張曉東 李彩霞 王元忠
摘要:克隆滇龍膽7-脫氧番木鱉酸-7-羥化酶基因GrDL7H,并進(jìn)行表達(dá)分析,為龍膽苦苷生物合成途徑的解析奠定基礎(chǔ)。根據(jù)滇龍膽轉(zhuǎn)錄組GrDL7H序列,使用RT-PCR(逆轉(zhuǎn)錄PCR)和3′RACE(cDNA末端快速擴(kuò)增)技術(shù)從滇龍膽幼葉中克隆該基因及其啟動(dòng)子,并進(jìn)行序列分析和組織特異性表達(dá)分析。結(jié)果表明,GrDL7H基因(登錄號(hào):KT306971)全長(zhǎng)2 154 bp,包含5個(gè)外顯子和4個(gè)內(nèi)含子,其中GrDL7H基因(登錄號(hào):KP340980)開放閱讀框長(zhǎng) 1 542 bp,編碼513個(gè)氨基酸;GrDL7H蛋白質(zhì)相對(duì)分子質(zhì)量為59.08 ku,等電點(diǎn)(pI值)為8.88,屬于CYP450蛋白超家族成員,可能定位于葉綠體;GrDL7H蛋白質(zhì)無(wú)信號(hào)肽,為親水穩(wěn)定蛋白質(zhì),主要由α-螺旋和環(huán)構(gòu)成;GrDL7H蛋白質(zhì)具有CYP450蛋白質(zhì)保守結(jié)構(gòu)域,功能為參與氧化還原反應(yīng);滇龍膽GrDL7H蛋白質(zhì)與黃金雞納樹CcDL7H蛋白質(zhì)的親緣關(guān)系最近;GrDL7H基因啟動(dòng)子主要包含6個(gè)光應(yīng)答元件、1個(gè)赤霉素應(yīng)答元件、6個(gè)參與茉莉酸甲酯應(yīng)答的順式調(diào)控元件和1個(gè)熱脅迫應(yīng)答元件等;組織特異性表達(dá)分析結(jié)果表明,GrDL7H基因主要在葉片中表達(dá)。
關(guān)鍵詞:滇龍膽;7-脫氧番木鱉酸-7-羥化酶;基因克隆;表達(dá)分析
中圖分類號(hào): S188;Q78 ?文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A ?文章編號(hào):1002-1302(2019)17-0076-06
滇龍膽(Gentiana rigescens Franch. ex Hemsl.)為多年生草本植物,主要分布于云南、四川等地,其根部主要用來治療肝炎和膽囊炎[1-2]。目前,由于滇龍膽的市場(chǎng)需求量逐年增加,野生滇龍膽遭到人為大肆破壞[3]。從合成生物學(xué)角度來看,滇龍膽的主要藥效成分為龍膽苦苷,要大量合成龍膽苦苷,首先必須先弄清龍膽苦苷的生物合成途徑及其調(diào)控機(jī)制。
萜類生物合成途徑包括基本前體形成、碳骨架結(jié)構(gòu)形成和萜類化合物的結(jié)構(gòu)后修飾3個(gè)階段[4]。7-脫氧番木鱉 酸-7-羥化酶(CrDL7H)是萜類龍膽苦苷生物合成途徑第二階段重要的酶,能夠催化7-脫氧番木鱉酸生成番木鱉酸[5]。在長(zhǎng)春花中,有研究者通過病毒誘導(dǎo)的基因沉默技術(shù)鑒定了 7- 脫氧番木鱉酸-7-羥化酶,CrDL7H基因沉默后,裂環(huán)番木鱉苷含量減少了70%,7-脫氧番木鱉酸鮮質(zhì)量含量增加到4 mg/g,且在裂環(huán)番木鱉苷途徑中羥基化先于羧基氧甲基化[5]。使用表達(dá)CrDL7H酶的酵母微體進(jìn)行酶動(dòng)力學(xué)分析,結(jié)果表明其米氏常數(shù)Km和最大速率Vmax分別為(111.07±14.80) μmol/min和(5.50±0.77) μmol/min[6]。目前,CrDL7H酶基因已從長(zhǎng)春花、小曼長(zhǎng)春花、蘿芙木、秀麗藤、金銀花、金雞納樹、水甘草等許多植物中分離[5],但是目前僅在長(zhǎng)春花中進(jìn)行過詳細(xì)的研究。DL7H基因表達(dá)具有組織特異性。在川西獐牙菜中,SmDL7H基因在葉中的表達(dá)量最高,其次是莖和花,在根中的表達(dá)量最低;并且與G10H、IS、IO、SLS2等基因表達(dá)量相比,DL7H基因的表達(dá)量相對(duì)較低[7]。在長(zhǎng)春花中,CrDL7H基因主要在葉中表達(dá),在第1對(duì)葉中表達(dá)量最高,在第2、3、4、5對(duì)葉中的表達(dá)量逐漸降低,且對(duì)應(yīng)的長(zhǎng)春堿與裂環(huán)番木鱉苷的含量逐漸減少;其次是莖和花,表達(dá)量最低的為根[8]。
目前,由于龍膽科植物的基因組并未測(cè)序,導(dǎo)致龍膽苦苷生物合成途徑并不完全清楚[9]。本研究根據(jù)筆者于2013年在滇龍膽轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)庫(kù)中檢索的GrDL7H基因序列,設(shè)計(jì)特異性引物,通過逆轉(zhuǎn)錄PCR(RT-PCR)技術(shù)成功從滇龍膽葉片中擴(kuò)增到GrDL7H基因,然后根據(jù)所克隆基因序列設(shè)計(jì)引物,對(duì)該基因的啟動(dòng)子序列進(jìn)行擴(kuò)增和分析,最后對(duì)二年生滇龍膽根、莖、葉、花等不同組織中GrDL7H基因的表達(dá)情況進(jìn)行分析,以期為滇龍膽龍膽苦苷生物合成途徑的解析提供幫助。
1 材料與方法
1.1 試驗(yàn)材料
基因克隆和啟動(dòng)子擴(kuò)增所用材料為滇龍膽無(wú)菌苗幼葉,采自玉溪師范學(xué)院分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)室,經(jīng)云南省農(nóng)業(yè)科學(xué)院藥用植物研究所金航研究員鑒定為滇龍膽,采樣日期為2014年5月17日。qPCR(實(shí)時(shí)定量基因擴(kuò)增)分析使用的二年生滇龍膽植株采自臨滄市云縣臨滄耀陽(yáng)生物藥業(yè)科技有限公司后箐基地,由該公司技術(shù)經(jīng)理董順福鑒定為滇龍膽,采樣日期為2018年4月30日。
1.2 試驗(yàn)方法
1.2.1 GrDL7H基因的擴(kuò)增 采用多糖植物組織提取試劑盒提取滇龍膽幼葉總RNA,采用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒合成cDNA,采用植物基因組DNA提取試劑盒[寶生物工程(大連)有限公司]提取滇龍膽葉片DNA。根據(jù)前期測(cè)序的滇龍膽轉(zhuǎn)錄組GrDL7H基因轉(zhuǎn)錄本序列,設(shè)計(jì)1對(duì)特異引物GrDL7H EcoRⅠ-F、GrDL7H-R(表1)。以cDNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,反應(yīng)體系如下:PrimeSTAR Max Premix(2×,TaKaRa)25 μL,cDNA模板2 μL,正反向引物(10 μmol/L)各1 μL,加ddH2O補(bǔ)足50 μL。PCR反應(yīng)條件如下:98 ℃ 10 s,55 ℃ 10 s,72 ℃ 10 s,30個(gè)循環(huán);72 ℃ 5 min。PCR產(chǎn)物經(jīng)1.0%瓊脂糖凝膠電泳分離,然后割膠,使用膠回收試劑盒(德國(guó)QIAGEN)對(duì)目的片段進(jìn)行回收,將其連接到pMD19-T載體上。轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α[寶生物工程(大連)有限公司]后進(jìn)行藍(lán)白斑篩選,挑取12個(gè)白斑搖菌;使用試劑盒(北京百泰克生物技術(shù)有限公司)提取質(zhì)粒,經(jīng)酶切檢測(cè)正確后進(jìn)行測(cè)序[生工生物工程(上海)股份有限公司],獲得重組質(zhì)粒pMD19-fGrDL7H。根據(jù)測(cè)序結(jié)果,設(shè)計(jì)基因特異性引物GrDL7H 3RACE-F,進(jìn)行3′ cDNA末端快速擴(kuò)增(RACE)。使用DNAMAN軟件比對(duì)后,進(jìn)行基因片段拼接,獲得GrDL7H基因ORF(開放閱讀框)全長(zhǎng)。設(shè)計(jì)基因特異性引物,分別以cDNA和gDNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,PCR產(chǎn)物進(jìn)行TA克隆后,分別進(jìn)行DNA測(cè)序。
1.2.2 GrDL7H基因啟動(dòng)子的克隆 根據(jù)“1.2.1”節(jié)中克隆到的滇龍膽GrDL7H基因序列,設(shè)計(jì)基因特異引物GrDL7H-sp2和GrDL7H-sp3(表1)。采用Universal Genome Walker 2.0試劑盒,分別使用DraⅠ、EcoR V、PuvⅡ和StuⅠ酶切滇龍膽基因組DNA,加接頭后,構(gòu)建文庫(kù)DL1、DL2、DL3和DL4,然后進(jìn)行2輪PCR擴(kuò)增。第1輪PCR總體系為25 μL,具體成分如下:DL1 g DNA 1 μL,50×Advantage 2聚合酶混合物0.5 μL,10×Advantage 2 PCR Buffer 1 μL,AP1(10 μmol/L)1 μL,dNTP(10 mmol/L)1 μL,GrDL7H-sp2(10 μmol/L)1 μL,ddH2O 19.5 μL,反應(yīng)條件為94 ℃ 25 s、72 ℃ 3 min,7個(gè)循環(huán);94 ℃ 25 s、67 ℃ 3 min,32個(gè)循環(huán);63 ℃ 7 min。第2輪PCR總體系為25 μL,具體成分如下:第1輪PCR產(chǎn)物 1 μL,50×Advantage 2聚合酶混合物0.5 μL,10×Advantage 2 PCR 1 μL,AP1(10 μmol/L) 1 μL緩沖液,dNTP(10 mmol/L)1 μL,GrDL7H-sp3(10 μmol/L)1 μL,ddH2O 19.5 μL,反應(yīng)條件為94 ℃ 25 s、72 ℃ 3 min,5個(gè)循環(huán);94 ℃ 25 s、67 ℃ 3 min,20個(gè)循環(huán);63 ℃ 7 min。第2輪PCR產(chǎn)物經(jīng)TA克隆,獲得重組質(zhì)粒pMD19-pGrDL7H,菌液送生工生物工程(上海)股份有限公司進(jìn)行DNA測(cè)序。
1.2.3 GrDL7H基因及啟動(dòng)子的生物信息學(xué)分析 用美國(guó)國(guó)立生物技術(shù)信息中心(NCBI)網(wǎng)站的BLAST程序進(jìn)行序列比對(duì),用Genetyx 6.1.8軟件進(jìn)行翻譯,用DNAMAN 7進(jìn)行多序列比對(duì);用Clustal X 2.1進(jìn)行比對(duì),然后使用MEGA 6.0軟件內(nèi)置的NJ(鄰接)法構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹,設(shè)置Bootstrap(自抽樣)=1 000;利用在線數(shù)據(jù)庫(kù)(http://molbiol. edu.ru/eng/scripts/01_11.html)進(jìn)行稀有密碼子分析。使用ChloroP服務(wù)器v 1.1進(jìn)行葉綠體轉(zhuǎn)運(yùn)肽預(yù)測(cè);使用Interpro軟件進(jìn)行保守結(jié)構(gòu)域預(yù)測(cè);使用ProtScale軟件進(jìn)行疏水性分析,方法為Hphob./Kyte & Doolittle量表法;使用PredictProtein對(duì)二級(jí)結(jié)構(gòu)進(jìn)行預(yù)測(cè);使用Phyre2(http://www.sbg.bio.ic.ac.uk/phyre2/html/page.cgi?id=index)對(duì)三級(jí)結(jié)構(gòu)進(jìn)行預(yù)測(cè);利用Expasy中的TMHMM工具預(yù)測(cè)蛋白質(zhì)的跨膜螺旋區(qū);利用在線工具Wolf Psort預(yù)測(cè)蛋白質(zhì)的亞細(xì)胞定位情況。使用GT-AG原則,將ORF序列與gDNA序列進(jìn)行比對(duì),進(jìn)行外顯子與內(nèi)含子的分析。使用啟動(dòng)子在線分析網(wǎng)站PlantCARE(http://bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/plantcare/html/)對(duì)克隆到的GrDL7H基因啟動(dòng)子序列進(jìn)行分析。
1.2.4 GrDL7H基因的熒光實(shí)時(shí)定量分析 分別取二年生滇龍膽的根、莖、葉、花,使用MiniBEST Plant RNA Extraction Kit[寶生物工程(大連)有限公司]提取總RNA,使用PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser[寶生物工程(大連)有限公司]處理除去基因組DNA,然后反轉(zhuǎn)錄合成第1鏈cDNA。以轉(zhuǎn)錄組中GrACTIN基因(GenBank登錄號(hào)為KM061807)作為內(nèi)參和GrDL7H基因ORF序列設(shè)計(jì)特異性引物(表1)。PCR體系如下:TB GreenPremix Ex TaqⅡ(Tli RNaseH Plus)10 μL,ddH2O 7 μL,cDNA 1 μL,正反向引物各1 μL。qPCR條件:95 ℃ 5 min;95 ℃ 15 s,60 ℃ 15 s,72 ℃ 20 s,重復(fù)4次。在LightCycler 480 Ⅱ熒光定量PCR儀(Roche,瑞士)上進(jìn)行擴(kuò)增反應(yīng),擴(kuò)增曲線、溶解曲線、標(biāo)準(zhǔn)曲線由軟件自動(dòng)生成。使用內(nèi)參基因GrACTIN表達(dá)校準(zhǔn)后,計(jì)算根、莖、葉中GrDL7H基因的相對(duì)表達(dá)量。采用比較CT值的2-ΔΔCT的方法進(jìn)行定量數(shù)據(jù)的分析處理。
2 結(jié)果與分析
2.1 滇龍膽GrDL7H基因的克隆
以滇龍膽幼葉cDNA為模板,使用表1中的基因特異性引物GrDL7H EcoRⅠ-F和GrDL7H-R擴(kuò)增出約1 500 bp的片段。通過TA克隆獲得重組質(zhì)粒pMD19-fGrDL7H,然后進(jìn)行DNA測(cè)序。結(jié)果表明,fGrDL7H長(zhǎng)1 502 bp,不含3′末端。使用SMART RACE試劑盒進(jìn)行擴(kuò)增,獲得600 bp DNA片段(圖1-A)。使用DNAMAN軟件對(duì)GrDL7H基因片段進(jìn)行組裝,結(jié)果發(fā)現(xiàn)GrDL7H基因ORF全長(zhǎng)1 542 bp(圖1-B,登錄號(hào):KP340980)。使用GrDL7H EcoR Ⅰ-F和GrDL7H EcoR Ⅰ-R對(duì)GrDL7H基因的基因組DNA(gDNA)進(jìn)行擴(kuò)增,結(jié)果顯示GrDL7H基因長(zhǎng)2 154 bp(圖1-C,登錄號(hào):KT306971),包含5個(gè)外顯子和4個(gè)內(nèi)含子(圖1-D)。
2.2 GrDL7H基因的生物信息學(xué)分析
2.2.1 GrDL7H基因的ORF分析和多序列比對(duì)分析 利用Genetyx 6軟件對(duì)GrDL7H基因的ORF序列進(jìn)行分析,該基因(GenBank登錄號(hào)為KP722033.1)長(zhǎng)1 542 bp,編碼513個(gè)氨基酸。
利用GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)的BLASTP程序?qū)rDL7H蛋白質(zhì)進(jìn)行比對(duì)分析,結(jié)果表明,滇龍膽GrDL7H與蘿芙木RsDL7HT(78.17%)、黃金雞納樹CcDL7H(77.78%)、長(zhǎng)春花CrDL7H(77.73%)的序列相似性均較高,與擬南芥AtDL7H(51.47%)的蛋白質(zhì)相似性稍低。利用DNAMAN 7將GrDL7H蛋白質(zhì)序列與NCBI中相似性較高的部分序列進(jìn)行多序列比對(duì)分析,結(jié)果表明,GrDL7H蛋白質(zhì)與已知蛋白質(zhì)序列的保守性較高(圖2)。利用MEGA 7.0軟件將GrDL7H氨基酸序列與NCBI中相似性較高的部分序列進(jìn)行系統(tǒng)發(fā)育分析,結(jié)果顯示,滇龍膽GrDL7H蛋白質(zhì)與黃金雞納樹CcDL7H的親緣關(guān)系較近(圖3)。
2.2.2 GrDL7H蛋白質(zhì)的理化特性分析 使用ExPASy ProtParam tool對(duì)GrDL7H蛋白質(zhì)進(jìn)行分析,結(jié)果表明,GrDL7H蛋白質(zhì)單體的相對(duì)分子質(zhì)量為59 077 u,理論等電點(diǎn)(pI值)為8.88,這與長(zhǎng)春花CrDL7H蛋白質(zhì)類似[8];帶正電氨基酸殘基(Arg+Lys)為70個(gè),帶負(fù)電氨基酸殘基(Asp+Glu)為63個(gè),化學(xué)方程式為C2 686H4 240N708O743S23;不穩(wěn)定指數(shù)為31.37,屬穩(wěn)定蛋白質(zhì);脂肪指數(shù)為94.81;總平均疏水性(GRAVY)為-0.173,為親水蛋白質(zhì)(圖4)。GrDL7H蛋白質(zhì)含有20種基本氨基酸,其中亮氨酸含量最高,為11.9%;其次是賴氨酸、異亮氨酸、蘇氨酸,含量分別為7.60%、6.40%、6.40%;半胱氨酸含量最低,為1.00%。
2.2.3 GrDL7H蛋白質(zhì)的二級(jí)結(jié)構(gòu)、三級(jí)結(jié)構(gòu)分析 利用PredictProtein軟件對(duì)GrDL7H蛋白質(zhì)進(jìn)行二級(jí)結(jié)構(gòu)分析,結(jié)果表明:該蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)中α-螺旋(H)占54.58%,環(huán)(L)占37.43%,延伸帶(E)占7.99%。利用Phyre 2軟件預(yù)測(cè)GrDL7H蛋白質(zhì)的三級(jí)結(jié)構(gòu),結(jié)果見圖5,該模型以細(xì)胞色素p4504b1酶[c5t6qA]為模板,在第15~513位氨基酸處建模,序列相似度為24%。
2.2.4 GrDL7H蛋白質(zhì)序列的分析歸類 使用InterPro 6.0在線工具對(duì)GrDL7H蛋白質(zhì)進(jìn)行分析和歸類,結(jié)果表明,GrDL7H蛋白質(zhì)屬于細(xì)胞色素P450超家族E類、類群Ⅰ(IPR002401)的成員,包含細(xì)胞色素P450保守結(jié)構(gòu)域(IPR036396)(圖6)。GO預(yù)測(cè)結(jié)果表明,在生物過程方面GrDL7H蛋白質(zhì)參與氧化還原過程,在分子功能方面,該蛋白質(zhì)參與鐵離子結(jié)合、氧化還原酶活性、血紅素結(jié)合,在細(xì)胞成分方面未預(yù)測(cè)到結(jié)果。
2.2.5 GrDL7H蛋白質(zhì)信號(hào)肽分析 利用ExPASy SignalP 41服務(wù)器分析GrDL7H蛋白質(zhì),未發(fā)現(xiàn)信號(hào)肽,表明該蛋白質(zhì)為非分泌型蛋白質(zhì)。利用TMHMM 2.0工具預(yù)測(cè)GrDL7H蛋白質(zhì)的跨膜螺旋區(qū),結(jié)果表明:GrDL7H蛋白質(zhì)在5~27位氨基酸含有跨膜區(qū)域,其余的1~4位氨基酸在細(xì)胞內(nèi),28~513位氨基酸在細(xì)胞外(圖7)。
2.2.6 GrDL7H蛋白質(zhì)亞細(xì)胞定位分析 使用WoLF PSORT軟件進(jìn)行GrDL7H蛋白的亞細(xì)胞定位分析,結(jié)果顯示,GrDL7H蛋白質(zhì)在葉綠體、細(xì)胞核、核骨架、細(xì)胞膜、細(xì)胞質(zhì)、液泡的定位系數(shù)分別為 6.0、3.5、2.5、2和1.0。
2.2.7 GrDL7H基因稀有密碼子分析 使用在線軟件對(duì)GrDL7H基因進(jìn)行稀有密碼子分析,結(jié)果表明,在大腸桿菌和釀酒酵母中,GrDL7H基因中稀有密碼子分別占1.36%、0.19%,且均無(wú)二聯(lián)或三聯(lián)稀有密碼子連續(xù)出現(xiàn)的情況,因此可選用大腸桿菌表達(dá)菌BL21、Rosetta(DE3)或釀酒酵母進(jìn)行蛋白質(zhì)表達(dá)。
2.3 GrDL7H基因啟動(dòng)子的克隆
以滇龍膽葉片DNA為模板,使用基因特異性引物分別進(jìn)行2輪PCR擴(kuò)增, 第2輪PCR擴(kuò)增產(chǎn)物通過TA克隆獲得重組質(zhì)粒pMD19-pGrDL7H,測(cè)序后,上傳至NCBI數(shù)據(jù)庫(kù),獲得登錄號(hào)(GenBank登錄號(hào):MG832585)。對(duì)獲得的GrDL7H啟動(dòng)子進(jìn)行生物信息學(xué)分析,結(jié)果表明,該啟動(dòng)子不但在-30區(qū)域附近含有轉(zhuǎn)錄起始的核心啟動(dòng)子元件TATA盒,而且含有啟動(dòng)子和增強(qiáng)子區(qū)域通用順式作用元件CAAT盒;此外,還具有6個(gè)光應(yīng)答元件、 1個(gè)赤霉素應(yīng)答元件、6個(gè)參與茉莉酸甲酯應(yīng)答的順式調(diào)控元件、1個(gè)熱脅迫應(yīng)答元件和1個(gè)參與生物鐘控制的順式調(diào)控元件(表2)。
2.4 GrDL7H基因的組織表達(dá)分析
取二年生滇龍膽的根、莖、花和葉,通過熒光定量PCR(qRT-PCR)檢測(cè)GrDL7H基因在根莖花葉等不同組織中的表達(dá)情況。結(jié)果顯示,GrDL7H基因表達(dá)量最高的組織是葉,其表達(dá)量大約分別是根、莖、花中的50、32、6倍;其次是花,表達(dá)量最低的是根(圖8)。這與川西獐牙菜SmDL7H基因在根莖葉花中的表達(dá)模式類似[7]。在長(zhǎng)春花中,CrDL7H基因主要在葉中表達(dá),隨著葉齡的增加,其表達(dá)量逐漸降低,相應(yīng)的長(zhǎng)春堿與裂環(huán)番木鱉苷的含量逐漸減少;其次是莖和花,表達(dá)量最低的是根[8]。這些結(jié)果表明,葉是滇龍膽龍膽苦苷生物合成的主要場(chǎng)所。
3 討論
滇龍膽的主要藥效成分為龍膽苦苷,屬于環(huán)烯醚萜類物質(zhì)。該類物質(zhì)的合成主要包括3個(gè)階段,第1階段是通過甲羥戊酸(MVA)和甲基赤蘚糖-4-磷酸(MEP)途徑合成IPP(異戊烯焦磷酸)和DMAPP(二甲基丙烯基二磷酸-三銨鹽)的基本前體,第2階段是IPP和DMAPP在異戊烯基轉(zhuǎn)移酶和萜類合酶作用下形成萜類化合物和中間產(chǎn)物,第3階段是萜類化合物的碳骨架結(jié)構(gòu)在后修飾酶的催化下,分別進(jìn)行羥基化、甲基化、糖基化等,形成結(jié)構(gòu)穩(wěn)定、具有活性的萜類化合物[4]。為闡明龍膽苦苷生物合成途徑及其調(diào)控機(jī)制,本研究克隆了1個(gè)萜類合成第2階段的GrDL7H基因,其表達(dá)情況可能影響龍膽苦苷的生物合成。由于許多萜類合成途徑中的底物不能通過商業(yè)化途徑獲得,導(dǎo)致學(xué)界對(duì)DL7H基因的研究較少,目前研究比較清楚的僅有長(zhǎng)春花中的CrDL7H基因。本研究從滇龍膽幼葉中克隆獲得GrDL7H基因,通過多序列比對(duì)分析,表明滇龍膽GrDL7H與其他植物DL7H蛋白質(zhì)具有較高的相似性,特別是與長(zhǎng)春花CrDL7H蛋白質(zhì)的序列相似性高達(dá)77.73%,表明二者具有相似的結(jié)構(gòu)與功能。在系統(tǒng)發(fā)育分析中,滇龍膽GrDL7H與黃金雞納樹CcDL7H的親緣關(guān)系較近,且GrDL7H蛋白質(zhì)具有典型的CYP450蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)域,屬于E類家族成員,這些結(jié)果表明,所克隆的基因?yàn)镈L7H基因。
在長(zhǎng)春花中,CrDL7H基因在根、莖、葉、花芽和花中均有表達(dá),但在第1對(duì)幼葉中的表達(dá)量遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于其他組織[8]。組織表達(dá)特異性研究結(jié)果表明,滇龍膽GrDL7H基因在葉中的表達(dá)量最高,遠(yuǎn)遠(yuǎn)高于根、莖和花,因此推測(cè)滇龍膽葉片為龍膽苦苷生物合成的主要器官,這與朱宏濤等的研究結(jié)果[10]一致。目前研究表明,滇龍膽全株可以入藥[11-12],但其根中龍膽苦苷含量最高[13]。因此,根中的龍膽苦苷主要是由葉片和莖中合成的龍膽苦苷通過運(yùn)輸?shù)竭_(dá)根中進(jìn)行積累而成的。
在真核生物基因中,啟動(dòng)子由核心啟動(dòng)子和上游啟動(dòng)子2個(gè)部分組成,是位于轉(zhuǎn)錄起始位點(diǎn)及其5′端上游近端大約100~200 bp的1組具有獨(dú)立功能的DNA序列,每個(gè)元件長(zhǎng)度約為7~20 bp,是決定RNA聚合酶轉(zhuǎn)錄起始和轉(zhuǎn)錄頻率的關(guān)鍵元件[14]。本研究擴(kuò)增到的滇龍膽GrDL7H基因啟動(dòng)子片段大小為818 bp,不但具有核心啟動(dòng)子TATA盒上游啟動(dòng)子CAAT盒,而且具有6個(gè)光應(yīng)答的元件、1個(gè)參與赤霉素應(yīng)答元件、6個(gè)參與茉莉酸甲酯應(yīng)答的順式調(diào)控元件、1個(gè)熱脅迫應(yīng)答元件、1個(gè)參與生物鐘控制的順式調(diào)控元件,表明GrDL7H基因的表達(dá)受光、赤霉素、茉莉酸甲酯、熱脅迫、生物鐘等多種因素的調(diào)控,這同時(shí)也表明,可通過調(diào)控基因表達(dá)來提高龍膽苦苷的含量。
本研究為滇龍膽GrDL7H基因功能的解析奠定了基礎(chǔ)。今后將對(duì)GrDL7H基因進(jìn)行蛋白質(zhì)表達(dá)、純化和酶活分析、基因調(diào)控機(jī)制分析來研究其功能,從而為龍膽苦苷生物合成途徑及其調(diào)控機(jī)制的闡明奠定基礎(chǔ)。
參考文獻(xiàn):
[1]Suyama Y,Tanaka N,Kawazoe K A,et al. Rigenolides B and C,conjugates of norsecoiridoid and secoiridoid glucoside from Gentiana rigescens Franch[J]. Tetrahedron Letters,2017,58(15):1459-1461.
[2]Suyama Y,Kurimoto S I,Kawazoe K,et al. Rigenolide A,a new secoiridoid glucoside with a cyclobutane skeleton,and three new acylated secoiridoid glucosides from Gentiana rigescens Franch[J]. Fitoterapia,2013(91):166-172.
[3]金 航,張 霽,張金渝,等. 滇龍膽[M]. 昆明:云南科技出版社,2013.
[4]黃璐琦,劉昌孝. 分子生藥學(xué)[M]. 3版.北京:科學(xué)出版社,2015.
[5]Salim V,Yu F,Altarejos J,et al. Virus-induced gene silencing identifies Catharanthus roseus 7-deoxyloganic acid-7-hydroxylase,a step in iridoid and monoterpene indole alkaloid biosynthesis[J]. Plant Journal,2013,76(5):754-765.
[6]王彩云,張曉東,沈 濤,等. 龍膽苦苷生物合成途徑研究進(jìn)展[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2014,42(3):4-10.
[7]Liu Y E,Wang Y,Guo F X,et al. Deep sequencing and transcriptome analyses to identify genes involved in secoiridoid biosynthesis in the Tibetan medicinal plant Swertia mussotii[J]. Scientific Reports,2017(7):43108.
[8]Salim V,Yu F,Altarejos J,et al. Virus-induced gene silencing identifies Catharanthus roseus 7-deoxyloganic acid-7-hydroxylase,a step in iridoid and monoterpene indole alkaloid biosynthesis[J]. Plant Journal,2013,76(5):754-765.
[9]Zhang X,Allan A C,Li C,et al. De Novo assembly and characterization of the transcriptome of the Chinese medicinal herb,Gentiana rigescens[J]. International Journal of Molecular Sciences,2015,16(5):11550-11573.
[10]朱宏濤,鄭傳偉,趙 平,等. 野生堅(jiān)龍膽及其組培苗中龍膽苦苷的含量分析[J]. 天然產(chǎn)物研究與開發(fā),2011,23(3):482-485.
[11]趙志蓮,張 琳,劉衛(wèi)紅,等. 滇龍膽裂環(huán)烯醚萜類活性成分積累規(guī)律的研究[J]. 時(shí)珍國(guó)醫(yī)國(guó)藥,2016,27(9):2073-2075.
[12]游維麗. 龍膽地上、地下部分藥理作用的比較[J]. 內(nèi)蒙古中醫(yī)藥,2017,36(8):135-136.
[13]楊美權(quán),張金渝,沈 濤,等. 不同栽培模式對(duì)滇龍膽中龍膽苦苷含量的影響[J]. 江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué),2011(1):287-289.
[14]朱玉賢,李 毅,鄭曉峰,等. 現(xiàn)代分子生物學(xué)[M]. 4版.北京:高等教育出版社,2013.