韓毅麗,張 澍,裴曉麗
(山西中醫(yī)藥大學中藥與食品工程學院,山西 晉中 030619)
款冬花(Farfarae Flos)為菊科(Compositae)款冬屬植物款冬(Tussilago farfara L.)的干燥花蕾,性辛溫,味微苦,歸肺經(jīng)。主要產(chǎn)自陜西、山西、河南、甘肅等地。具有潤肺下氣、止咳化痰等功效,主要活性成分為黃酮類、萜類、多糖類、生物堿類,其中多糖類還具有抗腫瘤等活性,是研究的主要活性成分之一,并且多糖的純度不同,其活性不同,因此款冬花中多糖的純化,對于款冬花多糖的研究具有重要的實際意義[1-2]。目前,款冬花多糖的主要純化方法有鹽酸法、三氯乙酸法、SEVAGE法、木瓜蛋白酶法、木瓜蛋白酶結合SEVAGE法、活性炭法、雙氧水法、反膠束溶液法、大孔樹脂法等,純化效果較好的為木瓜蛋白酶結合SEVAGE法和大孔吸附樹脂法,且多糖純化常用大孔吸附樹脂多為S-8型、D-101型、AB-8型、LS-206型、HPD-100型、XAD-16型等樹脂,XAD-7HP型樹脂的純化工藝未見報道[2-8]。本論文采用單因素法考察了弱極性XAD-7HP型大孔吸附樹脂純化款冬花多糖的最佳工藝。
款冬花藥材(批號:200101),山西元和堂中藥有限公司;XAD-7HP吸附樹脂,山西慧德易科技有限責任公司;蒸餾水(生產(chǎn)批號:201902237103SJ),山西娃哈哈昌盛飲料有限公司;無水乙醇、苯酚、濃硫酸、氯仿、正丁醇、氫氧化鈉、鹽酸,均為分析純,天津市北辰方正試劑廠;紫外-可見分光光度計(TU-1810),北京普析通用儀器有限責任公司。
1.2.1 款冬花粗多糖的制備
將款冬花粉碎,采用95%乙醇為提取劑,按1:10 (g:V)的料液比,回流脫脂2次,每次2 h,過濾,揮干乙醇備用[3]。
精密稱取脫脂后的款冬花藥材20 g,加入圓底燒瓶,按照1:20的料液比,加入蒸餾水400毫升,80 ℃加熱回流1 h,過濾,再向圓底燒瓶中加入400 mL的蒸餾水,80 ℃加熱回流 1 h,過濾,合并濾液,90 ℃濃縮至30 mL,采用Sevage試劑(氯仿:正丁醇為4:1)[4]除蛋白,直至不再有白色沉淀出現(xiàn)。將脫蛋白后的款冬花粗多糖提取液,加入三倍體積的無水乙醇,靜置過夜后抽慮。揮干溶劑,即得粗多糖。
1.2.2 多糖的含量測定
(1)對照品溶液的制備
精密稱取D-無水葡萄糖對照品14.1 mg放入小燒杯,用蒸餾水定容至100 mL容量瓶,搖勻,得濃度為0.141 mg/mL的葡萄糖對照品溶液。
(2)測定波長的選擇
精密移取上述對照品溶液0.0、0.5 mL,分別置于10 mL比色管中,加蒸餾水至2.0 mL,加入5%的苯酚溶液1.0 mL,濃硫酸5.0 mL,放置2 min,搖勻,沸水浴顯色20 min,冷卻至室溫。以相應試劑為空白,在波長為400~600 nm進行掃描,得最大吸收波長為490 nm,結果見圖1。
圖1 葡萄糖對照吸收光譜曲線圖Fig.1 Curve of absorption spectrum of glucose reference substance
(3)標準曲線的繪制
精密移取對照品溶液0.00、0.25、0.30、0.35、0.45、0.60、0.70 mL于10 mL比色管中,按“(2)”項下方法顯色,490 nm處測定吸光度值,結果在0.0044 ~ 0.0123 mg/mL濃度范圍內(nèi)線性關系良好,回歸方程:A=49.37C+0.0015,線性相關系數(shù)為r=0.9999,結果見圖2。
圖2 葡萄糖對照標準曲線Fig.2 Standard curve of glucose reference substance
(4)樣品含量的測定
精密稱取款冬花多糖0.5000 g,定容至100 mL容量瓶,精密移液0.08 mL于10 mL比色管中,按“1.2.2.2”項下方法顯色,490 nm處測定吸光度值,根據(jù)線性方程計算多糖濃度。
室溫下,將XAD-7HP吸附樹脂用無水乙醇密封浸泡8 h,用去離子水洗去乙醇,然后用質(zhì)量分數(shù)為5%的NaOH浸泡 8 h,用去離子水洗至中性,再用質(zhì)量分數(shù)為5%的HC1浸泡 8 h,用去離子水洗至中性待用。
將制備的款冬花粗多糖用蒸餾水配置成一定濃度的溶液,以一定的速度上樣至樹脂層析柱,再用一定濃度的乙醇以一定的速度洗脫。
式中:C0為提取液中多糖濃度mg/mL;Ce為濾液中多糖濃度mg/mL;Cd為洗脫液中多糖濃度mg/mL;V0為提取液體積mL;Vd為洗脫液體積;M1為提純樣液中的質(zhì)量;M2為樣液烘干后質(zhì)量。
2.2.1 上樣濃度對吸附效果的影響
取5 g經(jīng)預處理的XAD-7HP型樹脂,濕法裝柱。將濃度分別是0.9624、0.4812、0.3208、0.2406、0.1926 mg/mL的款冬花多糖提取液5、10、15、20、25 mL以相同的速度上樣。測量吸附后款冬花多糖溶液的吸光度,計算吸附率。
2.2.2 上樣速度對吸附效果的影響
配制5份相同濃度款冬花多糖提取液,分別以0.5、1、1.5、2.0、2.5 mL/min的上樣速度進行上樣。檢測吸附后款冬花提取液的吸光度,計算吸附率。
2.2.3 不同洗脫濃度對洗脫效果的影響
當洗脫速度為1.0 mL/min,洗脫液體積是15 mL時,以體積分數(shù)分別為55%、65%、75%、85%、95%的乙醇溶液進行洗脫,分別計算洗脫液中款冬花多糖的吸光度,計算洗脫率。
2.2.4 不同洗脫速度對洗脫效果的影響
用上述步驟得到的最佳體積分數(shù)的洗脫劑進行洗脫,考察洗脫速度為0.5、1.0、1.5、2.0、2.5 mL/min時,洗脫液中款冬花多糖的吸光度,計算洗脫率。
從圖3看到,當上樣濃度逐漸增大時,吸附率也跟著上升,當上樣濃度超過0.3208 mg/mL時,吸附率開始下降。這是因為上樣液濃度較低時有部分XAD-7HP樹脂未達到飽和狀態(tài),增加多糖溶液的濃度,就增大了多糖分子與XAD-7HP樹脂的接觸機會,多糖分子就可以擴散進樹脂,從而增大了多糖分子被XAD-7HP樹脂吸附的機會,但是當多糖的溶液濃度超過某一值時,XAD-7HP樹脂表面的多糖分子單分子層吸附飽和,多糖分子過多,阻礙其他多糖分子進入樹脂內(nèi)部,影響多糖分子在樹脂內(nèi)部的擴散。并且當款冬多糖液濃度過于龐大時,會有沉淀產(chǎn)生,進而堵塞樹脂影響吸附。所以考察純化的工藝時,樣液濃度要在0.3208 mg/mL左右。
圖3 上樣濃度對吸附效果的影響Fig.3 Effect of the above concentration on adsorption effect
由圖4可以看出,當上樣速度剛開始增加時,吸附率在增大。但是當上樣速度增大到1.0 mL/min時,之后速度的增加導致XAD-7HP型樹脂的吸附時間縮短,大量的多糖類化合物還來不及被樹脂充分吸附便流出樹脂柱,降低了吸附量。綜合考慮,上樣速度應該在1.0 mL/min左右為宜。
圖4 上樣速度對吸附效果的影響Fig.4 Effect of the above speed on the adsorption effect
從圖5中可知,洗脫劑的體積分數(shù)不同,洗脫效果也有一定程度的差異的??梢钥吹?,洗脫劑的體積分數(shù)為65%時洗脫效果最好,洗脫率最大。所以洗脫劑的體積分數(shù)65%為最佳。
圖5 不同洗脫濃度對洗脫效果的影響Fig.5 Effect of different elution concentrations on elution effect
由圖6可以得到,剛開始隨著洗脫速度的增加,洗脫率明顯增大。但當洗脫速度超過1.0 mL/min時,隨著洗脫速度的增加,洗脫率在明顯的減小,這是當洗脫速度較慢時,能將多糖類化合物從XAD-7HP型樹脂上充分的洗脫出來,但是隨著洗脫速度的不斷增加,有大部分的多糖類化合物來不及被洗脫下來。因此,在進行多糖溶液的洗脫時,我們應該選擇適宜的洗脫速度,這樣可以有一個較高的洗脫率。實驗結果顯示,當65%乙醇洗脫速度為1.0 mL/min時,可以得到較高洗脫率的效果。
圖6 洗脫速度對洗脫效果的影響Fig.6 Effect of elution speed on elution effect
配制0.3208 mg/mL的款冬花粗多糖溶液,以1.0 mL/min的速度上樣,采用 65%的乙醇以1.0 mL/min的流速進行洗脫,得最佳純化多糖溶液,平行測定3次,計算得多糖純度為72.98%。
大孔吸附樹脂(MACROPROUS ADSORPTION RESIN,MAR)是一類重要的高分子聚合物分離材料,已成為中藥產(chǎn)業(yè)帶動面最廣的共性技術和關鍵技術,但在中藥多糖的大分子分離方面還處于起步階段[2]。XAD7HP吸附樹脂屬弱極性吸附樹脂,可有效吸附芳香類、酚類等脂類有機化合物,可以有效去除多糖色素,經(jīng)過單因素實驗可以得到XAD-7HP型樹脂純化款冬花多糖的最佳工藝為上樣液濃度0.3208 mg/mL、上樣速度 1.0 mL/min、洗脫劑乙醇的體積分數(shù)65%,洗脫速度 1.0 mL/min,在上述實驗條件下,款冬花多糖的純度達到了72.98%,純化效果顯著。XAD-7HP型樹脂具有操作簡單,溶劑消耗低,有毒溶劑殘留少,純化效率高等特點,為MAR分離技術和款冬花多糖的進一步研究提供了參考信息。