于冰莉,方永晟,龐昕昕,郭小趁,王文全,2*,劉永剛*
1.北京中醫(yī)藥大學(xué) 中藥學(xué)院,北京 102488;
2.中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院 北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院 藥用植物研究所,北京 100193
人口老齡化已成為人們最關(guān)注的全球性社會(huì)問(wèn)題之一,衰老及衰老相關(guān)疾病成為日益嚴(yán)重的醫(yī)學(xué)問(wèn)題和社會(huì)難題。氧化應(yīng)激與衰老具有十分緊密的聯(lián)系。關(guān)于衰老的經(jīng)典學(xué)說(shuō)氧化應(yīng)激學(xué)說(shuō)認(rèn)為,衰老的根本原因是氧化性損傷,即自由基積累造成的細(xì)胞損傷[1]。通過(guò)抗氧化活性藥物降低體內(nèi)自由基水平是延緩機(jī)體衰老的重要途徑之一。
甘草為豆科植物甘草Glycyrrhiza uralensisFisch.、脹果甘草G.inflataBat.或光果甘草G.glabraL.的干燥根和根莖[2],具有補(bǔ)脾益氣、清熱解毒、潤(rùn)肺止咳、緩急止痛、調(diào)和諸藥之功效[3]。我國(guó)有“十方九草”“無(wú)草不成方”之說(shuō),從古至今,甘草根及根莖廣為藥用,而其地上部分常作為牧草或是焚燒丟棄,造成資源浪費(fèi)。研究發(fā)現(xiàn),甘草地上部分提取物具有抗氧化[4-9]、抗炎[9-10]、抑菌[11-14]、抗腫瘤[15]等多種藥理活性。甘草地上部分水提物中多糖類(lèi)成分已有報(bào)道,且抗氧化活性良好[6]。從中藥提取出的寡糖活性成分有很多,如巴戟天寡糖可能通過(guò)抗氧化減輕子宮缺血再灌注損傷[16];人參花寡糖可恢復(fù)D-半乳糖誘導(dǎo)的氧化損傷,提高氧化酶活力,減少丙二醛(MDA)在體內(nèi)的積累[17]。而甘草地上部分寡糖的研究尚未見(jiàn)相關(guān)報(bào)道。
本研究對(duì)甘草地上部分進(jìn)行提取,運(yùn)用柱色譜技術(shù)分離純化水提物得到寡糖類(lèi)成分,借助凝膠滲透色譜、薄層色譜手段對(duì)其進(jìn)行表征,通過(guò)體內(nèi)、體外實(shí)驗(yàn)評(píng)價(jià)甘草地上部分寡糖的抗衰老、抗氧化活性,探索其中潛在抗衰老天然活性物質(zhì),為后續(xù)甘草地上部分資源綜合開(kāi)發(fā)利用提供參考。
大腸桿菌Escherichia coliOP50、野生型秀麗隱桿線蟲(chóng)株N2由中國(guó)科學(xué)院遺傳與發(fā)育生物學(xué)研究所惠贈(zèng)。
甘草地上部分,2018 年9 月采集于甘肅省酒泉市瓜州縣河?xùn)|鄉(xiāng),經(jīng)中國(guó)醫(yī)學(xué)科學(xué)院藥用植物研究所王文全教授鑒定為甘草Glycyrrhiza uralensisFisch.的地上部分,陰干,粉碎,備用。
無(wú)水乙醇、甲醇、乙酸乙酯均為分析純(天津市致遠(yuǎn)化學(xué)試劑有限公司);吡啶、苯胺、磷酸、丙酮、硫酸、二苯胺、硝酸鈉、氯化鈉均為分析純(北京化工廠);5%苯酚水溶液(上海源葉生物科技有限公司);對(duì)照品D-葡萄糖(純度≥99%,批號(hào):S21J12I138537)、D-果糖(純度≥99%,批號(hào):J31M9R62568)、維生素C(純度≥98%,批號(hào):S19J6G1),均購(gòu)自上海源葉生物科技有限公司;1,1-二苯基-2-三硝基苯肼[DPPH,梯希愛(ài)(上海)化成工業(yè)發(fā)展有限公司];葡聚糖相對(duì)分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)[重均相對(duì)分子質(zhì)量(Mw)分別為289 000、110 000、60 600、12 600、4320,批號(hào)分別為C10025642、C10025640、C10034456、C10020386、C10020398],購(gòu)自上海麥克林生化科技有限公司;AB-8 型大孔吸附樹(shù)脂(滄州寶恩吸附材料科技有限公司);DEAE-52 型纖維素樹(shù)脂(北京索萊寶科技有限公司);Sephadex LH-20型樹(shù)脂[安瑪西亞(中國(guó))有限公司];薄層色譜硅膠G板(青島海洋化工有限公司)。
CP224C型萬(wàn)分之一分析天平(奧豪斯上海儀器有限公司);Multiskan FC 型酶標(biāo)儀(賽默飛世爾科技有限公司);BKQP-75L 型立式高壓滅菌鍋(濟(jì)南博鑫生物技術(shù)有限公司);UV-2600 型紫外-可見(jiàn)分光光度計(jì)(尤尼柯上海儀器有限公司);SMZ745 型體視顯微鏡、ECLIPSE Ts2R 型熒光倒置顯微鏡(尼康映像儀器銷(xiāo)售中國(guó)有限公司);e2695型色譜儀[色譜柱為Ultrahydrogel TM 250(300 mm×7.8 mm,6 μm)與Ultrahydrogel TM Linear(300 mm×7.8 mm,10 μm)串聯(lián)]、2424 RI Detector型示差折光檢測(cè)器均購(gòu)于沃特世科技有限公司。
2.1.1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線繪制 精密稱(chēng)取對(duì)照品D-葡萄糖10 mg,加去離子水定容于100 mL量瓶中,混勻,即得葡萄糖對(duì)照品溶液,質(zhì)量濃度為0.10 mg·mL-1。精密移取葡萄糖對(duì)照品溶液0、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6、0.7 mL 于10 mL 量瓶中,加入去離子水補(bǔ)至1.0 mL,加入5%苯酚溶液1 mL,混勻,加入濃硫酸5 mL,振搖混勻,室溫條件下靜置20 min,冰浴15 min,在波長(zhǎng)487 nm 處測(cè)定其吸光度(A)值。以A為縱坐標(biāo),對(duì)照品溶液質(zhì)量濃度(C)為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,得回歸方程。
2.1.2 樣品溶液總糖含量測(cè)定 精密稱(chēng)取受試樣品10 mg,用去離子水定容于10 mL 量瓶中,混勻。精密移取樣品溶液0.1 mL 于10 mL 量瓶中,加入去離子水補(bǔ)至1.0 mL,加入5%苯酚溶液1 mL,混勻,再加入濃硫酸5 mL,振搖混勻,室溫條件下靜置20 min,冰浴15 min,在波長(zhǎng)487 nm處測(cè)定其A值,將A值代入回歸方程計(jì)算得到其總糖含量。
取甘草地上部分,加10 倍量去離子水,加熱提取2 次,每次連續(xù)回流2 h,紗布濾過(guò),合并濾液,旋蒸濃縮,真空干燥后得到水提物。
取水提物,溶于少量水中,過(guò)AB-8型大孔樹(shù)脂柱[18],徑高比1∶8,吸附過(guò)夜,先以4 倍柱體積(BV)水洗除雜,再以30%乙醇洗脫,洗脫流速為3 BV·h-1,洗脫體積為8 BV,得到粗糖富集物。
取粗糖富集物,上樣DEAE-52 纖維素柱[19],依次以去離子水及0.1、0.3、0.5 mol·L-1NaCl梯度洗脫,洗脫體積為4 BV,流速為1 mL·min-1,洗脫液每5 mL接1瓶,以洗脫體積為橫坐標(biāo),以苯酚-硫酸法測(cè)得總糖含量為縱坐標(biāo),繪制洗脫曲線,合并糖含量高的洗脫液,透析、濃縮、干燥,得到粗糖。
取粗糖,溶于少量甲醇中,上樣Sephadex LH-20 凝膠柱[20],甲醇洗脫,洗脫體積為5 BV,流速為1 mL·min-1,洗脫液每5 mL 接1 瓶,以洗脫體積為橫坐標(biāo),以苯酚-硫酸法測(cè)得總糖含量為縱坐標(biāo),繪制洗脫曲線,合并糖含量高的洗脫組分,回收溶劑,得到甘草地上部分寡糖樣品。
2.3.1 凝膠滲透色譜法測(cè)定樣品Mw標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作:精密稱(chēng)取Mw為289 000、110 000、60 600、12 600、4320 的葡聚糖對(duì)照品,配制成1 mg·mL-1的溶液,用0.22 μm 的濾膜濾過(guò)除雜后進(jìn)樣。分析軟件為Angilent GFC;檢測(cè)流動(dòng)相為0.1 mol·L-1硝酸鈉溶液,流速為0.6 mL·min-1,柱溫箱溫度為35 ℃,示差檢測(cè)器溫度為40 ℃,進(jìn)樣量為20 μL,時(shí)間為45 min。
甘草地上部分寡糖測(cè)定:精密稱(chēng)量甘草地上部分寡糖樣品,溶于去離子水中,配制成1 mg·mL-1的溶液,用0.22 μm 的濾膜濾過(guò)除雜后進(jìn)樣。用Angilent GFC軟件分析計(jì)算樣品Mw。
2.3.2 薄層色譜法鑒定樣品成分 精密稱(chēng)量甘草地上部分寡糖樣品10 mg,溶于去離子水10 mL中,配制成1 mg·mL-1的供試品溶液。精密稱(chēng)量對(duì)照品D-葡萄糖和D-果糖各2 mg,溶于去離子水10 mL 中,配制成0.2 mg·mL-1的對(duì)照品溶液。展開(kāi)劑為乙酸乙酯-乙醇-吡啶-水(8∶2∶2∶1)。點(diǎn)樣量為5 μL。顯色劑為苯胺-二苯胺溶液(取苯胺1 mL和二苯胺1 g,同溶于100 mL 丙酮中,再加85%磷酸水10 mL,混勻,棕色瓶保存,現(xiàn)用現(xiàn)配),85 ℃加熱10 min。
精確稱(chēng)取DPPH 5 mg,用無(wú)水乙醇溶解并定容于50 mL 量瓶中,質(zhì)量濃度為0.1 mg·mL-1,避光保存。取96 孔板,加入不同質(zhì)量濃度(0.05、0.10、0.25、0.50、1.00 mg·mL-1)的甘草地上部分寡糖樣品水溶液100 μL,再分別加入新配制的DPPH 溶液100 μL,避光反應(yīng)30 min 后,用酶標(biāo)儀在517 nm 波長(zhǎng)下測(cè)定其A值。分別以去離子水和維生素C作為空白和陽(yáng)性對(duì)照,每個(gè)質(zhì)量濃度重復(fù)4次。按照公式(1)計(jì)算自由基清除率。
自由基清除率=[1-(Ai-Aj)]/A0× 100%(1)
式中,Ai為DPPH 100 μL 和樣品溶液100 μL 混合液的吸光度;Aj為樣品溶液100 μL 和水100 μL 混合液的吸光度;A0為DPPH 100 μL 和水100 μL 混合液的吸光度。
2.5.1 溶液配制 M9 緩沖液、NGM 培養(yǎng)基、LB培養(yǎng)基、線蟲(chóng)裂解液按照常規(guī)方法配制[21]。
2.5.2 線蟲(chóng)同步化 N2 線蟲(chóng)飼養(yǎng)于涂布有大腸桿菌E.coliOP50 的線蟲(chóng)標(biāo)準(zhǔn)培養(yǎng)基NGM 中,20 ℃下培養(yǎng)。挑取50 只左右產(chǎn)卵期成蟲(chóng)至1.5 mL 離心管中,加入線蟲(chóng)裂解液1 mL。渦旋混勻3~5 min,3000 r·min-1離心3 min(離心半徑120 mm);棄上清液至剩余液體0.1 mL,加入M9 Buffer 1 mL 混勻;重復(fù)此步驟2 次,最后保留液體0.1 mL,將液體滴加至新的線蟲(chóng)生長(zhǎng)培養(yǎng)基(NGM)中,次日孵化出新的線蟲(chóng)。
2.5.3 氧化應(yīng)激實(shí)驗(yàn) 將經(jīng)過(guò)同步化生長(zhǎng)至L4 期后的N2 線蟲(chóng)置于含或不含藥物的NGM 中,實(shí)驗(yàn)分對(duì)照組和甘草地上部分寡糖給藥組(質(zhì)量濃度分別為10、20、40 μg·mL-1),每板30 條,48 h 后,把各組線蟲(chóng)轉(zhuǎn)移到含有0.4% H2O2的線蟲(chóng)NGM 中觀察,每0.5 h 記錄線蟲(chóng)存活數(shù)目,直至線蟲(chóng)全部死亡,重復(fù)3次。
2.5.4 熱應(yīng)激實(shí)驗(yàn) N2線蟲(chóng)分組同2.5.3項(xiàng)下。給藥組線蟲(chóng)經(jīng)不同質(zhì)量濃度的甘草地上部分寡糖處理48 h 后與對(duì)照組線蟲(chóng)同時(shí)置于37 ℃培養(yǎng)箱中進(jìn)行觀察,每2 h 觀察線蟲(chóng)死亡情況,記錄并挑出死亡個(gè)體,直至線蟲(chóng)全部死亡,重復(fù)3次。
2.5.5 壽命實(shí)驗(yàn) N2線蟲(chóng)分組同2.5.3項(xiàng)下,每組50條,給藥后每48 h觀察1次線蟲(chóng)的生存狀態(tài),記錄死亡線蟲(chóng)數(shù)量并將其挑出,并更換新的含藥或不含藥NGM,直至所有線蟲(chóng)全部死亡,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次。采用Kaplan-Meier 生存分析不同質(zhì)量濃度組線蟲(chóng)的存活率差異。
2.5.6 脂褐素含量測(cè)定 N2 線蟲(chóng)分組同2.5.3 項(xiàng)下,給藥處理5 d后,挑至滴加M9 1滴的2%瓊脂片上,再滴加疊氮化鈉溶液1 滴,待蟲(chóng)體變直,蓋上蓋玻片,于倒置熒光顯微鏡下觀察不同組線蟲(chóng)體內(nèi)的脂褐素水平,固定曝光時(shí)間和強(qiáng)度,拍攝熒光圖片,拍攝條件為Ex 385 nm、Em 430 nm,使用Image J軟件統(tǒng)計(jì)圖片中脂褐素自發(fā)熒光強(qiáng)度。
建立葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線為A=8.526 8C-0.045 6(r=0.996 9),葡萄糖質(zhì)量濃度為0.01~0.07 mg·mL-1有較好的線性關(guān)系。從甘草地上部分4 kg 中得到寡糖樣品410 mg,苯酚-硫酸法測(cè)其總糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)為81.23%。
采用高效凝膠滲透色譜法測(cè)定已知相對(duì)分子質(zhì)量的葡聚糖,記錄色譜峰保留時(shí)間,結(jié)果見(jiàn)圖1。建立葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)曲線:Y=-3.464 6X+41.284(r=0.992 7),X為lgMw,Y為洗脫時(shí)間。取Mw為289 000的葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)溶液重復(fù)進(jìn)樣6 次,按上述色譜條件測(cè)定,葡聚糖標(biāo)準(zhǔn)溶液出峰時(shí)間的RSD為0.040 6%,說(shuō)明該儀器精密度良好。取供試品溶液6 份,進(jìn)樣,按上述色譜條件測(cè)定,溶液出峰時(shí)間的RSD 為0.081 5%,說(shuō)明該方法重復(fù)性良好。取供試品溶液6 份分別放置0、1、2、4、8、10 h,進(jìn)樣,按上述色譜條件測(cè)定,溶液出峰時(shí)間的RSD 為0.112%,說(shuō)明樣品穩(wěn)定性良好。將樣品配制成1 mg·mL-1的供試品溶液,通過(guò)高效凝膠滲透色譜法測(cè)定,結(jié)果見(jiàn)圖2。樣品的圖譜不是對(duì)稱(chēng)的色譜峰,左側(cè)可見(jiàn)多個(gè)肩峰,說(shuō)明樣品中含有多種糖類(lèi)組分,將樣品的洗脫時(shí)間最小肩峰值30 min 和峰值33.517 min 分別代入到回歸方程,計(jì)算得到樣品Mw為180~1800,判斷為寡糖類(lèi)成分。
圖1 葡聚糖對(duì)照品的凝膠滲透色譜圖
圖2 甘草地上部分寡糖樣品的凝膠滲透色譜圖
以D-葡萄糖和D-果糖為對(duì)照品,采用薄層色譜法對(duì)樣品進(jìn)行分析,結(jié)果見(jiàn)圖3。圖3顯示,樣品中不含葡萄糖和果糖。
圖3 D-葡萄糖、D-果糖、樣品的薄層色譜圖
甘草地上部分寡糖樣品清除DPPH 自由基能力測(cè)定結(jié)果見(jiàn)圖4,不同質(zhì)量濃度樣品溶液對(duì)DPPH 自由基均有清除作用,并且在實(shí)驗(yàn)選取的質(zhì)量濃度范圍內(nèi)呈現(xiàn)明顯的量效關(guān)系。樣品的半數(shù)抑制濃度(IC50)為0.220 2 mg·mL-1,抗氧化活性弱于陽(yáng)性對(duì)照維生素C(0.016 9 mg·mL-1)。表明甘草地上部分寡糖樣品具有一定的抗氧化活性。
圖4 甘草地上部分寡糖樣品與維生素C清除DPPH自由基的作用
各組線蟲(chóng)在H2O2應(yīng)激環(huán)境中培養(yǎng)的生存曲線見(jiàn)圖5。與對(duì)照組比較,甘草地上部分寡糖10、20、40 μg·mL-1組線蟲(chóng)生存曲線均明顯右移。在氧化應(yīng)激條件下,各質(zhì)量濃度樣品組線蟲(chóng)存活率明顯提高,與對(duì)照組比較,甘草地上部分寡糖10、20、40 μg·mL-1組線蟲(chóng)存活率差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,P<0.01)。甘草地上部分寡糖20 μg·mL-1對(duì)線蟲(chóng)壽命延長(zhǎng)作用最強(qiáng),抗氧化應(yīng)激能力最強(qiáng)。
圖5 氧化應(yīng)激下甘草地上部分寡糖對(duì)線蟲(chóng)壽命的影響
線蟲(chóng)在37 ℃環(huán)境中培養(yǎng)的生存曲線見(jiàn)圖6。與對(duì)照組比較,甘草地上部分寡糖10、20、40 μg·mL-1組線蟲(chóng)生存曲線均明顯右移。在熱應(yīng)激條件下各質(zhì)量濃度樣品組線蟲(chóng)存活率均明顯提高,且差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。甘草地上部分寡糖20 μg·mL-1組線蟲(chóng)壽命延長(zhǎng)作用最強(qiáng),抗熱應(yīng)激能力最強(qiáng)。
圖6 熱應(yīng)激下甘草地上部分寡糖對(duì)線蟲(chóng)壽命的影響
如圖7和表1所示,甘草地上部分寡糖各質(zhì)量濃度組線蟲(chóng)生存曲線與對(duì)照組比較沒(méi)有發(fā)生明顯的偏移。甘草地上部分寡糖20、40 μg·mL-1組線蟲(chóng)平均壽命均高于對(duì)照組,但差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。甘草地上部分寡糖20 μg·mL-1組線蟲(chóng)最長(zhǎng)壽命高于對(duì)照組,但差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。說(shuō)明甘草地上部分寡糖對(duì)線蟲(chóng)壽命沒(méi)有顯著的延長(zhǎng)作用。
表1 甘草地上部分寡糖對(duì)線蟲(chóng)壽命的影響(,n=150)
表1 甘草地上部分寡糖對(duì)線蟲(chóng)壽命的影響(,n=150)
圖7 甘草地上部分寡糖對(duì)線蟲(chóng)壽命的影響
在熒光顯微鏡下可見(jiàn)線蟲(chóng)體內(nèi)脂褐素自發(fā)藍(lán)色熒光。隨著線蟲(chóng)壽命的增加,脂褐素含量逐漸增多。給藥5 d后,甘草地上部分寡糖10、20、40 μg·mL-1組線蟲(chóng)體內(nèi)脂褐素?zé)晒鈴?qiáng)度均明顯降低,較對(duì)照組分別降低了23.8%、33.8%、23.4%,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。甘草地上部分寡糖20 μg·mL-1組線蟲(chóng)體內(nèi)脂褐素?zé)晒鈴?qiáng)度最低,對(duì)線蟲(chóng)體內(nèi)脂褐素沉積減緩作用最強(qiáng),見(jiàn)圖8~9。
圖8 給藥5 d后各組線蟲(chóng)體內(nèi)脂褐素?zé)晒鈭D(40×)
現(xiàn)代藥理研究表明,甘草主要的抗氧化活性成分為黃酮類(lèi),包括甘草總黃酮[22]、查耳酮[23]、甘草苷[24]、異甘草素[25]等,同時(shí)甘草中三萜[26]和多糖[27-29]等成分也有一定的抗氧化作用。甘草水提液對(duì)具有細(xì)胞損傷作用的超氧陰離子自由基和羥基自由基均有明顯的清除作用,并能抑制羥基自由基誘發(fā)的膜脂質(zhì)反應(yīng),發(fā)揮一定的抗衰老作用[30]。甘草苷可以改善D-半乳糖所致衰老大鼠的學(xué)習(xí)記憶能力,減緩衰老引起的氧化損傷,提高腦內(nèi)的抗氧化能力[31]。甘草水提物對(duì)D-半乳糖致衰老的大鼠具有肝保護(hù)、抗氧化和抗衰老作用[32]。
中藥多糖來(lái)源廣泛,具有調(diào)節(jié)免疫力、抗氧化、抗衰老、抗病毒、抗腫瘤、調(diào)血脂、降血糖等多種生物活性,尤其在抗衰老方面有明顯的優(yōu)勢(shì),其抗衰老作用機(jī)制一直是中藥多糖生物活性研究中的熱點(diǎn)之一。當(dāng)歸多糖[33]、枸杞多糖[34]、肉蓯蓉多糖[35]、海帶多糖[36]、黃芪多糖[37]、鎖陽(yáng)多糖[38]、黃精多糖[39]、平貝母多糖[40]、女貞子多糖[41]、馬齒莧多糖[42]等中藥多糖均可通過(guò)抗脂質(zhì)過(guò)氧化和清除自由基,調(diào)節(jié)端粒酶活性和機(jī)體的糖、脂質(zhì)代謝,以及神經(jīng)-內(nèi)分泌功能等多種途徑來(lái)發(fā)揮抗衰老作用。殼寡糖作為殼聚糖降解后的衍生物,能有效清除羥基自由基和超氧陰離子自由基,具有較強(qiáng)的抗氧化活性[43]。系列褐藻膠寡糖通過(guò)清除活性氧自由基,來(lái)發(fā)揮抗氧化作用[44]。瓊膠寡糖具有較強(qiáng)且廣泛的抗氧化能力,對(duì)DPPH 自由基、羥基自由基、超氧陰離子自由基均存在較強(qiáng)的清除作用[45]。
本研究通過(guò)提取甘草地上部分,得到的水提物經(jīng)過(guò)AB-8 型大孔吸附樹(shù)脂、DEAE-52 纖維素、Sephadex LH-20 樹(shù)脂等柱色譜進(jìn)行富集純化,得到甘草地上部分寡糖,質(zhì)量分?jǐn)?shù)為81.23%,說(shuō)明該方法可以有效去除水提物中的蛋白質(zhì)和色素,適宜于甘草地上部分寡糖的純化。經(jīng)凝膠滲透色譜法檢測(cè),樣品Mw為180~1800,且薄層色譜鑒別顯示樣品不含葡萄糖和果糖,可判斷樣品為甘草地上部分寡糖類(lèi)成分。其單糖組成及分子結(jié)構(gòu)信息尚待進(jìn)一步研究。樣品對(duì)DPPH 自由基有較好的清除作用,能顯著延長(zhǎng)氧化應(yīng)激、熱應(yīng)激下線蟲(chóng)壽命,減少線蟲(chóng)體內(nèi)脂褐素沉積,具有良好的抗氧化損傷及抗衰老活性。說(shuō)明甘草地上部分寡糖對(duì)秀麗隱桿線蟲(chóng)的氧化損傷和衰老具有一定的保護(hù)作用,在抗衰老方面具有一定的潛在藥用價(jià)值,但其作用機(jī)制有待深入研究。本研究為甘草地上部分寡糖在抗氧化、抗衰老方面的進(jìn)一步研究及相關(guān)食品、藥品、保健食品等產(chǎn)品的開(kāi)發(fā)提供了一定的理論依據(jù),為天然產(chǎn)物的體外抗氧化、體內(nèi)抗衰老活性評(píng)價(jià)的探究提供了一定的方法指導(dǎo)。
圖9 給藥5 d后甘草地上部分寡糖對(duì)線蟲(chóng)脂褐素沉積的影響(,n=30)