張佳睿,張丹丹,李佳樂,李晨陽,楊鎮(zhèn)才,李珊珊,劉麗杰,李波
(齊齊哈爾大學 1.生命科學與農(nóng)林學院,2.抗性基因工程與寒地生物多樣性保護黑龍江省重點實驗室,黑龍江 齊齊哈爾 161006)
紫花苜蓿(Medicago sativaL.)是豆科重要的牧草,其具有極強的適應能力及生態(tài)功能,對我國生態(tài)環(huán)境的建設及改善具有積極作用[1].我國對苜蓿的應用主要集中在上游產(chǎn)業(yè),對其次生代謝產(chǎn)物的生物學功能活性研究相對較少.隨著研究人員對紫花苜蓿的深入研究,人們對其營養(yǎng)價值有了一定的了解,以苜蓿為原料的食品和保健品逐漸被人們所接受.作為畜牧業(yè)及養(yǎng)殖業(yè)的優(yōu)質(zhì)飼草,紫花苜蓿在生長過程中會積累皂苷、黃酮類、香豆素等多種次生代謝產(chǎn)物[2],主要儲藏在苜蓿的莖、葉、根等部位.在對紫花苜蓿的開發(fā)利用中,目前從中提取出的黃酮類化合物已高達50 余種,所表現(xiàn)出來的生理、藥理活性也與其含有較多的黃酮類化合物密切相關(guān)[3].
黃酮類化合物結(jié)構(gòu)復雜,種類較多,各種植物中的黃酮類物質(zhì)具有較大差異[4-5].依據(jù)黃酮類化合物的特點可選擇相應的提取方法,常用的提取方法有浸提法、回流提取法、超聲波輔助提取法、微波輔助提取法等[6-8].其中,微波輔助提取法是微波與有機溶劑萃取相結(jié)合的產(chǎn)物,利用電磁加熱原理,使微波穿透有機溶劑,直接作用于萃取材料,提高植物活性物質(zhì)的萃取效率.微波輔助提取法提取效率高、速度快、對植物活性物質(zhì)的產(chǎn)物得率較高[9],可有效保存食品、藥品及其它物料中的有效成分.微波提取過程受物料比、乙醇體積分數(shù)、微波功率、微波提取時間等不同因素的影響.本文以龍牧801 紫花苜蓿干粉為材料,設計單因素和正交實驗,優(yōu)化微波輔助提取苜蓿總黃酮工藝,為開發(fā)利用苜蓿提供理論依據(jù).
以龍牧801紫花苜蓿為原材料,于盛花期收割其地上部分,置于避光通風處自然陰干,篩去砂礫、草棒、枯草等雜質(zhì),陰干后用高速多功能粉碎機將干草粉碎成草粉,置于密封盒內(nèi)避光備用.
高速多功能粉碎機(YB-1500A,永康市速鋒工貿(mào)有限公司);紫外可見分光光度計(TU-1810,北京普析通用儀器有限責任公司);微波爐(S7G88C,蘇州三星電子有限公司);旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(RE-52AA,上海亞榮生化儀器廠);全溫振蕩搖床(ZD-88,常州金壇中旺儀器制造有限公司);循環(huán)水真空泵(SHZ-DⅢ,鞏義市予華儀器有限責任公司).
蘆丁標準品(上海源葉生物科技有限公司);石油醚(60~90℃,遼寧泉瑞試劑有限公司);無水乙醇,氫氧化鈉,亞硝酸鈉,九水硝酸鋁(天津市天力化學試劑有限公司).以上試劑均為分析純(AR).
以蘆丁為標準品,配制不同質(zhì)量濃度標準液,以NaNO2-Al(NO3)3為顯色劑,在λ=510 nm測定吸光度,以蘆丁質(zhì)量濃度為x軸,吸光度為y軸,通過繪制的標準曲線獲得回歸方程為A=13.893C-0.005 9(R2=0.997 3),總黃酮在質(zhì)量濃度為0.008~0.048 mg/mL時有良好的線性關(guān)系.
2.2.1 基本實驗條件 物料比1∶30,乙醇體積分數(shù)50%,微波功率800 W,微波提取時間30 s.
2.2.2 每個單因素設計 選取4 個單因素(物料比、乙醇體積分數(shù)、微波功率、微波提取時間),每個單因素設置5 個水平,其中物料比(g∶mL)為1∶10,1∶20,1∶30,1∶40,1∶50;乙醇體積分數(shù)為40%,50%,60%,70%,80%;微波功率為180,300,450,600,800 W;微波提取時間為10,20,30,40,50 s.每組單因素實驗獨立重復3 次.
2.2.3 正交實驗設計 依據(jù)單因素實驗結(jié)果,每個因素選擇3 個水平,按L9(34)正交實驗表進行設計(見表1),得出優(yōu)選因素組合,確定微波輔助法提取紫花苜??傸S酮最優(yōu)工藝.
表1 正交實驗因素和水平
按照設定的物料比加入一定體積分數(shù)的乙醇,在室溫、120 r/min條件下震蕩浸泡1 h,使苜蓿中總黃酮類物質(zhì)充分溶出,浸泡完畢后進行微波處理.在微波爐轉(zhuǎn)盤中央放置一個裝有適量自來水的大燒杯用于吸熱,將裝有待提取樣本的三角瓶圍繞大燒杯周圍依次擺放,按照設定好的參數(shù)進行微波處理,每次微波處理10 s后將三角瓶取出,降至室溫后再進行下一次微波處理,直至達到規(guī)定時間,每組處理3次重復.過濾得浸提液,將浸提液加入等體積的石油醚萃取,再用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀進行減壓蒸發(fā)至膏狀物,用體積分數(shù)60%的乙醇重新定容至50 mL,取5mL置容量瓶中,再按照標準曲線的繪制方法進行顯色和OD值測定.
依據(jù)回歸方程計算樣品中總黃酮提取量,Y=cVn m,其中:c為總黃酮的質(zhì)量濃度(mg·mL-1);V為總黃酮提取液的體積(mL);n為提取液稀釋的倍數(shù);m為苜蓿草粉的質(zhì)量(g).
準確稱取1.00 g 備用苜蓿干粉4份,以最佳工藝進行驗證實驗,測其吸光度,并計算總黃酮提取量.
采用Excel2010對數(shù)據(jù)進行整理,SPSS19.0分析軟件對各測定數(shù)據(jù)進行方差分析(ANOVA).
微波輔助提取法對苜蓿總黃酮的單因素實驗結(jié)果見圖1.由圖1可見,隨著物料比、乙醇體積分數(shù)、微波功率和微波提取時間的增加,苜??傸S酮提取量均呈現(xiàn)先增加后降低的變化趨勢.
圖1 微波輔助提取的4個因素對苜??傸S酮提取量的影響
當物料比從1∶10 增加至1∶20 時,苜蓿總黃酮提取量快速上升,物料比超過1∶20時,總黃酮提取量趨于平緩,當物料比達到1∶30 時,苜??傸S酮提取量最高,為2.245 mg·g-1.繼續(xù)增加物料比時,由于提取溶劑的增加降低了苜??傸S酮的提取量,可能是細胞液對微波能量吸收減少,微波作用力變?nèi)鮗10],導致細胞破裂不完全,總黃酮提取量下降.物料比1∶10,1∶50 苜??傸S酮提取量與物料比1∶20,1∶30,1∶40之間苜蓿總黃酮提取量比較差異顯著(P<0.05).
在乙醇體積分數(shù)在40%~80%范圍內(nèi),總黃酮提取量呈現(xiàn)先平穩(wěn)緩慢增長,后劇烈下降的趨勢.當乙醇體積分數(shù)小于60%時,總黃酮提取量無明顯差異,在乙醇體積分數(shù)為60%時,苜??傸S酮提取量達最大值,為2.050 mg·g-1.繼續(xù)升高乙醇濃度,苜??傸S酮提取量迅速下降,可能是過高的乙醇體積分數(shù)影響一些黃酮類成分的溶解性[11].40%,50%,60%與70%,80%苜蓿總黃酮提取量比較差異顯著(P<0.05).
微波功率在300~450 W 時,苜??傸S酮提取量提高尤為明顯,總黃酮提取量峰值出現(xiàn)在微波功率450 W條件下,最高提取量為1.789 mg·g-1.當微波功率大于450 W 時,苜??傸S酮提取量逐漸下降,微波功率過高,會導致某些黃酮類結(jié)構(gòu)的變性或者降解[12],使總黃酮提取量降低.除微波功率為450 與600 W,180與800 W,300 與600 W 外,其它各處理間苜??傸S酮提取量比較差異顯著(P<0.05).
當微波提取時間為10~30 s 時,隨著微波提取時間的延長,苜??傸S酮的提取量迅速提高,在微波提取時間為30 s 時,苜蓿總黃酮提取量最高,為1.916 mg·g-1.但繼續(xù)延長微波提取時間,苜??傸S酮提取量反而下降,可能是隨著微波提取時間的延長增加了其它非黃酮類化合物的溶出[13],影響了總黃酮提取量.除20 與50 s 微波提取時間外,其它各微波提取時間內(nèi)苜??傸S酮提取量比較差異顯著(P<0.05).
根據(jù)微波輔助提取法的單因素實驗結(jié)果進行正交實驗,結(jié)果見表2.極差(R)值越小該因素對苜??傸S酮提取量的影響程度越小,R值越大該因素對苜??傸S酮提取量的影響越大,影響苜蓿總黃酮提取量的4 因素R值大小依次為C>D>B>A,即微波功率的影響最大,其次為微波提取時間、乙醇體積分數(shù)和物料比.由方差(K)值大小可知,當物料比為1∶30、乙醇體積分數(shù)為60%、微波功率為450 W 和微波提取時間40 s 時提取效果最好,從而得出最佳提取工藝為A2B3C2D3.綜合分析得出微波輔助法提取苜??傸S酮最佳工藝水平組合為物料比1∶30、乙醇體積分數(shù)60%、微波功率為450 W、微波提取時間40 s.
表2 微波輔助法正交實驗結(jié)果分析
采用正交實驗分析軟件對正交實驗結(jié)果進行方差分析,結(jié)果見表3.由表3 可見,物料比、乙醇體積分數(shù)、微波功率和微波提取時間對苜??傸S酮提取量的影響均達到顯著水平.
表3 苜??傸S酮提取量正交實驗方差結(jié)果分析
在正交實驗最佳組合提取工藝條件下進行4 次平行穩(wěn)定性實驗.準確稱取1 g 苜蓿干粉末,以物料比1∶30,乙醇體積分數(shù)60%,微波功率為450 W,微波提取時間40 s 進行微波輔助提取,測定結(jié)果見表4.在最佳組合工藝提取條件下,4 次驗證實驗結(jié)果接近,且高于單因素及正交實驗中的總黃酮提取量,苜??傸S酮的平均提取量為2.179 mg·g-1,說明微波輔助法提取苜蓿中總黃酮的優(yōu)化工藝穩(wěn)定可靠.
表4 微波輔助提取法穩(wěn)定性實驗結(jié)果
植物生長發(fā)育過程產(chǎn)生的次生代謝產(chǎn)物大量存在于根、莖、葉等器官中,這些產(chǎn)物的含量直接影響對其開發(fā)和利用.黃酮類物質(zhì)屬于植物次生代謝產(chǎn)物的一種,近年來,關(guān)于植物中黃酮類化合物的提取研究得到了長足的發(fā)展,多采用微波輔助、超聲波輔助和響應面等提取法提高黃酮類化合物的提取效率[14].
前人在利用微波輔助提取黃酮類化合物時,對影響黃酮類化合物提取效率的各單因素進行了不同水平的比較,在此基礎上對各因素的互作效率進行正交實驗,優(yōu)化黃酮類化合物的提取工藝.有關(guān)苜??傸S酮提取的工藝研究中,普遍認為微波輔助提取法提取紫花苜蓿總黃酮的提取效率較高,但不同研究者在物料比、乙醇體積分數(shù)、微波功率、微波提取時間等因素對黃酮提取量的影響研究上略有差異.張詠梅[15]等通過單因素實驗和正交實驗的方法,優(yōu)化微波輔助提取紫花苜??傸S酮的提取工藝,認為影響提取量的主要因素是物料比和乙醇濃度,在最優(yōu)工藝下(1∶30物料比,40%乙醇體積分數(shù),微波功率500 W,作用時間60 s)的總黃酮提取量為4.88 mg·g-1.與本文在微波輔助提取苜??傸S酮的影響因素的結(jié)果存在差異,物料比、乙醇體積分數(shù)、微波功率、微波提取時間均顯著影響苜??傸S酮提取量,其中微波功率的影響最大;但在最優(yōu)提取工藝上物料比和微波功率的篩選上基本一致,乙醇體積分數(shù)和微波處理時間上略有差異,導致本研究苜??傸S酮量低的原因可能是材料的選擇和微波處理功率方面.實驗研究可為紫花苜蓿資源利用方面提供有價值的參考依據(jù).
在微波輔助提取苜??傸S酮時,物料比、乙醇體積分數(shù)、微波功率、微波提取時間均對苜??傸S酮提取量產(chǎn)生顯著影響,微波功率>微波提取時間>乙醇體積分數(shù)>物料比.最佳提取工藝為:物料比1∶30、乙醇體積分數(shù)60%、微波功率450 W、微波提取時間40 s,此工藝條件下苜蓿總黃酮提取量為2.179 mg·g-1,提取工藝穩(wěn)定.