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    miR-508-3p靶向AFF4/TGFβ1信號(hào)通路調(diào)控人牙髓細(xì)胞分化的機(jī)制研究*

    2021-12-20 12:48:54楊正濤林方梁溫利梅

    楊正濤,林方梁,溫利梅

    (四川省自貢市第一人民醫(yī)院,自貢 643000)

    牙髓治療普遍認(rèn)可牙髓牙本質(zhì)復(fù)合體的修復(fù)、再生,包括干細(xì)胞移植、細(xì)胞歸巢、牙髓血運(yùn)重建等技術(shù)[1]。雖然醫(yī)療水平不斷進(jìn)步,牙髓治療的技術(shù)也得到了很大提升,但臨床上仍存在很多問題。牙髓細(xì)胞具有很強(qiáng)的分化和再生牙本質(zhì)牙髓復(fù)合體的能力,也是再生醫(yī)學(xué)研究的重要對(duì)象。據(jù)報(bào)道,牙髓細(xì)胞分化的分子機(jī)制受堿性成纖維細(xì)胞生長因子(bFGF)、轉(zhuǎn)化生長因子β(TGFβ)、神經(jīng)生長因子(NGF)、血小板衍生生長因子(PDGF)和骨形態(tài)發(fā)生蛋白(BMP)等基因的調(diào)控[2]。微小RNA(miRNA)是一種非編碼RNA,長度在18~25 個(gè)核苷酸,其通過識(shí)別靶基因,抑制靶基因mRNA 的翻譯,從而在生物的發(fā)育、細(xì)胞增殖、凋亡、分化及腫瘤中發(fā)揮作用[3-4]。目前已發(fā)現(xiàn),大量miRNA參與牙髓細(xì)胞的分化調(diào)控[5],其中包括新發(fā)現(xiàn)的miR-508-3p[6]。AF4/FMR2 家庭成員4(AFF4)是AF4/FMR2 家族的最末位成員。AFF1 和AFF4 都是重要的表觀遺傳調(diào)控因子,其在人骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞成骨分化過程中的作用不同,其中AFF4 在促進(jìn)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞成骨分化中起著關(guān)鍵作用[7]。本研究通過構(gòu)建缺氧誘導(dǎo)的牙髓細(xì)胞模型,觀察過表達(dá)miR-508-3p或敲減AFF4 對(duì)缺氧牙髓細(xì)胞分化的影響及相關(guān)機(jī)制。

    1 材料與方法

    1.1 主要試劑和儀器 DMEM 培養(yǎng)基、胎牛血清、胰蛋白酶均購自大連TaKaRa;pcDNA3.1(貨號(hào):HG-VPI0001)、pcDNA3.1-AFF4(貨 號(hào):GM-10405OP01)購自上海吉滿生物科技有限公司;兔抗AFF4、DMP1、DSPP、OCN、ALP、TGFβ1、Smad、BMP抗體、辣根過氧化物酶標(biāo)記的山羊抗兔二抗均購自上海艾博抗公司;熒光素酶報(bào)告基因試劑盒購自上海吉滿生物公司;RNA 抽提試劑盒、RT-qPCR試劑盒、ECL均購自碧云天。半干轉(zhuǎn)膜儀購自美國BIO-RAD公司,凝膠成像分析儀購自柯達(dá)公司。本試驗(yàn)所用所有引物、質(zhì)粒、mimics-NC、miR-508-3p mimics、si-NC、si-AFF4 序列均由上海吉瑪基因提供。

    1.2 牙髓細(xì)胞的分離培養(yǎng) 收集2019 年2 月至2021年5月自貢市第一人民醫(yī)院拔除的無病變健康前磨牙或第三磨牙。無菌條件下取出牙髓組織,PBS洗凈,剪碎,用Ⅰ型膠原酶消化1 h。收集細(xì)胞,用20%胎牛血清的高糖DMEM 培養(yǎng)基置于37 ℃、5%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。待細(xì)胞貼壁后,隔2 d 換液1 次,0.25%胰酶消化傳代。取第3~6 代的細(xì)胞用于實(shí)驗(yàn)研究。

    1.3 缺氧牙髓細(xì)胞模型的建立與分組轉(zhuǎn)染 用200 μmol/mL 的氯化鈷(CoCl2)溶液處理牙髓細(xì)胞24 h,建立缺氧模型,記為實(shí)驗(yàn)組。用等量生理鹽水處理的牙髓細(xì)胞為對(duì)照組。使用Lipofectamine?2000 脂質(zhì)體將miR-NC 組(轉(zhuǎn)染mimics-NC)、miR-508-3p組(轉(zhuǎn)染miR-508-3p mimics)、si-NC組(轉(zhuǎn)染si-NC)、si-AFF4 組(轉(zhuǎn)染si-AFF4)、miR-508-3p+pcDNA 組(共轉(zhuǎn)染miR-508-3p mimics 和pcDNA)、miR-508-3p+pcDNA-AFF4 組(共轉(zhuǎn)染miR-508-3p mimics 和pcDNA-AFF4)轉(zhuǎn)染至實(shí)驗(yàn)組牙髓細(xì)胞。轉(zhuǎn)染48 h后,用RT-qPCR法檢測(cè)轉(zhuǎn)染效率。

    1.4 RT-qPCR 實(shí)驗(yàn) 提取細(xì)胞總RNA,逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,進(jìn)行PCR 反應(yīng)。miR-508-3p 內(nèi)參為U6,AFF4、DMP1、DSPP、OCN、ALP 內(nèi)參為GAPDH。用2-△△Ct法計(jì)算miR-508-3p、AFF4、DMP1、DSPP、OCN、ALP的表達(dá)。PCR反應(yīng)條件:94 ℃變性2 min;94 ℃變性30 min;58 ℃退火30 s;72 ℃延伸2 min,共45 個(gè)循環(huán)。引物序列如下:miR-508-3p 上游:5’-ACACTCCAGCTGGGTACTCCAGAGGGCGTCACT-3’,下游:5’-TGGTGTCGTGGAGTCG-3’;DMP1 上游:5’-GTGAGTGAGTCCAGGGGAGATAA-3’,下游:5’-TTTTGAGTGGGAGAGTGTGTGCC-3’;DSPP 上游:5’-GGGACACAGGAAA-AGCAGAA-3’,下 游:5’-TGCTCCATTCCCACTAGGAC-3’;OCN 上游:5’-CTCACACTCCTCGCCCTATT-3’,下游:5’-TTGGACACAAAGGCTGCAC-3’;ALP上游:5’-CTATCCTGGCTCCGTGCTC-3’,下游:5’-GCTGGCAGTGGTCAGATGTT-3’;GAPDH上游:5’-GTTGTCTCCTGCGACTTCA-3’,下游:5’-GGTGGTCCAGGGTTTCTTA-3’;U6 上游:5’-GCTTCGGCAGCACATATACTAAAAT-3’,下游:5’-CGCTTC ACGAATTTGCGTGTCAT-3’。

    1.5 Western blotting 實(shí)驗(yàn) 將細(xì)胞充分裂解,提取總蛋白,并進(jìn)行定量、煮沸變性。SDS-PAGE 電泳,將蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF 膜,脫脂奶粉封閉,加入一抗AFF4(1∶1 000)、DMP1(1∶1 000)、DSPP(1∶500)、OCN(1∶1 000)、ALP(1∶1 000)、TGFβ1(1∶800)、Smad(1∶2 000)、BMP(1∶1 500)4 ℃孵育過夜;洗膜,加入山羊抗兔二抗溶液(1∶500)37 ℃孵育2 h,洗膜,ECL 顯影、曝光。ImageJ 分析蛋白條帶灰度值。以目的蛋白條帶灰度值與內(nèi)參GAPDH條帶灰度值的比值作為目的蛋白相對(duì)表達(dá)量。

    1.6 雙熒光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn) 在線預(yù)測(cè)網(wǎng)站Starbase(http://starbase.sysu.edu.cn)預(yù)測(cè)到miR-508-3p 與AFF4 存在靶向關(guān)系。將AFF4 3’UTR WT、AFF4 3’UTR MUT分別與miR-NC、miR-508-3p、anti-miR-NC、anti-miR-508-3p 構(gòu)建重組載體質(zhì)粒,并共轉(zhuǎn)染至293T 細(xì)胞。用雙熒光素酶活性檢測(cè)試劑盒測(cè)定細(xì)胞中螢火蟲熒光素酶的熒光值與海腎熒光素酶的熒光值的比值。

    1.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 用PEMS 3.2軟件分析數(shù)據(jù)。計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差()表示,多組間比較采用方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn),以P<0.05為差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 miR-508-3p、AFF4 及牙髓分化指標(biāo)在缺氧誘導(dǎo)牙髓細(xì)胞中的表達(dá) 與對(duì)照組相比,實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞中miR-508-3p 的表達(dá)顯著升高,AFF4、DMP1、DSPP、OCN、ALP 表達(dá)均顯著降低(均P<0.01),見圖1。

    圖1 miR-508-3p、AFF4及牙髓分化檢測(cè)指標(biāo)在缺氧誘導(dǎo)牙髓細(xì)胞中的表達(dá)

    2.2 過表達(dá)miR-508-3p 或敲減AFF4 對(duì)缺氧誘導(dǎo)牙髓細(xì)胞分化的影響 與miR-NC 組相比,miR-508-3p組miR-508-3p表達(dá)顯著升高,AFF4、DMP1、DSPP、OCN、ALP 的表達(dá)均顯著降低(均P<0.01)。與si-NC 組相比,si-AFF4 組miR-508-3p 表達(dá)升高,AFF4、DMP1、DSPP、OCN、ALP 的表達(dá)均明顯降低(均P<0.01),見圖2。

    圖2 過表達(dá)miR-508-3p或敲減AFF4對(duì)缺氧牙髓細(xì)胞分化的影響

    2.3 miR-508-3p 靶 向AFF4 Starbase(http://starbase.sysu.edu.cn)預(yù)測(cè)到miR-508-3p與AFF4之間的互補(bǔ)堿基序列,見圖3A。與miR-NC 組相比,miR-508-3p組AFF4 3’UTR WT細(xì)胞的熒光活性顯著降低(P<0.01),而AFF4 3’UTR MUT 組細(xì)胞的熒光活性變化不明顯,見圖3B;與miR-NC組相比,miR-508-3p組AFF4 蛋白表達(dá)顯著降低,與anti-miR-NC組相比,anti-miR-508-3p 組AFF4 蛋白表達(dá)顯著升高(P<0.01),見圖3C。

    圖3 miR-508-3p與AFF4的靶向關(guān)系

    2.4 過表達(dá)AFF4 部分逆轉(zhuǎn)過表達(dá)miR-508-3p 對(duì)缺氧誘導(dǎo)牙髓細(xì)胞分化的作用 與miR-508-3p+pcDNA 組相比,miR-508-3p+pcDNA-AFF4 組誘導(dǎo)牙髓細(xì)胞中miR-508-3p 表達(dá)顯著降低,AFF4、DMP1、DSPP、OCN、ALP 的表達(dá)均明顯升高(P<0.01),見圖4。

    圖4 過表達(dá)AFF4對(duì)miR-508-3p的抑制誘導(dǎo)牙髓細(xì)胞分化作用的調(diào)控

    2.5 TGFβ1 信號(hào)通路在缺氧誘導(dǎo)牙髓細(xì)胞中受miR-508-3p、AFF4 調(diào)控 與miR-NC 組相比,miR-508-3p 組TGFβ1、Smad、BMP 蛋白表達(dá)均顯著降低(P<0.01);與miR-508-3p+pcDNA 組相比,miR-508-3p+pcDNA-AFF4組TGFβ1、Smad、BMP蛋白表達(dá)均顯著升高(P<0.01);與si-NC 組相比,si-AFF4組TGFβ1、Smad、BMP 蛋白表達(dá)均顯著降低(P<0.01),見圖5。

    圖5 TGFβ1信號(hào)通路關(guān)鍵蛋白TGFβ1的表達(dá)與miR-508-3p/AFF4的關(guān)系

    3 討論

    牙髓細(xì)胞分化所處的環(huán)境含氧量雖然遠(yuǎn)遠(yuǎn)低于正常細(xì)胞培養(yǎng)的含氧量,但是若牙髓細(xì)胞長期受到炎癥、外傷、牙菌斑侵蝕等,容易誘發(fā)牙髓組織的缺血缺氧[8-9]。袁曉琴等[10]在研究中使用化學(xué)法誘導(dǎo)牙髓細(xì)胞缺氧,模擬牙髓的缺氧環(huán)境,在此基礎(chǔ)上發(fā)現(xiàn),miR-210-3p參與牙髓在缺氧環(huán)境中的促增殖分化作用。因此,本研究建立了缺氧環(huán)境中的牙髓細(xì)胞模型,用于探究miR-508-5p、AFF4 在其中的功能及機(jī)制。

    miRNA參與人類的多種疾病的發(fā)病過程,其中包括牙髓疾病[11]。Liu等[12]研究報(bào)道,miR-508-5p在牙周發(fā)育的過程中表達(dá)逐漸降低,過表達(dá)miR-508-5p 后,牙髓細(xì)胞的分化能力顯著降低,miR-508-5p的這種抑制牙髓細(xì)胞分化功能可被非轉(zhuǎn)移性黑色素瘤糖蛋白B(GPNMB)逆轉(zhuǎn),揭示miR-508-5p 通過靶向GPNMB 發(fā)揮抑制牙髓細(xì)胞分化的調(diào)節(jié)機(jī)制。于是,猜測(cè)miR-508-3p可能參與調(diào)控缺氧條件下牙髓細(xì)胞的分化過程。本研究檢測(cè)了缺氧牙髓細(xì)胞中miR-508-5p 的表達(dá)發(fā)現(xiàn),其明顯升高,再次確定了miR-508-5p 在牙髓細(xì)胞分化中的抑制作用。本實(shí)驗(yàn)對(duì)miR-508-5p 過表達(dá)后的缺氧牙髓細(xì)胞進(jìn)行檢測(cè),檢測(cè)其中牙髓分化相關(guān)基因DMP1、DSPP、OCN、ALP 的表達(dá)發(fā)現(xiàn),其可抑制牙髓分化的上述基因表達(dá),這些結(jié)果與Liu 等[12]的實(shí)驗(yàn)結(jié)果相一致。通過熒光素酶實(shí)驗(yàn)進(jìn)行深入探究發(fā)現(xiàn),miR-508-5p可與靶向負(fù)調(diào)節(jié)AFF4的表達(dá)水平。推測(cè)這種靶向關(guān)系可能與miR-508-5p 的牙髓分化調(diào)節(jié)有關(guān)。這些實(shí)驗(yàn)結(jié)果揭示了miR-508-5p 在缺氧牙髓細(xì)胞中顯著升高,發(fā)揮抑制牙髓細(xì)胞分化功能,這種抑制功能與靶向AFF4緊密相關(guān)。

    近期,AFF4 在人類疾病發(fā)生發(fā)展中的調(diào)控功能的研究越來越多[13]。最近Xiao等[14]發(fā)現(xiàn),AFF4參與牙囊細(xì)胞的成骨分化過程,敲減AFF4 能夠下調(diào)成骨相關(guān)基因遠(yuǎn)端同源框5、核心結(jié)合因子a1 和骨γ-羧谷氨酸蛋白的表達(dá),而慢病毒介導(dǎo)的AFF4過表達(dá)則具有相反的作用,并顯著增強(qiáng)牙囊細(xì)胞的成骨能力,這種調(diào)控作用與AFF4上調(diào)ALKB同源蛋白1具有直接關(guān)系。Zhang 等[15]報(bào)道,慢病毒介導(dǎo)的AFF4 過表達(dá)能夠促進(jìn)牙髓細(xì)胞的成牙分化,而AFF4缺失則可抑制牙髓細(xì)胞分化,并且AFF4的這種功能與牙根形成關(guān)鍵因素核因子ⅠC相關(guān)。本研究發(fā)現(xiàn),AFF4 在缺氧牙髓細(xì)胞中表達(dá)下調(diào),敲減AFF4 可抑制牙髓分化相關(guān)基因DMP1、DSPP、OCN、ALP的表達(dá),并且過表達(dá)AFF4還可逆轉(zhuǎn)過表達(dá)miR-508-3p對(duì)DMP1、DSPP、OCN、ALP表達(dá)的下調(diào)作用。這說明了AFF4可逆轉(zhuǎn)miR-508-5p對(duì)牙髓細(xì)胞分化的抑制作用。

    大量研究報(bào)道,TGFβ1信號(hào)通路參與牙髓細(xì)胞損傷過程[16]。為了探究該通路是否受miR-508-3p、AFF4 的影響,本實(shí)驗(yàn)檢測(cè)了TGFβ1 信號(hào)通路關(guān)鍵基因TGFβ1、Smad、BMP 的表達(dá)情況,結(jié)果顯示,miR-508-5p 可抑制缺氧誘導(dǎo)的牙髓細(xì)胞中TGFβ1、Smad、BMP的表達(dá),敲減AFF4也具有相似的功能,而過表達(dá)AFF4可逆轉(zhuǎn)過表達(dá)miR-508-3p對(duì)TGFβ1、Smad、BMP 的抑制作用。這些實(shí)驗(yàn)結(jié)果展示了TGFβ1 信號(hào)通路的活性在缺氧牙髓細(xì)胞中受miR-508-3p 的抑制、AFF4 的 促進(jìn),揭示miR-508-5p/AFF4/TGFβ1信號(hào)通路在牙髓細(xì)胞分化中的調(diào)控機(jī)制。

    綜上所述,miR-508-5p 可抑制缺氧誘導(dǎo)的牙髓細(xì)胞分化,產(chǎn)生這種作用的機(jī)制與miR-508-5p靶向AFF4,抑制TGFβ1 信號(hào)通路活性有關(guān),本研究結(jié)果可為牙髓再生提供理論參考。

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