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    沉默環(huán)磷腺苷效應(yīng)元件結(jié)合蛋白1對乳腺癌細胞生物學(xué)行為的影響

    2022-06-22 05:57:00辛肇晨BANGSOYEON楊子昂張宏偉
    中國臨床醫(yī)學(xué) 2022年2期
    關(guān)鍵詞:孔板培養(yǎng)箱印跡

    辛肇晨,吳 茜,BANG SOYEON,王 紅,楊子昂,張宏偉

    復(fù)旦大學(xué)附屬中山醫(yī)院普通外科,上海 200032

    乳腺癌是全球發(fā)病率最高的腫瘤之一,占女性新發(fā)癌癥總數(shù)的24.5%[1]。乳腺癌的發(fā)生發(fā)展與激素、肥胖、遺傳等多種因素有關(guān)。環(huán)磷腺苷效應(yīng)元件結(jié)合蛋白1(cAMP-response element binding protein 1, CREB1)是亮氨酸拉鏈轉(zhuǎn)錄因子CREB/ATF家族的一員,可被多種蛋白激酶磷酸化,進而調(diào)控靶基因的轉(zhuǎn)錄過程[2-3]。CREB1與肺癌[4]、腎癌[5]和膠質(zhì)瘤[6]的發(fā)生發(fā)展有關(guān),但CREB1對乳腺癌細胞生物學(xué)行為的影響鮮見報道。

    本研究通過構(gòu)建CREB1表達沉默的乳腺癌細胞系MCF-7和MDA-MB-231,采用Western印跡、CCK-8實驗、集落形成實驗、流式細胞術(shù)、細胞劃痕實驗、Transwell細胞遷移和侵襲實驗觀察CREB1對乳腺癌細胞增殖、凋亡、遷移和侵襲的影響,旨在為乳腺癌的診療提供新的潛在靶點。

    1 材料與方法

    1.1 細胞系、主要試劑和儀器 人乳腺癌細胞系MCF-7、MDA-MB-231和人腎上皮細胞系HEK293T購于美國模式菌種收集中心(ATCC)。胎牛血清(FBS)、DMEM培養(yǎng)基、胰蛋白酶購 于 美 國Gibco公 司(16140063、11995065、15090046);磷酸鹽緩沖液(PBS)購于美國Hyclone公司(SH30256.01B)。攜帶短發(fā)夾RNA(shRNA)序列的pLKO.1載體購自美國Sigma公司。Lipo3000試劑購于美國Invitrogen公司(L3000015);NP-40裂解液、細胞周期與細胞凋亡流式檢測試劑盒購于海門碧云天生物技術(shù)研究 所(P0013F、C1052);BCA蛋 白 定 量 試 劑盒 購 于 美 國Thermo公 司(23227)。CREB1、GAPDH、Cyclin D1、CDK2、CDK4、CDK6一 抗,辣根過氧化物酶(HRP)標記的山羊抗兔二抗購于 美 國CST公 司(9197、5174、55506、18048、12790、13331、7074);CCK-8試劑盒、Caspase 3、 Bcl-2、Survivin、Bax一 抗 購 于 英 國Abcam公司(ab228554、ab32351、ab32124、ab76424、ab32503)。ECL Western印跡試劑盒購于南京諾唯贊醫(yī)療科技有限公司(E412-01);Transwell小室和BD Matrigel基質(zhì)膠購自北京明陽科華生物科技有限公司(353097、354480)。酶標儀和流式細胞儀購自上海伯樂生命醫(yī)學(xué)產(chǎn)品有限公司。

    1.2 細胞培養(yǎng)及分組 MCF-7和MDA-MB-231細胞系用含10%FBS和100 U/mL青鏈霉素的DMEM培養(yǎng)基在37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中傳代培養(yǎng)。將細胞分為shSCR組(空載質(zhì)粒)、shCREB1#1組和shCREB1#2組。

    1.3 載體構(gòu)建及慢病毒轉(zhuǎn)染 用Lipo3000將shRNA-pLKO.1質(zhì)粒轉(zhuǎn)染至HEK293T細胞,用慢病毒感染HEK293T細胞后,收集病毒液,轉(zhuǎn)染MCF-7和MDA-MB-231細胞。用嘌呤霉素篩選7 d后,獲得穩(wěn)定沉默CREB1的乳腺癌細胞系。shRNA的序列見表1。

    表1 shRNA序列

    1.4 Western印跡和RT-PCR驗證轉(zhuǎn)染效率 Western印跡:使用NP-40裂解液提取總蛋白,通過BCA法測定蛋白濃度,進行SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳。電泳完成后,將蛋白轉(zhuǎn)至PVDF膜上,用5%脫脂牛奶封閉1 h,一抗孵育,4℃搖床過夜;第2天回收,經(jīng)TBST洗膜后,于室溫下用二抗孵育 1 h,用ECL試劑盒檢測蛋白條帶。

    RT-PCR:CREB1及GAPDH的PCR引 物 如表2所示。配置20 μL反應(yīng)體系,設(shè)定兩步法RTPCR程序,每個組設(shè)置3個副孔;讀取樣本光密度(D)值。

    表2 RT-PCR引物序列

    1.5 CCK-8法檢測細胞增殖 取對數(shù)生長期的細胞制成單細胞懸液,以100 mL/孔接種于96孔板中,使每孔含細胞3000~5000。每個細胞系設(shè)置夠5 d測量的副孔,將96孔板置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中進行培養(yǎng),分別于培養(yǎng)1、2、3、4、5 d后棄去3個副孔中的培養(yǎng)基,加入10 μL CCK-8溶液,于培養(yǎng)箱中孵育2 h后,測定450 nm處的D值。

    1.6 集落形成實驗 取對數(shù)生長期的細胞制成單細胞懸液,用細胞板對細胞進行計數(shù)。將計數(shù)好的細胞以600個/孔接種于6孔板并使細胞分散均勻,置于37℃、5%CO2及飽和濕度的細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)2周。待孔板中形成肉眼可見的克隆時,棄上清液,用PBS清洗,陰干,甲醇固定。加適量結(jié)晶紫染色20 min,統(tǒng)計細胞的克隆數(shù)。

    1.7 流式細胞術(shù)檢測細胞周期 將細胞以2×105個/孔接種至6孔板,于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)過夜。取對數(shù)生長期的細胞,消化并收集,4℃下200×g離心5 min,收集細胞懸液。用70%冷乙醇固定細胞18 h,用PBS洗滌2次。每個試管加入500 μL PI/RNase染液,混勻,室溫下避光孵育20 min后置于冰上,并于1 h內(nèi)通過流式細胞儀檢測細胞周期。

    1.8 流式細胞術(shù)檢測細胞凋亡 鋪板、制備單細胞懸液過程同上。用冰PBS洗滌細胞2次后,將細胞轉(zhuǎn)移到流式管中,離心,棄上清。加入300 μL的Annexin Ⅴ Binding Buffer懸浮細胞,然后加入5 μL Annexin Ⅴ-FITC,混勻,避光,室溫孵育15 min。 上機前5 min加入5 μL的PI染色,并補加200 μL的Annexin Ⅴ Binding Buffer。根據(jù)Annexin Ⅴ和PI的染色情況篩選出凋亡細胞。

    1.9 Western印跡檢測細胞周期相關(guān)蛋白和凋亡相關(guān)蛋白 采用Western印跡檢測CDK2、CDK4、CDK6、Cyclin D1、Bcl-2、Survivin、Caspase 3、Bax蛋白的表達情況,以GAPDH為內(nèi)參。實驗步驟同上。

    1.10 細胞劃痕實驗檢測細胞遷移能力 用馬克筆在六孔板背后劃線,每隔1 cm劃一道,每孔至少有5條線穿過。每孔鋪約5×105個細胞,每組設(shè)置3個副孔,培養(yǎng)過夜。用移液槍頭在六孔板內(nèi)按照馬克筆標記垂直劃線,用PBS洗滌細胞后,加入無血清培養(yǎng)基。將六孔板放入培養(yǎng)箱中培養(yǎng),于 8 h、24 h后拍照并計算劃痕閉合率。

    1.11 Transwell細胞遷移和侵襲實驗 進行遷移實驗前,先用無血清培養(yǎng)基饑餓細胞12 h,制備單細胞懸液。在Transwell小室上層加入300 μL無血清培養(yǎng)基,在培養(yǎng)箱中孵育2 h。在上層小室中加入100 μL細胞懸液,在下層小室中加入600 μL 含10%FBS的培養(yǎng)基,每組設(shè)置3個復(fù)孔。將Transwell小室放入培養(yǎng)箱培養(yǎng)16 h后取出,用5%戊二醛固定,結(jié)晶紫染色,在顯微鏡下觀察、拍照,并對細胞進行計數(shù)。侵襲實驗除須在接種細胞前將BD Matrigel基質(zhì)膠置于上層小室并培養(yǎng)24 h外,余步驟同遷移實驗。

    1.12 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS 22.0軟件進行統(tǒng)計學(xué)分析,采用GraphPad Prism繪制統(tǒng)計圖。計量資料以±s表示,多組間比較采用單因素方差分析,兩組間比較采用t檢驗。檢驗水準(α)為0.05。

    2 結(jié)果

    2.1 CREB1表達沉默細胞株的鑒定 結(jié)果 (圖1)顯 示,shRNA干 擾 后,shCREB1#1組 和shCREB1#2組中MCF-7和MDA-MB-231細胞系CREB1的mRNA和蛋白水平均低于shSCR組(P< 0.001),提示CREB1沉默細胞株構(gòu)建成功。

    圖1 RT-PCR和Western印跡檢測MCF-7和MDA-MB-231細胞系中CREB1的表達A、C:MCF-7細胞系;B、D:MDA-MB-231細胞系。n=3, ±s;***P<0.001。

    2.2 沉默CREB1對乳腺癌細胞增殖的影響 CCK-8實驗結(jié)果(圖2A)顯示,沉默CREB1后,MCF-7和MDA-MB-231細胞的增殖能力均明顯減弱(P< 0.001)。集落形成實驗結(jié)果(圖2B、2C)顯示,沉 默CREB1后,MCF-7和MDA-MB-231細 胞 的克隆數(shù)減少(P<0.001)。

    圖2 沉默CREB1對MCF-7和MDA-MB-231細胞增殖和集落形成的影響A:CCK-8法檢測細胞增殖能力;B、C:集落形成實驗檢測細胞的克隆數(shù)。n=3, ±s; ***P<0.001。

    2.3 沉默CREB1對乳腺癌細胞周期的影響 流式細胞分析結(jié)果(圖3A)顯示,沉默CREB1后,MCF-7和MDA-MB-231細胞的G1期細胞占比增多,而S期細胞占比減少(P<0.05)。同時,Western印跡結(jié)果(圖3B)顯示,沉默CREB1后,MCF-7細胞中CDK2、CDK4和CDK6的表達量降低,MDA-MB-231細 胞 中CDK2、CDK4、CDK6和Cyclin D1的表達量降低。

    圖3 沉默CREB1對MCF-7和MDA-MB-231細胞細胞周期的影響A:流式細胞術(shù)檢測各組細胞G1期、S期、G2期細胞占比;B:Western印跡檢測細胞周期相關(guān)蛋白的表達水平。n=3, ±s; *P<0.05,**P<0.01,***P<0.001。

    2.4 沉默CREB1對乳腺癌細胞凋亡的影響 流式細胞分析結(jié)果(圖4A)顯示,沉默CREB1后,MCF-7和MDA-MB-231細胞的凋亡率升高(P< 0.05)。Western印跡結(jié)果(圖4B)顯示,沉默CREB1后,MCF-7和MDA-MB-231細 胞 的 促 凋 亡蛋白Caspase3、Bax的表達水平升高,而抗凋亡蛋白Bcl-2和Survivin的表達水平降低(P<0.05),其中以shCREB1#2組的凋亡相關(guān)蛋白表達變化更明顯。

    圖4 沉默CREB1對MCF-7和MDA-MB-231細胞凋亡的影響A:流式細胞術(shù)檢測細胞凋亡率;B:Western印跡檢測細胞凋亡相關(guān)蛋白的表達水平。n=3, ±s; *P<0.05,**P<0.01, ***P<0.001。

    2.5 CREB1沉默對乳腺癌細胞遷移和侵襲的影響

    2.5.1 細胞劃痕實驗 結(jié)果(圖5)顯示,沉默CREB1后,MCF-7和MDA-MB-231細 胞 劃 痕8 h和24 h后的愈合率降低(P<0.05)。

    圖5 沉默CREB1對MCF-7和MDA-MB-231細胞遷移能力的影響n=3, ±s; *P<0.05,**P<0.01,***P<0.001。

    2.5.2 Transwell細胞遷移和侵襲實驗 結(jié)果(圖6)顯 示,沉 默CREB1后,MCF-7和MDAMB-231細胞的遷移和侵襲數(shù)量均減少(P<0.05)。

    圖6 沉默CREB1對MCF-7和MDA-MB-231細胞遷移和侵襲的影響A、B:Transwell遷移實驗;C、D:Transwell侵襲實驗。Original magnification:×200。n=3, x± s; *P<0.05,**P<0.01,***P<0.001。

    3 討論

    CREB1于1987年首先由Montrminy等從大鼠腦組織中分離純化出來[7-8]。近年來,CREB1在腫瘤發(fā)生發(fā)展中的作用越來越受到關(guān)注。CREB1作為重要的轉(zhuǎn)錄因子,可以與多種靶基因的啟動子結(jié)合,從而調(diào)控基因的表達,包括CDK4、Cyclin D1和Cyclin A等細胞周期關(guān)鍵蛋白[9]。在膠質(zhì)瘤中,CREB1可通過激活PI3K/Akt和MAPK信號通路促進Cyclin D1、Bcl-2的表達,而促進膠質(zhì)瘤細胞的增殖并抑制凋亡[10-11]。過表達CREB1可抵抗miR-133a-3p對視網(wǎng)膜母細胞瘤的促凋亡作用[12]。

    本研究中,沉默CREB1可導(dǎo)致乳腺癌細胞的增殖能力減弱,G1/S期阻滯以及CDK2、CDK4、CDK6、Cyclin D1表達水平下降,提示CREB1可能在乳腺癌細胞的增殖過程中起關(guān)鍵作用。而且,沉默CREB1還引起乳腺癌細胞的凋亡增加,凋亡蛋白Caspase 3、Bax的表達水平升高而促生存因子Bcl-2、Survivin的表達水平降低,表明CREB1可能參與乳腺癌細胞凋亡信號的調(diào)控。盡管本研究Western印跡結(jié)果中MCF-7細胞凋亡相關(guān)蛋白表達的變化與MDA-MB-231細胞并不完全一致,但與沉默CREB1抑制乳腺癌細胞周期和促進其凋亡的結(jié)論一致。關(guān)于CREB1調(diào)控乳腺癌增殖和凋亡過程的分子機制尚待進一步研究。

    腫瘤細胞遷移是一個復(fù)雜的、多因素調(diào)控的過程。該過程除受外部因素影響外,還與腫瘤細胞基因表達有關(guān)[13-15]。細胞遷移和侵襲的發(fā)生與細胞間黏附減少和細胞外基質(zhì)降解密切相關(guān)。E-鈣黏蛋白(E-cadherin,E-CAD)在上皮細胞胞間連接中起重要作用,當E-CAD缺乏時,上皮細胞會具有間充質(zhì)細胞的特性,其流動性大幅增強[16]。 基質(zhì)金屬蛋白酶(matrix metalloproteinases,MMPs)家族是與腫瘤轉(zhuǎn)移密切相關(guān),可以降解多種細胞外基質(zhì)中的蛋白質(zhì),促進腫瘤細胞轉(zhuǎn)移[17]。本研究細胞劃痕實驗和Transwell實驗發(fā)現(xiàn),沉默CREB1可導(dǎo)致乳腺癌細胞的遷移和侵襲能力減弱,表明CREB1與乳腺癌細胞的轉(zhuǎn)移有關(guān)。但本研究未進一步測定E-CAD和MMPs等蛋白的表達水平,后續(xù)可通過Western印跡、RT-PCR、ELISA等方法測定相關(guān)蛋白的表達水平,并對遷移和侵襲的相關(guān)信號通路進行探索。

    目前有關(guān)CREB1與乳腺癌關(guān)系的研究多側(cè)重于CREB1作為中介因子對其他腫瘤相關(guān)蛋白的調(diào)節(jié)作用[18-19],而CREB1調(diào)控的下游靶基因眾多,這些靶基因?qū)θ橄侔┥飳W(xué)行為的影響仍需進行研究。本研究通過沉默CREB1基因,抑制了CREB1調(diào)節(jié)相關(guān)基因轉(zhuǎn)錄的“總閘門”作用,證明CREB1表達的降低可抑制乳腺癌細胞的增殖、遷移、侵襲并誘導(dǎo)細胞凋亡,為乳腺癌的治療提供了新的靶點。未來可補充體內(nèi)實驗,在動物模型中對細胞實驗結(jié)果進行進一步驗證。

    利益沖突:所有作者聲明不存在利益沖突。

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