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    玉米芯低聚木糖制備方法對(duì)比研究

    2022-06-05 02:21:38孫軍濤張智超薛文龍周潤(rùn)浩王怡馨王怡卓
    中國(guó)調(diào)味品 2022年6期
    關(guān)鍵詞:酸法玉米芯木糖

    孫軍濤,張智超,薛文龍,周潤(rùn)浩,王怡馨,王怡卓

    (許昌學(xué)院,河南 許昌 461000)

    低聚木糖是由2~9個(gè)木糖單元,以β-1,4-糖苷鍵連接而成的低聚糖混合物[1]。低聚木糖具有較高的耐熱和耐酸性能,在pH 2.5~8.0范圍內(nèi)100 ℃加熱1 h幾乎不分解,是雙歧桿菌增殖所需用量最小的低聚糖[2],具有改善人體腸道、抗齲齒、提高免疫機(jī)能、促進(jìn)鈣的吸收、改善脂質(zhì)代謝等功能[3-6]。

    玉米芯是制備低聚木糖的主要原材料之一[7],2020年我國(guó)玉米總產(chǎn)量約2.76億噸,大約有0.88億噸的玉米芯副產(chǎn)物,為低聚木糖的制備提供了豐富的原料資源。目前低聚木糖的制備方法主要包括兩種:一種是采用酸解法、蒸煮法和微波法等直接將木質(zhì)纖維素降解為低聚木糖;另一種方法是預(yù)處理-酶解法制備低聚木糖,其中預(yù)處理方法有酸水解法、堿水解法、水熱法、有機(jī)溶劑法、超聲波輔助法和微波輔助法等[8-9]。文章以玉米芯為原料,采用復(fù)合酶法、超聲波輔助復(fù)合酶法、堿-酶法、高溫蒸煮-酸法、堿-超聲波輔助酶法和酸-復(fù)合酶法制備低聚木糖,分別對(duì)6種方法玉米芯組織結(jié)構(gòu)變化和低聚木糖組分進(jìn)行對(duì)比分析,為用玉米芯制備功能性低聚木糖提供一定的技術(shù)支持。

    1 材料與方法

    1.1 主要材料與儀器

    玉米芯:河南省許昌市;纖維素酶、木聚糖酶:江蘇銳陽(yáng)生物科技有限公司;3,5-二硝基水楊酸:國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;木糖、木二糖、木三糖、木四糖:上海甄準(zhǔn)生物科技有限公司;其余試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。

    EVO LS15型掃描電子顯微鏡 英國(guó)蔡司公司;FA1004B型分析天平 上海佑科儀器儀表有限公司;T6型紫外分光光度計(jì) 北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;NLD-6DI型超微粉碎機(jī) 濟(jì)南納力德超微粉碎技術(shù)公司;1260 Infinity高效液相色譜儀 安捷倫科技(中國(guó))有限公司;KQ-250E型超聲波清洗器 上海邁坤化工有限公司;LDZX-75KBS型立式壓力蒸汽滅菌鍋 上海申安醫(yī)療器械廠。

    1.2 實(shí)驗(yàn)方法

    1.2.1 測(cè)定方法

    1.2.1.1 還原糖

    還原糖的測(cè)定采用DNS法[10]。

    1.2.1.2 可溶性總糖

    向待測(cè)液中加入終濃度為72 g/L的濃硫酸,沸水浴2 h,中和至中性,按還原糖的測(cè)定方法測(cè)定待測(cè)液中可溶性總糖的含量。

    1.2.1.3 聚合度

    1.2.2 玉米芯低聚木糖的制備

    1.2.2.1 復(fù)合酶法

    粉碎后的玉米芯按照料液比1∶15(g/mL)的比例加入蒸餾水,調(diào)pH至5.0,加入1.5%的復(fù)合酶(木聚糖酶與纖維素酶按照2∶1的比例混合),混勻后,在50 ℃下水浴酶解1 h制備低聚木糖。

    1.2.2.2 超聲波輔助復(fù)合酶法

    粉碎后的玉米芯按照料液比1∶15(g/mL)的比例加入蒸餾水,調(diào)pH至5.0,加入玉米芯質(zhì)量1%的復(fù)合酶(木聚糖酶與纖維素酶按照3∶2的比例混合),混勻后,在溫度55 ℃、超聲功率250 W下超聲波輔助酶解20 min制備低聚木糖[11-12]。

    1.2.2.3 堿-酶法

    粉碎后的玉米芯按照料液比1∶25(g/mL)的比例加入1 mol/L的氫氧化鈉,置于110 ℃高壓滅菌鍋中處理40 min,冷卻至室溫后調(diào)pH至5.0,再加入玉米芯質(zhì)量6%的木聚糖酶,在55 ℃下水浴加熱50 min制備低聚木糖[13]。

    1.2.2.4 高溫蒸煮-酸法

    按照料液比1∶20(g/mL)加1.4 mol/L的硫酸于玉米芯中,置于110 ℃高壓滅菌鍋中處理50 min,冷卻后的溶液即為低聚木糖粗液。

    1.2.2.5 堿-超聲波輔助酶法

    按照料液比1∶20(g/mL)加15%氫氧化鈉溶液于玉米芯中,置于100 ℃高壓滅菌鍋中處理2 h, 冷卻至室溫后調(diào)pH至5.0,再加入6%的木聚糖酶,在溫度55 ℃和超聲功率250 W下超聲波輔助酶解10 min[14]。

    1.2.2.6 酸-復(fù)合酶法

    按照料液比1∶6(g/mL)加2.5 g/L的硫酸于玉米芯中,置于120 ℃高壓滅菌鍋中處理60 min,冷卻后調(diào)pH至5.0,加入玉米芯質(zhì)量1.5%的復(fù)合酶(由木聚糖酶與纖維素酶按照2∶3的比例混合),50 ℃下酶解30 min。

    1.2.3 玉米芯低聚木糖溶液中糖含量分析

    分別對(duì)復(fù)合酶法、超聲波輔助復(fù)合酶法、堿-酶法、高溫蒸煮-酸法、堿-超聲波輔助酶法和酸-復(fù)合酶法制備的低聚木糖溶液中還原糖、可溶性總糖、聚合度進(jìn)行測(cè)定。

    1.2.4 玉米芯組織結(jié)構(gòu)掃描電鏡分析

    采用掃描電子顯微鏡分別對(duì)粉碎后的玉米芯、不同制備方法玉米芯殘?jiān)奈⒂^結(jié)構(gòu)進(jìn)行分析,研究不同處理?xiàng)l件下玉米芯表面形態(tài)變化。

    1.2.5 玉米芯低聚木糖組分分析

    1.2.5.1 薄層層析

    層析板為硅膠板,展開(kāi)劑為乙腈和水(體積比為85∶15),顯色劑為甲醇和5%硫酸(體積比為95∶5),對(duì)不同方法制備的低聚木糖組分進(jìn)行定性分析[15]。

    1.2.5.2 高效液相色譜分析

    色譜柱為Hi-Plex Na(300 mm×7.7 mm, 10 μm),流動(dòng)相為水,流速為0.3 mL/min,柱溫85 ℃。分別對(duì)不同方法制備的玉米芯低聚木糖組分進(jìn)行定量分析[16]。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 玉米芯水解液中還原糖、可溶性總糖和聚合度分析

    復(fù)合酶法、超聲波輔助復(fù)合酶法、堿-酶法、高溫蒸煮-酸法、堿-超聲波輔助酶法和酸-復(fù)合酶法制備低聚木糖溶液中還原糖含量、可溶性總糖含量和聚合度見(jiàn)表1。

    表1 玉米芯水解液還原糖含量、總糖含量和聚合度分析Table 1 Analysis of reducing sugar content, total sugar content and polymerization degree of corncob hydrolysate

    由表1可知,高溫蒸煮-酸法、堿-酶法和酸-復(fù)合酶法制備的低聚木糖溶液中還原糖含量(以玉米芯質(zhì)量計(jì))較高,分別為369.95,206.11,199.14 mg/g,超聲波輔助復(fù)合酶法制備的低聚木糖溶液中還原糖含量最低,為75.00 mg/g。還原糖含量較高的水解液完全水解后得到的可溶性總糖含量也高。酸、堿或高溫高壓預(yù)處理方法便于木質(zhì)纖維素中半纖維素、纖維素和木質(zhì)素的解離,有利于纖維素和半纖維素進(jìn)一步水解成還原糖。該研究的高溫蒸煮-酸法可能導(dǎo)致玉米芯中的多糖徹底降解為單糖,因此水解液中還原糖含量高。超聲波輔助復(fù)合酶法可能由于超聲波作用影響復(fù)合酶的活力,導(dǎo)致酶解效率偏低。

    聚合度可用來(lái)衡量玉米芯中多糖被水解的程度,越接近1表明水解越徹底。高溫蒸煮-酸法的聚合度為0.9,得到的還原糖基本都是單糖;堿-超聲波輔助酶法的聚合度為2.05,其水解程度最低,含有較多的木聚糖。復(fù)合酶法、超聲波輔助復(fù)合酶法、堿-酶法、酸-復(fù)合酶法的聚合度較合適,利于低聚木糖的制備。

    2.2 玉米芯處理前后的結(jié)構(gòu)分析

    玉米芯預(yù)處理前后結(jié)構(gòu)掃描電鏡圖見(jiàn)圖1和圖2。

    圖1 預(yù)處理前后玉米芯掃描電鏡圖Fig.1 Scanning electron micrograph of corncob before and after pretreatment

    圖2 預(yù)處理前后玉米芯掃描電鏡圖Fig.2 Scanning electron micrograph of corncob before and after pretreatment

    由圖1和圖2可知,粉碎后的玉米芯原料組織結(jié)構(gòu)完整,沒(méi)有破壞的痕跡;復(fù)合酶法和超聲波輔助復(fù)合酶法的玉米芯殘?jiān)慕M織結(jié)構(gòu)出現(xiàn)了不同程度的空洞,結(jié)構(gòu)變得疏松,表面粗糙不平整;高溫蒸煮-酸法處理的玉米芯殘?jiān)M織結(jié)構(gòu)平滑,聚集成塊;堿-酶法和堿-超聲波輔助酶法得到的玉米芯組織結(jié)構(gòu)成碎片狀,并粘連在一起;酸-復(fù)合酶法得到的玉米芯組織結(jié)構(gòu)黏稠不成形,粘在一起,表面出現(xiàn)蜂窩。從玉米芯的組織結(jié)構(gòu)變化可以看出,堿切斷了玉米芯組織粘合成片,酸把玉米芯的結(jié)構(gòu)打碎粘合成塊,酶具有專一性,破壞了玉米芯組織,使玉米芯的組織結(jié)構(gòu)出現(xiàn)空洞,變得疏松。木質(zhì)纖維素玉米芯中的半纖維素以氫鍵和范德華力與木質(zhì)素緊密連接,導(dǎo)致木質(zhì)纖維素具有一定的抗降解能力,不同的預(yù)處理方法均為通過(guò)破壞纖維素、半纖維素和木質(zhì)素之間的連接鍵,提高木質(zhì)纖維素的降解效率。不同的玉米芯處理方法均使玉米芯結(jié)構(gòu)變得微細(xì)化,出現(xiàn)多碎片,其組織表面已經(jīng)由處理前的平面結(jié)構(gòu)變成蜂窩狀結(jié)構(gòu),玉米芯的組織結(jié)構(gòu)受到了破壞,表面積與體積比增大,部分結(jié)構(gòu)分解,產(chǎn)生了低聚合度的糖類物質(zhì)[17]。

    2.3 不同制備方法水解液中組分分析

    2.3.1 薄層層析分析

    不同制備方法的薄層層析見(jiàn)圖3。

    圖3 薄層層析圖Fig.3 Thin-layer chromatogram

    由圖3可知,復(fù)合酶法和超聲波輔助復(fù)合酶法制備的水解液中主要為木糖、木二糖和木三糖,堿-酶法制備的水解液中主要為木四糖,高溫蒸煮-酸法制備的水解液中主要為木糖和木二糖,堿-超聲波輔助酶法制備的水解液中沒(méi)有呈現(xiàn)明顯的條帶,酸-復(fù)合酶法制備的水解液中主要為木糖、木二糖和木三糖。

    2.3.2 高效液相色譜分析

    不同方法制備的水解液中低聚木糖各組分的含量見(jiàn)表2。

    表2 玉米芯水解液組分分析

    由表2可知,復(fù)合酶法制備的低聚木糖中木糖、木二糖、木三糖和木四糖含量分別為66.56,30.45,6.61,10.04 mg/g,低聚木糖得率為4.71%(以木二糖、木三糖和木四糖之和計(jì)),纖維素酶作用于木質(zhì)纖維素中的纖維素,降低植物細(xì)胞壁的抗降解能力,有利于木聚糖的提取和水解,木聚糖酶可以將木聚糖的β-1,4-糖苷鍵定向水解生成低聚木糖;超聲波輔助復(fù)合酶法制備的低聚木糖中木糖、木二糖和木三糖含量分別為43.35,17.81,1.04 mg/g,木四糖未檢測(cè)出,低聚木糖得率為1.88%,超聲波促使酶與底物作用,在較低溫度和較短時(shí)間內(nèi)完成水解反應(yīng),但超聲功率過(guò)高會(huì)破壞酶的活性;堿-酶法制備的低聚木糖中木糖、木二糖和木四糖含量分別為64.37,57.89,42.83 mg/g,未檢測(cè)出木三糖,低聚木糖得率為10.07%,堿法能夠溶解木質(zhì)素,破壞纖維素、半纖維素和木質(zhì)素之間的連接,易于分離半纖維素,產(chǎn)物中含鹽量高,需脫鹽純化;高溫蒸煮-酸法制備的水解液中主要為木糖,含量為283.35 mg/g,未檢測(cè)出木二糖、木三糖和木四糖,高溫蒸煮利用高溫水破壞木質(zhì)素與半纖維素之間的連接,實(shí)現(xiàn)半纖維素有效分離[18],酸解法產(chǎn)物中單糖較多,水解程度不易控制;堿-超聲波輔助酶法制備的低聚木糖中木糖、木二糖、木三糖和木四糖含量分別為28.51,73.28,11.13,39.91 mg/g,低聚木糖得率為12.43%;酸-復(fù)合酶法制備的低聚木糖中木糖、木二糖和木三糖含量分別為69.81,71.24,1.98 mg/g,未檢測(cè)出木四糖,低聚木糖得率為7.32%。

    3 結(jié)論

    通過(guò)高溫蒸煮-酸法、堿-酶法和酸-復(fù)合酶法制備的玉米芯低聚木糖水解液中還原糖的含量較高,超聲波輔助復(fù)合酶法制備的水解液中還原糖含量最低。不同制備方法處理后的玉米芯殘?jiān)Y(jié)構(gòu)變得疏松多孔,部分呈現(xiàn)蜂窩狀。

    高溫蒸煮-酸法制備的玉米芯水解液中主要為木糖,復(fù)合酶法、超聲波輔助復(fù)合酶法、堿-酶法、堿-超聲波輔助酶法和酸-復(fù)合酶法水解液中均含有不同量的木二糖、木三糖和木四糖,低聚木糖提取率分別為4.71%、1.88%、10.07%、12.43%和7.32%,其中堿-酶法、酸-復(fù)合酶法和堿-超聲波輔助酶法制備的低聚木糖中木二糖含量較高,分別為57.89,71.24,73.28 mg/g;超聲波輔助復(fù)合酶法制備的低聚木糖中木二糖含量最低,為17.81 mg/g。

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