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    高效液相色譜法檢測(cè)飼料中6 種游離氨基酸

    2022-03-19 03:01:04劉成模莫彩娜陳小燕任秋香黃智成
    中國(guó)飼料 2022年3期
    關(guān)鍵詞:硝基游離氨基酸

    劉成模, 楊 曦 , 莫彩娜, 陳小燕, 任秋香, 黃智成

    (1.廣東恒興飼料實(shí)業(yè)股份有限公司,廣東湛江 524094;2.農(nóng)業(yè)農(nóng)村部華南水產(chǎn)與畜禽飼料重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,廣東湛江 524094)

    飼料蛋白質(zhì)的氨基酸不平衡會(huì)降低蛋白質(zhì)效率, 用合成的氨基酸來(lái)平衡飼料中氨基酸比例是提高飼料蛋白質(zhì)利用率和節(jié)約蛋白質(zhì)資源, 降低飼料成本的途徑之一 (占秀安等,2007)。 在水產(chǎn)養(yǎng)殖中,?;撬嶂饕挥米魑r類(lèi)誘食劑(Fuzessery 等,1978)。 有研究表明,比目魚(yú)飼料中添加1.4%的牛磺酸能顯著促進(jìn)其生長(zhǎng),提高蛋白質(zhì)效率比(Park 等,2002);草魚(yú)飼料中適量添加?;撬幔?00 ~1400 mg/kg),能提高特定生長(zhǎng)率、飼料效率和蛋白質(zhì)效率,降低草魚(yú)體水分,增加體蛋白和體脂(蘿莉等,2006)。因此,準(zhǔn)確、快捷、低成本地測(cè)定飼料中?;撬幔═aurine)、蘇氨酸(Thr)、甘氨酸(Gly)、纈氨酸(Val)、蛋氨酸(Met)、賴(lài)氨酸(Lys)6 種游離氨基酸含量,對(duì)于飼料配方設(shè)計(jì),提高養(yǎng)殖效率具有十分重要的意義。

    GB/T 18246-2019《飼料中氨基酸的測(cè)定》對(duì)飼料中游離氨基酸的測(cè)定采用氨基酸分析儀檢測(cè),氨基酸分析儀成本比較高,檢測(cè)時(shí)間也比較長(zhǎng),不利于一般企業(yè)開(kāi)展,同時(shí)也不利于大批量樣品檢測(cè)。 本實(shí)驗(yàn)采用0.1 mol/L 鹽酸溶液提取樣品中的6 種游離氨基酸, 與1% 2,4-二硝基氟苯(DNFB)溶液衍生后經(jīng)高效液相色譜儀測(cè)定其含量。

    1 材料與方法

    1.1 儀器與試劑

    1.1.1 主要儀器 Agilent 1260 高效液相色譜儀(配紫外檢測(cè)器和工作站), 美國(guó)安捷倫科技(中國(guó))有限公司;PHS-3E pH 計(jì),上海儀電科學(xué)儀器股份有限公司;DK-BD 型電熱恒溫水浴箱, 上海新諾儀器設(shè)備有限公司。

    1.1.2 主要試劑 6 種氨基酸標(biāo)準(zhǔn)品: ?;撬幔═aurine)、蘇 氨 酸(Thr)、甘 氨 酸(Gly)、纈 氨 酸(Val)、 蛋氨酸 (Met)、 賴(lài)氨酸 (Lys)(純度均≥98%),美國(guó)Sigma 公司;2,4-二硝基氟苯(DNFB)(>99.0%),麥克林公司;乙腈為色譜純,無(wú)水乙酸鈉、磷酸二氫鈉、無(wú)水碳酸鈉、氫氧化鈉均為分析純;水為GB/T 6682 規(guī)定的一級(jí)水。

    1.2 色譜條件 色譜柱:Ultimate XB-C18 (4.6×250 mm,5 μm);流速:1.0 mL/min;進(jìn)樣量:10 μL;柱溫:40 ℃;檢測(cè)波長(zhǎng):360 nm;梯度洗脫程序如表1 所示。

    表1 梯度洗脫程序

    1.3 樣品前處理 稱(chēng)取已制好的飼料樣品2 g(準(zhǔn)確至0.0001 g)于100 mL 燒杯中,加入50 mL 0.1 mol/L 鹽酸溶液,用玻璃棒攪拌約1 min,置于超聲波儀中常溫超聲30 min(中間用玻璃棒攪拌2 次),超聲完畢后用氫氧化鈉溶液調(diào)溶液至中性(先加0.4 mL 40%氫氧化鈉溶液, 再用0.5 mol/L氫氧化鈉溶液慢慢調(diào)成中性), 然后轉(zhuǎn)移到100 mL容量瓶中,用超純水定容至刻度,混勻。 最后取約50 mL 溶液于離心管中,4000 r/min 離心10 min,上清液待用。

    1.4 衍生化 分別移取500 μL 上述上清液和6種游離氨基酸標(biāo)準(zhǔn)系列混合液于帶蓋試管中,依次準(zhǔn)確加入500 μL 碳酸鈉緩沖溶液 (pH=9.0)、500 μL 1%(DNFB)2,4-二硝基氟苯溶液,蓋上塞子,漩渦混勻,于60 ℃水浴中避光反應(yīng)60 min。取出,冷卻至室溫,再加磷酸鹽緩沖液(pH=7.0)3.5 mL,漩渦混勻,靜置15 min。 衍生后的試液過(guò)0.45 μm 水系濾頭過(guò)濾,濾液上機(jī)待測(cè)。

    2 結(jié)果

    2.1 提取方式和提取時(shí)間的選擇 稱(chēng)取同一份已制好飼料樣品,分別采用振蕩和超聲兩種方式提取,每種提取方式分別進(jìn)行5、15、30、40、50、60 min。 由表2 可知, 不同時(shí)間振蕩和超聲提取結(jié)果基本相同,說(shuō)明振蕩和超聲兩種方式對(duì)6 種游離氨基酸的提取無(wú)影響, 為確保6 種游離氨基酸能夠完全提取,本實(shí)驗(yàn)選擇超聲提取,提取時(shí)間為30 min。

    表2 振蕩和超聲不同時(shí)間提取效果%

    2.2 提取后樣品溶液pH 的選擇 氨基酸和衍生劑2,4-二硝基氟苯反應(yīng)所需的環(huán)境為弱堿性,加入500 μL 碳酸鈉緩沖液(pH=9.0)確保反應(yīng)環(huán)境為弱堿性,提取液為0.1 mol/L 鹽酸溶液,酸性,故在衍生前對(duì)樣品進(jìn)行堿化。 由表3 可知, 樣品pH 為3 ~9 時(shí),6 種游離氨基酸的結(jié)果基本相同,說(shuō)明樣品pH3~9 對(duì)種游離氨基酸的結(jié)果基本沒(méi)有影響,但衍生劑產(chǎn)物色譜峰隨pH 增大而升高,因此本實(shí)驗(yàn)選擇將樣品提取液pH 調(diào)成7,接近標(biāo)準(zhǔn)溶液pH。

    表3 提取后樣品溶液pH對(duì)游離氨基酸含量的影響%

    2.3 衍生劑用量和衍生時(shí)間的選擇 對(duì)同一飼料樣品分別加1% 2,4-二硝基氟苯溶液50、100、200、300、400、500、600、700 μL,最后加入磷酸鹽緩沖液(pH=7.0)至溶液體積為5 mL。由表4 和表5可知,衍生劑用量從50 ~500 μL 時(shí),隨衍生劑用量加大,6 種游離氨基酸結(jié)果不斷增大, 衍生劑用量超過(guò)500 μL 后,6 種游離氨基酸的結(jié)果基本相同,說(shuō)明衍生劑用量低于500 μL,6 種游離氨基酸與衍生劑反應(yīng)不完全。 衍生時(shí)間從5 ~60 min 時(shí), 隨衍生時(shí)間越長(zhǎng),6 種游離氨基酸結(jié)果不斷增大,衍生劑時(shí)間超過(guò)60 min 后,6 種游離氨基酸的結(jié)果基本相同, 說(shuō)明衍生時(shí)間低于60 min,6 種游離氨基酸與衍生劑反應(yīng)不完全。說(shuō)明樣品中6 種游離氨基酸與衍生劑完全反應(yīng)需要至少500 μL 衍生劑反應(yīng)60 min 以上,但衍生劑產(chǎn)物色譜峰隨衍生時(shí)間延長(zhǎng)而升高。 因此,本實(shí)驗(yàn)選擇衍生劑為500 μL 1% 2,4-二硝基氟苯溶液和衍生時(shí)間60 min。

    表4 衍生劑用量對(duì)游離氨基酸含量的影響%

    表5 衍生時(shí)間對(duì)游離氨基酸含量的影響%

    2.4 線(xiàn)性關(guān)系、 線(xiàn)性范圍、LOD 和LOQ 取6種 標(biāo) 準(zhǔn) 濃 度 為10、20、50、100、150、200 μg/mL混合氨基酸500 μL 按本實(shí)驗(yàn)操作,以氨基酸質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),峰面積為縱坐標(biāo),得到6 種氨基酸的工作曲線(xiàn)、線(xiàn)性范圍,在本實(shí)驗(yàn)條件下,按信燥比S/N=3 計(jì)算,求得飼料中的(LOD)檢出限,按信燥比S/N=10 計(jì)算,求得定量限(LOQ),結(jié)果見(jiàn)表6。

    表6 線(xiàn)性關(guān)系、線(xiàn)性范圍、LOD 和LOQ

    2.5 穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn) 取已處理好的供試溶液, 按本實(shí)驗(yàn)色譜條件,分別在0、4、8、12、16、24 h,測(cè)其峰面積,6 種游離氨基酸RSD 為0.526% ~0.865%,結(jié)果表明供試溶液24 h 內(nèi)基本穩(wěn)定(表7)。

    表7 穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)

    2.6 重復(fù)性實(shí)驗(yàn) 取同一飼料樣品6 份,按本實(shí)驗(yàn)測(cè)定,6 種游離氨基酸的含量以變異系數(shù)CV計(jì)為2.55% ~2.76%。

    表8 重復(fù)性實(shí)驗(yàn)

    2.7 加標(biāo)回收率實(shí)驗(yàn) 稱(chēng)取已知含量飼料6 份,分別添加一定濃度的6 種游離氨基酸標(biāo)準(zhǔn)品,采用本實(shí)驗(yàn)方法進(jìn)行測(cè)定, 計(jì)算回收率, 結(jié)果見(jiàn)表9,6 種游離氨基酸最低回收率超過(guò)92%。

    表9 添加不同水平游離氨基酸回收率%

    2.8 國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)方法與本實(shí)驗(yàn)方法結(jié)果對(duì)比 取不同飼料樣品, 分別采用本方法與標(biāo)準(zhǔn)方法檢測(cè)6 種游離氨基酸。 結(jié)果表明,兩種方法的測(cè)定結(jié)果無(wú)顯著性差異(表10)。

    表10 不同樣品國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)方法與本方法結(jié)果比對(duì)%

    3 討論

    因?yàn)榇蠖鄶?shù)氨基酸不含芳香環(huán)等紫外或可見(jiàn)光吸收基團(tuán), 無(wú)法直接用紫外和可見(jiàn)光吸收法檢測(cè), 需先將氨基酸衍生轉(zhuǎn)化成具有較強(qiáng)紫外或者熒光吸收的衍生產(chǎn)物。 衍生方式有柱前衍生法和柱后衍生法。 柱后衍生法的主要缺點(diǎn):(1)色譜儀器較復(fù)雜, 需額外的泵和反應(yīng)器以保證洗脫液與柱后試劑均勻組合,這樣使儀器局限于一類(lèi)分析。(2)在茚三酮方法中單波長(zhǎng)影響因素比較大,常需雙波長(zhǎng)檢測(cè),使儀器更加復(fù)雜、昂貴。 故本實(shí)驗(yàn)采用柱前衍生檢測(cè)飼料中游離氨基酸含量。 一般用于柱前衍生劑有異硫氰酸苯酯、 丹磺酰氯、6-氨基喹啉基-N-羥基琥珀酰亞氨基氨基甲酸、 鄰苯二甲醛、9-芴基甲氧基羰酰氯和2,4-二硝基氟苯等。 綜合考慮柱前衍生劑優(yōu)缺點(diǎn), 本實(shí)驗(yàn)采用2,4-二硝基氟苯作為柱前衍生試劑。

    4 結(jié)論

    本實(shí)驗(yàn)采用高效液相色譜法同時(shí)檢測(cè)飼料中6種游離氨基含量,實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,該方法分析速度快,回收率和重復(fù)性比較好。與國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)方法檢測(cè)結(jié)果進(jìn)行比對(duì),檢測(cè)結(jié)果無(wú)顯著性差異,是一種可快速、準(zhǔn)確測(cè)定飼料中6 種游離氨基酸含量的方法。

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