淺議小反芻獸疫研究概況

（山東省臨朐縣動物衛(wèi)生監(jiān)督所 262600）

1 病原學特點

小反芻獸疫也稱小反芻獸假性牛瘟、肺腸炎、口炎肺腸炎復征，是由PPRV（小反芻獸疫病毒）引起小反芻獸的一種急性、發(fā)熱性、高度接觸性傳染病，主要感染山羊和綿羊等小反芻動物，小反芻獸疫病毒(PPRV) 屬于副黏病毒科麻疹病毒屬，與牛瘟病毒、人麻疹病毒、犬瘟熱病毒等屬于同屬類病毒。病毒粒子呈現(xiàn)多樣性，其中最常見的表現(xiàn)形式為粗糙球形；病毒主要由核衣殼和外部囊性膜組成，核衣殼長度約為1000nm，平均直徑為500nm，表現(xiàn)為螺旋對稱性，主要由核衣殼蛋白、大蛋白和磷蛋白構成。外部囊性膜厚度為8～14nm，囊膜中有明顯的纖突，主要成分為無神經氨酸酶和血凝酶。

病毒不耐高溫，在50℃環(huán)境下30min 即可喪失感染性，但在酸堿度環(huán)境中相對穩(wěn)定，在pH4-10 區(qū)間內可以保持較長時間的活性，該病毒對一般消毒劑如酒精、乙醚和化學滅活劑等都具備較高的敏感性，在酚類物質作用下，24h 內可以將其滅活，失去感染宿主的能力和致病性。

2 流行病學硩硦

2.1 易感動物硩硦

小反芻獸疫的天然宿主是綿羊和山羊，一般認為山羊更易感，也有研究稱它們易感性幾乎相當，但綿羊的發(fā)病率和死亡率卻偏髙。野生動物也有被感染的報道，主要有單峰駱駝、湯氏瞪羚、印度水牛等。需要注意的是大家畜中牛一般呈現(xiàn)亞臨床感染，并能產生抗體；豬感染后既不表現(xiàn)出臨床癥狀，也不排毒。至今尚未曾見到人感染本病的報道。硩硦

2.2 傳染源硩硦

患病動物和隱性感染的動物是小反芻獸疫的主要傳染源，未表現(xiàn)臨床癥狀的病羊最為危險。病畜或帶病畜的呼吸道、消化道均可排毒。

2.3 傳播途徑硩硦

該病主要經呼吸系統(tǒng)傳播，具有高度的接觸傳染性。既可通過直接接觸等感染進行水平傳播，也可通過精液、乳汁等感染進行垂直傳播，還可通過家畜調運、引種及野生動物的遷徙等跨區(qū)域傳播。被這些分泌物、排泄物污染的水源、溝槽、墊料等雖然都會成為傳播媒介，但并不會長時間保持傳染性，因此小反芻獸疫傳播距離非常有限。

2.4 流行性特點

小反芻獸疫傳染性強，傳播速度快，沒有明顯的季節(jié)性，四季均發(fā)，在雨季和干燥寒冷的季節(jié)更為頻發(fā)，易感羊群發(fā)病率在60%以上，且病死率可達50%以上，嚴重者可達100%，該病常以零散疫點的形式發(fā)生，在某些年份呈暴發(fā)流行之后，一般有5～6 年的緩和期。該病主要導致小反芻動物的腹瀉、發(fā)熱、腸炎和口炎等，是一種急性高度接觸性傳播類疾病，其中羊感染性小反芻獸疫也被稱為假性羊瘟。小反芻獸疫在非洲、中東和亞洲等多地發(fā)生過，對養(yǎng)殖產業(yè)造成了巨大的影響。2007 年在我國西藏阿里地區(qū)于爆發(fā)過該病，患病羊數量達到6000 余只，死亡1500 余只，嚴重制約了當地羊養(yǎng)殖業(yè)的發(fā)展，并且?guī)砹司薮蟮慕洕鷵p失。

3 小反芻獸疫的診斷

3.1 臨床剖檢診斷

該病可通過臨床癥狀及病理學變化診斷，發(fā)病后病畜表現(xiàn)體溫升高，呼吸困難；眼、鼻大量排出分泌物，初呈水樣后呈膿樣，口腔黏膜充血，口、鼻腔黏膜出現(xiàn)大量部分粘連的極其微小的略呈灰色的壞死點、糜爛斑；病畜發(fā)熱2～3d 后開始腹瀉，并伴隨嚴重脫水、消瘦、虛脫；懷孕母羊可發(fā)生流產。

剖檢可見膿性黏膜炎、結膜炎、支氣管肺炎，肺尖肺炎；消化道黏膜常見嚴重的充血、潰爛及出血，有時大腸縱向折疊頂部出現(xiàn)嚴重的出血，有時形成斑馬樣條紋；腸淋巴組織發(fā)生壞死、萎縮，腸系膜淋巴結輕微腫大、水腫；腎和膀胱可見充血；母羊可見陰戶甚至陰道糜爛。肺臟組織組織學檢查可見多核巨細胞及細胞內嗜酸性包涵體出現(xiàn)。上述方法可作出懷疑或初步診斷，如需確診需要進行對該病進行特異性診斷。

3.2 實驗室診斷

目前，常用的實驗室診斷技術主要有病毒分離、聚合酶鏈式反應、酶聯(lián)免疫吸附試驗、病毒中和試驗、瓊脂凝膠免疫擴散、對流免疫電泳、膠體金試紙以及其他檢測方法，其中聚合酶鏈式反應和競爭ELISA 應用廣泛，是世界動物衛(wèi)生組織指定的標準檢測方法。在血清學檢測中，商品化的ELISA 試劑盒具有較高的特異性和敏感性，可以檢測病毒的N 或H 蛋白的抗體，可以評估群體血清水平。但是，現(xiàn)在仍然沒有一種血清學方法能夠區(qū)分受感染動物和預防接種動物。

3.2.1 病原學診斷硩硦

小反芻獸疫病原學診斷方法目前主要采取病毒分離鑒定、捕獲酶聯(lián)免疫吸附試驗、瓊脂凝膠免疫擴散、對流免疫電泳等方法。1995 年，F(xiàn)orsyth 和其他的研究人員一起建立了用于鑒別診斷的RT-PCR 的方法。Forsyth 和Barrett 在研究的過程中根據N 基因和F 基因進行了引物設計，并且構建了以PCR 為基礎的檢測手段進行RT-PCR 檢測，使用RT-PCR 進行病毒檢測的手段不斷得到推廣和應用，得到了人們的廣泛關注和認可。cDNA（互補脫氧核糖核酸）探針法和RT-PCR 兩種方法在病毒檢測和核算分析中得到了廣泛應用，尤其是后者具備操作簡便的特點，可以借助序列檢測的方式來對病毒強弱程度進行分析，可以用來與牛瘟病毒的鑒別診斷。George A 等以M 或N 基因建立的單一RT-PCR 和多重PCR 更為敏感。由SaravananP 等建立的PCR-ELISA 方法，能檢測早期感染的小反芻獸疫病毒，因為其采用一種標記的探針檢測病毒核酸擴增產物，其靈敏度比常規(guī)RT-PCR 増髙10 倍。我國毛立等建立了小反芻獸疫病毒特異、敏感的RT-PCR 診斷方法。此外，實時熒光定量PCR和環(huán)介導等溫擴增（LAMP）技術也可用于PPRV 的特異性的檢測。硩硦

3.2.2 免疫學診斷硩硦

一般，抗體滴度檢測需采集雙份血清進行試驗，抗體滴度升高4 倍以上才具有示病意義。目前常用方法有ELISA 試驗、中和試驗、熒光抗體試驗、瓊脂免疫擴散試驗等。在患病畜血清中，針對N 蛋白的抗體占主導地位，其抗原性穩(wěn)定。國內邱文英[1]等建立了靈敏度高、特異性強的單抗競爭性ELISA 方法。血細胞凝集試驗、乳膠凝集試驗和病毒中和試驗也是用于小反芻獸疫抗體檢測的方法。其中，病毒中和試驗是國際貿易中要求必須進行的一項檢測，其靈敏度高、特異性強，但缺點是非常耗時，影響其在實際工作中的推廣和應用。硩

4 小結

近年來，鑒于小反芻獸疫給家畜養(yǎng)殖帶來的危害與經濟損失，在實際生產中，已越來越為廣大養(yǎng)殖戶所重視。在寧夏[2]，從2014 年2 月起，全區(qū)范圍內對所有養(yǎng)殖、調運環(huán)節(jié)羊只使用小反芻獸疫疫苗進行強制免疫。通過此類方法，2014～2017 年，小反芻獸疫全年免疫密度維持100%，抗體陽性率超過70%以上。目前，全國各地基本都在使用此類方法，在疫苗運輸、使用、貯藏等等環(huán)節(jié)加強監(jiān)管，各市、縣（區(qū)）動物疾病預防控制中心做好免疫效果監(jiān)測評價的同時，陸續(xù)推出的重大疫病應急預案、嚴格的消殺工作以及強制免疫程序，這在很大程度上阻斷了該病的傳播及發(fā)生，也為有效防控該病打下了堅實的基礎。