胡 婷 張 華 吳 瓊 周 波 盧天航 崔德鳳* 張永紅*
(1.北京農(nóng)學院動物科學技術(shù)學院,獸醫(yī)學(中醫(yī)藥)北京市重點實驗室,北京102206;2.河北農(nóng)業(yè)大學動物科技學院,保定071000;3.中牧實業(yè)股份有限公司,北京100070)
革蘭氏陰性細菌主要存在于機體的腸道內(nèi),而脂多糖(LPS)則是革蘭氏陰性細菌的內(nèi)毒素物質(zhì)。機體在受到應激或者感染時革蘭氏陰性細菌大量繁殖,會破壞腸道屏障,細菌死亡后,大量LPS進入血液,作用于細胞膜受體[1-2],激活某些通路,如Toll樣受體4(TLR4)信號通路,通過一系列物質(zhì)的磷酸化,生成核因子-κB (NF-κB),再誘導機體產(chǎn)生大量促炎因子,導致腸道絨毛脫落,腸道通透性升高,從而使機體出現(xiàn)代謝紊亂、發(fā)熱等多種炎癥癥狀[3]。研究表明,益生菌通過調(diào)節(jié)細胞因子,調(diào)控緊密連接相關(guān)蛋白表達,抑制TLR4信號通路的激活,改善腸道屏障功能,降低腸道通透性,進而阻止有害物質(zhì)侵入而引起的炎癥反應[4-6]。王焱[7]的試驗證明,凝結(jié)芽孢桿菌LT3通過調(diào)控炎癥和氧化信號通路以及腸道菌群對LPS誘導的大鼠盲腸損傷起到保護作用。凝結(jié)芽孢桿菌作為一種新型益生菌對LPS誘導的腸道損傷作用具有一定的改善效果,其具有良好的耐熱性,適合添加在飼糧中[6-7]。而且本課題組同期研究表明,凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI通過降低腸道黏膜通透性,提高腸道黏膜屏障的保護作用及吸收功能,降低蛋雛雞料重比,提升其生長性能[8]。因此,本試驗使用本實驗室提取并驗證后制成的凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI菌粉,檢測其對30日齡蛋雛雞灌服2 mg/kg LPS 200 μL 6 h后的腸道黏膜通透性及TLR4信號通路相關(guān)基因表達和蛋白表達,旨在探究凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI調(diào)控LPS損傷腸道的作用機制。
凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI菌粉由北京農(nóng)學院中獸醫(yī)實驗室提取并驗證后制備[8]。
選取1日齡京紅蛋雛雞180只,隨機分為5組,每組6個重復,每個重復6只,重復之間體重接近??瞻讓φ战M(CON組)和模型組(LPS組)飼喂基礎(chǔ)飼糧(基礎(chǔ)飼糧組成及營養(yǎng)水平同本課題組同期試驗[8]),連續(xù)灌服生理鹽水,3個益生菌組飼喂基礎(chǔ)飼糧,同時分別連續(xù)灌服低、中、高劑量的凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI(濃度分別為106、107、108CFU/mL),灌服28 d,28 d后灌服LPS,灌服濃度為2 mg/kg,灌服劑量為200 μL/只,試驗周期為6 h,分別記為LOW+LPS、MID+LPS、HIGH+LPS組。蛋雛雞自由采食,充分飲水,按正常免疫程序進行免疫接種。
采集蛋雛雞的十二指腸、空腸和回腸腸道組織,每段約5 cm,用于測定腸道組織結(jié)構(gòu)。用1 mL針管對蛋雛雞進行心臟采血,采血量3~4 mL,室溫放置至少0.5 h,3 000 r/min離心10 min,吸取上層血清轉(zhuǎn)移到1.5 mL滅菌的EP管中,用于測定血清二胺氧化酶(DAO)活性及D-乳酸(D-Lac)、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)含量。采集約5 cm的蛋雛雞空腸縱向剖開,用0.9%生理鹽水緩慢沖去食糜,避免將腸絨毛沖掉,用消毒后的無齒鑷沿同一方向輕輕刮取黏膜,裝入EP管中,包上錫箔紙,放入-80 ℃保存,用于測定空腸黏膜黏液蛋白2(MUC2)和緊密連接蛋白mRNA相對表達量、分泌型免疫球蛋白A(SIgA)和白細胞介素-10(IL-10)含量及TLR4信號通路相關(guān)基因與蛋白表達量。
1.4.1 腸道組織結(jié)構(gòu)
采集的腸道組織用清水稍微清洗一下,放入4%多聚甲醛固定24 h,制備組織切片、蘇木精-伊紅(HE)染色,用熒光顯微鏡觀察且測量不同腸道的絨毛長度與隱窩深度,計算腸道絨隱比。
1.4.2 血清DAO活性及D-Lac、TNF-α含量
用酶聯(lián)免疫吸附測定(ELISA)方法測定血清中DAO活性及D-Lac、TNF-α含量,試劑盒購自上海江萊生物科技有限公司,試驗按照說明書操作。
1.4.3 空腸黏膜MUC2和緊密連接蛋白mRNA相對表達量
用實時熒光定量PCR的方法測定空腸黏膜中MUC2、閉合蛋白(Occludin)和閉鎖小帶蛋白-1(ZO-1)的mRNA相對表達量。試驗步驟以及引物序列信息等參考本課題組同期研究[8]。以磷酸甘油醛脫氫酶(GAPDH)作為內(nèi)參基因,采用2-△△Ct法計算mRNA相對表達量。
1.4.4 空腸黏膜SIgA和IL-10含量
采用ELISA的方法測定空腸黏膜中SIgA和IL-10的含量,試劑盒購自上海江萊生物科技有限公司,試驗按照說明書操作。
1.4.5 空腸黏膜TLR4信號通路相關(guān)基因與蛋白表達量
分別采用實時熒光定量PCR和Western blot的方法測定蛋雛雞空腸黏膜TLR4信號通路中TLR4、核轉(zhuǎn)錄因子-κB(NF-κB)mRNA相對表達量和蛋白表達量。試驗步驟以及引物序列信息等參考本課題組同期研究[8]。
試驗數(shù)據(jù)均用GraphPad Prism 7.00軟件進行統(tǒng)計處理,結(jié)果用平均值±標準差(mean±SD)表示,用t檢驗(t-test)分析差異顯著性,P>0.05為無顯著差異,P<0.05為差異顯著,P<0.01為差異極顯著。
LPS組蛋雛雞灌胃LPS 6 h后出現(xiàn)食欲不振、腹瀉等臨床癥狀,益生菌組未出現(xiàn)明顯腹瀉。
由表1可知,LPS組十二指腸絨毛長度顯著低于CON組(P<0.05),而回腸的隱窩深度則顯著高于CON組(P<0.05),與CON組相比,各腸道絨隱比顯著降低(P<0.05),高劑量凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI極顯著提高十二指腸的絨隱比(P<0.01);與LPS組相比,飼喂不同劑量的凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI均提高腸道的絨毛長度,降低隱窩深度,其中高劑量效果顯著(P<0.05),中、高劑量凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI極顯著提高各腸道的絨隱比(P<0.01)。
表1 蛋雛雞腸道絨毛長度、隱窩深度及絨隱比
由表2可知,與CON組相比,LPS組的血清DAO活性極顯著增加(P<0.01),D-Lac和TNF-α含量顯著增加(P<0.05);與LPS組相比,3個劑量凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI均極顯著降低血清DAO活性(P<0.01),顯著降低血清TNF-α含量(P<0.05);中劑量凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI顯著降低血清D-Lac含量(P<0.05),高劑量凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI極顯著降低血清D-Lac含量(P<0.01)。
由圖1可知,與CON組相比,LPS組的空腸黏膜MUC2、Occludin和ZO-1的mRNA相對表達量均極顯著降低(P<0.01),低、高劑量+LPS組的空腸黏膜MUC2、Occludin和ZO-1的mRNA相對表達量顯著降低(P<0.05),中劑量+LPS組空腸黏膜MUC2的mRNA相對表達量顯著降低(P<0.05),空腸黏膜ZO-1的mRNA相對表達量極顯著降低(P<0.01);與LPS組相比,高劑量凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI可以顯著提高空腸黏膜MUC2的mRNA相對表達量(P<0.05),中劑量凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI可以顯著提高空腸黏膜Occludin的mRNA相對表達量(P<0.05),低、高劑量凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI可以顯著提高空腸黏膜ZO-1的mRNA相對表達量(P<0.05)。
表2 蛋雛雞血清中DAO活性及D-Lac、TNF-α含量
與CON組相比,“*”為P<0.05;“**”為P<0.01;與LPS組相比,“#”為P<0.05;“##”為P<0.01。下圖同。
由表3可知,與CON組相比,LPS能夠極顯著提高空腸黏膜SIgA含量(P<0.01),顯著提高空腸黏膜中IL-10含量(P<0.05),凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI也能極顯著提高空腸黏膜中SIgA含量(P<0.01),顯著提高空腸黏膜中IL-10含量(P<0.05),但與LPS組相比無顯著差異(P>0.05)。
由圖2、圖3可知,與CON組相比,LPS組蛋雛雞空腸黏膜中TLR4和NF-κB的mRNA相對表達量和NF-κB的蛋白表達量顯著上調(diào)(P<0.05);不同劑量凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI對空腸黏膜TLR4的mRNA相對表達量和蛋白表達量會有不同程度的抑制作用,尤其是中、高劑量凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI抑制作用極顯著(P<0.01),甚至與CON組也出現(xiàn)顯著性差異(P<0.05)。
LPS能使動物機體產(chǎn)生異常生理行為,且影響其正常的飲食消化。其腸道的形態(tài)結(jié)構(gòu)決定吸收能力,絨毛長度代表吸收面積,隱窩深度反映上皮細胞的增殖和成熟情況[9-10],而二者的比值更能體現(xiàn)小腸功能的強弱,比值越大,黏膜功能越強,比值越小,消化吸收功能越受限,黏膜損傷越嚴重[11]。凝結(jié)芽孢桿菌能改善LPS作用后的腸道損傷。本試驗的結(jié)果也表明,LPS作用后,蛋雛雞腸道絨隱比降低,說明蛋雛雞腸道受到損傷,而飼喂凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI的蛋雛雞會改善這種損傷現(xiàn)象。
腸黏膜屏障作為機體抵抗外界刺激的第1道關(guān)卡,其完整性對于維持微環(huán)境穩(wěn)態(tài)尤為重要[12],其中黏液蛋白和緊密連接蛋白是維護上皮細胞極性和調(diào)節(jié)腸道屏障完整性的重要物質(zhì)[13]。研究表明,LPS能破壞腸黏膜上皮緊密連接完整性,損傷腸黏膜,增加腸道通透性,導致LPS以細胞旁作用穿過腸道屏障進入腸內(nèi),引起促炎細胞因子大量分泌,加劇腸道炎癥[14]。Wu等[12]在細胞上的研究表明,用LPS刺激IPEC-J2后,Occludin、緊密連接蛋白-1(Claudin-1)和ZO-1基因表達會下調(diào)。益生菌對于腸道屏障功能的改善具有良好效果,它通過增加黏液蛋白和緊密連接蛋白的表達來加強腸道結(jié)構(gòu)完整性,提高腸道黏膜保護作用,降低炎癥發(fā)病率。在一項研究中,VSL#3(8種不同的革蘭氏陽性菌組成的凍干粉)能顯著增加Wistar大鼠結(jié)腸炎模型中結(jié)腸黏液蛋白分泌,主要是MUC2 mRNA的表達,但是對黏液蛋白1 (MUC1)和黏液蛋白3(MUC3)基因表達的調(diào)節(jié)作用并不明顯[15]。宋曉珍[16]的試驗證實,復合益生菌能顯著提高炎癥性腸病小鼠模型下小鼠結(jié)腸組織中Occludin的基因表達。本試驗發(fā)現(xiàn)與CON組相比,LPS組MUC2和緊密連接蛋白(Occludin和ZO-1)的mRNA相對表達量極顯著降低;與LPS組相比,中劑量凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI能顯著提高空腸黏膜Occludin的mRNA相對表達量,高劑量凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI能顯著提高空腸黏膜MUC2的mRNA相對表達量,中、高劑量凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI均能顯著提高空腸黏膜ZO-1的mRNA相對表達量,因此,凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI能通過提高腸道緊密連接能力來增強腸道通透性,減少LPS的損傷作用。
表3 蛋雛雞空腸黏膜中SIgA和IL-10含量
圖2 蛋雛雞空腸黏膜TLR4、NF-κB的mRNA相對表達量
腸黏膜受損時,血液DAO活性會增加[17]。DAO是腸道黏膜中物質(zhì),只有當腸黏膜細胞損傷,腸道通透性增加時,才會進入血液,因此,DAO在血清中活性可作為評價腸道黏膜完整性的指標[18]。雞血清中D-Lac含量與LPS的含量呈正比例變化,也是LPS導致腸道黏膜通透性增加的標志物之一[19]。益生菌通過降低血清DAO活性和D-Lac含量來修復損傷的腸黏膜,降低腸道通透性,促進腸道屏障功能恢復,維護腸道健康[20]。江巧麗等[21]試驗證明益生菌制劑(雙歧桿菌、嗜酸乳桿菌和糞腸球菌的聯(lián)用)可降低肝硬化患者血清DAO活性以及LPS含量,降低患者腸道黏膜通透性,改善肝功能。本試驗中也得出飼喂不同劑量凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI能下調(diào)LPS刺激后血清DAO活性和D-Lac的含量,改善腸道損傷的結(jié)論。
當LPS作用腸道時,易產(chǎn)生大量促炎因子,破壞腸道屏障,進入血液,其中TNF-α是主要因子,其具有多種生物學活性,涉及炎癥反應[22]。蘭斌等[23]發(fā)現(xiàn)與空白組相比,給白兔耳緣注射0.3 mL/kg的LPS使血清TNF-α含量顯著升高。在LPS誘導炎癥因子產(chǎn)生的同時,也會激活黏膜免疫系統(tǒng)[24],分泌抗體與抑炎因子。SIgA是腸道黏膜中最豐富的非炎性免疫球蛋白抗體,IL-10則是主要抗炎因子[25]。劉紹瓊[26]的試驗通過飼喂肉雞500 μg/kg BW的LPS激發(fā)免疫應激,增加腸道SIgA含量,其中空腸SIgA含量在15 h有顯著增加。也有試驗發(fā)現(xiàn)經(jīng)LPS作用后腸道SIgA和IL-10含量會下降,可能的原因是LPS的劑量不同,激發(fā)免疫應答的效果也不一樣[27]。益生菌具有加強黏膜免疫作用。石夢玄[28]的試驗表明,預先口服雙歧桿菌BAA6能顯著提高結(jié)腸炎小鼠結(jié)腸組織IL-10含量,尤其高劑量組(1×1010CFU/mL)效果最佳。本試驗LPS灌服后,血清TNF-α、空腸黏膜SIgA和IL-10含量顯著增加,而凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI能下調(diào)血清TNF-α含量,但對空腸黏膜SIgA和IL-10的含量增強效果不顯著,從而凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI通過增強免疫功能緩解LPS對腸道的損傷。
圖3 蛋雛雞空腸黏膜TLR4和NF-κB的蛋白表達量
LPS是誘導TLR4信號通路的主要物質(zhì),其含量的增加能促使TLR4信號通路活化,產(chǎn)生一系列促炎因子,包括TNF-α、IL-1β等,從而誘導機體發(fā)生炎癥。TLR4和NF-κB是LPS作用后發(fā)生變化的主要信號物質(zhì),其中NF-κB是主要調(diào)控炎癥因子釋放的一種轉(zhuǎn)錄因子,當其進入到細胞核內(nèi),啟動轉(zhuǎn)錄程序后就會釋放大量炎癥因子,造成炎癥級聯(lián)放大反應[29-30],因此二者表達的改變能反映TLR4誘導的炎癥信號通路的變化,從而判斷炎癥發(fā)生程度。益生菌會抑制此通路基因表達,從而減少促炎因子產(chǎn)生,降低炎癥發(fā)生率。郝雅蓉等[31]通過實時熒光定量PCR測定TLR4和NF-κB的mRNA表達發(fā)現(xiàn),經(jīng)LPS處理的肉雞其肝臟中的TLR4/NF-κB的信號通路表現(xiàn)出較強活性,從而產(chǎn)生更多如白細胞介素-6(IL-6)等促炎因子,但益生菌處理過則能明顯抑制這條通路,降低炎癥因子產(chǎn)生的數(shù)量,緩解肝臟炎癥的發(fā)生。本試驗中,LPS能顯著上調(diào)蛋雛雞空腸黏膜TLR4和NF-κB的mRNA相對表達量和蛋白表達量,而凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI則會抑制此通路中這2種基因的mRNA相對表達量和蛋白表達量,因此,凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI可能是通過抑制TLR4/NF-κB信號通路的表達來減少促炎因子的生成,避免炎癥發(fā)生。
① LPS灌服蛋雛雞后會導致其腸道黏膜受到損害,提高血清DAO活性及D-Lac、TNF-α含量,同時會降低空腸黏膜MUC2、Occludin和ZO-1的mRNA相對表達量,啟動腸道黏膜免疫應答,激活TLR4/NF-κB信號通路。
② 連續(xù)飼喂凝結(jié)芽孢桿菌BC-HYI可下調(diào)TLR4/NF-κB信號通路中TLR4和NF-κBmRNA相對表達量和蛋白表達量,改善LPS灌服后的腸道損傷,提高蛋雛雞腸道健康。
致謝:
感謝北京農(nóng)學院動物科學技術(shù)學院童津津博士對文稿所提的寶貴意見。