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    非洲豬瘟病毒MGF505-3R蛋白的原核表達研究

    2022-02-23 05:19:40王鳳杰張芳毓王成宇張守峰扈榮良呂禮良王永志
    吉林畜牧獸醫(yī) 2022年1期

    王鳳杰,魏 天,張芳毓,王成宇,張守峰,扈榮良,呂禮良,王永志

    1.中國農業(yè)科學院長春獸醫(yī)研究所,吉林長春 130122;2.吉林省農業(yè)科學院,吉林長春 130124

    非洲豬瘟是由非洲豬瘟病毒引起的一種急性、熱性、高度接觸性傳染病,主要通過蜱傳播。該病以呼吸障礙,全身出血為主要臨床特征,病程短,發(fā)病率和死亡率高達100%。世界動物衛(wèi)生組織(OIE)將其列為法定報告疫病,我國將其列為一類傳染病。

    ASFV是非洲豬瘟病毒科、非洲豬瘟病毒屬的唯一成員,是由共價封閉的雙鏈DNA分子組成的具有線性基因組的二十面體DNA病毒,直徑為175~215 nm,基因組在170~193 kb之間,共編碼150~200個開放閱讀框(ORFs)。ASFV基因組中約30%的ORFs存在多個拷貝,即多基因家 族,包 括MGF100、MGF110、MGF300、MGF360、MGF505/530。其中MGF505基因家族包括MGF505-1R、MGF505-2R、MGF505-3R,它們在病毒的感染過程中發(fā)揮著重要作用。有研究表明MGF505與病毒的復制及毒力有關,敲除ASFV強毒株或弱毒株MGF505的某些基因,會大大降低病毒在巨噬細胞內的復制效率,除此之外,MGF505的編碼蛋白也可抑制正常I型干擾素的表達[1]。本研究成功構建出MGF505-3R重組質粒并在大腸桿菌中原核表達,純化后得到純度較高MGF505-3R重組蛋白,為MGF505蛋白的研究奠定了基礎,為ASFV MGF505基因缺失疫苗相關免疫學方面的鑒別檢測和診斷提供前期技術支持。

    1 材料

    1.1 質粒、ASFV陽性血清

    AFSV基因組DNA、ASFV陽性血清均由軍事醫(yī)學科學院軍事獸醫(yī)研究所保存。

    1.2 主要試劑

    ExTaq DNA聚合酶、DNA Marker、XhoⅠ限制性內切酶、EcoRⅠ限制性內切酶、In-fusion HD? Cloning kit連接試劑盒,均購自TaKaRa公司;兔抗鼠HRP-IgG,購自生工生物工程(上海)股份有限公司;IPTG異丙基-β-D-硫代半乳糖苷,購自長春飛凱生物有限公司;瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒,購自天根生化(北京)科技有限公司; Transetta(DE3)大腸桿菌感受態(tài)細胞,購自北京全式金生物技術有限公司。

    2 方法

    2.1 引物設計

    依據GenBank上非洲豬瘟病毒MGF505-3R(登錄號:NC_044959.1)基因序列,利用Lasergene 7.1設計具有酶切位點、His標簽和同源臂的特異性引物。

    引物序列:F5’-TGGGATCCCCGGAATTCATGTCCTC TTCTCTTCAGGAAC -3’,R5’-CGATGCGGCCGCTCGAGC TAGTGGTGGTGGTGGTGGTGGTGGTGGCTTTCCCAGGTTTCGA AG-3’。

    2.2 MGF505-3R基因的擴增、鑒定

    以軍事醫(yī)學科學院軍事獸醫(yī)研究所保存的非洲豬瘟基因全序列質粒為模板,PCR反應體系(20 μL):上、下游引物(10 pmol/μL)各1 μL,ExTaq DNA Polymerase Mix 10 μL,模板0.5 μL,加雙蒸水補至20 μL。反應條件為:95 ℃ 5 min;95 ℃ 30 s,60 ℃ 40 s,72 ℃ 40 s,共35個循環(huán);72 ℃ 5 min。用1%的瓊脂糖凝膠電泳對PCR產物進行鑒定。

    2.3 MGF505-13L原核表達載體的構建

    使用瓊脂糖凝膠DNA回收試劑盒回收2.2步驟的PCR產物。使用限制性內切酶Xho I和EcoR I酶切pGEX-6p-1原核表達載體并回收DNA。使用Super Fusion Cloning Mix(2×)連接酶將MGF505-3R基因片段和pGEX-6p-1原核表達載體連接。將連接好的重組質粒轉入Transetta(DE3)大腸桿菌感受態(tài)細胞,挑取單菌落經PCR初步驗證后,陽性克隆由吉林省庫美生物科技有限公司進行序列測定。

    2.4 MGF505-3R重組蛋白的原核表達及SDS-PAGE分析

    取50 μL MGF505-3R陽性菌液按1:1 000接種至5 mL LB液體培養(yǎng)基(氨芐青霉素100 μg/mL),37 ℃震蕩培養(yǎng)12~16 h;將擴增好的菌液按照1:100的比例加入LB液體培養(yǎng)基(氨芐青霉素100 μg/mL),37 ℃震蕩培養(yǎng)至OD=1時,加入IPTG至終濃度為1 mmol/L,37 ℃搖床震蕩誘導2 h。分別將誘導前后的菌液離心,用無菌水重懸菌體,冰水浴超聲破碎菌體,4 500 r/min 4 ℃離心15 min后收集上清液和沉淀。分別取80 μL上清液和沉淀與20 μL 5×SDS-PAGE蛋白上樣緩沖液混合,沸水浴5 min,冰水浴5 min,12 000 r/min 4 ℃ 離心2 min;取10 μL上清液和沉淀進行SDS-PAGE凝膠電泳檢測,考馬斯亮藍染色后分析目的蛋白的表達情況。

    2.5 MGF505-3R重組蛋白的純化

    通過SDS-PAGE分析顯示,MGF505-3R重組蛋白以包涵體形式表達。包涵體沉淀用1×PBST緩沖液洗滌后溶解于pH 8.0的8 mol/L尿素,12 000 r/min離心10 min收集上清液,上清液用0.45 μm濾膜過濾后加入已經平衡好的Ni-NTA瓊脂糖親和層析柱,流速1 mL/min,收集濾液,重復3次循環(huán)加入層析柱,用pH6.0的8 mol/L尿素洗滌雜蛋白,用pH4.0的8 mol/L尿素洗脫目的蛋白。將純化后的蛋白進行SDS-PAGE電泳檢測。通過BCA法測定蛋白濃度。

    2.6 Western-blot鑒定

    將純化后的重組蛋白凝膠轉印至PVDF膜,以5%脫脂奶粉封閉,使用1:5 000倍稀釋的ASFV陽性血清孵育1 h,洗滌5次;以HRP標記的兔抗鼠二抗1:10 000稀釋后孵育1 h,洗滌5次;加入DAB顯色,觀察重組MGF505-3R蛋白的反應原性。

    3 結果與分析

    3.1 PCR的檢測結果

    對MGF505-3R基因進行擴增,PCR產物用1% 的瓊脂糖凝膠電泳進行檢測,擴增片段與目的片段(843 bp)大小一致。

    3.2 原核表達載體的構建與測序鑒定

    將載體pGEX-6p-1酶切產物和MGF505-3R的PCR產物經In-fusion HD? Cloning kit連接試劑盒連接,轉化至Transetta(DE3)感受態(tài)細胞中。挑取單菌落PCR驗證,陽性克隆由庫美生物公司測序。測序結果使用seqman軟件分析,結果表明該序列與GenBank中收錄的MGF505-3R基因序列的相似性為99%,成功引入His標簽,且編碼框插入正確。

    3.3 MGF505-3R重組蛋白的原核表達及SDS-PAGE分析

    利用鑒定為陽性的MGF505-3R原核表達菌株進行原核誘導表達,超聲破碎菌體后進行SDS-PAGE電泳。結果顯示,MGF505-3R重組蛋白主要在沉淀中以包涵體的形式表達,蛋白條帶大小為53 ku符合預期值。

    3.4 MGF505-3R重組蛋白的純化及SDS-PAGE分析

    使用包涵體常規(guī)純化方式對MGF505-3R重組蛋白進行Ni-NTA瓊脂糖親和層析純化,獲得純度較高的目的條帶。

    3.5 Western-blot分析

    抗ASFV抗體與轉染到Pvdf膜上的MGF505-3R重組蛋白可以反應,以ASFV同樣具有GST和His雙標簽的重組P72蛋白為陽性對照,植物病毒蛋白為陰性對照,經DAB顯色后,在53 ku處有一條明顯特異性條帶,表明重組蛋白具有良好的表達活性。

    4 討論

    ASFV具有龐大的基因組,可編碼多種蛋白質,擁有十分復雜的免疫逃逸機制。MGFs約占ASFV基因組ORFs的30%,編碼的多個拷貝,為病毒提供了選擇進化的優(yōu)勢,盡管單個MGF基因的功能是未知的,但已有研究顯示MGF360和MGF505是促進感染細胞存活和抑制I型干擾素反應所必需的基因[2]。針對MGFs基因缺失疫苗的研究也是目前ASF疫苗研制的主要研究方向。

    原核表達系統(tǒng)是基因表達技術中發(fā)展最早,應用最廣泛的經典表達系統(tǒng),與其它表達系統(tǒng)相比,其優(yōu)點在于方法簡單、用時短、而且所需的成本低廉。但蛋白產物由于沒有真核生物的修飾,不一定具有天然的活性。蛋白也常以包涵體的形式表達,不易提取。本研究將目的基因克隆到原核表達載體pGEX-6p-1上,轉入表達菌株Transetta(DE3)中進行體外誘導表達,實現了目的基因的高效表達,但目的蛋白主要以包涵體形式表達,不具有生物學活性,除了與復性過程性質相關外,還與蛋白質本身特性有關。

    本實驗成功克隆出引入His標簽的MGF505-3R基因片段,以pGEX-6p-1為載體構建出帶有GST、His雙標簽的MGF505-3R重組質粒,原核表達并純化,獲得純度較高的MGF505-3R重組蛋白,Western-blot對重組蛋白進行血清學分析,檢測出其具有良好的表達活性。本實驗為MGF505蛋白的后續(xù)研究打下了基礎,為ASFV MGF505基因缺失疫苗相關免疫學方面的檢測提供前期技術儲備。

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