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    胰島移植緩解糖尿病大鼠腎臟纖維化的實(shí)驗(yàn)研究

    2022-01-05 07:28:18徐自強(qiáng)金昊王瑾珺
    浙江臨床醫(yī)學(xué) 2021年11期
    關(guān)鍵詞:血糖糖尿病實(shí)驗(yàn)

    徐自強(qiáng) 金昊 王瑾珺

    糖尿病腎病是引起終末期腎病的第一大疾病[1]。大量動(dòng)物實(shí)驗(yàn)和臨床研究表明,持續(xù)高血糖引起的代謝改變可影響糖尿病腎病的發(fā)生和發(fā)展。因此,維持穩(wěn)定理想的血糖是早期治療糖尿病腎病的關(guān)鍵[2]。近年來(lái),隨著胰島分離純化技術(shù)的逐漸成熟和完善,胰島移植已成為治療糖尿病并發(fā)癥的重要方法之一。國(guó)內(nèi)多中心已常規(guī)開展胰島移植術(shù)來(lái)治療糖尿病患者。研究發(fā)現(xiàn),胰島移植后可以明顯改善糖尿病患者腎臟疾病,尿微量白蛋白和血肌酐水平均明顯降低。然而,移植物排斥反應(yīng)仍是影響胰島細(xì)胞長(zhǎng)期存活的重要因素。海藻酸鈉-聚賴氨酸-海藻酸鈉(APA)微囊是一種生物相容性較好的半透膜,可以阻止胰島細(xì)胞與受者免疫系統(tǒng)接觸,還能讓體積小的營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)自由進(jìn)入,具有免疫隔離作用[3]。本研究通過(guò)移植APA微囊化的胰島細(xì)胞至糖尿病大鼠腹腔內(nèi),并觀察其對(duì)腎臟保護(hù)作用以及探討可能機(jī)制。

    1 材料和方法

    1.1 材料 實(shí)驗(yàn)大鼠由溫州醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物中心提供,16只8周健康雄性SD大鼠和12只8周健康雄性Wistar大鼠,體重約200~220 g。海藻酸鈉由上海精細(xì)化工科技有限公司提供;聚左賴氨酸、Ⅴ型膠原酶、鏈脲佐菌素為美國(guó)Sigma公司產(chǎn)品;雙硫腙(DTZ)為上海三愛思試劑有限公司產(chǎn)品;Ficoll-Paque PLUS溶液為美國(guó)GE公司產(chǎn)品;RPMI 1640、D-Hank's液為吉諾生物醫(yī)藥技術(shù)有限公司產(chǎn)品;大鼠胰島素ELISA試劑盒購(gòu)自上海朗頓生物科技有限公司;兔源單克隆抗體轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子-β1(TGF-β1)和兔源單克隆抗體結(jié)締組織生長(zhǎng)因子(CTGF)購(gòu)自Bioworld公司。

    1.2 胰島細(xì)胞分離和微囊化 異氟烷吸入麻醉成功后,Wistar大鼠腹部V形切口,破心處死。在左右肝管分叉處行膽總管插管;然后向胰管內(nèi)灌注8~10 mL(濃度0.8 mg/mL,pH 7.8)V型膠原酶溶液。待胰腺膨脹后,整塊獲取,立即放入相同濃度Ⅴ型膠原酶溶液離心管中;38℃恒溫水浴消化約15 min,等待大部分胰腺組織成乳糜狀后,加入35 mL 4℃ Hank's 液終止消化;棄上清液,再次加入25 mL 4℃ Hank's液振搖50 s,過(guò)800 μm不銹鋼篩網(wǎng),將沉淀轉(zhuǎn)移至15 mL 離心管中,加入RPMI 1640液至15 mL,離心洗滌5 min。在消化后的胰腺組織中加入5 mL Ficoll-Paque PLUS 溶液,充分混勻,加入Hank's 液5 mL,離心15 min,吸取Hank's液和Ficoll-Paque PLUS 液交界層液面的組織懸塊,即為純化的胰島,洗滌,采用RPMI1640培養(yǎng)液,37℃、5% CO2培養(yǎng),準(zhǔn)備制備胰島微囊。FDA-PI染色計(jì)算胰島活性:將胰島細(xì)胞團(tuán)同PI、FDA各7 μL混勻,然后在熒光顯微鏡下觀察細(xì)胞熒光染色情況,估算存活的細(xì)胞在所有細(xì)胞中所占比例,并計(jì)數(shù)約50個(gè)胰島細(xì)胞團(tuán)的活性比例,最終計(jì)算出平均值作為胰島活性大小。胰島當(dāng)量(IEQ)計(jì)算:依據(jù)LEMBERT等[4]制定的方法,鏡下計(jì)數(shù)DTZ陽(yáng)性細(xì)胞團(tuán),用標(biāo)尺測(cè)其直徑,用IEQ表?yè)Q算為直徑相當(dāng)于150 μm胰島的IEQ,然后根據(jù)以下公式算得總胰島當(dāng)量:總胰島當(dāng)量(IEO)=3次胰島總當(dāng)量÷3×20×樣本量(mL)。將4000當(dāng)量胰島與15 g/L海藻酸鈉溶液5 mL混合。采用高壓靜電成囊技術(shù)將上述混合液逐步滴入0.1 mol/L CaCl2溶液中,從而形成海藻酸鈣微膠珠,再投入0.5%聚左賴氨酸溶液中反復(fù)振搖;然后用1.5 g/L海藻酸鈉溶液包裹;最后以55 mmol/L 檸檬酸鈉溶液液化囊心,生理鹽水洗滌,即得包裹胰島的APA微囊。

    1.3 APA微囊化大鼠胰島及未包囊胰島糖刺激實(shí)驗(yàn) 將500當(dāng)量微囊化和未微囊化胰島置于12孔培養(yǎng)板中,于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)過(guò)夜。去培養(yǎng)液后,胰島細(xì)胞首先在37 ℃低葡萄糖(2.22 mmol/L)培養(yǎng)液中培養(yǎng)2 h,取上清液于4℃保存;然后再更換37℃高葡萄糖(22.2 mmol/L)培養(yǎng)液中培養(yǎng)2 h,取上清液。用ELISA 試劑盒測(cè)定兩種濃度培養(yǎng)后上清液的胰島素濃度,按以下公式計(jì)算刺激指數(shù)(SI):SI=高糖環(huán)境下胰島素的分泌濃度/低糖環(huán)境下胰島素的分泌濃度。

    1.4 實(shí)驗(yàn)分組和收集標(biāo)本 SD大鼠按50 mg/kg劑量給予鏈脲佐菌素(溶劑為0.1 mol/L檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液,pH 4.2),腹腔一次性注射。術(shù)后每日予以正常飲食。在72 h后連續(xù)3次測(cè)大鼠血糖均維持在>16.6 mmol/L,認(rèn)為糖尿病大鼠建模成功。實(shí)驗(yàn)分三組。糖尿病腎病組(n=6);微囊移植組(n=4),糖尿病建模后8周,腹腔內(nèi)移植1200當(dāng)量的APA微囊化胰島,術(shù)后非禁食下血糖持續(xù)≤16.6 mmol/L,可作為胰島功能存活判定標(biāo)準(zhǔn);正常對(duì)照組(n=6)。實(shí)驗(yàn)分組后4周,收集各組24 h尿液,行24 h尿蛋白定量。麻醉后處死大鼠,收集腎臟和腎動(dòng)脈標(biāo)本,并且觀察微囊在腹腔中的狀態(tài)。在0°鹽水環(huán)境下收集雙腎。雙刀法組織修塊,快速分離出3~5小塊腎皮質(zhì)(大小約1×1×1 mm3),立即浸泡于2.5%戊二醛電鏡保存液中固定,置于4℃冰箱備電鏡檢測(cè),剩余的腎組織和腎動(dòng)脈標(biāo)本放入預(yù)冷的4%多聚甲醛中,4~6 h固定,備檢免疫組化。

    1.5 電鏡標(biāo)本制作與觀察 在冰鹽水環(huán)境下橫斷皮質(zhì)髓質(zhì),迅速取大小約1×1×1 mm3腎皮質(zhì)組織塊于2.5%戊二醛前固定>2 h,漂洗,1%鋨酸后固定1 h,漂洗3次,塊染(1%醋酸鈾2 h),梯度脫水,浸透(100%丙酮:包埋劑 1∶1,37℃烘箱2 h,丙酮:包埋液1∶4,37℃烘箱過(guò)夜;純包埋液45℃烘箱2 h),包埋聚合(環(huán)氧樹脂45℃烘箱3 h),半薄切片定位腎小球,超薄切片,醋酸鈾和檸檬酸鉛雙重染色,日立H7500透射電鏡下觀察。

    1.6 免疫組織化學(xué) 石蠟切片(3μm)脫蠟水化,微波修復(fù),采用SP法免疫組化試劑盒檢測(cè)腎臟組織CTGF和TGF-β1表達(dá),采用相同方法檢測(cè)腎動(dòng)脈MCP-1表達(dá)。所有操作按照說(shuō)明書進(jìn)行。陽(yáng)性結(jié)果為胞膜或胞漿內(nèi)棕黃色線狀或顆粒物顯色。采用單盲法,各組大鼠每張切片隨機(jī)選取10個(gè)視野(×400)拍照,應(yīng)用Imagepro plus圖像分析軟件進(jìn)行半定量分析,測(cè)定陽(yáng)性部位的平均光密度(MD)。

    1.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS13.0統(tǒng)計(jì)軟件。計(jì)量資料以(x±s)表示,組間比較采用單因素方差分析(Oneway ANOVA),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 葡萄糖刺激胰島分泌實(shí)驗(yàn) 未微囊化胰島和微囊化胰島在低糖下的胰島分泌濃度分別為(0.25±0.03)ng/mL和(0.25±0.03)ng/mL,兩組差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),高糖刺激下胰島素釋放量為(0.63±0.07)ng/mL和(0.60±0.06)ng/mL,兩組差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。高糖刺激下胰島素釋放量為低糖刺激的>2倍,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。兩組SI分別為(2.54±0.36)和(2.43±0.47),差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)(P>0.05)。

    2.2 各組大鼠生化指標(biāo)檢測(cè) 移植前,糖尿病腎病組和微囊移植組大鼠血糖均明顯升高(28.57±1.58 mmol/LVS.30.35±0.90 mmol/L,P>0.05),兩組間比較無(wú)明顯統(tǒng)計(jì)學(xué)差異;糖尿病腎病組和微囊移植組大鼠24小時(shí)尿蛋白均顯著高于正常組(P<0.05),但兩組比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(51.26±4.69 mgVS.52.45±2.58 mg,P>0.05)。手術(shù)術(shù)后,微囊移植組血糖逐步下降,至2周左右下降至最低,但仍高于正常。術(shù)后3周,微囊移植組血糖開始逐步升高。術(shù)后28 d,微囊移植組血糖和糖尿病腎病組血糖比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(20.35±1.40 mmol/LVS.31.62±1.51 mmol/L,P<0.05)。24 h 尿蛋白定量微囊移植組比糖尿病腎病組明顯下降(25.58±4.68 mgVS.51.26±4.69 mg,P<0.001)。微囊移植組與正常組24 h尿蛋白比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。

    2.3 直視及電鏡改變 實(shí)驗(yàn)結(jié)束時(shí),打開移植組大鼠腹腔,觀察到APA微囊成簇聚集,表面可見纖維樣組織包裹,局部還可見新生血管,大部分黏附于大網(wǎng)膜、腸系膜及腹壁上(見圖1)。在電鏡下,糖尿病腎病組腎小球?yàn)V過(guò)膜上的足細(xì)胞形態(tài)改變,表現(xiàn)為局部足突增寬、相互融合,且基底膜節(jié)段增厚;而微囊移植組腎小球足細(xì)胞足突排列整齊,基底膜結(jié)構(gòu)清晰,不規(guī)則增厚少見,形態(tài)接近于正常組腎小球?yàn)V過(guò)膜結(jié)構(gòu)(見圖2)。

    圖1 腹腔內(nèi)包含胰島素的APA微囊聚集成簇(黑色箭頭)

    圖2 各組腎臟電鏡檢查

    2.4 免疫組化結(jié)果 TGF-β1在腎內(nèi)主要表達(dá)部位為腎小球。糖尿病腎病組和微囊移植組TGF-β1表達(dá)較正常對(duì)照組升高。微囊移植組TGF-β1在腎小球的表達(dá)較糖尿病腎病組降低(0.12±0.02VS.0.26±0.04,P<0.05)。CTGF主要表達(dá)部位為腎小管間質(zhì),在正常組中幾乎不表達(dá),但在其他兩組腎小管間質(zhì)中明顯表達(dá)。糖尿病腎病組CTGF在腎間質(zhì)中表達(dá)較微囊移植組明顯升高(0.35±0.04VS.0.14±0.03,P<0.05)。MCP-1主要在血管平滑肌細(xì)胞中表達(dá)。在糖尿病組中,大鼠腎動(dòng)脈平滑肌層中MCP-1表達(dá)明顯升高,但其在微囊移植組中的表達(dá)明顯降低(0.34±0.05VS.0.25±0.04,P<0.05)。見圖3~5。

    圖3 各組TGF-β1免疫組化

    圖4 各組CTGF免疫組化

    圖5 各組腎動(dòng)脈MCP-1表達(dá)

    3 討論

    糖尿病腎病典型的病理表現(xiàn)與代謝相關(guān)的腎小球硬化癥[5]。持續(xù)的高血糖狀態(tài)引起的代謝改變是影響糖尿病腎病發(fā)生發(fā)展的關(guān)鍵。因此,良好的血糖控制是糖尿病腎病治療的關(guān)鍵。胰島移植短期內(nèi)恢復(fù)受者血糖的效果非常理想[6]。此外,大量臨床研究發(fā)現(xiàn)胰島移植可以逆轉(zhuǎn)早期糖尿病腎病,恢復(fù)正常的腎小球?yàn)V過(guò)功能[7-8]。然而胰島移植遠(yuǎn)期效果并不理想,大部分患者常需要二次移植。主要原因包括移植物慢性排斥反應(yīng),免疫藥物毒副作用和局部炎癥反應(yīng)[9-11]。因此,目前大部分研究者專注于通過(guò)改進(jìn)胰島純化技術(shù),增加單次移植的胰島數(shù)量;改進(jìn)免疫抑制方案,減少藥物對(duì)胰島損害;或采用新的生物材料包裹胰島細(xì)胞,起到保護(hù)隔絕作用,從而延長(zhǎng)移植物的存活。

    本實(shí)驗(yàn)中,采用APA微囊包裹胰島,腹腔移植改善糖尿病大鼠持續(xù)高血糖狀態(tài)。APA微囊是一種生物相容性良好的半透膜。其孔徑允許氧氣、糖等營(yíng)養(yǎng)成分自由進(jìn)出,同時(shí)可以阻止胰島細(xì)胞直接與受者的免疫細(xì)胞直接接觸[12]。因此,微囊化胰島細(xì)胞團(tuán)體內(nèi)移植后,可以在不使用免疫抑制劑的情況下維持胰島分泌功能。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,移植后糖尿病腎病大鼠腎小球?yàn)V過(guò)屏障結(jié)構(gòu)得到顯著改善。在實(shí)驗(yàn)后期,隨著微囊內(nèi)胰島分泌功能下降,移植組大鼠血糖逐步上升,但至結(jié)束時(shí)微囊組大鼠血糖仍低于糖尿病組。相比于前期胰島移植實(shí)驗(yàn),微囊化的胰島移植對(duì)體內(nèi)血糖調(diào)控效果略差。主要因機(jī)體的抗異物反應(yīng),導(dǎo)致微囊被纖維組織包裹,引起囊內(nèi)胰島細(xì)胞缺氧死亡,而體內(nèi)局部炎癥反應(yīng),加重這一過(guò)程[13]。因此,較多研究者希望利用新的相容性更好的人工生物材料來(lái)包裹胰島細(xì)胞團(tuán),減少體內(nèi)反應(yīng),延長(zhǎng)存活時(shí)間。研究發(fā)現(xiàn),微囊表面結(jié)合間充質(zhì)干細(xì)胞,可以促進(jìn)血管新生,達(dá)到延長(zhǎng)微囊內(nèi)胰島細(xì)胞團(tuán)存活時(shí)間[14]。

    TGF-β1是重要的調(diào)節(jié)因子,其能引起腎臟組織一系列顯微結(jié)構(gòu)改變,包括系膜增厚和細(xì)胞外基質(zhì)合成增加,誘導(dǎo)足細(xì)胞凋亡;此外,TGF-β1使內(nèi)皮細(xì)胞向間質(zhì)樣細(xì)胞轉(zhuǎn)變,最終導(dǎo)致腎小球硬化,且促進(jìn)腎小管和間質(zhì)纖維化[15]。CTGF是TGF-β1下游介質(zhì)之一,能介導(dǎo)細(xì)胞間相互粘附,并促進(jìn)炎癥細(xì)胞遷移浸潤(rùn)及誘導(dǎo)細(xì)胞外基質(zhì)合成[16]。TGF-β1表達(dá)增加可以促進(jìn)平滑肌細(xì)胞、系膜細(xì)胞、血管內(nèi)皮細(xì)胞和腎小管上皮細(xì)胞中CTGF表達(dá)上調(diào)。持續(xù)高血糖狀態(tài)可以促進(jìn)TGF-β1過(guò)度表達(dá),激活TGF-β1/Smad途徑,上調(diào)下游促纖維介質(zhì)活化,導(dǎo)致腎小球硬化和腎間質(zhì)纖維化過(guò)程[17]。在整個(gè)實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,糖尿病腎病大鼠血糖明顯好轉(zhuǎn),雖不能完全恢復(fù)正常,但大鼠腎組織纖維化程度仍明顯緩解。隨著大鼠血糖好轉(zhuǎn),腎臟組織中TGF-β1及下游的CTGF蛋白的表達(dá)均明顯下降。作者推測(cè)胰島細(xì)胞團(tuán)可以根據(jù)血糖波動(dòng)持續(xù)分泌胰島素,糾正體內(nèi)高血糖狀態(tài),并且可以維持穩(wěn)定的血糖狀態(tài),這可能更有利于早期糖尿病腎病的恢復(fù)。還有文獻(xiàn)報(bào)道,胰島分泌的C肽對(duì)于糖尿病腎病也有治療作用,但具體機(jī)制尚不明確[18]。MCP-1是評(píng)估血管硬化的重要指標(biāo)。持續(xù)高血糖可通過(guò)多種途徑引起腎臟損害,不僅直接導(dǎo)致腎小球硬化癥,還會(huì)造成腎內(nèi)各級(jí)動(dòng)脈硬化、閉塞,減少腎內(nèi)血流,加重腎臟纖維化。實(shí)驗(yàn)顯示,糾正持續(xù)高血糖可以顯著改善糖尿病大鼠腎動(dòng)脈硬化程度。因此,推測(cè)腎臟內(nèi)動(dòng)脈的硬化程度也得到一定的改善,從而抑制腎小球的纖維化。

    綜上所述,采用腹腔APA微囊化胰島移植,可以顯著減少早期糖尿病腎病大鼠的尿蛋白總量。其可能機(jī)制是通過(guò)抑制TGF-β1及下游CTGF表達(dá),以及改善腎臟血管硬化程度,最終達(dá)到緩解腎臟纖維化過(guò)程。目前微囊化的胰島移植長(zhǎng)期治療效果仍不理想,但隨著生物工程進(jìn)步,微囊化胰島移植技術(shù)將為臨床治療糖尿病腎病提供一個(gè)新的策略。

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