-6、TNF-α水平。取液氮保存腦組織,生理鹽水沖洗,冰浴下制備10%組織勻漿。4 ℃、12 000 r/min離心,離心半徑8 cm,10 min,取上清液。嚴(yán)格按照IL-6、TNF-α試劑盒說(shuō)明書(shū)步驟操作:相應(yīng)反應(yīng)孔內(nèi)加不同程度標(biāo)準(zhǔn)品100 μL、標(biāo)本100 μL,37 ℃,溫育,2 h。甩干板內(nèi)液體,洗滌4次。各孔加100 μL一抗工作液,混勻,37 ℃,溫育,1 h。甩干板內(nèi)液體,洗滌4次。各孔加100 μL酶標(biāo)工作液,混勻,37 ℃,溫育,30 min。甩干板內(nèi)液體,洗滌4次。各孔加100 μL底物工作液,混勻,37 ℃,溫育,15 min。各孔加100 μL終止液,反應(yīng)10 min。20 min內(nèi)觀察酶標(biāo)儀450 nm波長(zhǎng)處吸光度值。將標(biāo)準(zhǔn)品濃度作為橫坐標(biāo),吸光度值作為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,根據(jù)標(biāo)本吸光度值獲得濃度值。
1.2.5 腦組織病理形態(tài)學(xué)檢測(cè) 采用HE染色法檢測(cè)腦組織病理形態(tài)。取4%多聚甲醛固定腦組織,生理鹽水沖洗,磷酸緩沖鹽溶液(PBS)浸泡12 h。脫水,石蠟包埋,切片,厚度4 μm,烤干。二甲苯透明,梯度乙醇脫蠟,水洗。蘇木精染色5 min,1%鹽酸乙醇分化,流水沖洗,共30 min。伊紅染色,流水沖洗,梯度乙醇脫蠟。二甲苯透明,中性樹(shù)膠封片。顯微鏡下觀察大鼠腦組織病理形態(tài)學(xué)。
1.2.6 血腦屏障通透性檢測(cè) 采用伊文思藍(lán)灌注染色法檢測(cè)血腦屏障通透性。各組所選大鼠以2%溶于生理鹽水的伊文思藍(lán)染料4 mL/kg靜脈注射,靜待2 h,觀察大鼠四肢末梢、結(jié)膜、齒齦、尾部呈藍(lán)色后,以2%戊巴比妥鈉50 mg/kg(0.25 mL/100 g)腹腔注射麻醉。自大鼠左心室插入灌注針,止血鉗固定。右心耳剪破,以250 mL生理鹽水緩慢自左心室灌注,清除腦血管內(nèi)殘留血液,以右心耳流出清亮液體為止。大鼠斷頭處死,快速將出血側(cè)腦半球組織取出,腦表面以生理鹽水沖洗,避免雜質(zhì)、血跡影響吸光度值。出血側(cè)腦半球組織稱重,置入1 mL/100 mg甲酰胺,37 ℃,48 h。低溫離心,觀察酶標(biāo)儀620 nm波長(zhǎng)處吸光度值。通過(guò)倍比稀釋法繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,將所得吸光度值轉(zhuǎn)換為伊文思藍(lán)染料含量,進(jìn)行血腦屏障通透性評(píng)估。
1.2.7 腦組織Sirt2、NF-κB p65、p-NF-κB p65蛋白相對(duì)表達(dá)量檢測(cè) 采用蛋白質(zhì)印跡法檢測(cè)腦組織Sirt2、NF-κB p65、p-NF-κB p65蛋白相對(duì)表達(dá)量。取液氮保存腦組織,PBS沖洗2次。加RIPA裂解液,冰上裂解30 min。4 ℃,12 000 r/min離心,離心半徑10 cm,8 min,取上清液。BCA試劑盒行蛋白定量,加2×上樣緩沖液。沸水浴10 min,變性。10%十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳,分離蛋白,轉(zhuǎn)至聚偏二氟乙烯(PVDF)膜,加5%脫脂奶粉封閉1 h。加兔抗大鼠Sirt2、NF-κB p65、p-NF-κB p65(1∶1 000)一抗,4 ℃搖床孵育,過(guò)夜。TBST洗膜4次,每次10 min。加二抗(1∶2 500),室溫孵育,共2 h。TBST洗膜4次,每次10 min。加化學(xué)發(fā)光法(ECL)檢測(cè)試劑,成像儀曝光成像。經(jīng)目的蛋白條帶灰度值/β-actin條帶灰度值比值計(jì)算目的蛋白表達(dá)水平。
2.1 3組大鼠NSS評(píng)分比較 與模型組比較,Sirt2抑制劑組NSS評(píng)分降低(P<0.05)。詳見(jiàn)表1。
表1 3組大鼠NSS評(píng)分比較(±s) 單位:分
2.2 3組大鼠IL-6、TNF-α水平比較 與假手術(shù)組比較,模型組、Sirt2抑制劑組IL-6、TNF-α水平升高(P<0.05);與模型組比較,Sirt2抑制劑組IL-6、TNF-α水平降低(P<0.05)。詳見(jiàn)表2。
表2 3組大鼠IL-6、TNF-α水平比較(±s) 單位:pg/mL
2.3 3組大鼠腦組織W/D值比較 與假手術(shù)組比較,模型組、Sirt2抑制劑組腦組織W/D值升高(P<0.05);與模型組比較,Sirt2抑制劑組腦組織W/D值降低(P<0.05)。詳見(jiàn)表3。
表3 各組腦組織W/D值比較(±s)
2.4 3組大鼠腦組織形態(tài)比較 HE染色顯示,假手術(shù)組腦組織結(jié)構(gòu)無(wú)異常,神經(jīng)細(xì)胞有序排列,染色較均勻,無(wú)炎性細(xì)胞浸潤(rùn)。模型組腦組織結(jié)構(gòu)紊亂,出現(xiàn)局部出血、水腫,損傷腦組織區(qū)伴大量炎性細(xì)胞浸潤(rùn)。與模型組比較,Sirt2抑制劑組腦組織結(jié)構(gòu)紊亂、局部出血、水腫、炎性細(xì)胞浸潤(rùn)等現(xiàn)象明顯改善。詳見(jiàn)圖1。
圖1 各組大鼠腦組織病理形態(tài)學(xué)變化比較(HE,×400)
2.5 3組大鼠血腦屏障通透性比較 與假手術(shù)組比較,模型組、Sirt2抑制劑組大腦皮層、基底節(jié)區(qū)伊文思藍(lán)含量升高(P<0.05);與模型組比較,Sirt2抑制劑組大腦皮層、基底節(jié)區(qū)伊文思藍(lán)含量降低(P<0.05)。詳見(jiàn)表4。
表4 3組大鼠血腦屏障通透性比較(±s) 單位:μg/g
2.6 3組大鼠Sirt2、NF-κB p65、p-NF-κB p65蛋白相對(duì)表達(dá)量比較 與假手術(shù)組比較,模型組、Sirt2抑制劑組Sirt2、p-NF-κB p65蛋白相對(duì)表達(dá)量升高(P<0.05);與模型組比較,Sirt2抑制劑組Sirt2、p-NF-κB p65蛋白相對(duì)表達(dá)量降低(P<0.05)。詳見(jiàn)圖2、表5。
圖2 3組大鼠Sirt2、NF-κB p65、p-NF-κB p65蛋白表達(dá)條帶圖
表5 3組大鼠Sirt2、NF-κB p65、p-NF-κB p65蛋白相對(duì)表達(dá)量比較(±s)
腦出血是一種常見(jiàn)的急危重癥,其發(fā)生、發(fā)展是一個(gè)多層次、多因素的復(fù)雜過(guò)程,而腦出血后繼發(fā)性腦損傷是導(dǎo)致病人殘疾、死亡的主要原因[9]。目前認(rèn)為出血性腦損傷發(fā)生機(jī)制復(fù)雜,包括細(xì)胞毒性物質(zhì)釋放、炎癥反應(yīng)、血腦屏障破壞等[10]。腦出血后,血腦屏障被破壞,發(fā)病3 h至14 d內(nèi),血腫周圍水腫持續(xù)增加,這是腦出血后致殘、致死的重要病理基礎(chǔ)[11]。另外,腦出血后繼發(fā)的炎癥反應(yīng)在血腦屏障紊亂中也具有重要作用。因此,臨床上盡早診治出血性腦損傷病人,尋求新的治療靶點(diǎn),減輕神經(jīng)功能損傷,控制血腦屏障破壞,已成為研究熱點(diǎn)之一。
Sirtuins屬于蛋白去乙?;割悾烧{(diào)控代謝、細(xì)胞分裂、老化等細(xì)胞和生物過(guò)程,而Sirt2為Sirtuins家族成員之一,主要定位于細(xì)胞質(zhì)[12]。在神經(jīng)系統(tǒng)方面,雖有研究發(fā)現(xiàn)Sirt2敲除可引發(fā)髓鞘形成減慢[13],但目前仍不知激活Sirt2在促進(jìn)損傷神經(jīng)髓鞘再生中是否有作用。另外,也有報(bào)道顯示,在神經(jīng)退行性疾病中,Sirt2抑制劑通過(guò)對(duì)固醇合成進(jìn)行抑制從而發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用[14]??梢?jiàn),Sirt2抑制劑對(duì)神經(jīng)損傷的功能目前研究少且存在爭(zhēng)議,可能是腦損傷后潛在的治療靶點(diǎn)。本研究發(fā)現(xiàn),應(yīng)用Sirt2抑制劑治療后,大鼠NSS評(píng)分、W/D值及IL-6、TNF-α水平降低,大腦皮層、基底節(jié)區(qū)伊文思藍(lán)含量減少;進(jìn)一步分析腦組織病理形態(tài)學(xué),發(fā)現(xiàn)Sirt2抑制劑組腦組織結(jié)構(gòu)紊亂、局部出血、水腫、炎性細(xì)胞浸潤(rùn)等現(xiàn)象明顯改善,提示Sirt2抑制劑可改善出血性腦損傷大鼠神經(jīng)功能,減輕炎癥反應(yīng)、腦水腫,降低血腦屏障通透性,控制腦組織損傷。
NF-κB是一種含多向轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)作用的核蛋白因子,可參與炎癥、氧化應(yīng)激、細(xì)胞凋亡等病理過(guò)程。相關(guān)報(bào)道顯示,Sirt2可參與NF-κB信號(hào)通路,且在細(xì)胞凋亡、炎癥反應(yīng)、多種糖脂代謝等方面發(fā)揮重要作用[15]。有學(xué)者提出,Sirt2在應(yīng)激條件下,可通過(guò)對(duì)NF-κB去乙?;?,調(diào)節(jié)細(xì)胞應(yīng)激所致?lián)p傷[16]。還有學(xué)者發(fā)現(xiàn),Sirt2/NF-κB信號(hào)通路可參與免疫、炎癥介導(dǎo)的神經(jīng)損傷,機(jī)制可能是Sirt2能對(duì)NF-κB活性進(jìn)行抑制,阻礙依賴NF-κB激活轉(zhuǎn)錄的炎性細(xì)胞因子釋放,以減輕炎癥反應(yīng)[17]。這些研究均提示Sirt2/NF-κB信號(hào)通路可能在出血性腦損傷中有一定作用。本研究發(fā)現(xiàn),應(yīng)用Sirt2抑制劑后,大鼠Sirt2、p-NF-κB p65蛋白相對(duì)表達(dá)量均降低,提示Sirt2抑制劑能對(duì)Sirt2/NF-κB信號(hào)通路進(jìn)行抑制,這可能是Sirt2抑制劑發(fā)揮改善大鼠出血性腦損傷、降低血腦屏障通透性的重要作用機(jī)制之一。
綜上所述,Sirt2抑制劑可改善出血性腦損傷大鼠神經(jīng)功能,減輕炎癥反應(yīng)、腦水腫,降低血腦屏障通透性,作用機(jī)制可能與抑制Sirt2/NF-κB信號(hào)通路有關(guān)。本研究存在一定不足之處,如研究局限于大鼠,并未實(shí)際應(yīng)用到臨床,且Sirt2抑制劑對(duì)大鼠出血性腦損傷改善作用及對(duì)血腦屏障通透性影響途徑較多,本研究并未就其他作用機(jī)制進(jìn)行分析,今后仍需進(jìn)一步深入研究。