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    CD4+T 細(xì)胞糖酵解在舍格倫綜合征中的表達(dá)及作用

    2022-04-28 07:12:14傅稼耀朱晗懿王保利鄭凌艷
    口腔頜面外科雜志 2022年2期
    關(guān)鍵詞:唾液腺糖酵解免疫性

    傅稼耀, 朱晗懿, 李 輝, 石 歡, 王保利, 鄭凌艷

    (1.上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬第九人民醫(yī)院,口腔醫(yī)學(xué)院口腔外科,國家口腔疾病臨床研究中心,上海市口腔醫(yī)學(xué)重點實驗室,上海市口腔醫(yī)學(xué)研究所,上海 200011;2.上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬第九人民醫(yī)院,口腔醫(yī)學(xué)院,上海 200125)

    舍格倫綜合征(Sj?gren’s syndrome, SS)又稱干燥綜合征,是一種口腔頜面部常見的慢性自身免疫性疾病,其特征為外分泌腺和其他組織免疫系統(tǒng)的自動激活,導(dǎo)致外分泌腺腺體受損,表現(xiàn)為口干和眼干[1-2]。 該疾病可能僅在外分泌腺中發(fā)生,或與其他自身免疫疾病一起發(fā)生, 例如系統(tǒng)性紅斑狼瘡(systemic lupus erythematosus, SLE)等。SS 的發(fā)病率為一般人群的0.5%~1.0%,在所有自身免疫性疾病中發(fā)病率相對較高[3]。 SS 患者中,有1/3 患有多種全身性并發(fā)癥,包括腎、肺或神經(jīng)功能障礙。 此外,在SS 的晚期,長期異常的免疫激活可能會導(dǎo)致非霍奇金淋巴瘤,這是SS 最嚴(yán)重的并發(fā)癥[4]。

    與其他經(jīng)典自身免疫性疾病類似,CD4+T 細(xì)胞長期以來,一直被認(rèn)為是主要的淋巴細(xì)胞群,其促進(jìn)了在SS 中能觀察到的早期的免疫病理病變[1-2,5]。除了在病變的唾液腺中浸潤外,SS 患者的外周血樣本還顯示出CD4+T 細(xì)胞的比例增加。 與正常的外周血淋巴淋巴細(xì)胞相比,病變唾液腺組織和外周血中的CD4+T 細(xì)胞表現(xiàn)出過度活化的表型[5]。這些活化的CD4+T 細(xì)胞具有重要作用,例如調(diào)節(jié)巨噬細(xì)胞功能、幫助B 細(xì)胞產(chǎn)生抗體及協(xié)調(diào)針對病原微生物的免疫反應(yīng)[6-7]。 一般情況下,當(dāng)CD4+T 細(xì)胞受到外界刺激激活后,會根據(jù)周圍不同細(xì)胞因子[如白細(xì)胞介素-2 (interlukin-2, IL-2) 和轉(zhuǎn)化生長因子-β(transforming growth factor-β(TGF-β)等]的濃度,選擇性地進(jìn)入Th1、Th2、Th17、Treg 和Tfh 等細(xì)胞亞型, 這些亞型分別起著免疫促進(jìn)(如Th1、Th17 等細(xì)胞亞型)和免疫抑制(如Treg 細(xì)胞亞型)的作用[4,6]。 顯然,當(dāng)自身免疫疾病發(fā)生時,這些亞型的比例和功能均出現(xiàn)了顯著改變。 在SS 患者和SS 樣小鼠受損的唾液腺組織中顯示Th1/Th2 平衡被破壞,出現(xiàn)大量Th17和Tfh。這些CD4+T 細(xì)胞亞群分泌的主要細(xì)胞因子,特別是干擾素-γ(IFN-γ)、白細(xì)胞介素-17(IL-17)及其他與T 細(xì)胞相關(guān)的細(xì)胞因子,包括IL-2,與疾病中淋巴細(xì)胞浸潤的發(fā)展有關(guān)[8]。 主導(dǎo)或參與CD4+T細(xì)胞過度活化并導(dǎo)致SS 發(fā)病的分子機制, 一直是一個有爭議的話題。

    CD4+T 細(xì)胞的增殖與活化需要糖酵解參與其中, 糖酵解是后續(xù)代謝產(chǎn)物轉(zhuǎn)變?yōu)槿姿嵯佘眨╝denosine triphosphate, ATP)的重要步驟。 異常的糖酵解會導(dǎo)致自身免疫性疾病的發(fā)生和發(fā)展,在例如SLE 和類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎(rheumatoid arthritis, RA)等經(jīng)典自身免疫性疾病中,已觀察到CD4+T 細(xì)胞中糖酵解水平的上調(diào)。 目前也已有一期臨床前研究證明,糖酵解抑制劑二甲雙胍(metformin)和2-脫氧葡萄糖(2-DG)可以治療自身免疫性紅斑狼瘡[9]。 目前沒有關(guān)于糖酵解是否影響SS 的報道。 本研究探討了糖代謝與SS 疾病發(fā)展的關(guān)系。

    1 材料和方法

    1.1 動物和組織學(xué)測量

    本研究挑選了會自發(fā)性產(chǎn)生SS 樣病變浸潤的NOD/ShiLtj(以下稱為NOD/Ltj)小鼠作為體內(nèi)SS 模型, 這類模型鼠在下頜下腺中會產(chǎn)生淋巴細(xì)胞浸潤,并在8 周齡時出現(xiàn)唾液分泌SS 癥狀。 對照組小鼠選用同源的野生型ICR 小鼠。 雌性NOD/Lti 小鼠和野生型ICR 小鼠購自南京大學(xué)模型動物研究中心,小鼠飼養(yǎng)于SPF 環(huán)境。 研究選用糖酵解抑制劑2-DG(Sigma-Aldrich 公司,美國),以飲水喂養(yǎng)(5 mg/mL 2-DG)的方式對各組小鼠進(jìn)行治療。 在小鼠8 周齡時對其進(jìn)行治療,在治療2 周和6 周后分別進(jìn)行觀察,并實施安樂死后提取其唾液腺組織。

    組織被固定、包埋在石蠟中,用于HE 染色。 使用1968 年Chisholm 和Mason 提出的唾液腺浸潤評分系統(tǒng)來評估腺體組織病變的嚴(yán)重程度[10-11],即一個淋巴病灶被定義為隨機4 mm2含50 個淋巴細(xì)胞。 簡單來說,評分系統(tǒng):0 為無淋巴細(xì)胞浸潤,1 為單個視野下少于10 個淋巴細(xì)胞的輕度淋巴細(xì)胞浸潤,2 為中度淋巴細(xì)胞浸潤但淋巴細(xì)胞少于50 個,3 為一個淋巴細(xì)胞灶,4 為2 個及以上淋巴細(xì)胞灶。 在實驗和常規(guī)喂養(yǎng)過程中,動物按照美國國立衛(wèi)生研究院出版的 《實驗室動物護理和使用指南》中的標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)行人道關(guān)懷[12]。 本動物學(xué)研究已通過上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院倫理委員會批準(zhǔn)(批準(zhǔn)號:SH9H-2021-TK69-1)。

    1.2 刺激性唾液流率檢測

    各組小鼠腹腔注射2.4%戊巴比妥鈉(5 mL/kg,Sigma-Aldrich 公司,美國)進(jìn)行麻醉。 麻醉后根據(jù)小鼠體質(zhì)量注射相應(yīng)劑量的普魯卡品 (0.125 mg/kg,Sigma-Aldrich 公司,美國)。 5 min 后,用干棉球收集小鼠唾液10 min,以含唾液棉球的整體質(zhì)量減去干棉球質(zhì)量進(jìn)行換算,收集的唾液根據(jù)每只小鼠的體質(zhì)量進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化(25 g)。

    1.3 多重?zé)晒饷庖呓M織化學(xué)染色

    將包埋的腺體組織進(jìn)行脫蠟和抗原修復(fù)處理。首先用分抗CD3(CST 公司,美國)進(jìn)行一抗孵育,隨后用辣根過氧化氫酶偶聯(lián)化學(xué)發(fā)光二抗進(jìn)行二抗孵育。 采用熒光團共軛的酪酰胺信號放大(tyramide signal amplification, TSA) 分子及擴增試劑(PerkinElmer 公司,美國)進(jìn)行染色和抗體覆蓋。 用抗CD4(CST 公司,美國)再次進(jìn)行一抗孵育,隨后的步驟同前。 染色后的結(jié)果在熒光顯微鏡下進(jìn)行觀察。

    1.4 外周血CD4+T 細(xì)胞分選

    按照2002 年歐美SS 診斷共識的標(biāo)準(zhǔn)選擇30~60 歲的女性SS 患者17 例,在告知實驗內(nèi)容、簽署知情同意書的情況下,在上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬第九人民醫(yī)院口腔外科對患者進(jìn)行唇腺活檢和血樣本的采集。 所有患者在采樣前均未使用免疫抑制或免疫調(diào)節(jié)藥物。 另外,在知情同意的情況下,隨機選取同樣年齡區(qū)間女性的外周血作為健康人群對照外周血樣本。 相關(guān)外周血用Ficoll-Paque 淋巴細(xì)胞分離液(GE Healthcare 公司,美國)進(jìn)行密度梯度離心來分離血液樣本中的外周血單個核細(xì)胞(peripheral blood mononuclear cell, PBMC),隨后用人源性CD4 磁珠(美天旎公司,美國)進(jìn)行分選。 相關(guān)研究方案已獲得上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院倫理委員會批準(zhǔn)(批準(zhǔn)號:SH9H-2019-T159-2)。 在提取完外周血CD4+T 細(xì)胞后,立刻提取總RNA,隨后進(jìn)行實時定量聚合酶鏈反應(yīng)(RT-qPCR)檢測。

    1.5 唾液腺CD4+T 細(xì)胞分選

    將活檢獲取的SS 患者唇腺組織浸泡于4 ℃0.9%氯化鈉溶液內(nèi),30 min 內(nèi)用無菌剪將其剪成小碎塊,并浸泡在Ⅱ型膠原酶中,用gentleMACS 全自動組織處理器(美天旎公司,美國)進(jìn)行機械消化,消化后的單細(xì)胞懸液用Percoll 密度梯度離心法進(jìn)行初步分層, 純化淋巴細(xì)胞。 隨后用人CD4 磁珠(Stemcell 公司,美國)進(jìn)行陽性分選,在分選后,初步進(jìn)行計數(shù), 確保細(xì)胞數(shù)大于1×105個。 一般情況下,1 個患者對應(yīng)1 個樣本, 當(dāng)存在患者腺體內(nèi)CD4+T 細(xì)胞數(shù)量不足時,采用數(shù)個患者CD4+T 細(xì)胞合并的方式予以補齊。 隨后用微量RNA 提取試劑盒(Qiagen 公司,美國)進(jìn)行提取。

    1.6 RT-qPCR 檢測

    在提取各樣本總RNA 后, 用cDNA 逆轉(zhuǎn)錄試劑盒(TaKaRa 公司,日本)進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄,隨后采用SYBR Green 熒光染液(Roche 公司,瑞士)及引物定制(表1)進(jìn)行RT-qPCR 檢測。

    表1 基因引物序列Table 1 Primer sequences

    1.7 代謝通量分析

    各組小鼠淋巴結(jié)和脾組織CD4+T 細(xì)胞經(jīng)研磨后,用鼠源性CD4 磁珠(Stemcell 公司,美國)進(jìn)行分選。 使用XF96 細(xì)胞外代謝分析儀(安捷倫公司,美國) 分析CD4+T 細(xì)胞的細(xì)胞外酸化率(extracellular acidification rate, ECAR),即糖酵解速率。 將分選后的CD4+T 細(xì)胞進(jìn)行計數(shù), 隨后以每孔2×105個的密度接種在涂有Cell-Tak 細(xì)胞黏附劑(Corning 公司,美國) 的Seahorse 96 孔培養(yǎng)板上。 在基礎(chǔ)條件下測定含2 nmmol/L 谷氨酰胺的RPMI 1640 培養(yǎng)液的ECAR 值, 同時在實時條件下測定25 mmol/L葡萄糖、1 μmol/L 寡霉素和50 mmol/L 2-DG 對各組細(xì)細(xì)胞ECAR 值的實時調(diào)控。 本研究選用了7 只10 周齡NOD/Ltj 小鼠和7 只ICR 小鼠進(jìn)行觀察。

    對于小鼠的糖酵解速率分析,以添加葡萄糖后的ECAR 值減去添加葡萄糖前的ECAR 值作為該小鼠的糖酵解水平;以添加寡霉素后,尚未添加2-DG 的ECAR 值減去添加2-DG 后的ECAR 值作為該小鼠的糖酵解潛力值。

    1.8 數(shù)據(jù)分析

    相關(guān)數(shù)據(jù)使用GraphPad Prism 8.0 軟件進(jìn)行制圖及統(tǒng)計學(xué)分析。 2 組之前的數(shù)值以t 檢驗進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,以P<0.05 為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 SS 患者浸潤CD4+T 細(xì)胞中存在糖酵解水平亢進(jìn)

    本研究摘取SS 患者的部分唇腺樣本后, 經(jīng)過HE 染色確認(rèn)該患者唇腺存在顯著的免疫細(xì)胞浸潤(圖1A、B)。 同期,將新鮮樣本通過組織研磨和Ⅱ型膠原酶消化的方法獲得組織勻漿后,利用MACS 法提取CD4+T 細(xì)胞。RT-qPCR 法檢測了多個糖酵解節(jié)點因子的轉(zhuǎn)錄情況, 并將其與健康人群外周血的CD4+T 細(xì)胞進(jìn)行比對。 結(jié)果顯示,SS 浸潤唾液腺組織中糖酵解節(jié)點分子己糖激酶2(hexokinase 2,HK2)、丙酮酸激酶(pyruvate kinase M1/2, PKM)的表達(dá)(圖1C、D)出現(xiàn)顯著上升,同時,SS 浸潤唾液腺組織和外周血中,CD4+T 細(xì)胞糖酵解驅(qū)動轉(zhuǎn)錄因子MYC 的表達(dá)也顯著提高(圖1E)。 為此,我們初步判定,CD4+T 細(xì)胞糖酵解在SS 患者唾液腺浸潤組織中,部分糖酵解因子存在轉(zhuǎn)錄水平的亢進(jìn)。

    圖1 SS 患者CD4+T 細(xì)胞糖酵解相關(guān)基因表達(dá)Figure 1 The expression of CD4+T cell glycolysis-related genes in SS patients

    2.2 SS 模型小鼠CD4+T 細(xì)胞中糖酵解水平增強

    我們隨后檢測了NOD/Ltj 小鼠和對照組ICR小鼠CD4+T 細(xì)胞的ECAR 指標(biāo),即2 組細(xì)胞的糖酵解水平。 如圖2 所示,與ICR 小鼠相比,NOD/Ltj 小鼠的CD4+T 細(xì)胞相對表現(xiàn)出的糖酵解能力更高。 該結(jié)果進(jìn)一步證實,SS 發(fā)生時,CD4+T 細(xì)胞存在異常的糖酵解亢進(jìn)。

    圖2 SS 模型鼠的CD4+T 細(xì)胞呈現(xiàn)出更高水平的糖酵解Figure 2 Higher level of glycolysis in CD4+T cells of SS mice model

    2.3 抑制糖酵解減輕了S S 小鼠的疾病進(jìn)程

    為了明確抑制糖酵解能否有效治療SS,我們使用糖酵解抑制劑2-DG 處理8 周齡的小鼠。 2-DG 給藥后2 周(10 周齡)和6 周(14 周齡)時,對小鼠進(jìn)行唾液流量檢查, 發(fā)現(xiàn)2-DG 能有效減緩NOD/Ltj小鼠唾液流率的下降(圖3A)。 隨后對小鼠下頜下腺最大橫截面積切片進(jìn)行HE 染色, 根據(jù)淋巴細(xì)胞浸潤灶數(shù)量進(jìn)行統(tǒng)計,發(fā)現(xiàn)經(jīng)2-DG 處理后,嚴(yán)重淋巴細(xì)胞灶(一個灶內(nèi)有50 個以上的淋巴細(xì)胞)的浸潤數(shù)量明顯下調(diào)(圖3B)。 同時,單個淋巴細(xì)胞浸潤灶中的淋巴細(xì)胞數(shù)量同樣明顯下調(diào)(圖3C)。 以上結(jié)果表明,抑制糖酵解減弱了SS 的疾病進(jìn)程。

    圖3 糖酵解抑制劑2-DG 治療能有效緩解SS 疾病癥狀Figure 3 Treatment of 2-DG can effectively attenuate the symptoms of SS

    2.4 2-DG 抑制糖酵解可緩解CD4+T 細(xì)胞浸潤及因子分泌

    為了進(jìn)一步觀察CD4+T 細(xì)胞的浸潤情況,我們用了mIHC 法對總T 細(xì)胞(CD3+)進(jìn)行紅色熒光標(biāo)記, 而對CD4+T 細(xì)胞用綠色熒光標(biāo)記。 如圖4A 所示,在NOD/Ltj 小鼠中,CD4+T 細(xì)胞是總T 細(xì)胞數(shù)量的主要成分, 這與先前研究對CD4+T 細(xì)胞在SS 疾病中的認(rèn)知相一致。 而經(jīng)2-DG 處理后, 我們發(fā)現(xiàn)CD4+T 細(xì)胞的數(shù)量顯著減少。 進(jìn)一步對小鼠唾液腺進(jìn)行消化,獲取單細(xì)胞勻漿,觀察CD4+T 細(xì)胞效應(yīng)分化(尤其是Th1 細(xì)胞和Th17 細(xì)胞)相關(guān)基因轉(zhuǎn)錄情 況。 RT-qPCR 示,Th1 細(xì) 胞 相 關(guān) 指 標(biāo)IFN-γ 和Th17 細(xì)胞相關(guān)指標(biāo)IL-17 的基因水平在NOD/Ltj 小鼠唾液腺內(nèi)的表達(dá)顯著上調(diào),而采用2-DG 處理后,IFN-γ 與IL-17 的表達(dá)均有所下調(diào),其中以IL-17 下調(diào)幅度更為明顯(圖4B)。 因此,我們確定抑制糖酵解可以通過降低浸潤CD4+T 細(xì)胞的數(shù)量和效應(yīng)分化來減緩疾病的進(jìn)展。

    圖4 糖酵解抑制劑2-DG 能有效抑制CD4+T 細(xì)胞浸潤Figure 4 Treatment of 2-DG can effectively inhibit the infiltration of CD4+T cell

    3 討論

    CD4+T 細(xì)胞的過度激活是SLE、SS 等自身免疫性疾病的共同標(biāo)志。 在激活后, 周期靜止的初始T細(xì)胞迅速進(jìn)行大量克隆擴增,以支持其分化為T 細(xì)胞亞群和分泌細(xì)胞因子。 活化的CD4+T 細(xì)胞可協(xié)調(diào)自身免疫反應(yīng),如調(diào)節(jié)巨噬細(xì)胞功能,促進(jìn)B 細(xì)胞成熟、定位和抗體的產(chǎn)生[6-7]。 因此,在SS 等自身免疫性疾病的病理過程中, 活化的T 細(xì)胞與靜止的T細(xì)胞相比,細(xì)胞增殖增加,代謝需求也有所不同。 活化的T 細(xì)胞需在短時間內(nèi)產(chǎn)生大量ATP,這一過程主要由代謝途徑的改變所支持。 Sharabi 等[13]對免疫細(xì)胞代謝的重要性進(jìn)行排序, 他們認(rèn)為糖代謝、脂代謝和氨基酸代謝是T 細(xì)胞的主要代謝方式,且在CD4+T 細(xì)胞不同亞型中, 細(xì)胞的主要代謝手段也有所差異。 在介導(dǎo)自身免疫疾病的Th1 和Th17 細(xì)胞亞型中,多數(shù)研究者認(rèn)為,糖代謝(尤其是糖酵解)是支持其效應(yīng)分化和因子分泌的主要代謝手段。在CD4+T 細(xì)胞激活后,存在糖代謝方式從氧化磷酸化向有氧糖酵解轉(zhuǎn)變,這一改變也被稱為“Warburg效應(yīng)”[14-15]。 增強的糖酵解支持對葡萄糖攝取和使用的依賴性增加[16]。許多研究表明,抑制葡萄糖攝取可以顯著抑制T 細(xì)胞的增殖和細(xì)胞因子的產(chǎn)生[17-18]。同樣,也有人提出抑制CD4+T 細(xì)胞的葡萄糖代謝可以延緩SLE[9,19-20],RA[21-22]和自身免疫性腦脊髓炎[19]的進(jìn)展。本研究中,我們初步證明了采用2-DG 抑制糖酵解可以減少浸潤CD4+T 細(xì)胞的數(shù)量, 減緩SS的進(jìn)展。 這一結(jié)果提示靶向CD4+T 細(xì)胞糖酵解可能為防止SS 和其他自身免疫性疾病的全新手段。

    目前, 靶向糖酵解的關(guān)鍵蛋白有PKM2、HK2、GLUT1、PDHK 等,這些蛋白也在許多研究中被證實可以緩解自身免疫疾病。 其中,Koga 等[23]發(fā)現(xiàn)靶向與GLUT1 可有效抑制糖攝取和鈣離子內(nèi)流, 緩解SLE。 Damasecno 等[24]利用PKM2 的小干擾RNA 和抑制劑, 發(fā)現(xiàn)該分子能同時緩解糖酵解和炎癥反饋。 而目前最常用、最公認(rèn)的糖酵解抑制劑依然是本研究中所采用的2-DG。 該抑制劑是一種葡萄糖類似物,同樣被細(xì)胞膜表面葡萄糖轉(zhuǎn)運受體蛋白所識別,并轉(zhuǎn)運至細(xì)胞中,競爭性地被己糖激酶磷酸化,但不能被代謝并積累在細(xì)胞中,從而阻斷糖酵解途徑,導(dǎo)致ATP 耗竭[25]。 目前,該藥物已經(jīng)初步應(yīng)用于抗病毒、抗免疫、抗腫瘤治療的臨床前期研究中[26]。 本研究采用2-DG 對SS 模型鼠進(jìn)行治療,確認(rèn)其能抑制CD4+T 細(xì)胞的異常糖代謝亢進(jìn),從而減弱CD4+T 細(xì)胞異常浸潤及功能發(fā)揮。 但在后續(xù)的研究中,我們依舊需要明確其潛在的副作用,以進(jìn)一步支持該藥物的后續(xù)臨床靶向研發(fā)。

    綜上所述,我們的研究表明, SS 患者及相關(guān)模型動物的CD4+T 細(xì)胞中存在一定水平的糖酵解亢進(jìn)。采用糖酵解抑制劑2-DG 對SS 模式動物進(jìn)行治療可以減弱CD4+T 細(xì)胞的異常浸潤和因子表達(dá),緩解SS 樣自身免疫反應(yīng)。

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