黃永橋 馬 凱 吳新文 高 亮 簡(jiǎn)銀池 路 瑤 楊昌彪
(1. 貴州省檢測(cè)技術(shù)研究應(yīng)用中心,貴州 貴陽(yáng) 550014;2. 貴州省分析測(cè)試研究院,貴州 貴陽(yáng) 550014)
米酵菌酸(Bongkrekic Acid)是椰毒假單胞菌屬酵米面亞種產(chǎn)生的一種可以引起食物中毒的毒素,毒性較強(qiáng),誤食后會(huì)損壞人的腦、肝臟及腎等器官,嚴(yán)重者可致死亡[1-2],其化學(xué)結(jié)構(gòu)式如圖1所示。
圖1 米酵菌酸的化學(xué)結(jié)構(gòu)式Figure 1 The chemical structure formula of bongkrekic acid
近年來(lái),中國(guó)因米酵菌酸引起的食物中毒事件時(shí)有發(fā)生[3-5]。黑木耳本身無(wú)毒,但長(zhǎng)時(shí)間浸泡會(huì)變質(zhì)滋生細(xì)菌、真菌等致病微生物,進(jìn)而產(chǎn)生生物毒素(米酵菌酸),危害人體健康。目前,中國(guó)現(xiàn)行的相關(guān)標(biāo)準(zhǔn)中只規(guī)定了銀耳中米酵菌酸含量≤ 0.25 mg/kg[6-7],現(xiàn)行的米酵菌酸檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn)中檢出限為0.005 mg/kg[8],且標(biāo)準(zhǔn)適用范圍為銀耳及其制品、酵米面及其制品等食品,而黑木耳未在其檢測(cè)范圍內(nèi)且限量不明確。
目前,有關(guān)米酵菌酸含量檢測(cè)的方法有薄層色譜法[9]、紫外分光光度法[10]、高效液相色譜法[11-12]、液相色譜—串聯(lián)質(zhì)譜法[13-15]、高分辨質(zhì)譜法[16]。薄層色譜法和紫外分光光度法操作簡(jiǎn)單,但易受其他雜質(zhì)的干擾;高效液相色譜法通用性強(qiáng),但靈敏度低;液相色譜—串聯(lián)質(zhì)譜法因具有靈敏度高、抗干擾能力強(qiáng)等優(yōu)點(diǎn),被廣泛用于痕量分析。而有關(guān)黑木耳中米酵菌酸含量的測(cè)定方法尚未見(jiàn)報(bào)道。QuEChERS法作為近年來(lái)新開(kāi)發(fā)的一種快速、簡(jiǎn)便的前處理方法,被廣泛用于農(nóng)獸藥殘留及其他痕量化合物的測(cè)定[17-20]。
研究擬以黑木耳為研究對(duì)象,采用QuEChERS凈化方法,建立QuEChERS結(jié)合UHPLC-MS/MS儀快速測(cè)定黑木耳中米酵菌酸含量的檢測(cè)方法,旨在為黑木耳的質(zhì)量控制提供一種更加快速、簡(jiǎn)便的檢測(cè)方法。
超高效液相色譜儀:Agilent 1290型,配ZORBAX Eclipse Plus C18(50 mm×2.1 mm, 1.8 μm),美國(guó)安捷倫科技有限公司;
三重四級(jí)桿串聯(lián)質(zhì)譜儀:6470型,配有電噴霧離子源,美國(guó)安捷倫科技有限公司;
多管渦旋混合器:UMV-2型,北京普立泰科公司;
純水機(jī):Milli-Q型,美國(guó)Millipore公司;
陶瓷均質(zhì)子:北京迪科馬科技有限公司;
C18吸附劑:40~63 μm,上海安譜實(shí)驗(yàn)科技股份有限公司;
無(wú)水硫酸鎂:分析純,天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司;
甲醇、乙腈:色譜級(jí),德國(guó)Merck公司;
氨水:分析純,山東西亞化工科技有限公司;
乙酸銨(質(zhì)量分?jǐn)?shù)25%~28%):色譜純,山東西亞化工科技有限公司;
米酵菌酸:≥95%,美國(guó)Sigma公司;
黑木耳:試驗(yàn)前于30 ℃下恒溫避光浸泡48 h,市售。
1.2.1 標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液配制 將米酵菌酸標(biāo)準(zhǔn)品配制成1.0 mg/mL標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,于-18 ℃避光保存。
1.2.2 基質(zhì)工作曲線配制 將樣品前處理后得到的空白基質(zhì)提取液,分別配置成0.50,1.00,2.00,4.00,8.00,10.00 ng/mL基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)工作液,現(xiàn)配現(xiàn)用。
柱溫35 ℃;進(jìn)樣量5 μL;流動(dòng)相A為2 mmol/L乙酸銨(含0.1%甲酸溶液),流動(dòng)相B為乙腈;流速0.3 mL/min;洗脫梯度:0.0~0.5 min,10% B;0.5~1.5 min,10%~85% B;1.5~2.0 min,85% B;2.0~2.5 min,85%~10% B;2.5~4.0 min,10% B。
ESI源;負(fù)離子掃描;MRM掃描;毛細(xì)管電壓4.0 kV;霧化器壓力275.8 kPa;干燥氣和鞘氣流速10 L/min;干燥氣和鞘氣溫度300 ℃;母離子m/z485.2,錐孔電壓80 V,定量離子m/z441.3,碰撞能量8 eV,定性離子m/z397.3,碰撞能量18 eV。
稱取浸泡粉碎后的試樣5.00 g于塑料離心管中,加入10 mL 1%氨水—甲醇溶液,渦旋振蕩10 min,5 000 r/min離心10 min,吸取上清液2 mL于預(yù)先加有500 mg無(wú)水硫酸鎂和50 mg C18吸附劑的離心管中,渦旋1 min,5 000 r/min離心2 min,取上層清液過(guò)膜,待測(cè)。
1.6.1 基質(zhì)效應(yīng) 采用基質(zhì)標(biāo)準(zhǔn)曲線和純?nèi)軇?biāo)準(zhǔn)曲線,并按式(1)計(jì)算基質(zhì)效應(yīng)(ME)。
ME=[(k1/k2)-1]×100%,
(1)
式中:
ME——基質(zhì)效應(yīng),%;
k1——基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率;
k2——純?nèi)軇?biāo)準(zhǔn)曲線斜率。
通常ME>0%為基質(zhì)增強(qiáng)效應(yīng);ME<0%為基質(zhì)抑制效應(yīng)。當(dāng)|ME|≤10%時(shí),可忽略不計(jì);當(dāng)|ME|為10%~20%時(shí),存在較弱的基質(zhì)效應(yīng);當(dāng)|ME|>20%時(shí),存在強(qiáng)基質(zhì)效應(yīng)[21]。
1.6.2 檢出限及定量限 通過(guò)在陰性樣品中添加標(biāo)準(zhǔn)溶液來(lái)考察方法的檢出限(LOD)和定量限(LOQ)。
1.6.3 回收率及精密度 選取陰性樣品進(jìn)行加標(biāo)回收試驗(yàn),添加水平分別為2,4,10 μg/kg,每個(gè)水平重復(fù)6次,計(jì)算回收率和精密度。
1.6.4 數(shù)據(jù)處理 采用Excel 2016軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行處理,使用Origin 2018軟件繪圖。
米酵菌酸結(jié)構(gòu)式中含有3個(gè)羧基(—COOH),酸性較強(qiáng),當(dāng)采用乙腈—水作為流動(dòng)相時(shí),其峰形、響應(yīng)值和分類效果均優(yōu)于甲醇—水。當(dāng)在水相中加入2 mmol/L乙酸銨時(shí),其峰形得到明顯改善,因此,選擇乙腈—0.1%甲酸(含2 mmol/L乙酸銨溶液)作為流動(dòng)相,采用梯度條件洗脫。
采用接雙通的方式,用100 μg/L的標(biāo)準(zhǔn)溶液進(jìn)樣優(yōu)化分析,在負(fù)離子模式下使用一級(jí)全掃描得m/z為485.2的準(zhǔn)分子離子([M-H]-),通過(guò)優(yōu)化錐孔電壓進(jìn)行二級(jí)質(zhì)譜分析,得到m/z為397.3,441.3的特征碎片離子。
2.3.1 提取 選擇乙腈、0.1%甲酸—乙腈、1%氨水—乙腈、甲醇、0.1%甲酸—甲醇和1%氨水—甲醇作為提取溶劑,結(jié)果見(jiàn)圖2。由圖2可知,當(dāng)使用1%氨水—乙腈作提取溶劑時(shí),米酵菌酸提取效率為34.9%,明顯低于其他幾種溶劑;當(dāng)使用乙腈、0.1%甲酸—乙腈、甲醇和0.1%甲酸—甲醇作提取溶劑時(shí),其提取效率相差較小,均<70%;當(dāng)使用1%氨水—甲醇作提取溶劑時(shí),其提取效率為87.6%,高于其他幾種提取溶劑,且滿足要求。故選用1%氨水—甲醇作為提取溶劑。
圖2 提取溶劑對(duì)米酵菌酸回收率的影響Figure 2 Effects of different extraction solvents on the recovery of bongkrekic acid (n=3)
2.3.2 凈化 選擇C18吸附劑、PSA吸附劑、GCB吸附劑和Oasis PRiME HLB小柱進(jìn)行考察,結(jié)果見(jiàn)圖3(a)。由圖3(a)可知,使用PSA和GCB吸附劑作凈化材料時(shí),目標(biāo)物的吸附較多,回收率<20%;使用C18吸附劑和Oasis PRiME HLB小柱時(shí),回收率均滿足要求,但C18吸附劑的回收率略優(yōu)于Oasis PRiME HLB小柱,且雜質(zhì)干擾、基線噪聲等優(yōu)于Oasis PRiME HLB小柱。由圖3(b)可知,使用50 mg C18吸附劑的回收率優(yōu)于其他兩種。因此,選擇50 mg C18吸附劑作為凈化方法。
圖3 凈化方法及C18吸附劑用量對(duì)回收率的影響Figure 3 Effects of different purification methods and the amount of C18 adsorbent dosage on recovery (n=3)
2.4.1 基質(zhì)效應(yīng) 由表1可知,基質(zhì)效應(yīng)為21.8%,說(shuō)明米酵菌酸在木耳基質(zhì)中存在較強(qiáng)的基質(zhì)增強(qiáng)效應(yīng),為減弱或消除基質(zhì)效應(yīng)對(duì)結(jié)果的影響,采用基質(zhì)匹配標(biāo)準(zhǔn)曲線進(jìn)行定量分析。
2.4.2 方法的標(biāo)準(zhǔn)曲線和檢出限 由表1可知,米酵菌酸在0.50~10.00 ng/mL的質(zhì)量濃度范圍內(nèi),相關(guān)系數(shù)(r)為0.998 3,線性關(guān)系良好,檢出限為2.0 μg/kg。
表1 線性范圍、線性方程、相關(guān)系數(shù)、檢出限及基質(zhì)效應(yīng)Table 1 Linear range, Linear equation, correlation coefficient (r), limits of detection (LOD) and matrix effects (ME) of bongkrekic acid
2.4.3 回收率及精密度 由表2可知,3個(gè)添加水平的日內(nèi)平均回收率為74.4%~91.6%,日內(nèi)相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為6.0%~9.2%;日間平均回收率為74.9%~89.4%,日間相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)為3.3%~4.3%。說(shuō)明試驗(yàn)方法具有較好的重復(fù)性與準(zhǔn)確性,可用于木耳中米酵菌酸殘留量的定性、定量分析。
表2 加標(biāo)回收率和精密度Table 2 Recoveries of standard addition and precisions of bongkrekic acid
標(biāo)準(zhǔn)溶液、空白樣品及加標(biāo)樣品的總離子流圖如圖4所示。
圖4 米酵菌酸標(biāo)準(zhǔn)溶液、黑木耳空白樣品、黑木耳 加標(biāo)樣品總離子流圖Figure 4 TIC chromatograms of standard solution, blank sample of auricularia auricula and bongkrekic acid spiked sample of auricularia auricular
按試驗(yàn)建立的方法對(duì)浸泡48 h后的10批次黑木耳進(jìn)行測(cè)定,每個(gè)樣品平行測(cè)定2次,結(jié)果均未檢出米酵菌酸。由于試驗(yàn)是在冬季進(jìn)行的,故未能反映不同季節(jié)環(huán)境條件對(duì)黑木耳浸泡的影響。
建立了QuECHERS結(jié)合UHPLC-MS/MS法快速測(cè)定木耳中米酵菌酸殘留量的檢測(cè)方法,并對(duì)建立的方法進(jìn)行方法學(xué)驗(yàn)證。結(jié)果表明,試驗(yàn)方法前處理簡(jiǎn)單、快速、靈敏度、精密度和分析準(zhǔn)確性均滿足相關(guān)要求,且方法檢出限低于現(xiàn)有檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn),單個(gè)樣品分析時(shí)間為4 min,能夠快速、準(zhǔn)確定性和定量分析木耳中米酵菌酸殘留量,為日常監(jiān)管提供技術(shù)支持。后續(xù)可研究黑木耳中產(chǎn)生米酵菌酸與浸泡時(shí)環(huán)境條件的關(guān)系,以揭示米酵菌酸在浸泡過(guò)程中的產(chǎn)生機(jī)理。