張 奇,肖會姣,武麗輝,賈 薇
1 北京城市學(xué)院生物醫(yī)藥學(xué)部,北京 100094
2 中馭(北京)醫(yī)學(xué)研究院,北京 101102
3 農(nóng)業(yè)農(nóng)村部農(nóng)藥檢定所,北京 100125
人類腸道內(nèi)存在上千種、數(shù)以億計的微生物,它們參與了人體多種物質(zhì)代謝,并與人體健康密切相關(guān)。研究發(fā)現(xiàn),疾病的發(fā)生通常伴隨著腸道微生態(tài)的改變,這越發(fā)引起了人們的關(guān)注。在某些因素致腸道微生態(tài)失衡的情況下,益生菌對肥胖[1]、糖尿病[2]、炎癥性腸病[3]、腫瘤[4]、動脈粥樣硬化[5]、骨質(zhì)疏松[6]、代謝綜合征、非酒精性脂肪肝及過敏反應(yīng)等的發(fā)生具有潛在地促進作用[7]。
抗生素臨床治療感染性疾病時,對患者的腸道微生物有多種不良影響,如減少有益微生物的數(shù)量、促進潛在致病菌的定植、刺激細菌產(chǎn)生抗藥性、穩(wěn)定微生物抗藥性等[8],進而導(dǎo)致患者腸道菌群的組成和功能發(fā)生改變,從而影響健康。
我國益生菌資源豐富,尤其是牧民傳統(tǒng)自制乳制品,可作為益生菌的寶貴來源,探索新發(fā)現(xiàn)的源于自然發(fā)酵乳制品的益生菌的功能具有一定的意義。前期研究表明,驢乳具有顯著的腸道微生態(tài)調(diào)理功能,其作用可能與其富含益生菌有關(guān)。本研究首先對從新疆驢乳發(fā)酵乳中篩選的菌種L28進行鑒定,然后以抗生素致小鼠腸道菌群失調(diào)模型為實驗動物,以L28為微生態(tài)調(diào)節(jié)劑,低聚果糖為陽性對照物,采用平板計數(shù)法測定干預(yù)前后腸道內(nèi)腸桿菌、乳酸菌的含量和比例變化,并通過16S rDNA擴增子測序技術(shù),分析干預(yù)前后模型動物腸道菌群的多樣性,確證植物乳桿菌L28對腸道調(diào)理的益生功能。
SPF級KM小鼠25 只,雄性,體重18~22 g,購于北京維通利華實驗動物技術(shù)有限公司(SCXK(京)2016-0011);鹽酸林可霉素(貨號:L8390)、頭孢唑啉鈉(貨號:C9680)、氨芐西林鈉(貨號:A8180)、低聚果糖(貨號:F8370),購于北京索萊寶科技有限公司;MC、MRS、VABR培養(yǎng)基,購于北京陸橋技術(shù)股份有限公司;菌種L28,從新疆牧民自制傳統(tǒng)驢乳發(fā)酵乳中篩選獲得,產(chǎn)酸、接觸酶陰性、革蘭氏染色陽性、桿狀;其他試劑均為國產(chǎn)分析純。
1.2.1 L28的培養(yǎng)
取保存的L28菌種,MRS平板活化,挑取單菌落,MRS肉湯37 ℃培養(yǎng)24 h,將培養(yǎng)液離心去上清,PBS(0.02 mol/L,pH7.4)洗滌菌體2 次,然后將菌體分散于PBS中,配制濃度分別為1.0×105CFU/mL和1.0×109CFU/mL的菌液。
1.2.2 L28菌種鑒定
將上述菌種培養(yǎng)物進行碳水化合物鑒定(API50CH)。同時對其16S rDNA和pheS基因進行測序、分析、比對。
1.2.3 腸道菌群失調(diào)動物模型的建立
隨機選取20 只KM小鼠,無菌條件下采集糞便,隨后灌服抗生素溶液(以無菌生理鹽水配制的鹽酸林可霉素、頭孢唑啉鈉及氨芐西林鈉的混合液,3 種抗生素的終濃度均為20 mg/mL,0.2 mL/只,每天2 次,連續(xù)3 天,然后收集灌胃小鼠糞便,采用平板計數(shù)法對乳酸菌和腸桿菌進行檢測,以乳酸菌菌落數(shù)顯著降低且降低程度高于腸桿菌為模型建立成功標準[9]。
1.2.4 分組及干預(yù)
將抗生素處理過的20 只小鼠隨機分為4 組,每組5 只:A組(模型自然恢復(fù)組,以PBS灌胃)、B組(L28低劑量組,1.0×105CFU/mL)、C組(L28高劑量組,1.0×109CFU/mL),D組(低聚果糖陽性對照組,100 mg/mL的低聚果糖生理鹽水溶液),0.2 mL/只,每天2 次,連續(xù)6 天;未經(jīng)抗生素處理的5 只小鼠作為空白對照組(E組)。
1.2.5 糞便采集及微生物計數(shù)
于灌胃前(第0天)、灌胃3 天后(第3天)和灌胃6 天后(第6天)無菌采集小鼠糞便,經(jīng)稀釋后選擇適當(dāng)?shù)南♂尪?,分別涂布MC和VRBA培養(yǎng)基,37 ℃培養(yǎng)48 h后計數(shù).
1.2.6 微生物多樣性分析
為了進一步證明L28對小鼠腸道紊亂模型腸道微生態(tài)的改善作用,在無菌條件下收集模型自然恢復(fù)組、空白對照組、低聚果糖陽性對照組以及高、低濃度L28干預(yù)組6 天后的實驗小鼠糞便,委托北京博云華康基因科技有限公司對糞便中的16S rDNA進行測序,并進行微生物菌群多樣性分析。
1.2.7 統(tǒng)計方法
以Excel對各組動物腸道菌群進行分析,計算x±s,比較各組之間差異。
將L28菌接種于37 ℃培養(yǎng)后,進行碳水化合物利用研究(表1);同時,進行16S rDNA和pheS基因測序,基因序列見表2,經(jīng)序列同源性比對,結(jié)果表明,L28菌株與Lactobacillus plantarumWCFS1(Sequence ID: NC_004567.2)的同源性達99%,結(jié)合理化性質(zhì)、碳水化合物利用,對比伯杰氏手冊,綜合鑒定菌株L28為植物乳桿菌。
表1 菌種L28 碳源利用鑒定
無菌條件下收集20 只小鼠抗生素灌胃前后的糞便,以平板計數(shù)法檢測灌胃前后糞便中的乳酸菌和腸桿菌的變化,經(jīng)抗生素灌胃后,小鼠腸道中乳酸菌與腸桿菌含量均顯著降低(p<0.01),且抗生素灌胃小鼠糞便中乳酸菌含量降低更多,降低比例顯著高于腸桿菌,根據(jù)模型判斷標準,判斷模型建立成功(表3)。
表3 腸道紊亂模型構(gòu)建(x±s,log CFU/g,n=20)
分別對0 d、3 d和6 d各組動物腸道內(nèi)乳酸菌和腸桿菌進行平板計數(shù),結(jié)果見圖1,不同劑量乳桿菌灌胃組(B、C)及陽性對照組(D)與模型自然恢復(fù)組(A)相比,3 d和6 d時腸道中的乳酸菌和腸桿菌均有顯著提升,與干預(yù)時間正相關(guān)(p<0.01),6 d時,高劑量植物乳桿菌L28干預(yù)組的小鼠腸道內(nèi)乳酸菌恢復(fù)更快,含量可達正??瞻讓φ战M水平,與之相比無顯著差異(p>0.05),且存在劑量依賴關(guān)系。
圖1 植物乳桿菌L28對腸道內(nèi)乳酸菌和腸桿菌的影響
收集模型自然恢復(fù)組、低、高濃度植物乳桿菌L28組、陽性對照組、空白對照組6 d后的小鼠糞便,測序分析其腸道微生物多樣性,組間Alpha多樣性如圖2所示,經(jīng)L28和低聚果糖干預(yù)后,observed species、Chao、ACE以及Shannon 指數(shù)提高,Simpson 指數(shù)下降,表明小鼠腸道菌群多樣性顯著提升,植物乳桿菌L28具備顯著的改善腸道微生態(tài)功能。
圖2 組間Alpha多樣性盒形圖
根據(jù)文獻報道選擇致腸道紊亂的抗生素種類[9],同時調(diào)整抗生素終濃度至20 mg/mL,灌胃KM小鼠,建立腸道菌群紊亂小鼠模型,經(jīng)檢測,灌胃抗生素小鼠糞便中腸桿菌與乳酸菌均由1.0×108CFU/g降至約1.0×104CFU/g,且乳酸菌下降更多,含量低于腸桿菌,適合于腸道微生態(tài)干預(yù)恢復(fù)研究。
腸道微生態(tài)與人體健康密切相關(guān),在某些因素致腸道微生態(tài)失衡的情況下,可導(dǎo)致多種疾病發(fā)生或提升患病風(fēng)險[7]??股刂委煂λ拗髂c道微生物有諸多不良影響,如減少有益微生物的數(shù)量、促進潛在致病菌的定植、刺激和穩(wěn)定細菌對抗生素的抗藥性等[8]。因此,抗生素使用后,采用益生菌制劑加速腸道微生態(tài)恢復(fù)對于機體健康而言具有重要意義。
本研究對從新疆牧民傳統(tǒng)自制驢乳發(fā)酵乳中篩選獲得的潛在菌種L28進行菌種鑒定,確認其分類地位為植物乳桿菌——國家衛(wèi)健委可食用菌種目錄之一。隨后采用抗生素致小鼠腸道紊亂模型,在腸道菌群被破壞的情況下灌服L28,3 d后腸道內(nèi)乳酸菌顯著恢復(fù),6 d恢復(fù)至正常水平。為了證明模型小鼠腸道內(nèi)乳酸菌恢復(fù)為腸道功能恢復(fù),不是因植物乳桿菌L28灌服提升了乳酸菌總體含量,進一步采用16S rDNA測序技術(shù)對各組小鼠的腸道菌群多樣性進行分析,綜合比較observed species、Chao、ACE、Shannon及Simpson 指數(shù)變化,結(jié)果顯示干預(yù)后小鼠腸道菌群多樣性顯著提升,L28菌株具備顯著的改善抗生素致腸道紊亂小鼠模型的腸道微生態(tài)。