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    寧夏野生甘草和種植甘草內(nèi)生菌的分離和初鑒定

    2022-07-18 03:26:00寧夏職業(yè)技術(shù)學(xué)院寧夏銀川7500阿拉善盟生態(tài)環(huán)境綜合服務(wù)中心內(nèi)蒙古阿拉善盟750300
    安徽農(nóng)業(yè)科學(xué) 2022年13期
    關(guān)鍵詞:培養(yǎng)皿內(nèi)生甘草

    張 燃,李 佳 (.寧夏職業(yè)技術(shù)學(xué)院,寧夏銀川 7500;.阿拉善盟生態(tài)環(huán)境綜合服務(wù)中心,內(nèi)蒙古阿拉善盟 750300)

    甘草(),豆科甘草屬灌木狀多年生草本植物,是我國(guó)干旱、半干旱地區(qū)重要的植物資源,寧夏、甘肅、內(nèi)蒙古等地為其主產(chǎn)區(qū),具有耐旱、耐鹽堿、防風(fēng)固沙等特點(diǎn),可以產(chǎn)生較好的生態(tài)效益。同時(shí)甘草作為我國(guó)重要的大宗藥材,具有補(bǔ)脾益氣、清熱解毒、 祛痰止咳、緩急止痛、調(diào)和諸藥、抗癌抗病毒等作用,在臨床上用于治療呼吸系統(tǒng)、消化系統(tǒng)、免疫系統(tǒng)等疾病。此外,甘草還廣泛應(yīng)用于食品、化工等工業(yè)中。因此,優(yōu)質(zhì)甘草在國(guó)內(nèi)外需求量極大,市場(chǎng)供不應(yīng)求。隨著近年來(lái)對(duì)于野生甘草資源毫無(wú)節(jié)制的采挖,資源總量和質(zhì)量逐年下降,野生甘草資源已接近枯竭。而人工栽培甘草的周期長(zhǎng)、難度大,且藥用成分如甘草黃酮、甘草酸等含量都較低。因此探索如何提高人工種植甘草質(zhì)量則成為間接保護(hù)野生甘草資源、保障甘草市場(chǎng)需求的方法之一。

    植物內(nèi)生菌是指一類共生于植物體內(nèi),而不使宿主植物表現(xiàn)出明顯感染癥狀或產(chǎn)生負(fù)向影響的微生物。藥用植物中也含有大量的內(nèi)生菌,研究表明一些內(nèi)生菌可與藥用植物進(jìn)行基因融合,使其具有可以合成與宿主相同藥效物質(zhì)的能力;有些內(nèi)生菌也可協(xié)助植物共同完成一些生物的合成,使中藥材中藥用成分含量增加。甘草中也有非常豐富的內(nèi)生菌資源,其中以從根中分離的菌株為主。從野生優(yōu)質(zhì)甘草中分離其內(nèi)生菌,并摸清內(nèi)生菌和甘草間的相互作用、內(nèi)生菌和甘草藥用成分間的關(guān)系,都將為提高種植甘草的藥用品質(zhì)提供新思路,同時(shí)也將為野生甘草的保護(hù)、解決其資源匱乏等問題提供新途徑。

    1 材料與方法

    試材。試驗(yàn)用種植甘草植株采自寧夏鹽池甘草種植基地,試驗(yàn)用野生甘草植株采自寧夏鹽池金馬村,并由寧夏中藥材研究中心郭紅艷教授鑒定為烏拉爾甘草(Fisch.)。

    培養(yǎng)基。

    牛肉膏蛋白胨(BPDA)培養(yǎng)基。牛肉膏 3 g、蛋白胨 10 g、氯化鈉5 g,加蒸餾水熱攪拌至全部溶解后,加入瓊脂 20 g,調(diào) 節(jié) pH 至 7.3~7.6,補(bǔ)加蒸餾水定容至 1 000 mL,高壓蒸汽滅菌后倒平板,每個(gè)培養(yǎng)皿約 15 mL,放置冷卻凝固,無(wú)菌觀察,備用。

    馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基(PDA)。將馬鈴薯去皮,取 200 g,切成小塊放入加 1 L 水中,加熱煮沸 30 min,用四層紗布過(guò)濾,加入 20 g 葡萄糖、5 g氯化鈉、20 g 瓊脂,溶液再加熱煮至瓊脂全部溶解,補(bǔ)加蒸餾水定容至 1 000 mL,調(diào) 節(jié) pH 至 7.0~7.4,高壓蒸汽滅菌后,加適量氯霉素倒平板,每個(gè)培養(yǎng)皿約 15 mL,放置冷卻凝固,無(wú)菌觀察,備用。

    甘草處理。2種甘草樣本各取一截根部外表無(wú)破損的部分,約5 cm,用自來(lái)水將甘草表面泥土沖洗干凈,放入超凈工作臺(tái)紫外照射殺菌30 min,之后用75%乙醇浸泡1 min,無(wú)菌水沖洗5次;3%次氯酸鈉浸泡2 min,無(wú)菌水沖洗5次;75%乙醇浸泡1 min,無(wú)菌水沖洗5次。

    內(nèi)生菌分離培養(yǎng)。以無(wú)菌濾紙片吸干甘草樣品表面水分并剝?nèi)ジ什莞客馄?,再用滅菌的手術(shù)剪刀將樣品沿甘草根部橫截面剪切成2~3 mm厚的薄片,接種于已制備好的2種固體培養(yǎng)基上,每個(gè)培養(yǎng)皿中接3~4塊,并標(biāo)記好,每個(gè)樣本 10皿。將接種植株組織的培養(yǎng)基用封口膜封好,放置于智能光照培養(yǎng)箱培養(yǎng),28 ℃恒溫培養(yǎng),BPDA培養(yǎng)基培養(yǎng)2~3 d,PDA培養(yǎng)基培養(yǎng)3~5 d。同時(shí)設(shè)置空白對(duì)照組,即將剝?nèi)ネ馄さ母什莞拷M織塊在空白的培養(yǎng)基上滾動(dòng)并輕輕按壓,使樣品表面各處都接觸到培養(yǎng)基,再用封口膜封口,與接種好的培養(yǎng)皿在相同條件下一起培養(yǎng),若對(duì)照組培養(yǎng)皿上未長(zhǎng)出菌落,說(shuō)明植株的表面消毒徹底。培養(yǎng)完成后,分別計(jì)算2種甘草的分離率和定殖率,其中分離率為從樣本組織塊中得到的菌株數(shù)與全部樣本組織塊數(shù)的比值,定殖率為樣本中受內(nèi)生真菌侵染的組織塊數(shù)占全部樣本組織塊數(shù)的百分?jǐn)?shù)。

    內(nèi)生菌的純化。培養(yǎng)完成后,觀察2種培養(yǎng)基的空白對(duì)照組和樣品組,若空白對(duì)照組無(wú)菌落產(chǎn)生,而樣品組有菌落產(chǎn)生,則利用接種環(huán)挑取邊緣菌落,用劃線法接入新鮮的培養(yǎng)基中,于 28 ℃繼續(xù)培養(yǎng),待長(zhǎng)出新菌落后,根據(jù)菌種的形態(tài)與顏色的不同,再次挑取尖端菌絲進(jìn)行純化,反復(fù)純化至單一菌種。

    甘草內(nèi)生菌形態(tài)學(xué)鑒定。參照《常見細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)》、《伯杰細(xì)菌鑒定手冊(cè)》、《真菌鑒定手冊(cè)》,根據(jù)內(nèi)生菌菌落的表面形態(tài)、潤(rùn)澤、大小、邊緣形態(tài)、顏色、質(zhì)地、生長(zhǎng)速度等特征,光學(xué)顯微鏡觀察菌絲顏色、有無(wú)產(chǎn)孢、孢子形態(tài)、產(chǎn)孢結(jié)構(gòu)、有無(wú)橫隔等微觀特征,并進(jìn)行形態(tài)學(xué)初步鑒定。

    2 結(jié)果與分析

    在接種的樣品中,從野生組分離得到12株甘草內(nèi)生菌,其中內(nèi)生真菌8株、內(nèi)生細(xì)菌4株,從人工種植組中分離得到4株,其中內(nèi)生真菌2株、內(nèi)生細(xì)菌2株,分離率、定殖率見表1,部分菌種見圖1。從結(jié)果可以看出,野生組所獲得的內(nèi)生菌數(shù)量明顯高于人工種植組,其中內(nèi)生真菌數(shù)量高于內(nèi)生細(xì)菌的數(shù)量,并且整體來(lái)看,分離獲得的甘草內(nèi)生菌數(shù)量并不多。

    表1 甘草內(nèi)生菌的分離率、定殖率Table 1 Isolation rate and colonization rate of endophyte licorice %

    圖1 甘草樣本中分離的部分菌種和空白對(duì)照Fig.1 Part of bacteria isolated from Glyeyrrhica uralensis samples and blank control

    分離出來(lái)的甘草內(nèi)生菌經(jīng)過(guò)純化培養(yǎng)獲得單一菌株,部分菌落見圖2,其菌落特點(diǎn)見表2,參照《常見細(xì)菌系統(tǒng)鑒定手冊(cè)》《伯杰細(xì)菌鑒定手冊(cè)》《真菌鑒定手冊(cè)》對(duì)分離獲得的內(nèi)生菌進(jìn)行初步形態(tài)學(xué)鑒定,從野生甘草樣本中分離出的8株甘草內(nèi)生真菌分別為青霉屬2株,占25.0%;根霉屬2 株,占25.0%;木霉屬1 株,占12.5%;鐮孢屬3 株,占 37.5%,鐮孢屬是優(yōu)勢(shì)種屬;4株甘草內(nèi)生細(xì)菌均屬于芽孢桿菌屬,但分別屬于萎縮芽孢桿菌、枯草芽孢桿菌。從種植甘草樣本中分離出的2株甘草內(nèi)生真菌分別為根霉屬1株,占50.0%;鐮孢屬1株,占50.0%,分離獲得內(nèi)生真菌太少,無(wú)法分析其優(yōu)勢(shì)種屬;2株甘草內(nèi)生細(xì)菌均屬于芽孢桿菌屬。

    3 討論與結(jié)論

    此次試驗(yàn)中分離純化出的甘草內(nèi)生菌數(shù)量較少,不夠理想,分析推測(cè)其原因首先是甘草樣本表面消毒條件較高(紫外照射殺菌30 min,之后用 75% 乙醇浸泡1 min,無(wú)菌水沖洗5次;3%次氯酸鈉浸泡 2 min,無(wú)菌水沖洗5次;75% 乙醇浸泡1 min,無(wú)菌水沖洗5次),無(wú)論是乙醇還是次氯酸鈉溶液對(duì)于甘草樣本的滲透作用都較強(qiáng),因此會(huì)將甘草樣本淺表部分的內(nèi)生菌殺死,導(dǎo)致樣本中的內(nèi)生菌數(shù)量減少,影響最終分離的結(jié)果;其次在試驗(yàn)初期的2次分離培養(yǎng)過(guò)程中都出現(xiàn)了空白對(duì)照陽(yáng)性的情況,導(dǎo)致需反復(fù)對(duì)甘草表面的消毒條件進(jìn)行摸索改良,錯(cuò)過(guò)分離甘草內(nèi)生菌的最佳時(shí)期,樣本中部分內(nèi)生菌出現(xiàn)死亡,移植的樣本中內(nèi)生菌數(shù)較少;最后此次試驗(yàn)所采甘草樣本中野生甘草約3年生,種植甘草約2.5年生,因此推測(cè)由于樣本生長(zhǎng)年限較短,本身也未曾共生太多內(nèi)生菌,基于以上原因,最終培養(yǎng)獲得的甘草內(nèi)生菌數(shù)量較少。

    圖2 純化后部分甘草內(nèi)生菌菌落形態(tài)及顯微形態(tài)Fig.2 Colony morphology and microscopic morphology of some Glyeyrrhica uralensis endophytes after purification

    表2 純化后部分甘草內(nèi)生菌的菌落特點(diǎn)

    雖然獲得的內(nèi)生菌數(shù)量較少,但從數(shù)據(jù)上也可看出明顯特點(diǎn),從野生組分離獲得的內(nèi)生菌不論是數(shù)量還是多樣性方面都明顯高于種植組,這與多數(shù)相關(guān)研究一致,同時(shí)也可更好地印證在藥用植物中大量且多樣的內(nèi)生菌確實(shí)會(huì)直接或間接地影響其共生植物藥材的藥物作用和效果。此外還有研究表明,某些內(nèi)生菌群為宿主植物適應(yīng)特殊的生境提供極大的幫助,能增強(qiáng)或賦予宿主藥用植物抗病、抗旱、抗寒、抗鹽堿等特性賦予道地藥材較好的抗逆性品質(zhì)。因此后續(xù)會(huì)繼續(xù)研究分離出來(lái)的內(nèi)生菌與甘草的相互作用,以期通過(guò)對(duì)分離培養(yǎng)的內(nèi)生菌進(jìn)行篩選,來(lái)獲得可以產(chǎn)生甘草有效成分的內(nèi)生菌,為提高種植甘草的藥用品質(zhì)、解決野生甘草資源匱乏和保護(hù)等問題提供支持。

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