張 銘,梁軍,2*,李箐,謝憲,程元,張星耀,2
(1.中國(guó)林業(yè)科學(xué)研究院森林生態(tài)環(huán)境與保護(hù)研究所,國(guó)家林業(yè)和草原局森林保護(hù)學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100091;2.昆崳山森林生態(tài)系統(tǒng)國(guó)家定位觀測(cè)研究站,山東 煙臺(tái) 264100;3.北京市西山林場(chǎng),北京 100083)
松枯梢病(又名松梢枯病shoot blight of pine)是世界范圍內(nèi)針葉樹(shù)種上分布最廣、最常見(jiàn)的重要林木枝干病害之一[1]。自從我國(guó)自20 世紀(jì)70 年代末報(bào)道以來(lái),松枯梢病已蔓延至黑龍江、吉林、遼寧、陜西、江蘇、湖北、福建、安徽、江西、廣東和廣西等10 余個(gè)省份[2],嚴(yán)重危害松屬(Pinus)、冷杉屬(Abies)、落葉松屬(Larix)、崖柏屬(Thuja)、雪松屬(Cedrus)、刺柏屬(Juniperus)、云杉屬(Picea)和黃杉屬(Pseudotsuga)約8 屬60 多種針葉樹(shù)種[3]。該病害病原存在基因型的分化,De Wet 通過(guò)多基因系譜學(xué)和微衛(wèi)星標(biāo)記手段將松枯梢病原菌劃分為3 個(gè)不同類型,分別為A 型Diplodia scrobiculata,B 型Diplodia seriata和C 型Sphaeropsis sapinea(同物異名:Diplodia pinea)[4]。在中國(guó)引起松枯梢病的病原菌是C 型松球殼孢菌(Sphaeropsis sapinea)[5],該病原菌可危害大樹(shù)和幼樹(shù),大樹(shù)多為側(cè)枝發(fā)病,小樹(shù)上頂梢發(fā)病,導(dǎo)致頂芽枯死、枯梢、根腐,嚴(yán)重時(shí)會(huì)出現(xiàn)流脂現(xiàn)象[6],對(duì)松樹(shù)人工林造成了嚴(yán)重危害。目前,對(duì)松枯梢病主要采取化學(xué)防治與營(yíng)林措施相結(jié)合的防治技術(shù)[7]。但長(zhǎng)期使用化學(xué)農(nóng)藥不僅會(huì)導(dǎo)致環(huán)境污染、農(nóng)藥殘留、威脅人類健康,而且容易誘導(dǎo)病原菌產(chǎn)生抗藥性[8],甚至?xí)?dǎo)致病害的再次流行。而營(yíng)林措施見(jiàn)效慢,投入成本較大。為有效防控松枯梢病,必須尋求一種生態(tài)友好的防治策略,木霉菌由于特有的拮抗和促生作用,現(xiàn)已成為一類應(yīng)用較多的生防真菌[9],它通過(guò)競(jìng)爭(zhēng)、寄生或產(chǎn)生抗菌素等次生代謝產(chǎn)物,從而對(duì)病原菌起到抑制作用[10],并能促進(jìn)植物生長(zhǎng)[11],提高寄主抵抗性。常見(jiàn)的生防木霉有哈茨木霉(Trichoderma harzianum)、綠色木霉(T.viride)、棘孢木霉(T.asperellum)等。研究表明,哈茨木霉ES323可有效抑制番茄灰霉病菌灰葡萄孢菌菌絲生長(zhǎng),引起菌絲腔質(zhì)液泡化并導(dǎo)致菌體裂解[12]。非洲哈茨木霉菌(Trichoderma afroharzianum)株NAIMCC-F-01938 發(fā)酵液可使葡萄白粉病原菌分生孢子扭曲變形,可作為安全殺菌劑在田間使用,可使葡萄白粉病發(fā)病率降低43%[13]。接種棘孢木霉可使洋蔥鱗莖內(nèi)酚類化合物含量提高97.6%,提高了洋蔥對(duì)葉枯病的抵御能力,對(duì)洋蔥葉枯病病原菌Stemphylium vesicarium具有顯著的防控效果[14]。內(nèi)生木霉菌株V76-12 可抑制油棕葉斑病原菌Curvularia oryzae菌絲生長(zhǎng),同時(shí)提高了油棕幼苗苯丙氨酸解氨酶PAL、過(guò)氧化物酶POD 和多酚氧化酶PPO 的活性[15],提高了寄主植物的抗性。在前期的研究中,本實(shí)驗(yàn)室以松枯梢病原松球殼孢菌(Sphaeropsis sapinea)為目標(biāo)菌株,從土壤真菌中分離篩選到1 株對(duì)松球殼孢菌具有良好抑菌效果的森吉木霉菌株M75。為明確森吉木霉M75 對(duì)松球殼孢菌的抑制作用機(jī)理,本研究從森吉木霉M75 對(duì)病原菌代謝系統(tǒng)酶活性和電導(dǎo)率、丙二醛含量等方面,探究生防菌森吉木霉M75 發(fā)酵粗提液對(duì)松球殼孢菌的抑菌機(jī)制,為松枯梢病的生物防治提供理論依據(jù)。
松球殼孢菌(Sphaeropsis sapinea)由中國(guó)林業(yè)科學(xué)研究院森林保護(hù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室菌種保藏中心提供。森吉木霉M75 由本實(shí)驗(yàn)室分離篩選獲得,現(xiàn)保藏于中國(guó)林業(yè)微生物菌種保藏管理中心,保藏編號(hào):CFCC54490。
1.2.1 森吉木霉M75粗提液制備將保藏的M75菌株接種于PDA 培養(yǎng)基上,28℃活化5 d,用打孔器選取直徑5 mm 菌餅,接入裝有250 mL PDB 培養(yǎng)液的三角瓶中,180 r·min?1、28 ℃振蕩培養(yǎng)4 d,10000 r·min?14℃離心10 min,取上清經(jīng)0.45 μm 無(wú)菌微孔濾膜過(guò)濾,得到發(fā)酵粗提液,于4 ℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.2 松球殼孢菌菌絲團(tuán)制備 將保藏的松球殼孢菌菌株接種于PDA 培養(yǎng)基上,28 ℃活化5 d,用打孔器選取直徑5 mm 菌餅,接入裝有250 mL PDB 培養(yǎng)液的三角瓶中,160 r·min?1、28 ℃振蕩培養(yǎng)3~4 d,將產(chǎn)生的直徑約為2 cm 的病原菌菌絲團(tuán)用無(wú)菌水洗凈后置于20 mL 含20%發(fā)酵粗提液的無(wú)菌水溶液中,靜置2、4、6、8、10、12、24、48、72、96 h 后測(cè)定松球殼孢菌各項(xiàng)代謝酶活性和生理指標(biāo)。以不添加發(fā)酵粗提液作為空白對(duì)照,每個(gè)時(shí)間段處理重復(fù)3 次,指標(biāo)測(cè)定時(shí)技術(shù)重復(fù)3 次。
1.2.3 測(cè)定的指標(biāo) 測(cè)定的病原菌代謝系統(tǒng)酶包括:保護(hù)酶系統(tǒng)中的超氧化物歧化酶(SOD)、過(guò)氧化物酶(POD)、過(guò)氧化氫酶(CAT)、多酚氧化酶(PPO);糖酵解途徑中的己糖激酶(HK)、丙酮酸激酶(PK)和乳酸脫氫酶(LDH);三羧酸循環(huán)中的琥珀酸脫氫酶(SDH)和蘋(píng)果酸脫氫酶(MDH);輔酶Ⅰ含量和ATP 酶。酶活性測(cè)定試劑盒由南京建成生物工程研究所提供。
生理指標(biāo)包括電導(dǎo)率、丙二醛(MDA)含量2 個(gè)指標(biāo)。電導(dǎo)率測(cè)定使用電導(dǎo)儀測(cè)定[16],丙二醛含量測(cè)定采用硫代巴比妥酸法[17]。
采用Excel 2010 軟件對(duì)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)和分析,繪圖使用Origin 2018 軟件。
2.1.1 對(duì)松球殼孢菌保護(hù)酶活性的影響 如圖1 所示,經(jīng)森吉木霉M75 粗提液處理的前8 h 內(nèi),與對(duì)照組相比,松球殼孢菌代謝系統(tǒng)SOD 酶活性顯著上升,并在處理8 h 時(shí)達(dá)到峰值,此時(shí)酶活性為72.717 U·(g·min)?1。說(shuō)明病原菌在粗提液的處理下,前期SOD 酶活性增加以達(dá)到保護(hù)菌體的作用。處理8 h 后,SOD 酶活性大幅降低,在處理96 h 時(shí)酶活性最低,為1.510 U·(g·min)?1,說(shuō)明隨著處理時(shí)間增加,SOD 酶活性不斷降低。對(duì)照組在前8 h 內(nèi)SOD 酶活性也呈上升趨勢(shì),8 h 時(shí)酶活性達(dá)37.167 U·(g·min)?1,顯著低于同時(shí)段處理組酶活性。但8 h 后,對(duì)照組SOD 酶活性呈平穩(wěn)變化趨勢(shì),無(wú)大幅下降,48 h 時(shí)達(dá)峰值62.180 U·(g·min)?1,在處理96h時(shí)酶活性為52.985 U·(g·min)?1。
圖1 森吉木霉M75 粗提液對(duì)松球殼孢菌保護(hù)系統(tǒng)酶活性的影響Fig.1 Effects of the crude extract of Trichoderma songyi M75 on pathogen protective enzyme activities
經(jīng)森吉木霉M75 粗提液處理的前12 h 內(nèi),CAT 酶活性快速上升并在12 h 時(shí)達(dá)到峰值,0.067 U·(g·s)?1,說(shuō)明發(fā)酵粗提液導(dǎo)致松球殼孢菌代謝系統(tǒng)中過(guò)氧化氫含量增加,但處理12 h 后酶活性大幅下降,并逐漸趨于零,在處理96 h 時(shí)為0.004 U·(g·s)?1,是由于SOD 酶活性逐漸降低,及膜脂過(guò)氧化嚴(yán)重,導(dǎo)致CAT 酶活性不斷降低。而對(duì)照組在48 h 內(nèi)CAT 酶活性都處于上升狀態(tài),在48 h 時(shí)達(dá)到峰值0.064 U·(g·s)?1,在之后隨時(shí)間增加酶活性緩慢下降,96 h 時(shí)為0.054 U·(g·s)?1,且在24 h 后對(duì)照組CAT 酶活性始終高于處理組。
在經(jīng)森吉木霉M75 粗提液處理的前12 h 內(nèi),與對(duì)照組相比,松球殼孢菌代謝系統(tǒng)POD 酶活性顯著上升,在12 h 時(shí)達(dá)到峰值,為5.733 U·(g·s)?1,在12 h 后,處理組酶活性大幅下降,并在48 h 后趨于平穩(wěn)。對(duì)照組POD 酶活性一直呈上升趨勢(shì)。PPO 酶活性與POD 酶活性變化趨勢(shì)基本一致,處理組在10 h 時(shí)達(dá)到酶活性峰值,11.909 U·(g·s)?1,此后酶活性大幅快速下降,并在處理96 h 時(shí)達(dá)到最低值0.046 U·(g·s)?1。
2.1.2 對(duì)松球殼孢菌糖酵解途徑中PK、HK 和LDH 的影響 如圖2 所示,經(jīng)M75發(fā)酵粗提液處理后,松枯梢病原菌松球殼孢菌菌絲團(tuán)的PK、HK、LDH均隨時(shí)間增加呈下降趨勢(shì),PK酶活性從初始2h時(shí)的0.550U·(g·min)?1,至96h時(shí)下降至0.033U·(g·min)?1。HK酶活性從初始2h時(shí)的0.066U·(g·min)?1,至96h時(shí)下降至0.005U·(g·min)?1。LDH 酶活性由初始2 h 的2.351 U·(g·min)?1,至96h時(shí)下降至0.122 U·(g·min)?1。而對(duì)照組的PK、HK 活力都隨時(shí)間增加呈持續(xù)上升趨勢(shì),PK酶活性由初始2h的0.492U·(g·min)?1,至96h時(shí)上升至0.952 U·(g·min)?1;HK酶活性由初始2h的0.060 U·(g·min)?1,至96h時(shí)上升至0.204 U·(g·min)?1;對(duì)照組的LDH 酶活性整體趨于平穩(wěn),且酶活性始終高于處理組,說(shuō)明M75 發(fā)酵粗提液對(duì)糖酵解途徑中的PK、HK 及LDH 的合成產(chǎn)生了抑制作用,嚴(yán)重干擾了其正常代謝。
圖2 森吉木霉M75 粗提液對(duì)松球殼孢菌糖酵解途徑中關(guān)鍵酶活性的影響Fig.2 Effects of the crude extract of Trichoderma songyi M75 on pathogen key enzyme activities in sugar metabolic pathways
2.1.3 對(duì)松球殼孢菌三羧酸循環(huán)中MDH與SDH酶活性的影響 琥珀酸脫氫酶SDH 是細(xì)胞能量代謝的重要酶類,其活性變化可直接反應(yīng)細(xì)胞能量代謝狀況[18]。如圖3 所示,經(jīng)生防菌M75 粗提液處理后,松球殼孢菌菌絲團(tuán)的MDH 與SDH 酶活性在處理后的12 h 內(nèi)急速下降,MDH 酶活性由初始2 h 時(shí)的15.550 U·(g·min)?1下降至24 h 時(shí)的1.275 U·(g·min)?1,之后下降趨勢(shì)變緩,但仍隨時(shí)間呈逐漸下降趨勢(shì),在96 h 時(shí)為0.196 U·(g·min)?1。SDH 酶活性在處理12 h 內(nèi)由初始2 h 的30.327 U·(g·min)?1急速下降至9.997 U·(g·min)?1,之后下降趨勢(shì)減緩,處理96 h 時(shí)為0.948 U·(g·min)?1。而對(duì)照組MDH 與LDH酶活性則隨時(shí)間呈逐漸上升趨勢(shì)。這說(shuō)明粗提液抑制了病原菌代謝系統(tǒng)中MDH 和SDH 的正常合成,導(dǎo)致三羧酸循環(huán)停滯。
2.1.4 對(duì)松球殼孢菌輔酶I 和ATP 酶活性的影響 如圖4 所示,經(jīng)森吉木霉菌M75 發(fā)酵粗提液處理后的12 h 內(nèi),松枯梢病原菌松球殼孢菌菌絲團(tuán)的輔酶I 含量快速下降,由2 h 的5.700%下降至1.340%,在之后隨處理時(shí)間的增加不斷趨于零。對(duì)照組輔酶I 含量則不斷增加。
圖4 森吉木霉M75 粗提液松球殼孢菌輔酶I 含量的影響Fig.4 Effects of the crude extract of Trichoderma songyi M75 on the content of pathogens enzyme I
如圖5 所示,經(jīng)森吉木霉菌M75 發(fā)酵粗提液處理的Na+,K+-ATP、Mg2+-ATP、Ca2+-ATP 酶活性總體上呈先上升后急速下降的趨勢(shì)。處理4h時(shí),Na+,K+-ATP酶活性達(dá)到峰值0.902 μmol Pi·(g·h)?1,處理12h時(shí),Mg2+-ATP、Ca2+-ATP 酶活性達(dá)到峰值,分別為1.759 和3.184 μmol Pi·(g·h)?1,此后急劇下降并逐漸趨于零。對(duì)照組酶活性在24 h 內(nèi)處于快速上升趨勢(shì),后上升趨緩,但酶活性在10 或12 h 后高于處理組。
圖5 森吉木霉M75 粗提液對(duì)松球殼孢菌ATP 酶活的影響Fig.5 Effects of the crude extract of Trichoderma songyi M75 on ATP enzyme activities
2.2.1 對(duì)松球殼孢菌電導(dǎo)率的影響 如圖6 所示,松球殼孢菌經(jīng)森吉木菌M75 發(fā)酵粗提液處理后,電導(dǎo)率隨處理時(shí)間呈明顯增大趨勢(shì),并且在各處理時(shí)段都遠(yuǎn)高于對(duì)照組,說(shuō)明經(jīng)處理的病原菌體電解質(zhì)泄露,導(dǎo)致電導(dǎo)率值增加。
圖6 森吉木霉M75 粗提液對(duì)球殼孢菌電導(dǎo)率的影響Fig.6 Effects of the crude extract of Trichoderma songyi M75 on pathogens conductivity
2.2.2 對(duì)松球殼孢菌丙二醛含量的影響 如圖7 所示,經(jīng)森吉木霉M75 粗提液處理后,松球殼孢菌MDA 含量在24 h 內(nèi)呈急速增加趨勢(shì),在24 h 時(shí)達(dá)到峰值,1.063 nmol·g?1,而后呈下降趨勢(shì)。對(duì)照組MDA 含量整體隨時(shí)間增加呈平穩(wěn)上升趨勢(shì),且對(duì)照組MDA 含量始終低于處理組。
圖7 森吉木霉M75 粗提液對(duì)松球殼孢菌丙二醛含量的影響Fig.7 Effects of the crude extract of Trichoderma songyi M75 on pathogens MDA contents
木霉菌作為應(yīng)用最廣泛的一類生防真菌,對(duì)18 個(gè)屬的29 種植物病原真菌表現(xiàn)出顯著的抑菌活性[19],生防菌株能夠抑制病原菌的生長(zhǎng),必然是破壞了菌體正常的生理代謝途徑[20]。森吉木霉M75發(fā)酵粗提液對(duì)松枯梢病原菌松球殼孢菌的抑制作用主要體現(xiàn)在,發(fā)酵粗提液有效抑菌成分可使松球殼孢菌代謝保護(hù)酶系統(tǒng)中的SOD、CAT、POD、PPO酶活性先上升后下降,并在處理10 h 至12 h 后顯著低于正常水平,說(shuō)明隨著處理時(shí)間增加,氧自由基不斷增多,細(xì)胞膜脂過(guò)氧化加重,導(dǎo)致保護(hù)系統(tǒng)酶活性不斷降低,影響了病原菌保護(hù)酶系統(tǒng)的正常代謝。同時(shí)導(dǎo)致糖酵解途徑中的HK、PK 和LDH酶活性持續(xù)下降,影響了松球殼孢菌正常的糖酵解途徑[21]。作為三羧酸循環(huán)中的關(guān)鍵酶,SDH 和MDH 代表TCA 循環(huán)活化狀態(tài)[22],其酶活數(shù)值變化能直接反應(yīng)細(xì)胞能量代謝的情況[23],SDH 與MDH 活性降低,代表菌體的TCA 循環(huán)受阻,正常的細(xì)胞代謝無(wú)法進(jìn)行。ATP 是生命體維持生命活動(dòng)的能量庫(kù),其含量能在一定程度上反應(yīng)出自身的生理狀態(tài)[24],輔酶I 含量可用于評(píng)價(jià)糖酵解和TCA 循環(huán)的強(qiáng)弱,ATP 和輔酶I 的變化曲線反映出菌體在受到發(fā)酵粗提液脅迫時(shí),細(xì)胞代謝路徑受阻,糖酵解和TCA 循環(huán)合成減慢,細(xì)胞能量供給不足[25]。MDA 是細(xì)胞膜脂過(guò)氧分解的主要產(chǎn)物,MDA 的含量可直接反映細(xì)胞膜過(guò)氧化程度[26],當(dāng)生物體受到脅迫時(shí),會(huì)引起細(xì)胞質(zhì)膜過(guò)氧化,使得MDA 含量大幅上升[27],本研究中松球殼孢菌MDA 含量在處理24 h 內(nèi)急劇上升,且處理組MDA 含量始終高于對(duì)照組,說(shuō)明發(fā)酵液導(dǎo)致病原菌菌體過(guò)氧化程度加劇[28]。細(xì)胞內(nèi)物質(zhì)成分滲出是菌體膜脂受損的標(biāo)志,能直接反映菌體細(xì)胞膜通透性的變化[29],本研究中松球殼孢菌的電導(dǎo)率隨處理時(shí)間增加,電導(dǎo)率值不斷上升,說(shuō)明發(fā)酵粗提液破壞了菌體細(xì)胞膜的完整性,使菌體細(xì)胞膜透性改變,導(dǎo)致電解質(zhì)滲漏[30],抑制了松球殼孢菌的正常生長(zhǎng)。本研究中所用為此前分離得到的森吉木霉M75,這是森吉木霉首次應(yīng)用于生物防治,目前還未見(jiàn)有關(guān)森吉木霉菌抑菌機(jī)理的報(bào)道,本研究對(duì)豐富生防木霉菌的資源庫(kù)具有重要意義。
通過(guò)對(duì)松枯梢病病原菌松球殼孢菌代謝系統(tǒng)中保護(hù)酶系統(tǒng)、糖代謝、三羧酸循環(huán)、能量代謝中各關(guān)鍵酶和電導(dǎo)率、MDA 含量等指標(biāo)的測(cè)定,說(shuō)明森吉木霉M75 發(fā)酵粗提液對(duì)松枯梢病原松球殼孢菌有較好的抑制作用,可使其代謝系統(tǒng)相關(guān)酶活性降低,并導(dǎo)致電解質(zhì)外滲,電導(dǎo)率升高,MDA 大量累積,阻礙松球殼孢菌正常的生理代謝途徑,使得病原菌無(wú)法進(jìn)行正常的生理生化反應(yīng),從而抑制病原菌的生長(zhǎng)。