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    艾葉多糖的分離純化、結(jié)構(gòu)表征及抗氧化活性

    2021-11-04 12:35:08陳同強(qiáng)李燦郭錦材徐文泱何青科李凱龍
    食品工業(yè) 2021年10期
    關(guān)鍵詞:質(zhì)量

    陳同強(qiáng) ,李燦 ,郭錦材,徐文泱 ,何青科,李凱龍

    1.湖南省產(chǎn)商品質(zhì)量檢驗(yàn)研究院(長(zhǎng)沙 410007);2.食品安全監(jiān)測(cè)與預(yù)警湖南省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室(長(zhǎng)沙 410111);3.長(zhǎng)沙市口腔醫(yī)院(長(zhǎng)沙 410006);4.湖南省植物保護(hù)研究所(長(zhǎng)沙 410125)

    艾葉,為菊科植物艾(Artemisia argyiLevl.et Vant.)的干燥葉,廣泛分布于我國(guó)大部分地區(qū)。其藥用價(jià)值主要包括溫經(jīng)止血、散寒止痛;外用有祛濕、驅(qū)蚊、止癢等功效[3]。艾葉的嫩芽及幼苗可作蔬菜食用,在民間還有把采摘的艾葉和糯米一起制成“蒿子糍粑”的習(xí)俗。研究表明艾葉中除主要成分揮發(fā)油外,還含有黃酮、萜類、多糖等有機(jī)化合物成分[2-3]。

    多糖由10個(gè)(含)以上的單糖通過(guò)糖苷鍵縮聚而成,主要分為植物多糖、動(dòng)物多糖及微生物多糖3類。大量的藥理以及臨床試驗(yàn)表明,多糖類化合物能夠激活人體免疫細(xì)胞,從而提高機(jī)體的免疫力,且對(duì)正常細(xì)胞幾乎無(wú)毒副作用[4]。

    目前對(duì)艾葉多糖研究主要包括提取工藝、抗氧化作用、抗腫瘤作用以及免疫調(diào)節(jié)等[5-7],而對(duì)艾葉多糖的分離純化、結(jié)構(gòu)表征及純品組分抗氧化活性研究報(bào)道鮮見(jiàn)。試驗(yàn)通過(guò)對(duì)艾葉水提取乙醇沉淀得到粗多糖,再經(jīng)脫色、脫蛋白、柱色譜分離純化等過(guò)程處理后最終得到2種純多糖組分。通過(guò)對(duì)2種多糖化合物的糖含量、單糖組成、相對(duì)分子質(zhì)量、分子特征等指標(biāo)以及其體外抗氧化活性進(jìn)行研究分析,為進(jìn)一步研究艾葉中多糖的構(gòu)效關(guān)系以及艾葉的綜合開(kāi)發(fā)和利用提供理論依據(jù)。

    1 材料和方法

    1.1 材料與試劑

    干燥艾葉(粉碎至約0.250 mm孔徑大小,備用);單糖標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(L-鼠李糖、D-木糖、D-阿拉伯糖、D-甘露糖、D-葡萄糖、肌醇、D-半乳糖、D-葡萄糖醛酸、D-半乳糖醛酸)、肌醇(內(nèi)標(biāo)),中國(guó)藥品生物制品檢定所;陰離子交換纖維素DEAE-52(英國(guó)Whatman公司);葡聚糖凝膠Sephadex G-200(百浩天生物科技有限公司);所用試劑均為分析純。

    1.2 儀器與設(shè)備

    透析袋(截留分子質(zhì)量3500 Da,上海易佰聚經(jīng)貿(mào)有限公司);高效液相色譜儀(美國(guó)Waters 600;紫外可見(jiàn)檢測(cè)器DAD,示差檢測(cè)器RI,UltrahydrogelTM1000、500色譜柱,7.8 mm×300 mm,美國(guó)Waters);十八角度激光散射儀(MALLS);氣相色譜儀GC-2010(日本島津),配OV-101石英毛細(xì)管柱(30 m×0.32 mm×0.33 μm);BS-100N自動(dòng)部分收集器,恒流泵BT100N數(shù)顯恒流泵(上海青浦滬西儀器廠)。

    1.3 試驗(yàn)方法

    1.3.1 多糖的提取

    艾葉多糖的提取參照文獻(xiàn)[8]的方法進(jìn)行。稱取1 kg干燥艾葉,搗碎,使用體積分?jǐn)?shù)為95%的乙醇回流除去脂肪,殘?jiān)?0 ℃烘箱烘干后稱其質(zhì)量,用20倍量的水在80 ℃的條件下提取2 h,過(guò)濾,重復(fù)提取1次,合并濾液,濃縮至一定體積,離心,取上清液,在不斷攪拌下加入95%乙醇使得溶液中乙醇的最終體積分?jǐn)?shù)為70%(V/V),靜置過(guò)夜,離心,收集沉淀,冷凍干燥,得到粗多糖,命名為AY。

    1.3.2 AY的分離純化

    AY通過(guò)Savag法除蛋白和H2O2法脫色素[9]后,樣液濃縮至一定體積,再按1.3.1方式醇沉2次,將得到沉淀溶解于水中,用自來(lái)水流水透析48 h,冷凍干燥,備用。

    準(zhǔn)確稱取經(jīng)上述處理后的AY(200 mg)置于醋酸鈉-醋酸(NaAc-HAc)緩沖鹽(pH 5.2)溶液中,溶脹過(guò)夜,過(guò)陰離子交換柱(DEAE-52,Cl-,2.5 cm×70 cm,填料纖維素陰離子交換劑DEAE-52依次經(jīng)0.2 mol/L NaOH、0.2 mol/L HCl處理1 h,蒸餾水洗至中性)。先用NaAc-HAc緩沖鹽(pH 5.2)平衡過(guò)夜,上樣,先后用含0,0.1和0.3 mol/L NaCl的NaAc-HAc緩沖鹽(pH 5.2)流動(dòng)相洗脫,流速均為5 mL/10 min,以苯酚-硫酸法(490 nm)[10]隔管示蹤,以奇數(shù)管號(hào)為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo),繪制曲線,收集合并主峰部分,透析,冷凍干燥。

    準(zhǔn)確稱取將上述洗脫所得多糖(100 mg),過(guò)凝膠Sephadex G-200柱(2.6 cm×90 cm),Sephadex G-200葡聚糖凝膠預(yù)先用0.02% NaN3水溶液浸泡48 h,蒸餾水平衡1 d,裝樣,蒸餾水洗脫,流速為0.5 mL/min,每管收集約5 mL,采用苯酚-硫酸法測(cè)A490示蹤,繪制曲線,收集主峰部分,冷凍干燥。

    1.3.3 多糖的相對(duì)分子質(zhì)量與分子特征分析

    試樣制備:準(zhǔn)確稱取純化多糖樣品,流動(dòng)相配制成5 mg/mL溶液,經(jīng)0.22 μm濾膜過(guò)濾,用高效凝膠色譜-十八角度激光散射聯(lián)用技術(shù)(HPGPC-MALLS)分析。

    色譜條件:色譜柱,UltrahydrogelTM1000、500色譜柱串接;流動(dòng)相,含0.02% NaN3的0.1 mol/L NaNO3溶液;流速0.8 mL/min;柱溫40 ℃;MALLS的光源氣體,氦氣、氖氣;波長(zhǎng)690 nm。流動(dòng)相的折光指數(shù)1.298;組分在溶液中的折光指數(shù)增量(dn/dc)測(cè)得值約0.128;校準(zhǔn)激光的儀器常數(shù)7.8059×10-6(V·cm)-1,校準(zhǔn)示差折光檢測(cè)器儀器常數(shù)2.1455×10-4(V·cm)-1。

    1.3.4 單糖組成分析

    標(biāo)準(zhǔn)品及樣品處理參考文獻(xiàn)[11]。

    氣相色譜(GC)條件:進(jìn)樣口溫度250 ℃;進(jìn)樣模式,分流,分流比10∶1;進(jìn)樣體積1.0 μL;檢測(cè)器溫度280 ℃。程序升溫:160 ℃,保持4.0 min,以5℃/min升至190 ℃,保持4.0 min,然后以3 ℃/min升至最終溫度210 ℃,保持15.0 min,最后以10 ℃/min升至260 ℃,保持5 min。

    1.3.5 抗氧化活性分析

    將分離純化后的艾葉多糖組分配制成質(zhì)量濃度分別為0,0.1,0.2,0.5,0.8和1.0 mg/mL的多糖系列溶液,參照文獻(xiàn)[12-14]方法,測(cè)定艾葉多糖組分對(duì)DPPH自由基、羥自由基、ABTS自由基3類自由基的清除率,上述試驗(yàn)均采用維生素C(VC)作為陽(yáng)性對(duì)照。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 粗多糖(AY)的分離純化

    AY脫蛋白色素處理后,經(jīng)DEAE-52 Cl-離子交換柱色譜分離,用含0.1 mol/L NaCl的NaAc-HAc緩沖鹽(pH 5.2)流動(dòng)相洗脫得到AY-1,AY-2和AY-3這3個(gè)組分多糖,如圖1所示,因AY-2和AY-3濃度較低,富集相對(duì)困難,選擇AY-1進(jìn)一步分離純化。將AY-1經(jīng)SephadexG-200凝膠柱色譜純化,得到兩個(gè)多糖組分,見(jiàn)圖2,分別集中收集,用自來(lái)水流水透析1 d,蒸餾水磁力攪拌透析1 d,濃縮,冷凍干燥,分別命名為AY-1A和AY-1B。

    圖1 AY的陰離子交換纖維素柱色譜洗脫圖

    圖2 AY-1的凝膠柱色譜洗脫圖

    2.2 AY-1A與AY-1B兩個(gè)組分純度鑒定與理化分析

    AY-1A與AY-1B兩個(gè)組分色譜出峰均呈現(xiàn)單一對(duì)稱峰,說(shuō)明兩個(gè)多糖組分純度較高,紫外光譜圖為典型的多糖吸收光譜,且在波長(zhǎng)280 nm與260 nm處吸收很弱,排除了AY-1A與AY-1B為糖蛋白(或蛋白糖)與核酸的可能性。經(jīng)苯酚硫酸測(cè)得AY-1A與AY-1B兩個(gè)組分中多糖質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為95.8%和97.3%。

    2.3 AY-1A與AY-1B分子特征分析

    表1顯示:AY-1A的重均分子質(zhì)量(MW)高于AY-1B,AY-1A的多分散系數(shù)MW/Mn=2.048,處于2~3之間,屬于中等分布寬度樣品;AY-1B多分散系數(shù)接近于1,屬于窄分布樣品,當(dāng)MW/Mn=1時(shí),則認(rèn)為樣品的相對(duì)分子質(zhì)量分布是均一的。

    表1 AY-1A與AY-1B的分子特征參數(shù)

    AY-1A與AY-1B的Rg都較小,AY-1A的Rg要小于AY-1B的Rg,這與重均分子質(zhì)量大小順序剛好相反,分析原因是由AY-1A在該電解質(zhì)(鹽)溶液(0.1 mol/L NaNO3)中分子形狀發(fā)生皺縮而引起分子尺寸大小降低造成的。

    對(duì)AY-1A與AY-1B的Rg與Mw分別繪制曲線,由Astra處理軟件計(jì)算得,AY-1A的斜率為0.32±0.02,如圖3所示,而AY-1B的線性關(guān)系較差,類似U型曲線,如圖4所示。一般來(lái)說(shuō),當(dāng)斜率為1時(shí),表示高分子在溶液中是棒狀排列;當(dāng)斜率為0.4~0.6時(shí),則表示高分子在溶液中呈線性無(wú)規(guī)則線團(tuán);當(dāng)斜率約為0.33時(shí),則表示為球狀形態(tài)[15]。由此可知:AY-1A在流動(dòng)相溶液中呈球形構(gòu)象;AY-1B結(jié)構(gòu)則呈典型的高枝化度結(jié)構(gòu),這是因?yàn)橄嗤肿淤|(zhì)量的支鏈化多糖與線形多糖相比較,枝化多糖分子的旋轉(zhuǎn)半徑要更大,從而引起曲線彎折,如U型。

    圖3 AY-1A的均方根旋轉(zhuǎn)半徑(Rg)與重均分子質(zhì)量(MW)之間的關(guān)系

    圖4 AY-1B的均方根旋轉(zhuǎn)半徑(Rg)與重均分子質(zhì)量(MW)之間的關(guān)系

    2.4 單糖組成分析

    通過(guò)與標(biāo)準(zhǔn)單糖保留時(shí)間的比較分析確定單糖組成,如圖5所示,并采用內(nèi)標(biāo)法定量計(jì)算組成單糖的摩爾比例。AY-1A是由葡萄糖組成的均多糖,如圖6所示;AY-1B則為由阿拉伯糖、半乳糖、半乳糖醛酸組成的酸性雜多糖,如圖7所示。單糖組成的摩爾比例為c阿拉伯糖∶c半乳糖∶c半乳糖醛酸=50.27∶40.59∶9.14,其中阿拉伯糖與半乳糖含量較高。

    圖5 混合單糖標(biāo)準(zhǔn)品的GC圖

    圖6 AY-1A的的單糖組成GC圖

    圖7 AY-1B的單糖組成GC圖

    2.5 抗氧化活性分析

    圖8(A)顯示:艾葉多糖AY-1A與AY-1B對(duì)DPPH、羥自由基、ABTS自由基的清除能力具有一定的量效關(guān)系,隨著多糖濃度的升高而逐漸增強(qiáng)。DPPH清除率在AY-1A與AY-1B 0.0~0.4 mg/mL質(zhì)量濃度范圍內(nèi)均明顯上升,當(dāng)AY-1A與AY-1B質(zhì)量濃度為1.0 mg/mL 時(shí),兩者清除率達(dá)到最大值,分別為55.29%與65.97%,而陽(yáng)性對(duì)照品VC對(duì)DPPH自由基的清除率則高達(dá)98.50%。

    圖8(B)顯示:當(dāng)AY-1A與AY-1B質(zhì)量濃度達(dá)到0.5 mg/mL后,增長(zhǎng)速率均趨于平緩,當(dāng)質(zhì)量濃度為1 mg/mL時(shí),AY-1A與 AY-1B對(duì)羥自由基清除率分別達(dá)到最大值(40.37%和53.23%)。

    圖8(C)顯示:在質(zhì)量濃度 1.0 mg/mL的AY-1A與 AY-1B中,清除ABTS自由基的活性最大值分別為21.08%與37.91%。

    圖8 AY-1A與AY-1B DPPH自由基(A)、羥自由基(B)、ABTS自由基(C)清除效果

    綜上所述,AY-1A與 AY-1B均具有一定清除自由基能力,且AY-1B總體抗氧化活性強(qiáng)于AY-1A。這種差異性可能原因是AY-1B結(jié)構(gòu)中含有一定比例易電離基團(tuán),如糖醛酸等。其抗氧化機(jī)理與多糖結(jié)構(gòu)的關(guān)系尚需進(jìn)一步研究。

    3 結(jié)論

    通過(guò)對(duì)艾葉中多糖采用水提醇沉得到粗多糖,粗多糖經(jīng)除蛋白脫色素處理,先后經(jīng)陰離子DE-52交換柱色譜、Sephadex G-200葡聚糖凝膠色譜分離純化,最終得到AY-1A與AY-1B兩個(gè)多糖組分。結(jié)構(gòu)表征結(jié)果顯示AY-1A為由葡萄糖構(gòu)成的均多糖,AY-1B為由半乳糖、阿拉伯糖和半乳糖醛酸組成的酸性雜多糖。AY-1A在0.1 mol/L NaNO3溶液中呈球形構(gòu)象,AY-1B則呈高度支鏈化分子結(jié)構(gòu);抗氧化活性試驗(yàn)證實(shí),AY-1A與AY-1B均具備一定清除自由基能力,且AY-1B總體抗氧化性強(qiáng)于AY-1A,結(jié)果表明艾葉多糖具備被開(kāi)發(fā)成天然抗氧化劑的前景,同時(shí)為艾葉在醫(yī)學(xué)、化妝品以及食品工業(yè)等領(lǐng)域的開(kāi)發(fā)與利用奠定了良好的基礎(chǔ)。

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