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    共表達(dá)H7N9 M2 蛋白和H5N1 HA 蛋白的流感病毒樣顆粒的制備

    2022-01-13 08:02:26張風(fēng)衛(wèi)王珊珊周紅娟商學(xué)釵蔡龍

    張風(fēng)衛(wèi) 王珊珊 周紅娟 商學(xué)釵 蔡龍

    浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬杭州市胸科醫(yī)院臨床醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)實(shí)驗(yàn)中心 310003

    近年來(lái), 流感病毒跨物種感染成為流感防疫工作面臨的新挑戰(zhàn),對(duì)人類(lèi)健康造成重大影響[1-2]。接種疫苗是目前預(yù)防流感發(fā)生與傳播的最有效方法,但由于流感病毒表面蛋白易發(fā)生抗原漂移、重配,變異的流感病毒極易逃避免疫系統(tǒng)記憶,導(dǎo)致疫苗失效[3],因此研制一種能夠應(yīng)對(duì)流感病毒快速變異的廣譜疫苗迫在眉睫。 近年來(lái),以M2 蛋白為基礎(chǔ)的廣譜疫苗逐漸成為研究的熱點(diǎn)[4-8]。M2 蛋白在所有A 型流感病毒中非常保守, 可誘導(dǎo)產(chǎn)生CTL,在反應(yīng)中具有交叉保護(hù)能力,其作為流感廣譜疫苗的成分進(jìn)行研究具有潛在的意義和應(yīng)用前景。 本研究擬利用基因工程技術(shù),將禽流感H7N9流感病毒特異性抗原M2 蛋白作為基礎(chǔ)蛋白,與高致病性禽流感H5N1 亞型膜蛋白HA 共表達(dá),制備一種新型流感相關(guān)病毒樣顆粒(VLPs),為廣譜疫苗研究提供參考。

    材料與方法

    一、材料

    昆蟲(chóng)細(xì)胞Sf9 及培養(yǎng)基、大腸埃希菌DH10Bac、轉(zhuǎn)移載體 pFastDual、 桿粒轉(zhuǎn)染試劑 Cellfectin ⅡReagent 和轉(zhuǎn)染試劑 LipofectamineTM2000 購(gòu)自Invitrogen 公司; 含 H5N1 的 HA 編碼序列的質(zhì)粒pVRC-H5N1 HA 由浙江大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬杭州市胸科醫(yī)院臨床醫(yī)學(xué)檢驗(yàn)實(shí)驗(yàn)中心保存; 含H7N9 M2基因的A 型流感病毒H7N9 M2 質(zhì)粒購(gòu)自北京義翹神州科技有限公司;DNA Ligation Kit Ver.2.1, 限制性 內(nèi) 切 酶 EcoR Ⅰ 、Hind Ⅲ 、Kpn Ⅰ 、Xho Ⅰ 購(gòu) 自TAKARA 公司; 質(zhì)粒提取試劑盒購(gòu)自TIANGEN 公司; 桿粒提取試劑盒購(gòu)自碧云天公司; 引物由Invitrogen 公司合成。

    二、研究方法

    1.重組穿梭載體的構(gòu)建

    重組穿梭載體pFastBac Dual-H5N1 HA 的構(gòu)建:設(shè)計(jì)引物,引物序列:F:5'-CCGGAATTCATGGA GAAAATAGTGCTTCT-3',R:5'-ACCAAGCTTTTA AATGCAAATTCTGCATT-3', 以 pVRC-H5N1 HA 質(zhì)粒為模板,PCR 擴(kuò)增 HA 基因, 將 HA 基因克隆至pFastDual 的EcoRⅠ、HindⅢ位點(diǎn)之問(wèn),得到重組穿梭載體pFastBac Dual-H5N1 HA。

    重組穿梭載體pFastDual-H5N1 HA-H7 M2 的構(gòu)建:設(shè)計(jì)引物,引物序列:F:5'-CCGCTCGAGATG AGTCTTCTAACCGAGGT-3',R:5'-CGGGGTACCT TACTTCAGCTCTATGTTGA-3', 以 A 型流 感 病 毒H7N9 M2 質(zhì)粒為模板,PCR 擴(kuò)增 H7N9 M2(H7 M2)基因, 將M2 基因克隆在載體pFastBac Dual p10 啟動(dòng)子下的XhoⅠ、KpnⅠ位點(diǎn)之間,即得到重組穿梭質(zhì)粒pFastBac Dual-H5N1 HA-H7 M2。

    2. 重組桿狀病毒表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建及鑒定

    轉(zhuǎn)座構(gòu)建重組桿狀病毒質(zhì)粒DNA H5N1 HAH7 M2 Bacmid: 參照 Invitrogen 公司的 Bac-to-Bac桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)技術(shù)手冊(cè),將構(gòu)建好的穿梭載體pFastBac Dual-H5N1 HA-H7 M2、pFastBac Dual 空載體(陰性對(duì)照)轉(zhuǎn)化DH10Bac 感受態(tài)細(xì)胞,經(jīng)過(guò)含有卡那霉素(50 μg/mL)、慶大霉素(7 μg/mL)、四環(huán)素(10 μg/mL)、X-gal(100 μg/mL)和 IPTG(40 μg/mL)的LB 藍(lán)白斑篩選平板篩選后, 再經(jīng)含有卡那霉素(50 μg/mL)、慶大霉素(7 μg/mL)和四環(huán)素(10 μg/mL)LB 培養(yǎng)基擴(kuò)大培養(yǎng), 用碧云天公司的桿粒提取試劑盒提取重組桿狀病毒質(zhì)粒H5N1 HA-H7 M2 Bacmid、control Bacmid(陰性對(duì)照)。

    重組桿狀病毒質(zhì)粒通過(guò)Bac-to-Bac 系統(tǒng)操作手冊(cè)推薦的通用引物(pUC/M13 F + pUC/M13 R)進(jìn)行PCR 擴(kuò)增鑒定。

    3. 重組病毒以及假病毒顆粒的制備

    Sf9 細(xì)胞用含10%胎牛血清的Grace’s 培養(yǎng)基貼壁培養(yǎng), 用含無(wú)血清的Sf-900 ⅢSFM 培養(yǎng)基懸浮培養(yǎng)。 參考Invitrogen 公司的CellfectinⅡReagent轉(zhuǎn)染試劑說(shuō)明, 將重組桿狀病毒質(zhì)粒H5N1 HA-H7 M2 Bacmid、control Bacmid (陰性對(duì)照) 轉(zhuǎn)染 Sf9 細(xì)胞,5 d 后收集細(xì)胞培養(yǎng)上清,即獲得重組桿狀病毒H5N1 HA-H7 M2 Baculoviruses(H5-M2 Bv)、control Baculoviruses(cBv)。

    借助本實(shí)驗(yàn)室流感假病毒包裝技術(shù)[3],將pcDNA-Gag-pol、 pcDNA-GFP 和 pVRC-H5N1 HA三種質(zhì)粒在lipofect 2000 脂質(zhì)體介導(dǎo)下共轉(zhuǎn)染HEK 293/17 細(xì)胞, 培養(yǎng) 36~48 h 后收集上清,經(jīng)0.45 μmol/L 濾器過(guò)濾后即為只包含HA 膜蛋白的H5N1 HA 假病毒顆粒(H5N1 HA pp)。

    4. H5-M2 Bv 滴度檢測(cè)及富集

    參照Invitrogen 公司的Bac-to-Bac 桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)操作說(shuō)明,重組桿狀病毒質(zhì)粒在Cellfectin ⅡReagent 介導(dǎo)下轉(zhuǎn)染對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的Sf9 細(xì)胞, 培養(yǎng)5~7 d,待細(xì)胞出現(xiàn)感染病變(CPE)后收集上清液,獲得初代重組桿狀病毒(P0),測(cè)定滴度。 按病毒感染復(fù)數(shù)(MOI)值為0.1 感染懸浮培養(yǎng)的Sf9 細(xì)胞,72 h后收集上清,即為 1 代病毒(P1);再次用 MOI=0.1的P1 代病毒感染Sf9 細(xì)胞,72 h 后收集上清, 即為富集的2 代病毒(P2),測(cè)定病毒滴度備用。

    5. 紅細(xì)胞凝集活性檢測(cè)

    在96 孔U 型底血凝板上自左至右各孔加50 μL磷酸緩沖液 (PBS)。 自左側(cè)第 1 孔加 50 μL 病毒液(P3 代病毒上清及濃縮純化病毒,以H5N1 流感假病毒顆粒為陽(yáng)性對(duì)照),混勻后,吸50 μL 至第2孔,依次倍比稀釋至第11 孔,混勻后吸取棄掉50 μL;第12 孔只加入為紅細(xì)胞對(duì)照。 最后,自右至左依次向各孔加入1%火雞紅細(xì)胞懸液50 μL, 振蕩均勻后,室溫下靜置30 min 后觀察血凝結(jié)果。

    6. Western 印跡鑒定重組蛋白

    VLPs 中蛋白的表達(dá)檢測(cè): 用富集的重組桿狀病毒 HA-M2 Bv、cBv 分別感染 Sf9 細(xì)胞 (MOI=10),28 ℃培養(yǎng) 72 h,取懸液 5 000×g 離心 10 min以去除細(xì)胞碎片,收獲病毒液上清;取適量病毒液上清加入 5× PEG-8000 NaCl 溶液, 每 20 分鐘上下顛倒混合一次,共混合3~5 次,4 ℃放置過(guò)夜。第2 天取出,4 ℃,10 000×g 離心 50 min。 吸棄上清,加入適量的蛋白裂解液重懸病毒顆粒沉淀。 取適量裂解液行Western 印跡試驗(yàn),分別用H5N1 HA、H7N9 M2 一抗檢測(cè) H5N1 HA、H7N9 M2 蛋白的表達(dá)。

    昆蟲(chóng)細(xì)胞中的蛋白表達(dá)檢測(cè): 感染后的Sf9 細(xì)胞用細(xì)胞裂解液處理后,10 000 × g 離心 10 min,獲得細(xì)胞裂解液上清, 取細(xì)胞裂解液行Western 印跡試驗(yàn), 分別用H5N1 HA、H7N9 M2 一抗檢測(cè)H5N1 HA、H7N9 M2 蛋白的表達(dá)。

    7. 電鏡觀察VLPs

    取適量PEG8000 濃縮純化的VLPs, 適當(dāng)稀釋后取少量滴在支持膜的銅網(wǎng)上, 使用加速電壓為80 kV 的透射電子顯微鏡 (TECNAI 12, FEI,Blackwood, NJ)觀察 VLPs。

    結(jié) 果

    一、 重組桿狀病毒質(zhì)粒 H5N1 HA-H7 M2 Bacmid 的構(gòu)建和鑒定結(jié)果

    重組桿狀病毒質(zhì)粒H5N1 HA-H7 M2 Bacmid的構(gòu)建示意圖如圖1所示。 穿梭質(zhì)粒pFastDual-H5N1 HA-H7 M2 轉(zhuǎn)化大腸埃希菌 DH10Bac,經(jīng)LB藍(lán)白斑篩選平板篩選,白色克隆為轉(zhuǎn)座成功的陽(yáng)性菌落,如圖1所示。 重組桿狀病毒質(zhì)粒經(jīng)PCR 擴(kuò)增鑒定,PCR 產(chǎn)物經(jīng)1%的瓊脂糖凝膠電泳分析顯示,大小為4 558 bp,如圖1,可用于轉(zhuǎn)染Sf 9 細(xì)胞。

    圖1 重組桿狀病毒質(zhì)粒H5N1 HA-H7 M2 Bacmid 的構(gòu)建與鑒定

    二、 重組桿狀病毒H5-M2 Bv 滴度測(cè)定結(jié)果及Western 印跡鑒定重組蛋白

    初代H5-M2 Bv 滴度約為106~107pfu/mL,病毒經(jīng)過(guò)兩輪富集后滴度達(dá)到108pfu/mL 以上。HA-M2 Bv感染Sf9 細(xì)胞,72 h 后取細(xì)胞及上清鑒定H5N1 病毒 HA 和 H7N9 病毒 M2 蛋白的表達(dá)。 經(jīng) H5N1 HA抗體檢測(cè), 在相對(duì)分子質(zhì)量為72 000~80 000 處有特異條帶,HA1 蛋白大小約 50 000,HA2 蛋白大小約30 000; 病毒液上清中也可以檢測(cè)到與HA 抗體特異結(jié)合的蛋白帶 (略小于細(xì)胞裂解液中的蛋白大小),陰性對(duì)照組(cBv 感染組)在相同位置無(wú)特異帶(圖2);H7N9 M2 抗體檢測(cè)發(fā)現(xiàn), 在 10 000~15 000 處有特異條帶,收集的細(xì)胞裂解液及病毒液上清中可以檢測(cè)到特異性條帶,而陰性對(duì)照在相同位置無(wú)特異帶(圖2)。

    圖2 重組桿狀病毒蛋白的蛋白印跡鑒定

    三、VLPs 血凝活性檢測(cè)

    將收獲的P3 代病毒液上清及富集的VLPs 上清行紅細(xì)胞血凝試驗(yàn), 觀察到P3 代病毒液上清VLPs 有與流感H5N1 假病毒顆粒相近的血凝活性。

    四、流感VLPs 的形態(tài)觀察

    通過(guò)透射電鏡觀察, 在富集的VLPs 上清液中存在形態(tài)不規(guī)則、大小與流感病毒相似的病毒樣顆粒,以圓形和橢圓形為主,直徑70~80 nm(圖3)。

    圖3 病毒樣顆粒透射電鏡圖(×59 000)

    討 論

    VLPs 可作為一種新型流感疫苗, 與傳統(tǒng)禽流感疫苗生產(chǎn)方法相比,它具有諸多優(yōu)勢(shì)[9-13]:(1)產(chǎn)生的病毒顆粒本身不具有傳染性, 生物安全性高;(2) 采用體外細(xì)胞培養(yǎng)技術(shù)制備, 產(chǎn)能高;(3)VLPs 可以以天然構(gòu)象和模式提呈抗原,能誘導(dǎo)較強(qiáng)的體液免疫和細(xì)胞免疫。 在本研究中,借助Bac-to-Bac 桿狀病毒系統(tǒng)在Sf9 昆蟲(chóng)細(xì)胞中表達(dá)了2 株禽流感病毒的部分結(jié)構(gòu)蛋白: 高致病性禽流感H5N1血凝素HA 蛋白和禽流感H7N9 M2 結(jié)構(gòu)蛋白。通過(guò)電鏡觀察發(fā)現(xiàn)上清存在類(lèi)似流感病毒的顆粒,說(shuō)明來(lái)自2 株亞型流感病毒的結(jié)構(gòu)蛋白可以重配組裝成流感VLPs。 Western 印跡試驗(yàn)同樣證明了2 種結(jié)構(gòu)蛋白在Sf9 細(xì)胞及其上清中的表達(dá),H5N1 HA 在昆蟲(chóng)細(xì)胞中同樣可以成功將HA0 前體切割為為HA1 和HA2 二聚體, 并沒(méi)有影響病毒顆粒的成功包裝, 而且包裝出的VLP 具有一定的生物活性,比如可以使紅細(xì)胞發(fā)生凝集。 此外,本研究使用了本實(shí)驗(yàn)室流感假病毒包裝平臺(tái)技術(shù)制作的高致病性禽流感假病毒顆粒作為對(duì)照[14-15],相比之下,通過(guò)昆蟲(chóng)細(xì)胞表達(dá)的VLP 在蛋白表達(dá)及血凝試驗(yàn)中表現(xiàn)出了與禽流感假病毒相似的生物活性。

    綜上,本研究中來(lái)自2 株亞型禽流感的結(jié)構(gòu)蛋白可以通過(guò)桿狀病毒表達(dá)系統(tǒng)在昆蟲(chóng)細(xì)胞中組成成熟的流感VLPs,且表達(dá)的結(jié)構(gòu)具有與流感病毒相似的生物活性。 今后可基于此項(xiàng)研究探索多株禽流感病毒抗原蛋白的VLP 疫苗的制備,并進(jìn)行相關(guān)動(dòng)物試驗(yàn)驗(yàn)證, 以期望制備一種有效的廣譜禽流感VLP 疫苗,用于禽流感的防治。

    利益沖突所有作者均聲明不存在利益沖突

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