• <tr id="yyy80"></tr>
  • <sup id="yyy80"></sup>
  • <tfoot id="yyy80"><noscript id="yyy80"></noscript></tfoot>
  • 99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

    雙孢蘑菇出菇的氣體自抑物質(zhì)研究進(jìn)展

    2022-08-10 08:45:32張君齊曼郭家穩(wěn)張朝輝邱立友
    食藥用菌 2022年4期
    關(guān)鍵詞:脫氨酶辛烯雙孢

    張君 齊曼 郭家穩(wěn) 張朝輝 邱立友*

    雙孢蘑菇出菇的氣體自抑物質(zhì)研究進(jìn)展

    張君1, 2齊曼1郭家穩(wěn)1張朝輝3邱立友1*

    (1. 河南農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,農(nóng)業(yè)農(nóng)村部農(nóng)業(yè)微生物酶工程重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河南 鄭州 450002;2. 河南省三門峽市農(nóng)業(yè)科學(xué)院生物研究所,河南 三門峽 472000;3. 河南科技學(xué)院生命科技學(xué)院,河南 新鄉(xiāng) 453003)

    雙孢蘑菇覆土出菇的機(jī)理尚不明晰。用無(wú)菌活性炭或通以無(wú)菌空氣可以誘導(dǎo)雙孢蘑菇出菇,表明雙孢蘑菇菌絲生長(zhǎng)過程中有抑制原基形成的氣體自抑物質(zhì)產(chǎn)生。目前,一種觀點(diǎn)認(rèn)為雙孢蘑菇菌絲合成的氣體自抑物質(zhì)是乙烯,另一種觀點(diǎn)認(rèn)為是1-辛烯-3-醇。通過查閱相關(guān)研究文獻(xiàn),評(píng)述近年來有關(guān)這兩種氣體自抑物質(zhì)的合成途徑、功能及其抑制雙孢蘑菇出菇的機(jī)理,提出雙孢蘑菇出菇的氣體自抑物質(zhì)需滿足以下特征:在原基形成前后合成量劇增,抑制原基形成,能夠被特定細(xì)菌類群所利用。根據(jù)這些特征,認(rèn)為雙孢蘑菇菌絲合成的氣體自抑物質(zhì)是乙烯,而非1-辛烯-3-醇。

    雙孢蘑菇;覆土;氣體自抑物質(zhì);原基;乙烯;1-辛烯-3-醇;活性氧

    盡管食用菌產(chǎn)業(yè)取得了巨大發(fā)展,但食用菌界仍有許多未解之謎。如:食用菌細(xì)胞中的兩個(gè)單核為什么沒有融合??jī)蓚€(gè)核中的基因是如何協(xié)調(diào)表達(dá)調(diào)控菌絲生長(zhǎng)和發(fā)育的?為什么食用菌的配子體(單核菌株)和孢子體(雙核菌株)都能獨(dú)立生活?從菌絲發(fā)育成多細(xì)胞的子實(shí)體的調(diào)控機(jī)制是什么?為什么有些食用菌能夠馴化栽培,而有些則很難馴化?為什么一些食用菌必須覆土才能出菇?等等。解開雙孢蘑菇()等食用菌必須覆土才能出菇的機(jī)理,既有利于破解其子實(shí)體形成之謎,也有利于后續(xù)同類食用菌的馴化和現(xiàn)有栽培效益的提高。

    雙孢蘑菇人工栽培之初,人們就發(fā)現(xiàn)栽培該菌時(shí)必須覆土,否則很少或不能出菇[1]。此外,姬松茸()[2]、印度麗蘑()[3]、雞腿菇()[4]、竹蓀()、巨大口蘑()、羊肚菌()、暗褐網(wǎng)柄牛肝菌()和大球蓋菇()等食用菌栽培時(shí)也需要覆土才能出菇。食用菌覆土出菇機(jī)理研究最早、最深入的是雙孢蘑菇。在雙孢蘑菇覆土出菇機(jī)理研究中,受到普遍肯定的是由于雙孢蘑菇菌絲產(chǎn)生的氣體自抑物質(zhì)抑制了原基的形成,覆土中的有益細(xì)菌,主要是假單胞菌,能夠利用這些氣體自抑物質(zhì),從而解除了其抑制作用。關(guān)于雙孢蘑菇菌絲合成的氣體自抑物質(zhì),一種觀點(diǎn)認(rèn)為是乙烯,另一種觀點(diǎn)認(rèn)為是1-辛烯-3-醇。本文評(píng)述這兩種氣體自抑物質(zhì)的相關(guān)研究進(jìn)展,以期為食用菌高效栽培和出菇機(jī)理研究提供參考。

    1 抑制雙孢蘑菇出菇的自抑物質(zhì)是氣體

    Stoller(1952)最早對(duì)雙孢蘑菇覆土出菇機(jī)理進(jìn)行研究,認(rèn)為覆土能夠使雙孢蘑菇產(chǎn)生的抑制物降低至非抑制濃度[5]。其他研究者則認(rèn)為覆土為雙孢蘑菇出菇提供了必要的環(huán)境條件,包括孔隙度、持水能力、滲透性和氣體交換量等[6,7]。然而,滅過菌的覆土不能誘導(dǎo)雙孢蘑菇形成原基[8,9],說明誘導(dǎo)出菇的是覆土中的微生物。隨后大量研究表明,覆土中的細(xì)菌,主要為惡臭假單胞菌(),能夠誘導(dǎo)雙孢蘑菇原基形成[10-13]。用無(wú)菌活性炭[8,10,14]或通以無(wú)菌空氣[15,16]同樣可代替覆土刺激雙孢蘑菇形成子實(shí)體。所以,雙孢蘑菇菌絲產(chǎn)生的自抑物質(zhì)是揮發(fā)性物質(zhì),覆土中細(xì)菌的作用則是去除氣體自抑物質(zhì)。

    2 栽培過程中雙孢蘑菇合成的氣體物質(zhì)

    常規(guī)栽培或使用滅菌培養(yǎng)料常規(guī)覆土栽培雙孢蘑菇,均可檢測(cè)出乙烷、乙烯、丙烷、丙烯、丁烷和異丁烷,以及一氯甲烷、氧硫化碳和二硫化碳。然而,在原基形成后只有乙烯急劇增加,與菌絲生長(zhǎng)階段相比增加6倍,當(dāng)子實(shí)體膨大至適當(dāng)大小時(shí),乙烯濃度開始降低并至較低的水平。產(chǎn)生的乙烯來自培養(yǎng)料中的雙孢蘑菇菌絲體,而非來自子實(shí)體和覆土中的微生物[17]。產(chǎn)生子實(shí)體的培養(yǎng)料合成的乙烯量比未產(chǎn)生子實(shí)體的培養(yǎng)料高近10倍,而產(chǎn)生子實(shí)體的覆土層與未產(chǎn)生子實(shí)體的覆土層合成的乙烯量則沒有差異[18]。與之類似,香菇()也可產(chǎn)生乙烯,所不同的是,香菇原基形成后產(chǎn)生的乙烯僅比菌絲生長(zhǎng)階段增加2倍[19]。

    1-辛烯-3-醇、1-辛烯-3-酮和3-辛醇也是雙孢蘑菇生長(zhǎng)發(fā)育過程中合成的主要?dú)怏w物質(zhì)[20,21],但1-辛烯-3-醇的合成量很低。播種后8~9天,培養(yǎng)室空氣中檢測(cè)不到1-辛烯-3-醇;播種后12~13天,有時(shí)可檢測(cè)到少量的3-辛酮及1-辛烯-3-醇;將發(fā)菌的培養(yǎng)料與土混合進(jìn)行覆土后,可檢測(cè)到大量的3-辛酮和少量的1-辛烯-3-醇;覆土5~6天后,3-辛酮的含量迅速降低,檢測(cè)不到1-辛烯-3-醇。將發(fā)滿菌的培養(yǎng)料破碎后裝入塑料袋中,1-辛烯-3-醇的產(chǎn)量遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于未破碎的培養(yǎng)料。培養(yǎng)料破碎后覆土,1-辛烯-3-醇的產(chǎn)量則顯著降低[21]。

    3 雙孢蘑菇乙烯合成的途徑及其功能

    3.1 雙孢蘑菇乙烯合成的途徑

    乙烯是植物的一種重要激素,其合成途徑為1-氨基環(huán)丙烷-1-羧酸(1-Aminocyclopropane-1-carboxylic acid,ACC)途徑,合成途徑的關(guān)鍵酶是ACC合酶(ACC synthase,ACS)和ACC氧化酶(ACC oxidase,ACO)(圖1)。許多真菌能夠合成乙烯,Ilag等[22]測(cè)定的228種真菌中,有58種(占25.6%)能合成乙烯;El-Sharouny[23]從植物病根中分離的81種真菌中有31%的種類能合成乙烯。Arshad等[24]綜述了88種酵母菌和霉菌可合成乙烯,其中霉菌分布于真菌的所有門中。已報(bào)道的食、藥用菌中,能合成乙烯的有牛舌菌()、硫磺菌()[25]、金針菇()、裂褶菌()[22]、雙孢蘑菇[26]、香菇[19]、糙皮側(cè)耳()[27]和草菇()[28]等。應(yīng)用乙烯抑制劑1-MCP處理能夠提高杏鮑菇()[29]、廣葉繡球菌()[30]和雞樅菌()[31]等的保質(zhì)期,表明這些食用菌或許也能夠合成乙烯。

    圖1 高等植物和微生物中的乙烯合成途徑(修改自文獻(xiàn)[32])

    注:①乙烯形成酶(Ethylene-forming enzyme)途徑;②2-酮-4-甲基硫代丁酸途徑;③ACC途徑。ACC,1-氨基環(huán)丙烷-1-羧酸;ACS,ACC合成酶;ACO,ACC氧化酶;AOA,氨氧乙酸;AVG,氨基乙氧基乙烯甘氨酸;KMBA,2-酮-4-甲基硫代丁酸;MTA,5’-甲硫腺苷;MTR,5’-甲硫基核糖(5’-Methylthioribose,MTR);MTR-1P,5-甲硫核糖1-磷酸;SAM,S-腺苷甲硫氨酸(S-adenosylmethionine,SAM);SAMS,S-腺苷甲硫氨酸合成酶(S-Adenosylmethionine synthetase,SAMS)。

    真菌合成乙烯的途徑已鑒定的有乙烯形成酶(EFE)途徑、2-酮-4-甲基硫代丁酸(KMBA)途徑和ACC途徑[32](圖1)。如:尖孢鐮刀菌()[33]、圓弧青霉()[34]和指狀青霉菌()[35]等可通過EFE途徑合成乙烯;土曲霉()[36]和灰葡萄孢菌()[37]為KMBA途徑,尖孢鐮刀菌[38]也有KMBA途徑;雙孢蘑菇[39]、糙皮側(cè)耳[27]、草菇[40,41]和粘菌中的毛霉?fàn)罹W(wǎng)柄菌()[42]等則是ACC途徑。

    3.2 乙烯對(duì)雙孢蘑菇生長(zhǎng)發(fā)育的調(diào)控作用

    乙烯是植物的逆境激素之一,在植物生長(zhǎng)發(fā)育的不同階段都會(huì)合成,尤其在生物和非生物脅迫條件下,乙烯合成量增加。在逆境條件下,植物體內(nèi)活性氧積累,誘導(dǎo)乙烯的合成。乙烯通過乙烯信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑能夠促進(jìn)還原酶和非酶抗氧化物質(zhì)的合成,從而清除活性氧,維持機(jī)體內(nèi)活性氧的平衡,避免了活性氧過量造成的毒害損傷[43]。關(guān)于真菌的乙烯合成調(diào)控機(jī)制研究得還很少。高溫和高氨條件能夠誘導(dǎo)糙皮側(cè)耳基因的高表達(dá)和高的乙烯合成量[44]。在雙孢蘑菇子實(shí)體形成過程中,其菌絲的乙烯合成量大幅增加[17,45,46]。雙孢蘑菇和草菇采后子實(shí)體中活性氧含量和乙烯合成量均增加,乙烯利能夠誘導(dǎo)乙烯合成高峰提前[41,47]。

    乙烯對(duì)植物生長(zhǎng)發(fā)育有重大的調(diào)節(jié)作用,包括種子萌發(fā)、果實(shí)成熟、器官成熟和脫落及脅迫響應(yīng)等。同樣的,乙烯對(duì)真菌的生長(zhǎng)發(fā)育、致病性、代謝,以及與植物的共生性也有影響[48]。乙烯抑制雙孢蘑菇和糙皮側(cè)耳菌絲的生長(zhǎng)[27,39,44]。雙孢蘑菇基因的反義轉(zhuǎn)化子的ACO酶活力和乙烯合成量比出發(fā)菌株降低,菌絲中的ACC含量增加,滅菌培養(yǎng)料中的菌絲生長(zhǎng)速度快于出發(fā)菌株,在未滅菌的覆土中出菇比出發(fā)菌株早,在滅菌的覆土材料中能夠出菇,而出發(fā)菌株則不能出菇[39],表明乙烯對(duì)雙孢蘑菇出菇有抑制作用。乙烯還能誘導(dǎo)雙孢蘑菇采后子實(shí)體的成熟和衰老,縮短貨架期[49]。

    3.3 覆土中的細(xì)菌能夠消除乙烯對(duì)雙孢蘑菇出菇的抑制作用

    在動(dòng)物飼料中添加益生菌的營(yíng)養(yǎng)和健康作用機(jī)制有:抑制病原菌的粘附,產(chǎn)生抗菌物質(zhì),競(jìng)爭(zhēng)性地消除病原菌,增強(qiáng)屏障作用,降低腸腔的pH和提高免疫功能等。常用的動(dòng)物益生菌有乳酸桿菌()、雙歧桿菌()、乳球菌()、芽孢桿菌()、鏈球菌()和酵母菌等。土壤中的植物有益細(xì)菌趨化和利用根系分泌物到達(dá)根際并定殖,與植物形成互惠關(guān)系,促進(jìn)植物生長(zhǎng),被稱為植物根際促生細(xì)菌(plant growth promoting rhizobacteria,PGPR)。PGPR促進(jìn)植物生長(zhǎng)的直接機(jī)制有產(chǎn)生植物生長(zhǎng)激素、固氮、產(chǎn)生酶和鐵載體、促進(jìn)鐵和磷等礦物質(zhì)的溶解和誘導(dǎo)植物系統(tǒng)抗性等;間接機(jī)制有生物防治、合成抗生素、螯合根際有效性鐵、分泌水解酶和競(jìng)爭(zhēng)根際生態(tài)位等。尤其是一些可合成ACC脫氨酶的細(xì)菌,其產(chǎn)生的ACC脫氨酶能夠水解乙烯前體物ACC,降低植物的乙烯合成量,解除乙烯對(duì)植物生長(zhǎng)的抑制作用,提高植物對(duì)逆境的耐受性[50]。因此,在動(dòng)植物益生菌中僅發(fā)現(xiàn)ACC脫氨酶產(chǎn)生菌能消除植物合成的自抑氣體物質(zhì),從而促進(jìn)植物生長(zhǎng)。

    PGPR中有多種細(xì)菌能夠合成ACC脫氨酶,包括根瘤菌科的根瘤菌屬()、中華根瘤菌屬()和農(nóng)桿菌屬(),葉桿菌科的葉桿菌屬()、中慢生根瘤菌屬()和固氮螺菌屬(),以及解硫胺素芽孢桿菌屬()、節(jié)桿菌屬()、無(wú)色桿菌屬()、芽孢桿菌屬、短桿菌屬()、伯克霍爾德氏菌屬()、檸檬酸桿菌屬()、腸桿菌屬()、萊克勒氏菌屬()、微球菌屬()、黃桿菌屬()、副鏈球菌屬()、假單胞菌屬、雷氏桿菌屬()和沙雷氏菌屬()等。ACC脫氨酶可劈開ACC,生成氨和α-丁酮酸,因此這些具有ACC脫氨酶活性的細(xì)菌能夠以ACC為唯一氮源和碳源進(jìn)行生長(zhǎng),且以ACC為代謝依賴型趨化物趨化到達(dá)根際并定殖形成菌膜,與根系形成互惠關(guān)系,以多種機(jī)制促進(jìn)植物生長(zhǎng)。另有大量其他細(xì)菌、酵母菌和真菌也能合成ACC脫氨酶,或具有特定的ACC脫氨酶基因,如酵母菌和真菌中的土星形塞伯林德納氏酵母()桔青霉()和棘孢木霉()[51]假單胞菌是土壤中主要的ACC脫氨酶產(chǎn)生菌,在已測(cè)序的2 591個(gè)假單胞菌菌株的基因組中檢索有ACC脫氨酶的基因,結(jié)果在38個(gè)種的菌株中可檢測(cè)到ACC脫氨酶活性[52]。

    在雙孢蘑菇培養(yǎng)料和覆土中存在著豐富的微生物菌群。在培養(yǎng)料第一次發(fā)酵和第二次發(fā)酵時(shí)期,培養(yǎng)料中的微生物通過轉(zhuǎn)化易利用的物質(zhì)如糖分、氨基酸及纖維素、半纖維素等生成微生物生物量[53]。至第二次發(fā)酵結(jié)束,培養(yǎng)料中的纖維素和木聚糖50%~60%被降解,而木質(zhì)素則幾乎沒有被降解[54]。培養(yǎng)料第一、二次發(fā)酵階段的優(yōu)勢(shì)真菌均為子囊菌,第一次發(fā)酵階段的優(yōu)勢(shì)菌群主要有赤霉菌屬()、鏈格菌屬()、微菌屬()、毛殼屬()、節(jié)水霉()和木霉屬;在第二次發(fā)酵階段,則以微菌屬、毛殼屬、嗜熱霉菌屬()和節(jié)水霉為優(yōu)勢(shì)菌群[55,56];在發(fā)菌階段,培養(yǎng)料中的雙孢蘑菇替代子囊菌成為優(yōu)勢(shì)菌群[57]。培養(yǎng)料第一次發(fā)酵階段的優(yōu)勢(shì)細(xì)菌菌群主要有厚壁菌門的芽孢桿菌、瘤胃梭菌()和嗜熱芽孢桿菌()等;第二次發(fā)酵階段的優(yōu)勢(shì)細(xì)菌菌群則以放線菌門的嗜熱多孢菌屬()、嗜熱雙歧菌屬()和嗜熱雙孢菌屬()為主;發(fā)菌階段,培養(yǎng)料中細(xì)菌的多樣性降低,變形菌門細(xì)菌占到細(xì)菌群體的50%,優(yōu)勢(shì)屬是螯臺(tái)球菌屬(),還有屬(未知門)和棲熱菌屬(,隸屬異常球菌-棲熱菌門)[58]。雙孢蘑菇發(fā)菌時(shí)期,培養(yǎng)料中的木質(zhì)素被降解50%,而木聚糖和纖維素僅被降解15%和10%[54],培養(yǎng)料中的細(xì)菌生物量降低了73%,主要為革蘭氏陰性菌的生物量降低[58,59]。相應(yīng)地,雙孢蘑菇發(fā)菌期培養(yǎng)料中的纖維素酶和木聚糖酶活性幾乎沒有變化或變化較小,而漆酶和錳過氧化物酶活力則急劇增加[60,61]。因此,發(fā)菌期雙孢蘑菇與細(xì)菌的關(guān)系被認(rèn)為是:雙孢蘑菇通過降解木質(zhì)纖維素為細(xì)菌提供糖分,而細(xì)菌則利用糖分合成維生素,為雙孢蘑菇提供其自身無(wú)法合成的維生素營(yíng)養(yǎng)[59]。

    覆土中的主要真菌是子囊菌門、球囊菌門和接合菌門,隨著雙孢蘑菇在覆土中的定殖,逐漸被擔(dān)子菌門所取代。覆土中主要的細(xì)菌門有變形菌門、放線菌門、厚壁菌門、擬桿菌門和酸桿菌門,隨著雙孢蘑菇在覆土中的定殖,細(xì)菌中變形菌門的相對(duì)豐度增加,而放線菌門和厚壁菌門的相對(duì)豐度降低。共有69個(gè)屬的細(xì)菌在覆土層中的組成相對(duì)穩(wěn)定,其中以變形菌門的鞘氨醇桿菌()和假單胞菌,以及擬桿菌門的黃桿菌()為主[62, 63]。隨著雙孢蘑菇在覆土中的定殖,覆土中的細(xì)菌生物量迅速降低,但在第一潮菇期間有所增加并維持到第二潮菇采收[58]。然而,覆土中的假單胞菌則不減反增,假單胞菌數(shù)量與細(xì)菌總數(shù)的比值從覆土開始時(shí)的0.1分別增加至原基期的0.66和采收期的0.7[64]。

    覆土材料中的木質(zhì)纖維素含量幾乎沒有變化,表明覆土層在雙孢蘑菇生產(chǎn)中所起的營(yíng)養(yǎng)作用很小[58]。但覆土層的高含水量能夠提高菇產(chǎn)量,表明覆土層的供水能力對(duì)雙孢蘑菇生長(zhǎng)發(fā)育非常重要[65]。

    在雙孢蘑菇培養(yǎng)料和覆土中可分離到大量能夠合成ACC脫氨酶和以ACC為唯一氮源進(jìn)行生長(zhǎng)的細(xì)菌,其比例約占可培養(yǎng)細(xì)菌總數(shù)的9%~31%[66,67]。ACC脫氨酶產(chǎn)生菌能夠趨化雙孢蘑菇菌絲分泌的ACC,在菌絲表面形成菌膜,促進(jìn)菌絲生長(zhǎng),減少乙烯合成[68,69]。將細(xì)菌的ACC脫氨酶基因轉(zhuǎn)入雙孢蘑菇,能夠降低菌絲中的ACC含量,減少乙烯合成,促進(jìn)菌絲生長(zhǎng)和早出菇[68]。研究表明,在滅菌覆土或蛭石替代覆土中添加ACC脫氨酶產(chǎn)生菌,能夠促進(jìn)雙孢蘑菇早出菇,提高產(chǎn)量,ACC脫氨酶產(chǎn)生菌的數(shù)量與雙孢蘑菇產(chǎn)量呈正相關(guān)[67,70]。進(jìn)一步證實(shí)乙烯對(duì)雙孢蘑菇出菇有抑制作用。

    但也有相反的報(bào)道。Co2+是ACO抑制劑,在覆土中添加0.8 mM CoCl2而不補(bǔ)充乙烯,會(huì)延遲雙孢蘑菇菌株S-281的出菇并降低產(chǎn)量,但不延遲U3菌株的出菇卻降低其產(chǎn)量[71];在覆土中添加0.8 mM CoCl2并補(bǔ)充乙烯,既不延遲S-281出菇也不降低產(chǎn)量。因此,認(rèn)為乙烯對(duì)雙孢蘑菇出菇?jīng)]有抑制作用。該研究中的覆土并沒有滅菌,覆土中的細(xì)菌能夠降低雙孢蘑菇合成的乙烯量,消除乙烯對(duì)雙孢蘑菇出菇的影響;補(bǔ)充乙烯可能是降低了氧的分壓強(qiáng),從而有利于出菇和提高產(chǎn)量,因?yàn)檫^低或過高的二氧化碳濃度都不利于出菇和高產(chǎn)[72]。另外,添加氯化鈷增加了覆土中的鹽分濃度,可能也是導(dǎo)致產(chǎn)量降低的原因[73]。

    3.4 乙烯抑制雙孢蘑菇出菇的機(jī)理

    盡管蕈菌形成子實(shí)體的機(jī)制還不清楚,但應(yīng)當(dāng)與活性氧有關(guān)。有觀點(diǎn)認(rèn)為,真核生物的有性繁殖是其適應(yīng)細(xì)胞內(nèi)活性氧氧化脅迫的一種方式。細(xì)胞在代謝過程中積累的活性氧會(huì)損傷DNA并極大提高基因組的突變速率。通過減數(shù)分裂進(jìn)行DNA的配對(duì)和重組,是真核生物維持基因組的穩(wěn)定和清除有害突變的有效方式[74]。敲除主要的活性氧合成酶NADPH氧化酶A基因,構(gòu)巢曲霉不能形成有性生殖閉囊殼[75]。同樣地,下調(diào)表達(dá)NADPH氧化酶A,平菇和靈芝的子實(shí)體形成受到影響[76,77]。因此,食用菌出菇的機(jī)理可能是,在低溫、光照、氧或機(jī)械損傷等誘導(dǎo)下,菌絲中活性氧迸發(fā),啟動(dòng)有性生殖程序,形成子實(shí)體。然而,乙烯通過其信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑能夠上調(diào)抗氧化酶和合成抗氧化物質(zhì)的基因的表達(dá),從而清除活性氧,消除活性氧對(duì)原基形成的誘導(dǎo)作用,導(dǎo)致不能出菇。

    乙烯之所以抑制雙孢蘑菇的出菇,與其在雙孢蘑菇子實(shí)體形成和發(fā)育過程中的大量合成密切相關(guān)。雙孢蘑菇是草腐菌但卻具有白腐菌的特性,能夠合成漆酶和錳過氧化物酶(Manganese peroxidase,MnP)從而利用木質(zhì)素[61]。漆酶是雙孢蘑菇主要的胞外蛋白,與菌絲生物量呈顯著正相關(guān)[78]。常規(guī)栽培雙孢蘑菇,子實(shí)體原基形成和發(fā)育階段漆酶和MnP活力達(dá)到最大,當(dāng)?shù)谝怀惫绞斋@時(shí)酶活性明顯降低[61],原因可能是,在子實(shí)體發(fā)育過程中,雙孢蘑菇需要在短時(shí)間內(nèi)合成大量的細(xì)胞物質(zhì)供子實(shí)體膨大,因此該時(shí)期許多酶包括漆酶和MnP的活力達(dá)到最大,以提供營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)。漆酶是單電子氧化還原酶,催化氧化酚類和芳香胺類化合物時(shí)會(huì)在細(xì)胞中積累較多的活性氧,MnP在催化過程中同樣有活性氧形成[79],再加上低溫誘導(dǎo)子實(shí)體形成時(shí)NADPH氧化酶合成的活性氧,菌絲細(xì)胞中活性氧的積累急劇增加,活性氧誘導(dǎo)細(xì)胞合成乙烯[80],使乙烯合成量在短時(shí)間內(nèi)爆發(fā)性增加。當(dāng)子實(shí)體發(fā)育到適當(dāng)大小時(shí)不再繼續(xù)膨大,菌絲不再需要大量合成細(xì)胞物質(zhì),漆酶和MnP的活力及乙烯合成量隨之降低。

    同樣需要覆土才能出菇的姬松茸[81]和雞腿菇[82],其漆酶和過氧化物酶的活力同樣在子實(shí)體形成期達(dá)到高峰。香菇子實(shí)體形成和發(fā)育過程中乙烯合成量少于雙孢蘑菇,可能與其在此過程中漆酶活力及其基因表達(dá)量迅速下降而纖維素酶活力及其基因表達(dá)量迅速增加有關(guān)[83]。平菇子實(shí)體形成和發(fā)育過程中漆酶和纖維素酶活力的變化與香菇相似[84]。

    抑制雙孢蘑菇出菇的乙烯來自培養(yǎng)料中的雙孢蘑菇菌絲,雙孢蘑菇培養(yǎng)料中也生活有ACC脫氨酶產(chǎn)生菌,也能夠降解雙孢蘑菇菌絲合成的ACC,為什么還需要覆土呢?一方面隨著雙孢蘑菇菌絲的生長(zhǎng),菌絲對(duì)細(xì)菌、尤其是對(duì)革蘭氏陰性菌的降解,導(dǎo)致培養(yǎng)料中的細(xì)菌數(shù)量極大地降低,培養(yǎng)料中假單胞菌的數(shù)量極低。另一方面,隨著雙孢蘑菇菌絲的生長(zhǎng),培養(yǎng)料中的氧氣越來越缺乏,雙孢蘑菇菌絲可以通過表面菌絲向培養(yǎng)料內(nèi)部的菌絲供氧,但培養(yǎng)料中的細(xì)菌則因缺氧而降低了代謝活性。例如,我們?cè)谠嚬芑蛟耘啻醒b入添加了ACC脫氨酶產(chǎn)生菌的滅菌培養(yǎng)料,開始階段細(xì)菌對(duì)雙孢蘑菇菌絲生長(zhǎng)的促進(jìn)作用明顯,之后幾乎沒有促生作用,分析可能與培養(yǎng)料中缺氧有關(guān)。覆土中含水量高,培養(yǎng)料中的菌絲的代謝產(chǎn)物包括ACC和草酸鈣等,能夠通過毛細(xì)作用擴(kuò)散到覆土層,為覆土層中的ACC脫氨酶產(chǎn)生菌提供碳源和氮源,使其中的ACC脫氨酶產(chǎn)生菌數(shù)量大大增加(圖2),這些ACC脫氨酶產(chǎn)生菌水解ACC,降低菌絲合成的乙烯量,解除乙烯對(duì)菌絲形成子實(shí)體的抑制作用。同時(shí),隨著草酸鈣通過毛細(xì)管擴(kuò)散到覆土層,也解除了草酸鈣對(duì)菌絲的影響。雙孢蘑菇菌絲在培養(yǎng)料中生長(zhǎng)時(shí),在菌絲表面會(huì)形成草酸鈣結(jié)晶,形成的草酸鈣結(jié)晶越多,表明菌絲活性越強(qiáng),菇產(chǎn)量就越高。覆土后菌絲表面的草酸鈣結(jié)晶即消失[85,86]。到達(dá)覆土的草酸鈣也是覆土中細(xì)菌的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)。

    圖2 雙孢蘑菇栽培過程中培養(yǎng)料和覆土中細(xì)菌和假單胞菌 16S rRNA V4區(qū)拷貝數(shù)的變化(數(shù)據(jù)來自文獻(xiàn)[87])

    注:D0,建堆時(shí)的培養(yǎng)料;PI,第一次發(fā)酵結(jié)束的培養(yǎng)料;PII,第二次發(fā)酵結(jié)束的培養(yǎng)料;PIII,雙孢蘑菇發(fā)菌結(jié)束的培養(yǎng)料;Ca,覆土前的覆土;CaF1,低溫誘導(dǎo)至第一潮菇采收期間的中段時(shí)間的覆土;CaF2,第一潮菇采收后至第二潮菇采收期間的中段時(shí)間的覆土;CoF1,低溫誘導(dǎo)至第一潮菇采收期間的中段時(shí)間的培養(yǎng)料;CoF2,第一潮菇采收后至第二潮菇采收期間的中段時(shí)間的培養(yǎng)料。

    4 雙孢蘑菇合成1-辛烯-3-醇的途徑及其功能

    4.1 雙孢蘑菇合成1-辛烯-3-醇的途徑

    1-辛烯-3-醇是最早在松茸()中發(fā)現(xiàn)的一種香味物質(zhì)[88],隨后在多種真菌、動(dòng)植物及其制品中被發(fā)現(xiàn)。在雙孢蘑菇中,1-辛烯-3-醇的合成途徑可能是,不飽和脂肪酸主要是亞油酸,在脂氧合酶或含血紅素雙加氧酶作用下,加上一個(gè)氧分子,生成 (8E,12Z)-10-氫過氧十八碳-8,12-二烯酸,然后被氫過氧化物裂解酶裂解生成等摩爾的1-辛烯-3-醇和10-氧-反-8-葵烯酸(圖3)。當(dāng)雙孢蘑菇菌絲或子實(shí)體受到損傷時(shí),1-辛烯-3-醇的合成量大幅度增加。如雙孢蘑菇切片后1-辛烯-3-醇的合成量是完整子實(shí)體的10余倍[89]。

    圖3 雙孢蘑菇中推測(cè)的1-辛烯-3-醇生物合成途徑(修改自文獻(xiàn)[90])

    4.2 1-辛烯-3-醇的生物學(xué)功能

    1-辛烯-3-醇對(duì)細(xì)菌的作用如同抗生素,低濃度促生、高濃度抑制。將分離自雙孢蘑菇覆土中的274 株細(xì)菌置于含有0.05%的1-辛烯-3-醇的LB培養(yǎng)基中培養(yǎng),約97%的菌株能夠生長(zhǎng)[64]。然而,高濃度的1-辛烯-3-醇則能夠抑制多種細(xì)菌的生長(zhǎng),對(duì)革蘭氏陽(yáng)性菌的最低抑制濃度(MIC)和最低殺菌濃度(MBC)分別是1.0 mg/mL和4.0 mg/mL;對(duì)革蘭氏陰性菌的MIC和MBC分別是2.0 mg/mL和8.0 mg/mL;對(duì)銅綠假單胞菌()的最低抑菌濃度是1 000 μg/g和2.0 mg/mL,最低殺菌濃度是8.0 mg/mL[91,92]。1-辛烯-3-醇的抑菌機(jī)理是破壞細(xì)菌的細(xì)胞壁和細(xì)胞膜,誘導(dǎo)細(xì)胞膜的損傷,導(dǎo)致細(xì)胞質(zhì)外溢,對(duì)DNA則沒有破壞作用[91]。

    1-辛烯-3-醇對(duì)真菌的作用表現(xiàn)為多種機(jī)制。一是真菌的適應(yīng)性因子。當(dāng)濃度為0.1 μM時(shí)可誘導(dǎo)木霉形成分生孢子,但當(dāng)濃度為500? μM時(shí)則抑制分生孢子的形成[93]。低劑量1-辛烯-3-醇處理可提高黃曲霉()毒素及其前體物的合成[94]。二是真菌毒素作用。高劑量1-辛烯-3-醇處理可抑制黃曲霉菌絲的生長(zhǎng)和菌核的形成[94]。三是群體感應(yīng)分子,自我抑制劑。在展青霉()分生孢子不同萌發(fā)階段,越早添加1-辛烯-3-醇對(duì)孢子萌發(fā)的抑制作用越強(qiáng),表現(xiàn)為對(duì)細(xì)胞膜產(chǎn)生損傷,改變細(xì)胞膜的滲透性,干擾細(xì)胞基本的代謝過程,如分生孢子的吸水膨脹和萌發(fā),但這個(gè)過程是可逆的[95]。四是真菌的細(xì)胞信號(hào)物質(zhì)。黃曲霉編碼合成1-辛烯-3-醇的酶的基因突變,增加了菌核數(shù)量,減少了分生孢子數(shù)量[96]。

    4.3 1-辛烯-3-醇抑制雙孢蘑菇出菇

    1-辛烯-3-醇也是雙孢蘑菇合成的一種氣體物質(zhì),是生物中普遍存在的氧脂類信號(hào)分子。Wood等于1982年發(fā)現(xiàn)在平板培養(yǎng)皿中,1-辛烯-3-醇抑制雙孢蘑菇子實(shí)體的形成但不抑制菌絲的生長(zhǎng)[97]。在微培養(yǎng)系統(tǒng)中有1-辛烯-3-醇揮發(fā),能夠提高覆土中細(xì)菌的總數(shù)和假單胞菌的數(shù)量,但對(duì)原基的形成和發(fā)育有顯著抑制作用[16]。在空氣中流加0.035%的1-辛烯-3-醇,可抑制雙孢蘑菇原基的形成[98]。空間中短暫或連續(xù)揮發(fā)1-辛烯-3-醇,第一潮菇產(chǎn)量顯著降低,但對(duì)第二潮菇?jīng)]有影響??臻g中短暫或連續(xù)揮發(fā)1-辛烯-3-醇5天,覆土中的可培養(yǎng)細(xì)菌總數(shù)沒有差異,到第12 天才出現(xiàn)差異,但到第19天短暫揮發(fā)則沒有差異,只有連續(xù)揮發(fā)才會(huì)升高。空間中短暫或連續(xù)有1-辛烯-3-醇揮發(fā)5天、12天,熒光假單胞菌的數(shù)量均顯著增加,但到第19天,僅連續(xù)揮發(fā)下菌數(shù)才顯著增加[99]。

    在雙孢蘑菇出菇實(shí)驗(yàn)中所使用的1-辛烯-3-醇的濃度可能過高[16,98]。Turner 等在雙孢蘑菇栽培室內(nèi)沒有檢測(cè)到1-辛烯-3-醇[17],Pfeil1等[21]在培養(yǎng)室空氣中僅檢測(cè)到痕量的1-辛烯-3-醇,只有在菌絲受到損傷時(shí)才合成較多的1-辛烯-3-醇。另外也忽視了雙孢蘑菇合成1-辛烯-3-醇時(shí),同時(shí)還合成有10-氧-反-8-癸烯酸(10-Oxo-trans-8-decenoic acid,10-ODA)[100]。低濃度10-ODA能夠促進(jìn)雙孢蘑菇菌絲的生長(zhǎng)及子實(shí)體菌柄的伸長(zhǎng)[101,102]。覆土中補(bǔ)充雙孢蘑菇子實(shí)體粉能夠合成更多的1-辛烯-3-醇和10-ODA,同時(shí)提高雙孢蘑菇產(chǎn)量[103]。高濃度的10-ODA則抑制雙孢蘑菇菌絲的生長(zhǎng)[101]。因此,1-辛烯-3-醇應(yīng)當(dāng)不是雙孢蘑菇出菇的自抑物質(zhì)。高劑量的1-辛烯-3-醇抑制出菇的機(jī)制可能是使細(xì)胞膜和線粒體膜損傷,導(dǎo)致細(xì)胞中積累的活性氧進(jìn)一步對(duì)菌絲細(xì)胞產(chǎn)生毒害作用,使得菌絲不能正常生長(zhǎng)發(fā)育。一旦消除1-辛烯-3-醇或菌絲對(duì)其產(chǎn)生了適應(yīng)性,這種毒害作用即是可逆的。

    我們用1-辛烯-3-醇處理雙孢蘑菇菌絲,菌絲中活性氧得到積累,而用乙烯利處理的菌絲細(xì)胞中的活性氧則被清除(圖4)。具體方法:在分割平板的一側(cè)裝有加富PDA培養(yǎng)基中培養(yǎng)雙孢蘑菇,將蓋玻片滅菌后斜插入菌絲生長(zhǎng)的培養(yǎng)基中,置于25 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)2周;取3 g乙烯利溶于1 mL 5 M的氫氧化鈉中或0.5 mL 20 μM的1-辛烯-3-醇,加入分割平板的另一側(cè),分別于10 min、20 min、30 min取長(zhǎng)有菌絲的蓋玻片,采用DCHF-DA(2', 7'-dichlorodihydrofluorescein diacetate)進(jìn)行染色檢測(cè)細(xì)胞中的活性氧,用激光共聚焦顯微鏡觀察菌絲中活性氧的變化。以無(wú)菌水處理為對(duì)照。

    圖4 乙烯利和1-辛烯-3-醇處理對(duì)雙孢蘑菇菌絲中活性氧的影響

    5 結(jié) 論

    抑制雙孢蘑菇子實(shí)體形成的氣體自抑物質(zhì)應(yīng)滿足的條件:在原基形成前后合成量較高,對(duì)原基形成有抑制作用,能夠被特定細(xì)菌類群所利用。顯然,乙烯比1-辛烯-3-醇更能滿足這些條件。乙烯抑制雙孢蘑菇出菇的機(jī)理:在低溫誘導(dǎo)出菇和原基形成時(shí),雙孢蘑菇菌絲中因低溫誘導(dǎo)乙烯合成并積累活性氧,再加上木質(zhì)素降解酶作用積累的活性氧,導(dǎo)致活性氧迸發(fā),活性氧又進(jìn)一步誘導(dǎo)乙烯的合成;乙烯通過其信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑上調(diào)抗氧化酶和合成抗氧化物質(zhì)的基因的表達(dá),從而清除活性氧,消除了活性氧對(duì)原基形成的誘導(dǎo)作用,導(dǎo)致不能出菇;覆土中的ACC脫氨酶產(chǎn)生菌能夠利用菌絲合成的乙烯前體物ACC,減少菌絲合成的乙烯量,從而消除乙烯對(duì)原基形成的抑制作用(圖5)。盡管高濃度的1-辛烯-3-醇能夠損傷細(xì)胞膜和改變細(xì)胞代謝,對(duì)菌絲有一定的抑制作用,但1-辛烯-3-醇在雙孢蘑菇原基形成前后并沒有大量合成。另外,1-辛烯-3-醇是在菌絲受到損傷時(shí)才大量合成,也不存在被特定的細(xì)菌類群所利用。因此,1-辛烯-3-醇不應(yīng)是雙孢蘑菇出菇的氣體自抑物質(zhì)。

    圖5 乙烯抑制雙孢蘑菇出菇的機(jī)制示意圖

    注:ACDS,ACC脫氨酶;ACO,ACC氧化酶;ACS,ACC合成酶;Met,甲硫氨酸;ROS,活性氧;SAM,S-腺苷甲硫氨酸。

    [1] Lambert E B. Principles and problems of mushroom culture[J]. The Botanical Review, 1938, 4(7): 397-426.

    [2] Young L S, Chu J N, Young C C. Beneficial bacterial strains oncultivation[J]. Pesquisa Agropecuária Brasileira, 2012, 47(6): 815-821.

    [3] Doshi A, Sharma S S, Trivedi A. A promising edible mushroom for the tropicsP&C[J]. Mushroom Information 1993, 86: 14-22.

    [4] 杜巍, 袁靜, 唐興芳, 等. 雞腿蘑覆土機(jī)理研究初探[J]. 中國(guó)食用菌, 2003, 22(1): 15-16.

    [5] Stoller B B. Studies on the function of the casing soil for mushroom beds[J]. Mushroom Growers' Association Bulletin, 1952, 34: 289-297.

    [6] Vijay B, Saxena S, Sohi H S. Studies on new casing media for(Lange) Sing[J]. Mushroom Journal, 1987, 178: 313-315.

    [7] Singh M, Singh R P, Chaube H S. Impact of physico-chemical properties of casing soil on yield of(Langue) Imbach[J]. Mushroom Science, 2000, 9: 441-446.

    [8] Eger G. Untersuchungen über die funktion der deckschicht bei der fruchtk rperbildung des kulturchampignons,Lge[J]. Archives of Microbiology, 1961, 39: 313-334.

    [9] Park J Y, Agnihotri V P. Sporophore production ofin aseptic environments[J]. Antonie van Leeuwenhoek, 1969, 35: 523-528.

    [10] Noble R,F(xiàn)ermor T R,Lincoln S,et al. Primordia initiation of mushroom () strains on axenic casing materials[J]. Mycologia, 2003, 95(4): 620-629.

    [11] Hayes W A, Randle P E, Last F T. The nature of the microbial stimulus affecting sporophore stimulation in(Lange) Sing[J]. The Annals of Applied Biology, 1969, 64(1): 177-187.

    [12] Rainey P B, Cole A L J. Fermor T R, et al. A model system for examining involvement of bacteria in basidiome initiation of[J]. Mycological Research, 1990, 94(2): 191-195.

    [13] Umar M H, Van-Griensven L J L D. The role of morphogenetic cell death in the histogenesis of the mycelial cord ofand in the development of macrofungi[J]. Mycological Research, 1998, 102(6): 719-735.

    [14] Long P E, Jacobs L. Aseptic fruiting of the cultivated mushroom[J]. Transactions of the British Mycological Society, 1974, 63(1): 99-107.

    [15] Wood D A. Primordium formation in axenic cultures of(Lange) Sing[J]. Journal of General Microbiology, 1976, 95(2): 313-323.

    [16] Noble R, Dobrovin-Pennington A, Hobbs P J, et al. Volatile C8 compounds and pseudomonads influence primordium formation of[J]. Mycologia, 2009, 101(5): 583-591.

    [17] Turner E M, Wright M, Ward T, et al. Production of ethylene and other volatiles and changes in cellulase and laccase activities during the life cycle of the cultivated mushroom,[J]. Journal of General Microbiology, 1975, 91(1): 167.

    [18] Ward T, Turner E M, Osborne D J. Evidence for the production of ethylene by the mycelium ofand its relationship to sporocarp development[J]. Microbiology, 1978, 104(1): 23-30.

    [19] Ohga S. Carbon dioxide and ethylene levels during incubation and fruiting stages on sawdust-based culture of[J]. Bulletin of Kyushu University Forests, 1998, 79: 13-20.

    [20] Grove J F, Blight M M. The oviposition attractant for the mushroom phorid: the identification of volatiles present in mushroom house air[J]. Journal of the Science of Food and Agriculture, 1983, 34: 181-185.

    [21] Pfeil R M, Mumma R O. Air sampling of volatiles fromin a mushroom facility and from mushroom compost[J]. HortScience, 1992, 27: 416-419.

    [22] Ilag L, Curtis R W. Production of ethylene by fungi[J]. Science, 1968, 159(3821): 1357-1358.

    [23] El-Sharouny H M. Screening of ethylene-producing root-infecting fungi in Egyptian soil[J]. Mycopathologia, 1984, 85(1-2): 13-15.

    [24] Arshad M, Frankenberger Jr W T. Ethylene: Agricultural sources and applications[M]. New York: Springer Science & Business Media, 2012.

    [25] Tanaka H, Enoki A, Fuse G. Correlation between ethylene production from α-oxo-γ-methylthiobu-t yric acid and degradation of lignin dimeric model compounds by wood-inhabiting fungi[J]. Journal of the Japan Wood Research Society (Japan), 1987, 32(2): 125-135.

    [26] Turner E M, Wright M, Ward T, et al. Production of ethylene and other volatiles and changes in cellulase and laccase activities during the life cycle of the cultivated mushroom,[J]. Microbiology, 1975, 91(1): 167-176.

    [27] 李亞楠, 張艷, 尚迪, 等. 不同糙皮側(cè)耳菌株氨耐受性分析[J]. 食用菌學(xué)報(bào), 2021, 28(4): 57-63.

    [28] 賈文君, 何金銀, 徐步前. 臭氧處理對(duì)草菇保鮮效果的影響[J]. 保鮮與加工, 2006(6): 15-18.

    [29] 趙春燕, 馬芳菲, 馮敘橋, 等. 1-MCP 處理對(duì)杏鮑菇采后生理和結(jié)構(gòu)變化的影響[J]. 食品科學(xué), 2014, 35(6): 185-188.

    [30] 王術(shù)榮, 郭富寬, 孟俊龍, 等. 不同濃度 1-甲基環(huán)丙烯處理對(duì)廣葉繡球菌子實(shí)體采后生化和感官特性的影響[J]. 食用菌學(xué)報(bào), 2017, 24(3): 68-73.

    [31] 李湘利, 劉靜, 楊永濤, 等. 1-MCP 對(duì)雞樅菌采后生理及貯藏品質(zhì)的影響[J]. 食品科學(xué), 2016, 37(14): 237-241.

    [32] Chagué V. Ethylene production by fungi: biological questions and future developments towards a sustainable polymers industry[M]. In: Handbook of Hydrocarbon and Lipid Microbiology. Heidelberg,Berlin: Springer-Verlag, 2010.

    [33] Hottiger T, Boller T. Ethylene biosynthesis inf. sp. tulipae proceeds from glutamate/2-oxoglutarate and requires oxygen and ferrous ions in vivo[J]. Archives of Microbiology, 1991, 157(1): 18-22.

    [34] Pazout J, Pazoutova S. Ethylene is synthesised by vegetative mycelium in surface cultures ofwestling[J]. Canadian Journal of Microbiology, 1989, 35: 384-387.

    [35] Fukudaa H, Fujiia T, Ogawaa T. Preparation of a cell-free ethylene- forming system from[J]. Agricultural and Biological Chemistry. 1986, 50(4): 977-981.

    [36] Akhtar M J, Arshad M, Khalid A, et al. Substrate-dependent biosynthesis of ethylene by rhizosphere soil fungi and its influence on etiolated pea seedlings[J]. Pedobiologia, 2005, 49: 211-219.

    [37] Cristescu S M, De Martinis D, Hekkert S L, et al. Ethylene production byin vitro and in tomatoes[J]. Applied and Environmental Microbiology, 2002, 68: 5342-5350.

    [38] Tzeng D, De-Vay J. Ethylene production and toxi genicity of methionine and its derivatives with riboflavin in cultures of,andspecies exposed to light[J]. Physiologia Plantarum, 1984, 62: 545-552.

    [39] Zhang C, Huang T, Shen C, et al. Downregulation of ethylene production increases mycelial growth and primordia formation in the button culinary-medicinal mushroom,(Agaricomycetes)[J]. International Journal of Medicinal Mushrooms, 2016, 18(12): 1131-1140.

    [40] Chen J, Chen T, Qiu M, et al. Identification of ACC synthetase genes inand analysis of their response to ethephon and 1-methylcyclopropene treatments[J]. Scientia Horticulturae, 2021, 278: 109848.

    [41] 徐志旭. 乙烯調(diào)控草菇采后成熟和衰老的分子機(jī)制[D]. 鄭州: 河南農(nóng)業(yè)大學(xué), 2021.

    [42] Amagai A, Maeda Y. The ethylene action in the development of cellular slime molds: an analogy to higher plants[J]. Protoplasma, 1992, 167: 159-168.

    [43] Riyazuddin R, Verma R, Singh K, et al. Ethylene: A master regulator of salinity stress tolerance in plants[J]. Biomolecules, 2020, 10(6): 959.

    [44] 張艷. 1-氨基環(huán)丙烷-1-羧酸脫氨酶產(chǎn)生菌提高糙皮側(cè)耳高氨和高溫適應(yīng)性研究[D]. 鄭州: 河南農(nóng)業(yè)大學(xué), 2022.

    [45] Wood D A, Hammond J B. Ethylene production by axenic fruiting cultures of[J]. Applied and Environmental Microbiology, 1977, 34(2): 228-229.

    [46] Ward T, Turner E M, Osborne D J. Evidence for the production of ethylene by the mycelium ofand its relationship to sporocarp development[J]. Microbiology. 1978, 104: 23-30.

    [47] 孟德梅. 雙孢菇子實(shí)體生長(zhǎng)發(fā)育與采后衰老過程中乙烯的調(diào)控及其生物合成途徑的探究[D]. 北京: 中國(guó)農(nóng)業(yè)大學(xué), 2014.

    [48] 趙葵, 郜熙陽(yáng), 邱立友. 真菌激素研究進(jìn)展[J]. 微生物學(xué)通報(bào), 2019, 46(11): 3102-3109.

    [49] Li T, Zhang J, Gao X, et al. The molecular mechanism for the ethylene regulation of postharvest button mushrooms maturation and senescence[J]. Postharvest Biology and Technology, 2019, 156: 110930.

    [50] Ahmad I, Zaib, S. Mighty microbes: plant growth promoting microbes in soil health and sustain able agriculture[M]. In: Soil Health. Cham, Switzerland: Springer, 2020: 243-264.

    [51] Nascimento F X, Rossi M J, Soares C R F S, et al. New insights into 1-aminocyclopropane-1-carboxylate (ACC) deaminase phylogeny, evolution and ecological significance[J]. PLoS One, 2014, 9(6): e99168.

    [52] Girard L, Lood C, H?fte M, et al. The ever-expandinggenus: description of 43 new species and partition of thegroup[J]. Microorganisms, 2021, 9: 1766.

    [53] Ross R C, Harris P J. An investigation into the selective nature of mushroom compost[J]. Scientia Horticulturae, 1983, 19: 55-64.

    [54] Jurak E, Punt A M, Arts W, et al. Fate of carbohydrates and lignin during composting and mycelium growth ofon wheat straw based compost[J]. PLoS One, 2015, 10: e0138909.

    [55] Straatsma G, Samson R A, Olijnsma T W, et al. Ecology of thermophilic fungi in mushroom compost, with emphasis onand growth stimulation ofmycelium[J]. Applied and Environmental Microbiology, 1994, 60: 454-458.

    [56] Kertesz M A, Thai M. Compost bacteria and fungi that influence growth and development ofand other commercial mushrooms[J]. Applied Microbiology and Biotechnology, 2018, 102: 1639-1650.

    [57] McGee C F, Byrne H, Irvine A, et al. Diversity and dynamics of the DNA- and cDNA-derived compost fungal communities throughout the commercial cultivation process for[J]. Mycologia, 2017, 109: 475-484.

    [58] Carrasco J, García-Delgado C, Lavega R, et al. Holistic assessment of the microbiome dynamics in the substrates used for commercial champignon () cultivation[J]. Microbial Biotechnology, 2020, 13(6): 1933-1947.

    [59] Vos A M, Heijboer A, Boschker H T, et al. Microbial biomass in compost during colonization of[J]. AMB Express, 2017, 7(1): 1-7.

    [60] Wood D A, Goodenough P W. Fruiting of[J]. Archives of Microbiology, 1977, 114(2): 161-165.

    [61] Bonnen A M, Anton L H, Orth A B. Lignin-degrading enzymes of the commercial button mushroom,[J]. Applied and Environmental Microbiology. 1994, 60(3): 960-965.

    [62] Taparia T, Hendrix E, Hendriks M, et al. Casing soil microbiome mediates suppression of bacterial blotch of mushrooms during consecutive cultivation cycles[J]. Soil Biology and Biochemistry, 2021, 155: 108161.

    [63] Carrasco J, Tello M L, De-Toro M, et al. Casing microbiome dynamics during button mushroom cultivation: implications for dry and wet bubble diseases[J]. Microbiology, 2019, 165: 611-624.

    [64] Zarenejad F, Yakhchali B, Rasooli I. Evaluation of indigenous potent mushroom growth promoting bacteria (MGPB) onproduction[J]. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 2012, 28(1): 99-104.

    [65] Navarro M J, Carrasco J, Gea F J. The role of water content in the casing layer for mushroom crop production and the occurrence of fungal diseases[J]. Agronomy, 2021, 11(10): 2063.

    [66] 張大飛, 戚元成, 高玉千, 等. 雙孢蘑菇覆土出菇機(jī)理初步探討[J]. 食用菌, 2010, 32(1): 9-11.

    [67] 張巖, 張朝輝, 劉冬忍, 等. 脂質(zhì)體介導(dǎo)遺傳轉(zhuǎn)化雙孢蘑菇菌褶及1-氨基環(huán)丙烷-1-羧酸氧化酶基因(ACO)功能初探[J]. 農(nóng)業(yè)生物技術(shù)學(xué)報(bào), 2015, 23(8): 1112-1120.

    [68] Zhang C, Zhang G, Wen Y, et al.sp. UW4 acdS gene promotes primordium initiation and fruiting body development of[J]. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 2019, 35(11): 1-10.

    [69] Li T, Zhang J, Shen C H, et al. 1-Aminocyclopropane-1-carboxylate: a novel and strong chemoattractant for the plant beneficial rhizobacteriumUW4[J]. Molecular Plant-Microbe Interactions, 2019, 32(6): 750-759.

    [70] 程雁, 王景冒, 張巖, 等. 應(yīng)用 1-氨基環(huán)丙烷-1-羧酸脫氨酶產(chǎn)生菌提高雙孢蘑菇產(chǎn)量[J]. 河南科學(xué), 2015, 33(10): 1750-1755.

    [71] Kurtzman R H. Cobalt chloride and ethylene affect fruiting of[J]. Mycologia, 1995, 87(3): 366-369.

    [72] Long P E, Jacobs L. Aseptic fruiting of the cultivated[J]. Transactions of the British Mycological Society, 1974, 63(1): 99-107.

    [73] Sharma A K, Sharma S S, Gurjar A K. Effect of different casing materials on growth and yield of[J]. The Pharma Innovation Journal, 2021, 10(9): 604-607.

    [74] H?randl E, Speijer D. How oxygen gave rise to eukaryotic sex[J]. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences, 2018, 285(1872): 20172706.

    [75] Lara-Ortiz T, Riveros-Rosas H, Aguirre J. Reactive oxygen species generated by microbial NADPH oxidase NoxA regulate sexual development in[J]. Molecular Microbiology, 2003, 50: 1241-1255.

    [76] Zuo Y, Yang Q, Li Y, et al. Functions and bioinformatics analysis of the NADPH oxidase NoxA in basidiomycete: ROS production and fruiting body formation[J]. Academia Journal of Agricultural Research, 2016, 4(4): 218-229.

    [77] Mu D, Li C, Zhang X, et al. Functions of the nicotinamide adenine dinucleotide phosphate oxidase family in: an essential role in ganoderic acid biosynthesis regulation, hyphal branching, fruiting body development, and oxidative-stress resistance[J]. Environmental Microbiology, 2014, 16(6): 1709-1728.

    [78] Matcham S E, Jordan B R, Wood D A. Estimation of fungal biomass in a solid substrate by three independent methods[J]. Applied Microbiology and Biotechnology, 1995, 21(2): 108-112.

    [79] Martínez A T, Speranza M, Ruiz-Duenas F J, et al. Biodegradation of lignocellulosics: microbial, chemical, and enzymatic aspects of the fungal attack of lignin[J]. International Microbiology, 8(3): 195-204.

    [80] Wang K L C, Li H, Ecker J R. Ethylene biosynthesis and signaling networks[J]. The Plant Cell, 2002, 14(suppl 1): S131-S151.

    [81] 倪新江, 丁立孝, 潘迎捷, 等. 姬松茸在兩種培養(yǎng)基上生長(zhǎng)期間九種胞外酶活性變化[J]. 菌物系統(tǒng), 2001(2): 222-227.

    [82] 劉朝貴, 邵坤, 聶和平, 等. 不同培養(yǎng)料對(duì)雞腿菇胞外酶活性影響的研究[J]. 西南師范大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版), 2008, 33(1): 40-42.

    [83] Ohga S, Royse D J. Transcriptional regulation of laccase and cellulase genes during growth and fruiting of Lentinula edodes on supplemented sawdust[J]. FEMS Microbiology Letter, 2001, 201(1): 111-115.

    [84] Elisashvili V, Kachlishvili E, Penninckx M. Lignocellulolytic enzymes profile during growth and fruiting ofon wheat straw and tree leaves[J]. Acta Microbiologica et Immunologica Hungarica, 2008, 55(2): 157-168.

    [85] Whitney K D, Arnott H J. Calcium oxalate crystal morphology and development in[J]. Mycologia, 1987, 79(2): 180-187.

    [86] Atkey P T, Wood D A. An electron microscope study of wheat straw composted as a substrate for the cultivation of the edible mushroom ()[J]. Journal of Applied Bacteriology, 1983, 55(2): 293-304.

    [87] Vieira F R, Pecchia J A. Bacterial community patterns in thecultivation system, from compost raw materials to mushroom caps[J]. Microbial Ecology, 2021, https://doi.org/10.1007/s00248-021-01833-5.

    [88] Murahashi S. über die riechstoffe des matsutake[J]. Scientific papers of the Institute of Physical and Chemical Research, 1938, 34: 155-172.

    [89] Combet E, Henderson J, Eastwood D C, et al. Influence of sporophore development, damage, storage, and tissue specificity on the enzymic formation of volatiles in mushrooms ()[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 2009, 57(9): 3709-3717.

    [90] Kües U, Khonsuntia W, Subba S, et al. Volatiles in communication of Agaricomycetes[M].Cham, Switzerland: Springer, 2018: 149-212.

    [91] Xiong C, Qiang L, Li S, et al. In vitro antimicrobial activities and mechanism of 1-octen-3-ol against food-related bacteria and pathogenic fungi[J]. Journal of Oleo Science, 2017, 66(9): 1041-1049.

    [92] Beltran-Garcia M J, Estarron-Espinosa M, Ogura T. Volatile compounds secreted by the oyster mushroom () and their antibacterial activities[J]. Journal of Agricultural and Food Chemistry, 1997, 45(10): 4049-4052.

    [93] Nemcovic M, Jakubíková L, Víden I, et al. Induction of conidiation by endogenous volatile compounds inspp[J]. FEMS Microbiology Letter, 2008, 284: 231-236.

    [94] Singh D, Son S Y, Lee C H. Critical thresholds of 1-octen-3-ol shape inter-speciesinteractions modulating the growth and secondary metabolism[J]. Scientific Reports, 2020, 10(1): 1-14.

    [95] Chitarra G S, Abee T, Rombouts F M, et al. Germination ofconidia is regulated by 1-octen-3-ol, a volatile self-inhibitor[J]. Applied and Environmental Microbiology, 2004, 70(5): 2823-2829.

    [96] Tsitsigiannis D I, Kowieski T M, Zarnowski R, et al. endogenous lipogenic regulators of spore balance in[J]. 2018, 3(6): 1398-1411.

    [97] Wood D A, Blight M. Sporophore initiation in axenic culture[R]. Report of the Glasshouse Crops Research Institute for 1981. Littlehampton, Sussex: the Glasshouse Crops Research Institute, 1982: 140.

    [98] Eastwood D C, Herman B, Noble R, et al. Environmental regulation of reproductive phase change inby 1-octen-3-ol, temperature and CO2[J]. Fungal Genetics and Biology, 2013, 55: 54-66.

    [99] Berendsen R L, Kalkhove S I C, Lugones L G, et al. Effects of the mushroom-volatile 1-octen-3-ol on dry bubble disease[J]. Applied Microbiology and Biotechnology, 2013, 97: 5535-5543.

    [100] Grosch W. Wurzenberger M, Grosch W. The formation of 1-octen-3-ol from the 10-hydroperoxide isomer of linoleic acid by a hydroperoxide lyase in mushrooms ()[J]. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Lipids and Lipid Metabolism, 1984, 794(1): 25-30.

    [101] Champavier Y, Pommier M, Arpin N, et al. 10-Oxo-trans-8-decenoic acid (ODA): production, biological activities, and comparison with other hormone-like substances in[J]. Enzyme and Microbial Technology, 2000, 26(2-4): 243-251.

    [102] Mau J L, Ma J T. Effect of 10-oxo-trans-8-decenoic acid on growth of several mushroom mycelia[J]. Fungi Science, 2001, 16(3, 4): 1-21.

    [103] Mau J L, Beelman R B, Ziegler G R. Effect of 10-oxo-trans-8-decenoic acid on growth of[J]. Phytochemistry, 1992, 31: 4059-4064.

    Recent advances in the volatile self-inhibitor for mushroom formation of the button mushroom,

    Zhang Jun1, 2Qi Man1Guo Jiawen1Zhang Chaohui3Qiu Liyou1

    (1. College of Life Sciences, Henan Agricultural University, Key Laboratory of Enzyme Engineering of Agricultural Microbiology, Ministry of Agriculture and Rural Affairs, Zhengzhou, Henan 450002, China; 2. Institute of Biology, Sanmenxia Academy of Agricultural Sciences, Sanmenxia, Henan 472000, China; 3. College of Life Science and Technology, Henan Institute of Science and Technology, Xinxiang, Henan 453003, China)

    The mechanism of the mushroom formation in the button mushroom () must be induced by casing soils remains uncertain. Other than the casing layer, the mushroom primordia can be stimulated and promoted by sterile activated charcoal or sterile air, indicating that the self-inhibitor of the mushroom formation synthesized by the mushroom mycelia should be volatiles. Currently, one view is that the volatile self-inhibitor is ethylene, and the other view proposes it is 1-octen-3-ol. Referring to the relevant literature in recent years, the synthesis pathway, function and the mechanism of inhibiting the mushroom formation of the two volatile compounds are reviewed. It is suggested that the characteristics of the volatile self-inhibitor of the mushroom formation should be that the synthesis amount increased dramatically before and after the primordia formation, inhibition the formation of the primordia, and could be utilized by specific bacterial community.Based on these characteristics, the volatile self-inhibitor synthesized by the mushroom mycelia is ethylene, not 1-octen-3-ol.

    ; casing soil; volatile self-inhibitor; primordia; ethylene; 1-octen-3-ol; reactive oxygen species

    S646

    A

    2095-0934(2022)04-248-13

    河南省科技攻關(guān)項(xiàng)目(202102110044、202102110019)

    張君(1992—),女,碩士,助理研究員,主要從事食用菌研究工作。E-mail:961810203@qq.com。

    邱立友,男,博士,教授,主要從事食用菌分子生物學(xué)研究。E-mail:qliyou@henau.edu.cn。

    猜你喜歡
    脫氨酶辛烯雙孢
    溶液法聚乙烯裝置1-辛烯的效能提升應(yīng)用
    腺苷脫氨酶在肝臟疾病中的臨床應(yīng)用
    結(jié)核性腦膜炎腦脊液腺苷脫氨酶檢測(cè)的臨床意義及應(yīng)用價(jià)值
    雙孢蘑菇菌種質(zhì)量檢驗(yàn)規(guī)程探討
    雙孢蘑菇低溫保鮮試驗(yàn)初報(bào)
    食用菌(2017年3期)2017-05-24 06:52:18
    西藏野生雙孢蘑菇栽培種營(yíng)養(yǎng)成分研究
    西藏科技(2016年8期)2016-09-26 09:00:59
    辛烯共聚聚乙烯樹脂非等溫結(jié)晶動(dòng)力學(xué)
    反式聚辛烯橡膠/丁腈橡膠并用膠的性能研究
    廣西橫縣被評(píng)為“中國(guó)雙孢蘑菇之鄉(xiāng)”
    食藥用菌(2014年1期)2014-04-04 16:55:57
    辛烯基琥珀酸魔芋葡甘聚糖酯的微波半干法制備工藝及性能
    亚洲精品日韩在线中文字幕| 九九爱精品视频在线观看| 久久人人爽av亚洲精品天堂| 亚洲av成人精品一二三区| 波野结衣二区三区在线| 十八禁高潮呻吟视频| 久久人人爽人人片av| 国产精品久久久久成人av| 在线观看国产h片| 少妇的丰满在线观看| 日韩av在线免费看完整版不卡| 亚洲av在线观看美女高潮| 日日摸夜夜添夜夜爱| 一本色道久久久久久精品综合| 久久久久精品久久久久真实原创| 欧美xxⅹ黑人| 亚洲中文av在线| 久久久久久久国产电影| 三级国产精品片| 韩国av在线不卡| 丰满乱子伦码专区| 高清毛片免费看| 久久99热6这里只有精品| 国产成人av激情在线播放| 国产成人av激情在线播放| 国产激情久久老熟女| 肉色欧美久久久久久久蜜桃| 大陆偷拍与自拍| 在线天堂中文资源库| 日韩电影二区| 自线自在国产av| 一二三四在线观看免费中文在 | 99热这里只有是精品在线观看| 一边亲一边摸免费视频| 五月伊人婷婷丁香| 久久久久国产网址| 久久毛片免费看一区二区三区| 国产色爽女视频免费观看| 中文字幕制服av| 日日啪夜夜爽| 久久这里有精品视频免费| 久久精品国产a三级三级三级| 国产高清三级在线| 久久人人爽人人爽人人片va| 高清黄色对白视频在线免费看| 午夜免费观看性视频| 国产精品一区www在线观看| 国产亚洲午夜精品一区二区久久| 日本wwww免费看| 草草在线视频免费看| a级毛片在线看网站| 在线天堂中文资源库| 欧美 亚洲 国产 日韩一| 午夜久久久在线观看| 插逼视频在线观看| 久久av网站| 国产黄色视频一区二区在线观看| av视频免费观看在线观看| 日本爱情动作片www.在线观看| 国产一区亚洲一区在线观看| 亚洲第一区二区三区不卡| 国产成人aa在线观看| 国产亚洲欧美精品永久| 十八禁网站网址无遮挡| 婷婷色综合www| 日本色播在线视频| 久久精品国产a三级三级三级| 国产国拍精品亚洲av在线观看| av免费观看日本| 免费观看av网站的网址| 一个人免费看片子| 香蕉精品网在线| 欧美人与性动交α欧美软件 | 五月天丁香电影| av女优亚洲男人天堂| 黄色 视频免费看| av视频免费观看在线观看| 免费av不卡在线播放| av福利片在线| 成人18禁高潮啪啪吃奶动态图| 欧美国产精品va在线观看不卡| 丝袜在线中文字幕| 精品一区二区三卡| 99久久人妻综合| 亚洲欧美色中文字幕在线| 日韩视频在线欧美| 午夜视频国产福利| 久热这里只有精品99| 日韩成人伦理影院| av在线app专区| 色婷婷久久久亚洲欧美| 成人影院久久| 美女国产视频在线观看| 在线看a的网站| 成年人免费黄色播放视频| 国产伦理片在线播放av一区| 国产成人精品一,二区| 免费看av在线观看网站| 女性被躁到高潮视频| 我要看黄色一级片免费的| 少妇猛男粗大的猛烈进出视频| 人人澡人人妻人| 亚洲综合色网址| 亚洲美女视频黄频| 亚洲精品国产色婷婷电影| 丝袜美足系列| 久久精品夜色国产| 国产亚洲精品第一综合不卡 | 久久99蜜桃精品久久| 最黄视频免费看| 久久久国产一区二区| 中文乱码字字幕精品一区二区三区| 中文字幕免费在线视频6| 波野结衣二区三区在线| 夫妻午夜视频| a级毛色黄片| 久久鲁丝午夜福利片| 精品国产一区二区久久| av国产久精品久网站免费入址| 免费黄色在线免费观看| 极品人妻少妇av视频| 日韩大片免费观看网站| 多毛熟女@视频| 日本欧美国产在线视频| 国产在线一区二区三区精| 伦理电影大哥的女人| 亚洲一码二码三码区别大吗| 99视频精品全部免费 在线| 男女啪啪激烈高潮av片| 最近最新中文字幕大全免费视频 | 中国三级夫妇交换| 日韩制服骚丝袜av| 国产 一区精品| 日韩av不卡免费在线播放| 日韩人妻精品一区2区三区| 男女边摸边吃奶| 日本-黄色视频高清免费观看| 免费观看a级毛片全部| 国产综合精华液| 亚洲欧美一区二区三区国产| 国产日韩欧美亚洲二区| 人体艺术视频欧美日本| 一区二区av电影网| 一二三四在线观看免费中文在 | 看免费成人av毛片| 亚洲欧美精品自产自拍| 色婷婷av一区二区三区视频| 久久韩国三级中文字幕| 国语对白做爰xxxⅹ性视频网站| 韩国高清视频一区二区三区| 久久亚洲国产成人精品v| 国产成人一区二区在线| 成人手机av| 国产精品一国产av| 综合色丁香网| 热re99久久精品国产66热6| 亚洲三级黄色毛片| 成年美女黄网站色视频大全免费| 777米奇影视久久| 看免费av毛片| 成年人午夜在线观看视频| 啦啦啦啦在线视频资源| 涩涩av久久男人的天堂| 久久人妻熟女aⅴ| 99热国产这里只有精品6| av免费在线看不卡| 咕卡用的链子| 狠狠精品人妻久久久久久综合| 91aial.com中文字幕在线观看| 国产精品欧美亚洲77777| 一本久久精品| 91成人精品电影| 国产免费现黄频在线看| 日韩,欧美,国产一区二区三区| 亚洲av中文av极速乱| 一本—道久久a久久精品蜜桃钙片| 一区二区三区四区激情视频| 蜜桃国产av成人99| 国产成人一区二区在线| 亚洲美女黄色视频免费看| 亚洲综合色惰| videossex国产| 九九爱精品视频在线观看| 亚洲,欧美,日韩| 亚洲av中文av极速乱| 777米奇影视久久| 91精品国产国语对白视频| 曰老女人黄片| av在线app专区| 久久女婷五月综合色啪小说| 亚洲色图 男人天堂 中文字幕 | 欧美国产精品一级二级三级| 毛片一级片免费看久久久久| 午夜老司机福利剧场| 两性夫妻黄色片 | 建设人人有责人人尽责人人享有的| 亚洲国产欧美日韩在线播放| 国产精品蜜桃在线观看| 男女午夜视频在线观看 | 国产成人a∨麻豆精品| 色视频在线一区二区三区| 最近中文字幕高清免费大全6| 久久精品久久精品一区二区三区| 亚洲,一卡二卡三卡| videossex国产| 成人18禁高潮啪啪吃奶动态图| av不卡在线播放| 国产色爽女视频免费观看| 久久久久久久久久人人人人人人| 亚洲熟女精品中文字幕| 在线看a的网站| 成人毛片a级毛片在线播放| 久久综合国产亚洲精品| 免费少妇av软件| 亚洲精品久久久久久婷婷小说| 美女内射精品一级片tv| 亚洲在久久综合| 五月玫瑰六月丁香| 亚洲精品中文字幕在线视频| 满18在线观看网站| 国产成人a∨麻豆精品| 赤兔流量卡办理| 亚洲国产精品专区欧美| 欧美日韩亚洲高清精品| 这个男人来自地球电影免费观看 | 中文精品一卡2卡3卡4更新| 国产精品久久久久久精品古装| 精品国产一区二区三区久久久樱花| 久久午夜综合久久蜜桃| 国产日韩欧美在线精品| 精品一区二区免费观看| 久久久久久人人人人人| 国产精品偷伦视频观看了| 国产在视频线精品| 99re6热这里在线精品视频| 亚洲综合色网址| 久久久久久久国产电影| 国产一区二区三区av在线| 美国免费a级毛片| 中国美白少妇内射xxxbb| 我的女老师完整版在线观看| 免费看av在线观看网站| freevideosex欧美| 在现免费观看毛片| 久久久久久久久久人人人人人人| 人人澡人人妻人| 日韩视频在线欧美| 最近最新中文字幕免费大全7| 曰老女人黄片| 午夜福利在线观看免费完整高清在| 国产成人av激情在线播放| 欧美97在线视频| 亚洲美女视频黄频| 女人被躁到高潮嗷嗷叫费观| 在线观看免费日韩欧美大片| 少妇人妻精品综合一区二区| 满18在线观看网站| 午夜91福利影院| 日韩在线高清观看一区二区三区| 精品久久蜜臀av无| 国产亚洲av片在线观看秒播厂| 欧美人与性动交α欧美精品济南到 | 日韩,欧美,国产一区二区三区| 日本猛色少妇xxxxx猛交久久| 精品亚洲乱码少妇综合久久| 婷婷色综合大香蕉| 侵犯人妻中文字幕一二三四区| 一级毛片黄色毛片免费观看视频| 在线观看免费高清a一片| 80岁老熟妇乱子伦牲交| 国产激情久久老熟女| 精品人妻一区二区三区麻豆| 亚洲精品,欧美精品| 亚洲精品日本国产第一区| 九草在线视频观看| 久久精品久久精品一区二区三区| 高清视频免费观看一区二区| 久久久国产一区二区| 97在线人人人人妻| 精品一区二区三区四区五区乱码 | 纵有疾风起免费观看全集完整版| 我要看黄色一级片免费的| 精品酒店卫生间| 亚洲国产精品一区三区| 免费少妇av软件| 精品久久久久久电影网| av片东京热男人的天堂| 18禁观看日本| 午夜av观看不卡| 9热在线视频观看99| 伦理电影大哥的女人| 精品第一国产精品| 久久亚洲国产成人精品v| 国产男女内射视频| av线在线观看网站| 少妇被粗大猛烈的视频| 亚洲精品中文字幕在线视频| 日本av免费视频播放| 少妇人妻精品综合一区二区| 男女边摸边吃奶| 在现免费观看毛片| 国产成人精品久久久久久| 在线观看免费高清a一片| 亚洲成av片中文字幕在线观看 | 美女xxoo啪啪120秒动态图| 日韩精品免费视频一区二区三区 | 黑人猛操日本美女一级片| 亚洲美女黄色视频免费看| 国产日韩一区二区三区精品不卡| 看免费av毛片| 成人无遮挡网站| 久久狼人影院| 26uuu在线亚洲综合色| 亚洲国产色片| 久久国产精品大桥未久av| 国国产精品蜜臀av免费| 99热6这里只有精品| 亚洲,欧美,日韩| 波多野结衣一区麻豆| 综合色丁香网| 中文字幕制服av| 男男h啪啪无遮挡| 美女xxoo啪啪120秒动态图| 内地一区二区视频在线| 黄色配什么色好看| 中国三级夫妇交换| 亚洲精品成人av观看孕妇| 夫妻性生交免费视频一级片| 亚洲国产欧美在线一区| 九九爱精品视频在线观看| 超色免费av| 老司机影院成人| videosex国产| 精品一区在线观看国产| 亚洲国产精品国产精品| 久久久亚洲精品成人影院| 一二三四中文在线观看免费高清| 国产高清三级在线| 久久精品国产自在天天线| 高清欧美精品videossex| 九草在线视频观看| 色哟哟·www| 如何舔出高潮| 亚洲精品aⅴ在线观看| 中国国产av一级| 久热久热在线精品观看| 欧美激情极品国产一区二区三区 | 水蜜桃什么品种好| 蜜桃在线观看..| 最新中文字幕久久久久| 国产亚洲精品久久久com| 免费在线观看完整版高清| 免费在线观看黄色视频的| 一本久久精品| 亚洲国产精品999| 精品久久久久久电影网| 2021少妇久久久久久久久久久| 成年动漫av网址| 只有这里有精品99| 美女福利国产在线| 午夜视频国产福利| 亚洲国产精品专区欧美| 妹子高潮喷水视频| 国产男女超爽视频在线观看| 亚洲av福利一区| 国产日韩欧美视频二区| 免费观看在线日韩| 黄色怎么调成土黄色| 精品亚洲乱码少妇综合久久| 美女大奶头黄色视频| 国产激情久久老熟女| 香蕉国产在线看| 亚洲色图综合在线观看| 成年动漫av网址| 精品国产乱码久久久久久小说| 亚洲成人手机| 宅男免费午夜| 亚洲一级一片aⅴ在线观看| 狂野欧美激情性bbbbbb| 99国产综合亚洲精品| 国产av国产精品国产| 久久婷婷青草| 黑人高潮一二区| 久久精品国产a三级三级三级| 男女边摸边吃奶| www日本在线高清视频| 久久久久久久久久久免费av| 亚洲精品久久午夜乱码| 国产精品人妻久久久久久| 色吧在线观看| 少妇人妻精品综合一区二区| www.av在线官网国产| 精品午夜福利在线看| 纯流量卡能插随身wifi吗| 日韩av在线免费看完整版不卡| 亚洲成人手机| 国产成人午夜福利电影在线观看| 亚洲国产av新网站| 欧美3d第一页| 国产男女超爽视频在线观看| 一区二区av电影网| 国产精品久久久久久精品电影小说| 国产一区二区三区综合在线观看 | 在现免费观看毛片| 久久毛片免费看一区二区三区| 国产精品偷伦视频观看了| 91精品国产国语对白视频| 日韩欧美一区视频在线观看| 少妇被粗大猛烈的视频| 亚洲欧美日韩另类电影网站| 国产成人精品福利久久| 亚洲av男天堂| 欧美日韩av久久| 18禁国产床啪视频网站| 少妇人妻久久综合中文| 在线免费观看不下载黄p国产| 99精国产麻豆久久婷婷| 久久综合国产亚洲精品| 午夜视频国产福利| 亚洲国产av影院在线观看| 久久人人爽人人片av| 午夜福利在线观看免费完整高清在| 久久综合国产亚洲精品| 日本欧美视频一区| 亚洲色图 男人天堂 中文字幕 | 国产成人午夜福利电影在线观看| 久久精品国产自在天天线| 老司机影院成人| 人妻 亚洲 视频| 91aial.com中文字幕在线观看| 亚洲国产最新在线播放| 精品人妻在线不人妻| 亚洲天堂av无毛| 99九九在线精品视频| 人妻 亚洲 视频| 国产一区亚洲一区在线观看| 亚洲欧美中文字幕日韩二区| 国产精品国产av在线观看| 日韩不卡一区二区三区视频在线| 婷婷成人精品国产| 大话2 男鬼变身卡| 久久国产亚洲av麻豆专区| 亚洲国产成人一精品久久久| 亚洲三级黄色毛片| 国产精品国产三级国产av玫瑰| 国产一级毛片在线| 亚洲精品视频女| 人妻人人澡人人爽人人| 精品人妻熟女毛片av久久网站| 伦理电影免费视频| 人妻 亚洲 视频| 夫妻午夜视频| 久热这里只有精品99| 高清av免费在线| 亚洲欧美色中文字幕在线| 亚洲国产av影院在线观看| 纯流量卡能插随身wifi吗| 免费观看a级毛片全部| 青春草国产在线视频| 精品人妻偷拍中文字幕| a级毛片黄视频| 一级毛片黄色毛片免费观看视频| 亚洲婷婷狠狠爱综合网| 久久久久久久久久成人| 精品一区在线观看国产| 青春草国产在线视频| 黑丝袜美女国产一区| 大片免费播放器 马上看| 亚洲精品美女久久av网站| av在线播放精品| 精品少妇黑人巨大在线播放| 久久久久人妻精品一区果冻| 18+在线观看网站| 男女国产视频网站| 老女人水多毛片| 一本色道久久久久久精品综合| 老熟女久久久| 最黄视频免费看| 99久久综合免费| 欧美成人午夜精品| 午夜日本视频在线| 9热在线视频观看99| 国产精品久久久久久久电影| 色哟哟·www| 精品一品国产午夜福利视频| 国产亚洲欧美精品永久| 午夜视频国产福利| 国产精品一区二区在线不卡| 人人妻人人爽人人添夜夜欢视频| 国产精品女同一区二区软件| 18+在线观看网站| 男女边吃奶边做爰视频| 久久精品aⅴ一区二区三区四区 | 久久久久精品人妻al黑| 高清不卡的av网站| 五月开心婷婷网| 美女内射精品一级片tv| 插逼视频在线观看| 夜夜骑夜夜射夜夜干| 人人妻人人澡人人爽人人夜夜| 大片免费播放器 马上看| 熟女电影av网| 我要看黄色一级片免费的| 你懂的网址亚洲精品在线观看| 国产精品嫩草影院av在线观看| 熟女电影av网| 一本大道久久a久久精品| 五月开心婷婷网| 在线观看美女被高潮喷水网站| 国产午夜精品一二区理论片| 国产精品免费大片| 一边亲一边摸免费视频| videossex国产| videosex国产| 在线观看免费高清a一片| www.av在线官网国产| 在线观看美女被高潮喷水网站| 国产精品国产av在线观看| www.色视频.com| 97在线人人人人妻| 精品国产一区二区久久| 如何舔出高潮| 国产精品一国产av| 性色av一级| 日产精品乱码卡一卡2卡三| 国产精品久久久久久精品电影小说| 香蕉丝袜av| 亚洲高清免费不卡视频| 久久女婷五月综合色啪小说| 视频中文字幕在线观看| 国产伦理片在线播放av一区| 美女xxoo啪啪120秒动态图| 欧美+日韩+精品| 亚洲,一卡二卡三卡| 亚洲成色77777| 亚洲精品国产av成人精品| 亚洲av日韩在线播放| 午夜激情av网站| 男女啪啪激烈高潮av片| 国产乱来视频区| 亚洲色图 男人天堂 中文字幕 | 91精品伊人久久大香线蕉| 国产又爽黄色视频| 爱豆传媒免费全集在线观看| 久久久国产欧美日韩av| 国产精品免费大片| 欧美激情 高清一区二区三区| 激情五月婷婷亚洲| 久久精品国产亚洲av涩爱| 久久精品久久精品一区二区三区| 亚洲国产日韩一区二区| 国产成人a∨麻豆精品| 女性生殖器流出的白浆| 亚洲成人手机| 亚洲欧美一区二区三区黑人 | 少妇 在线观看| 日本午夜av视频| 亚洲av在线观看美女高潮| av又黄又爽大尺度在线免费看| 日韩一区二区视频免费看| 丰满乱子伦码专区| 一本一本久久a久久精品综合妖精 国产伦在线观看视频一区 | 一区在线观看完整版| 久久久久久久国产电影| av片东京热男人的天堂| 成年女人在线观看亚洲视频| 美女xxoo啪啪120秒动态图| 性高湖久久久久久久久免费观看| 春色校园在线视频观看| 制服丝袜香蕉在线| 久久人人爽人人片av| 少妇被粗大猛烈的视频| 极品少妇高潮喷水抽搐| 精品久久国产蜜桃| 国产成人一区二区在线| 国产免费一区二区三区四区乱码| 插逼视频在线观看| 最近2019中文字幕mv第一页| 中文欧美无线码| 国产欧美日韩一区二区三区在线| www.色视频.com| 美女中出高潮动态图| 黑人猛操日本美女一级片| 久久久欧美国产精品| 亚洲色图综合在线观看| 免费观看av网站的网址| 人妻系列 视频| 亚洲熟女精品中文字幕| 乱码一卡2卡4卡精品| 一级a做视频免费观看| 久久精品国产亚洲av涩爱| 9191精品国产免费久久| 99精国产麻豆久久婷婷| 最近2019中文字幕mv第一页| 22中文网久久字幕| 亚洲av综合色区一区| 国产成人91sexporn| 日韩欧美一区视频在线观看| 男女高潮啪啪啪动态图| 不卡视频在线观看欧美| 久久国产亚洲av麻豆专区| 插逼视频在线观看| 秋霞在线观看毛片| 日日撸夜夜添| 久久狼人影院| 亚洲精品久久午夜乱码| 成人亚洲欧美一区二区av| 国产 精品1| 日韩伦理黄色片| 日韩视频在线欧美| 观看美女的网站| 免费观看av网站的网址| 97精品久久久久久久久久精品| 中文字幕人妻熟女乱码| 十八禁高潮呻吟视频|