李慧敏,李鵬輝,吉蘭潔,閆 鏞
(1.河南中醫(yī)藥大學(xué),河南 鄭州 450046;2.開封市中醫(yī)院,河南 開封 475000)
2型糖尿病(Type 2 diabetes,T2DM)是常見的內(nèi)分泌疾病,預(yù)計2045年,全球T2DM患者將達(dá)到6.29億[1]。T2DM發(fā)病率高,發(fā)病機制復(fù)雜,易引起腸道菌群變化及腸道相關(guān)并發(fā)癥,腸道菌群的變化亦可影響T2DM的發(fā)生和發(fā)展[2-3]。糖尿病患者易并發(fā)腹瀉,其機制可能與外周血高糖引發(fā)腸黏膜屏障損傷及水通道蛋白表達(dá)異常有關(guān)[4-5]。連術(shù)消渴顆粒是閆鏞教授治療T2DM的經(jīng)驗方,臨床證實其治療T2DM療效較好[6]。本研究擬通過腹腔注射鏈脲佐菌素(Streptozotocin,STZ)制備T2DM大鼠模型,觀察連術(shù)消渴顆粒對T2DM模型大鼠糖代謝、腸道菌群、腸黏膜屏障功能及結(jié)腸水通道蛋白的影響,從多重角度初步闡釋連術(shù)消渴顆粒干預(yù)T2DM的作用機制。
1.1 實驗材料
1.1.1 實驗動物:60只健康SPF級SD雄性大鼠購自濟南朋悅實驗動物繁育有限公司,體重200~220 g,動物合格證號1107261911004137、生產(chǎn)許可證號SCXK(魯)20190003、實驗室使用許可證編號SYXK(豫)2015-0005,于22 ℃、50%濕度條件下飼養(yǎng)。
1.1.2 實驗藥物:連術(shù)消渴顆粒由黃連、澤瀉、山楂各30 g,蒼術(shù)、枳實、制半夏、陳皮各10 g,升麻、干姜、甘草各6 g,茯苓20 g,水蛭3 g,大棗3枚組成,由廣東一方制藥有限公司制成顆粒劑。
1.1.3 實驗試劑與儀器:STZ(批號LF20191009,北京六一生物科技公司);D-乳酸(D-lactic acid,D-LA)、連蛋白(Zonulin)ELISA 試劑盒(批號WHB647235、WHB647305,美國Cloud-Clone Corp公司);乳脂球表皮生長因子-8(Milk fat globule EGF factor-8,MFG-E8)(批號ab235638,英國Abcam科技公司);水通道蛋白4(Aquaporin 4,AQP4)、水通道蛋白8(Aquaporin 8,AQP8)、甘油醛-3-磷酸脫氫酶(Glyceraldehyde-3-phosphate dehydrogenase,Gapdh)單克隆抗體(批號ab125049、ab133667,英國Abcam公司);ChemDoc XRS型化學(xué)發(fā)光成像儀(美國Bio-rad公司)、703940型半干轉(zhuǎn)膜儀(美國Bio-rad公司)、1703539型垂直電泳儀(美國Bio-rad公司)。
1.2 實驗方法
1.2.1 建模、分組及給藥:60只SD大鼠隨機分為空白組、模型組、連術(shù)消渴顆粒低劑量組、連術(shù)消渴顆粒中劑量組、連術(shù)消渴顆粒高劑量組及二甲雙胍組,每組各10只??瞻捉M正常喂養(yǎng),其余各組大鼠喂養(yǎng)高脂高糖飼料,大鼠飼養(yǎng)30 d后禁食12 h,腹腔注射STZ,劑量為45 mg/kg,空白組大鼠腹腔注射等量檸檬酸鹽緩沖液。1周后,大鼠尾部少量取血,若空腹血糖(Fasting blood glucose,F(xiàn)BG)≥11.1 mmol/L,隨機血糖≥16.7 mmol/L提示2型糖尿病造模成功[6]。模型組、連術(shù)消渴顆粒低劑量組、連術(shù)消渴顆粒中劑量組、連術(shù)消渴顆粒高劑量組及二甲雙胍組最終分別成模8、8、9、8、9只。連術(shù)消渴顆粒低劑量組、連術(shù)消渴顆粒中劑量組、連術(shù)消渴顆粒高劑量組及二甲雙胍組大鼠分別給予連術(shù)消渴顆粒2.92、5.84、11.68 g/(kg·d)及鹽酸二甲雙胍片0.17 g/(kg·d)灌胃,空白組及模型組給予相同劑量的純凈水灌胃,各組大鼠均治療30 d。
1.2.2 糖代謝相關(guān)指標(biāo)檢測:采用江蘇魚躍血糖儀檢測各組大鼠血漿FBG水平,采用放射免疫分析法檢測各組大鼠空腹血清胰島素(Fasting serum lisulin,F(xiàn)INS)水平,并計算胰島素抵抗指數(shù)(Homeostasis model assessment for insulin resistance,HOMA-IR)。HOMA-IR=(FBG×FINS)/22.5。
1.2.3 腸道菌群檢測:治療30 d末取各組大鼠糞便0.2 g于無菌培養(yǎng)皿中,加入糞便體積10倍雙蒸水稀釋,充分震蕩后形成均質(zhì)化懸濁液,依次進(jìn)行10倍系列稀釋至10-7。不同稀釋度選擇需氧、厭氧培養(yǎng)基進(jìn)行菌群培養(yǎng),培養(yǎng)條件參照文獻(xiàn)進(jìn)行,對各組菌落數(shù)統(tǒng)計[7]。每克糞便的細(xì)菌數(shù)=菌落數(shù)×10 n×40,結(jié)果以每克糞便中的細(xì)菌菌落數(shù)的對數(shù)值Log CFU/g表示。
1.2.4 腸黏膜屏障功能檢測:抽取各組大鼠外周血,2000 r/min條件下分離血清,采用ELISA法檢測各組大鼠血清中D-LA、Zonulin及MFG-E8含量,操作流程嚴(yán)格按照說明書進(jìn)行。
1.2.5 水通道蛋白檢測:取各組大鼠結(jié)腸組織并制備組織勻漿,應(yīng)用冷研磨法破壞組織,BCA法測定各樣本蛋白濃度。各組均取10 μl樣本液和5 μl蛋白Marker加入電泳裝置中,10% SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳分離蛋白,待電泳結(jié)束后將含蛋白SDS-聚丙烯酰胺凝膠轉(zhuǎn)移到PVDF膜,5%脫脂奶粉常溫封閉4 h,加入AQP4一抗、AQP8一抗4 ℃封閉過夜,次日取出PVDF膜,PBS液洗膜3次,加入二抗后常溫下孵育2 h,取出PVDF膜,PBS液洗膜3次,ECL顯像,暗室曝光,掃描膠片,采用凝膠圖象處理系統(tǒng)分析結(jié)果。實驗獨立重復(fù)3次。目標(biāo)蛋白相對表達(dá)量=目的蛋白的灰度值/Gapdh的灰度值。
2.1 各組大鼠糖代謝指標(biāo)比較 見表1。與空白組比較,模型組大鼠FINS降低,F(xiàn)BG、HOMA-IR水平均升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);與模型組比較,連術(shù)消渴顆粒低劑量組、連術(shù)消渴顆粒中劑量組、連術(shù)消渴顆粒高劑量組及二甲雙胍組FINS水平均升高,F(xiàn)BG、HOMA-IR水平均降低,且呈劑量依賴性,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05)。
表1 各組大鼠糖代謝指標(biāo)比較
2.2 各組大鼠腸道菌群比較 見表2。與空白組比較,模型組大鼠糞便培養(yǎng)中大腸桿菌數(shù)量增加,雙歧桿菌、乳酸桿菌數(shù)量降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05);與模型組比較,連術(shù)消渴顆粒低劑量組、連術(shù)消渴顆粒中劑量組、連術(shù)消渴顆粒高劑量組及二甲雙胍組大鼠糞便培養(yǎng)中大腸桿菌數(shù)量降低,雙歧桿菌、乳酸桿菌數(shù)量增加,且呈劑量依賴性,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05)。
表2 各組大鼠腸道菌群比較(Log CFU/g)
2.3 各組大鼠腸黏膜屏障功能標(biāo)記物比較 見表3。與空白組比較,模型組大鼠血清腸黏膜屏障功能標(biāo)記物D-LA、Zonulin含量升高,MFG-E8含量降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05)。與模型組比較,連術(shù)消渴顆粒低劑量組、連術(shù)消渴顆粒中劑量組、連術(shù)消渴顆粒高劑量組及二甲雙胍組大鼠血清中D-LA、Zonulin含量降低,MFG-E8含量升高,且呈劑量依賴性,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05)。
表3 各組大鼠腸黏膜屏障功能標(biāo)記物比較
2.4 各組大鼠結(jié)腸水通道蛋白表達(dá)比較 見表4(圖1)。與空白組比較,模型組大鼠結(jié)腸組織中AQP4、AQP8表達(dá)均降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05);與模型組比較,連術(shù)消渴顆粒低劑量組、連術(shù)消渴顆粒中劑量組、連術(shù)消渴顆粒高劑量組及二甲雙胍組AQP4、AQP8表達(dá)均升高,且呈劑量依賴性,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。
表4 各組大鼠結(jié)腸組織中AQP4、AQP8表達(dá)比較
A:空白組;B:模型組;C:連術(shù)消渴顆粒低劑量組;D:連術(shù)消渴顆粒中劑量組;E:連術(shù)消渴顆粒高劑量組;F:二甲雙胍組
糖尿病屬于中醫(yī)“消渴”范疇,由近代醫(yī)家張錫純首次明確“消渴”即糖尿病。糖尿病有虛實燥熱之別,主要病機為脾胃受損、升降運化失司、濕熱瘀結(jié)所致,治療方面立足于中焦脾胃,立法為運脾清熱,瀉濁化瘀,重鑄中焦運化,方可改善機體對營養(yǎng)物質(zhì)的吸收,濡養(yǎng)五臟六腑,輸布百骸精微。連術(shù)消渴顆粒是閆鏞教授治療T2DM的經(jīng)驗方,其組成是在“升降散”“黃連溫膽湯”治療消渴病的基礎(chǔ)上,結(jié)合多年臨床經(jīng)驗化裁而來,全方由黃連、蒼術(shù)、枳實、升麻、制半夏、陳皮、茯苓、澤瀉、山楂、水蛭、干姜、大棗、甘草組成,共成運脾、宣導(dǎo)、清熱、升陽、通瘀之法,標(biāo)本兼顧,則脾運、濁化、瘀消,三焦、經(jīng)絡(luò)通暢,消渴自除[8]。
腸道菌群數(shù)量龐大,約有500~1000種類型,其數(shù)量是人體自身細(xì)胞的10倍之多,可與宿主以物質(zhì)的形式進(jìn)行信息交流及物質(zhì)交換,是人體后天獲得的“器官”,參與宿主的生長、生活、營養(yǎng)、代謝和疾病發(fā)展過程[9-13]。腸道菌群可通過結(jié)構(gòu)變化影響宿主對營養(yǎng)的需求及情緒變化,導(dǎo)致體重、糖脂代謝、膽汁酸鹽代謝紊亂及免疫失衡,參與T2DM的發(fā)病[14]。已有研究證實中藥復(fù)方可通過調(diào)節(jié)腸道菌群,對T2DM起到一定的治療作用[15]。本團隊通過腹腔注射STZ建立經(jīng)典T2DM大鼠模型,發(fā)現(xiàn)T2DM大鼠腸道菌群中大腸桿菌數(shù)量增加,雙歧桿菌及乳酸桿菌數(shù)量降低,整體腸道菌群結(jié)構(gòu)變化,這與張海平等[16]研究結(jié)果相似。通過不同劑量連術(shù)消渴顆粒進(jìn)行干預(yù)治療后,大鼠糖代謝功能改善,F(xiàn)INS升高,F(xiàn)BG及HOMA-IR均降低,糞便培養(yǎng)大腸桿菌數(shù)量降低,雙歧桿菌及乳酸桿菌數(shù)量增加,呈劑量依賴性,并且高劑量組上述指標(biāo)改善后水平與空白組相近,說明高劑量連術(shù)消渴顆粒治療T2DM效果較好,可基本改善大鼠血糖升高及胰島素抵抗?fàn)顟B(tài),其機制可能與改善腸道菌群結(jié)構(gòu),增強微生物對糖分酵解作用并調(diào)節(jié)腸道對糖分吸收功能有關(guān)。
腸黏膜屏障功能與糖尿病的發(fā)生及發(fā)展密切相關(guān),二者互為因果,高糖可破壞腸黏膜完整性,而腸黏膜屏障完整性被破壞導(dǎo)致小腸絨毛性水腫,影響降糖藥物吸收,從而導(dǎo)致血糖升高[17-18]。D-LA、Zonulin及MFG-E8是目前公認(rèn)的腸黏膜屏障功能血清標(biāo)志物,雖然三者產(chǎn)生機制不同,但均可準(zhǔn)確反映腸黏膜屏障功能狀態(tài)[19-20]。本研究發(fā)現(xiàn),T2DM大鼠存在腸黏膜屏障功能損傷,血清D-LA、Zonulin含量升高,MFG-E8含量降低,經(jīng)連術(shù)消渴顆粒治療后,D-LA、Zonulin及MFG-E8水平均得到改善,說明連術(shù)消渴顆粒的降糖效果可能與修復(fù)腸黏膜屏障功能有關(guān)。因此推測連術(shù)消渴顆粒對T2DM大鼠腸黏膜屏障功的改善可能是中藥對腸黏膜的直接作用,治療后增強了腸黏膜屏障的完整性;也可能是連術(shù)消渴顆粒調(diào)整T2DM大鼠腸道菌群結(jié)構(gòu),減輕對腸黏膜屏障的破壞,有效阻滯腸內(nèi)微生物、內(nèi)毒素、有毒食物及食物抗原的入侵,從而改善大鼠自身胰島素抵抗?fàn)顟B(tài),達(dá)到降糖目的。
《傷寒論·辨厥陰病脈證并治第十二》言:“厥陰之為病,消渴,氣上……下之利不止”,津液代謝紊亂是T2DM的特征之一。大腸與肺相表里,主津,是人體水液代謝的重要一環(huán),大腸可吸收食物中的水分,行津液于上焦,清降肺火,又可灌溉肌膚,充實腠理。水通道蛋白是大腸、結(jié)腸對水液吸收的主要運載“工具”,既往對T2DM水通道蛋白的研究主要集中在心、肺、腎,結(jié)腸中水通道蛋白的報道較少[21]。AQP4、AQP8均在結(jié)腸中表達(dá),其中AQP4是目前已知的水轉(zhuǎn)移能力最強的蛋白,高于其他水通道蛋白3~4倍,AQP8有獨特的水液重吸收功能[22-23]。本研究結(jié)果提示,T2DM大鼠結(jié)腸組織AQP4、AQP8表達(dá)均明顯降低,經(jīng)高劑量連術(shù)消渴顆粒治療后AQP4、AQP8表達(dá)均升高至正常水平。說明連術(shù)消渴顆??筛纳芓2DM大鼠結(jié)腸水液代謝功能,一方面可能通過中藥復(fù)方直接起效,增加水通道蛋白表達(dá),另一方面可能通過調(diào)節(jié)大鼠腸道菌群結(jié)構(gòu)、恢復(fù)腸黏膜屏障功能而降低血糖,從而對結(jié)腸水通道蛋白起到保護作用。
綜上所述,連術(shù)消渴顆??筛纳芓2DM模型大鼠糖代謝,修復(fù)腸黏膜屏障功能,提高結(jié)腸水通道蛋白表達(dá),其機制可能與改善腸道菌群有關(guān)。