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    牡蠣酶解超濾組分對TM4小鼠睪丸支持細胞的氧化損傷保護作用

    2021-10-23 02:29:14張雪妍秦小明林海生曹文紅鄭惠娜高加龍章超樺
    南方水產(chǎn)科學 2021年5期
    關(guān)鍵詞:牡蠣睪丸存活率

    張雪妍,秦小明, 2,林海生, 2,曹文紅, 2,鄭惠娜, 2,高加龍, 2,章超樺, 2

    (1. 廣東海洋大學食品科技學院,廣東 湛江 524088; 2. 廣東省水產(chǎn)品加工與安全重點實驗室/廣東普通高等學校水產(chǎn)品深加工重點實驗室/國家貝類加工技術(shù)研發(fā)分中心 (湛江) /南海生物資源開發(fā)與利用協(xié)同創(chuàng)新中心,廣東 湛江 524088)

    近年來男性不育癥的發(fā)病率呈逐年升高趨勢,調(diào)查顯示全球8%~12%育齡夫婦患有不育癥[1],其中歸因于男性伴侶的占近50%[2]。生殖系統(tǒng)疾病[3]、環(huán)境污染[4-5]、內(nèi)分泌失調(diào)[6]和藥物[7]引起的生殖損傷均可導致男性不育。睪丸的生殖激素改變[6]、細胞凋亡[8]、氧化損傷[9]和組織結(jié)構(gòu)異??赡苁悄行陨彻δ苷系K的機制。睪丸支持細胞作為睪丸生精的“營養(yǎng)細胞”,為生殖細胞發(fā)育、存活和成熟提供微環(huán)境,其所形成的血睪屏障可有效保護生殖細胞免受有毒物質(zhì)的破壞。因此,體外研究睪丸支持細胞對物質(zhì)的敏感性可能是間接衡量這些物質(zhì)在精子形成中發(fā)揮作用的有效途徑。雷公藤 (Tripterygium wilfordii Hook. f.) 中藥制劑在臨床上長期用于治療炎癥及免疫系統(tǒng)疾病,而雷公藤甲素 (TP,C20H24O6) 作為雷公藤的藥理和毒性作用的主要有效成分[10],其副作用中發(fā)生率最高的是生殖毒性[11]。TP攝入過多會導致睪丸萎縮、激素合成代謝紊亂及精子活力下降等[11-12]。研究表明,TP可降低TM4小鼠睪丸支持細胞存活率、增加細胞活性氧 (ROS)蓄積并誘導細胞凋亡途徑的激活[13]。因此,TP的生殖毒性極大限制了其臨床應(yīng)用。

    香港牡蠣 (Crassostrea hongkongensis),俗稱生蠔,因其肉質(zhì)鮮美,富含蛋白質(zhì)、糖原、氨基酸、脂肪酸和無機鹽等[14],被冠以“海洋牛奶”的美稱[15]。牡蠣已被我國衛(wèi)生部批準為藥食兩用材料[16]。牡蠣肉提取物具有抗氧化[17]、增強機體免疫[18]、抗疲勞[19]、抗皮膚光老化[20]、降血壓[21]、降血糖[22]、醒酒護肝[23]和生殖保健[24]等多種生物活性。研究表明,小分子牡蠣多肽可提高小鼠血清性激素水平及其精子質(zhì)量[25]。Li等[26]發(fā)現(xiàn)近江牡蠣 (Ostrea rivularis) 多糖可抑制過氧化氫 (H2O2) 誘導的TM4細胞氧化應(yīng)激水平,改善環(huán)磷酰胺所致小鼠睪丸組織損傷,提高精子存活率并減少精子畸形。可見牡蠣肉提取物具有改善雄性生殖功能的潛能,但其有效成分、作用機理尚不明確。本研究以香港牡蠣為原料,以TM4小鼠 (Mus musculus) 睪丸支持細胞株為研究對象,探究牡蠣酶解超濾組分對TP誘導的TM4小鼠睪丸支持細胞氧化損傷的保護作用,在細胞水平上探討牡蠣酶解超濾組分對TP抗生育作用的減毒效果,以期為研發(fā)以牡蠣為原料的改善男性生殖健康的保健功能食品提供理論基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    新鮮香港牡蠣購于湛江海鮮批發(fā)市場,動物蛋白酶 (酶活力 3×104U·g?1) 購于廣西南寧龐博生物有限公司,DMED/F12培養(yǎng)基購自Gibco公司,馬血清、青/鏈霉素雙抗購自HyClone公司,噻唑蘭(MTT) 購自 Genview 公司,TP (純度>98%) 購自美倫生物技術(shù)有限公司,還原型谷胱甘肽 (GSH) 測定試劑盒和丙二醇 (MDA) 測定試劑盒購自南京建成生物工程研究所,ROS檢測試劑盒和BCA蛋白濃度測定試劑盒均購自碧云天生物研究所,小鼠睪丸支持細胞株 (TM4) 購于廣州賽庫生物技術(shù)有限公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    XX42PMINI超濾裝置 (美國 Milipore 公司);Lynx6000高速落地離心機 (美國Thermo公司);R-1005旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 (鄭州長城科工貿(mào)有限公司);1200型半制備高效液相色譜儀 (美國Agilent公司);7500cx電感耦合等離子體質(zhì)譜 (ICP-MS,美國Agilent公司);HHT4-LX-C50L型立式壓力蒸汽滅菌器 (北京中西遠大科技有限公司);CKX41型倒置顯微鏡 (日本Olympus公司);SW-CJ-2FD型超凈工作臺 (蘇州凈化有限公司);Forma 370型二氧化碳 (CO2) 恒溫箱 Multiskan FC型酶標儀 (美國Thermo公司);5810R型高速臺式冷凍離心機 (德國 Eppendorf公司)。

    1.3 實驗方法

    1.3.1 牡蠣酶解產(chǎn)物超濾組分的制備 取新鮮牡蠣肉,經(jīng)洗凈、瀝干,然后按料水質(zhì)量體積比1∶3 (g·mL?1) 加入預(yù)冷的蒸餾水,高速勻漿,按照酶活和底物 1 000∶1 (U·g?1) 的比例加入動物蛋白酶[27],酶解液沸水浴滅活10 min,冷卻至室溫,最后以 12 000 r·min?1離心 20 min 取上清液,并對其進行超濾分級,利用超濾裝置及3、5、10 ku超濾膜對酶解液進行分級處理,進口壓力控制在60 psi,得到<3、3~5、5~10和>10 ku 4個超濾組分,收集各個組分,冷凍干燥備用。

    1.3.2 牡蠣酶解產(chǎn)物超濾組分的分子量分布測定 參考Li等[28]的測定方法,通過高效凝膠過濾色譜法測定牡蠣酶解超濾組分的分子量分布。使用蛋白分析色譜柱 Waters Protein-pak 60A (WAT085250),流動相濃度為 0.05 mol·L?1、pH 8.3的 Tris-HCl緩沖液。將洗脫速度控制在 0.7 mL·min?1,設(shè)置柱溫 25 ℃;檢測波長 214 nm,每次進樣 20 μL。

    1.3.3 牡蠣酶解產(chǎn)物超濾組分的微量金屬元素測定 銅 (Cu)、鋅 (Zn)、錳 (Mn)、硒 (Se) 微量金屬元素按照GB/T 5009.268—2016,采用微波消解-電感耦合等離子體質(zhì)譜法進行測定。

    1.3.4 TM4細胞的培養(yǎng) TM4細胞在 D-MEM/F-12培養(yǎng)基 (體積分數(shù)92.5%) 中培養(yǎng),該培養(yǎng)基補充有體積分數(shù)5%馬血清和體積分數(shù)2.5%優(yōu)質(zhì)胎牛血清,37 ℃細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng) [體積分數(shù)5%CO2,濕度95%]。當細胞融合至80%~90%時,用胰酶消化,按照1∶3的比例進行傳代培養(yǎng),選擇對數(shù)生長期的細胞進行實驗。

    1.3.5 牡蠣酶解超濾組分對 TM4細胞生長的影響 將 TM4細胞濃度稀釋至 1×104個·mL?1[29],按每孔200 μL接種至96孔板,待細胞生長到融合狀態(tài),小心吸出培養(yǎng)基,每孔加入20 μL含不同質(zhì)量濃度 (0、50、100、250、500、1 000 μg·mL?1) 的牡蠣酶解超濾組分 (<3、3~5、5~10和>10 ku),每組設(shè)置6個平行,并分別培養(yǎng)12和24 h。培養(yǎng)結(jié)束后,用磷酸緩沖液 PBS配置 5 g·L?1噻唑藍(MTT) 溶液,每孔加入 20 μL MTT 溶液,并將培養(yǎng)板溫育4 h。小心吸走上清液,向每孔中加入100 μL DMSO,然后搖動 10 min。用酶標儀測量上清液的吸光度值 (測定波長570 nm)。以不加牡蠣酶解超濾組分為空白對照組,按式 (1) 計算細胞存活率 (%)。

    式中:R為細胞存活率;A0為空白對照組上清液的吸光度;A1為實驗組上清液的吸光度。

    1.3.6 TP對 TM4細胞生長的影響 同 1.3.5的方法,將牡蠣酶解超濾組分換成不同濃度的TP (0、125、250、500、1 000 nmol·L?1)[13]。以不加 TP為空白對照,按式 (1) 計算細胞存活率。

    1.3.7 牡蠣酶解超濾組分對TP誘導TM4細胞毒性的保護作用 將 TM4細胞濃度稀釋至 1×104個·mL?1,按每孔 200 μL 接種至 96孔板,待細胞生長至融合狀態(tài)時,棄掉舊培養(yǎng)基,設(shè)置空白對照組(加入同等體積培養(yǎng)液);TP 模型組 (500 nmol·L?1);牡蠣酶解超濾組分+TP實驗組 (加入不同質(zhì)量濃度的牡蠣酶解超濾組分),質(zhì)量濃度分別為50、100、250、500 μg·mL?1;細胞孵育 6 h/12 h 后小心吸出培養(yǎng)液,除空白對照組外均加入含TP的無血清培養(yǎng)液,TP終濃度為 500 nmol·L?1,于 37 ℃、含5% CO2孵育培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,采用MTT法測定吸光度值,計算牡蠣酶解超濾組分對TP所致TM4細胞存活率的變化量,每組設(shè)定6個復孔。

    1.3.8 牡蠣酶解超濾組分對TP誘導TM4細胞的氧化應(yīng)激損傷的生化檢測 將 TM4細胞濃度稀釋至 1.5×104個·mL?1,按每個 5 mL體積接種至60 mm培養(yǎng)皿中,待細胞生長至融合狀態(tài)時,進行分組。實驗組加入不同質(zhì)量濃度的牡蠣酶解超濾組分,質(zhì)量濃度分別為 50、100、250 μg·mL?1;空白對照組和TP模型組加入不含樣品的培養(yǎng)基,細胞孵育12 h后小心吸出培養(yǎng)液,除空白對照組外均加入含TP的無血清培養(yǎng)液,TP終濃度為500 nmol·L?1,于 37 ℃、含 5% CO2孵育培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。細胞經(jīng)過不同樣品和TP處理后,收集細胞進行各指標的測定[30]。分別用試劑盒提供的方法測定細胞內(nèi)GSH和MDA含量。通過BCA蛋白測定試劑盒確定相應(yīng)的樣品蛋白質(zhì)含量。

    1.3.9 活性氧試劑盒檢測 ROS的生成 將<3 ku超濾組分在不同濃度下提前與TM4細胞培養(yǎng)6 h后,TP (500 nmol·L?1) 作用 TM4細胞造模 3 h[29]。細胞培養(yǎng)達到測定時間,按試劑盒說明將DCFHDA工作液采用無血清培養(yǎng)基稀釋,使其終濃度為10 μmol·L?1。去除含樣品的培養(yǎng)基,每孔加入DCFH-DA 稀釋液 500 μL,避光孵育 45 min。采用無血清培養(yǎng)基洗滌細胞5次,2 min?次?1。細胞采用倒置熒光顯微鏡拍照并保存,同時采用多功能酶標儀檢測細胞熒光值。

    1.3.10 數(shù)據(jù)統(tǒng)計分析 采用 Excel 2016、Origin 2018、SPSS 19.0軟件對數(shù)據(jù)進行分析處理,用LSD多重比較和t檢驗進行差異顯著性分析 (α=0.05)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 牡蠣酶解超濾組分分子量分布

    超濾作為一種初步分離手段,具有操作便利、節(jié)省材料、保留樣品活性等優(yōu)點。分子量分布測定可有效評價超濾分級的分離效果。>10 ku超濾組分中>10 ku的成分占67.96%,<3 ku超濾組分中<3 ku的小分子物質(zhì)占57.48%,各個超濾組分中,隨著分子量的降低,<3 ku的小分子物質(zhì)占比不斷升高,>10 ku的大分子物質(zhì)占比不斷降低 (表1),表明通過超濾分級將大分子物質(zhì)和小分子物質(zhì)進行了有效分離。而在牡蠣酶解產(chǎn)物中,3~5 ku和5~10 ku 2個分子量區(qū)間的物質(zhì)占比較低,因此分離難度較大。

    表1 超濾膜分級后不同分子量區(qū)間的成分占各超濾組分的比值Table 1 Ratio of different molecular mass ingredients to each ultrafiltration fraction after ultrafiltration membrane classification%

    本研究選取的原料、酶解工藝和超濾分級方法均參照筆者課題組前期研究[27],前期研究對牡蠣酶解產(chǎn)物及其超濾組分的基本成分分析發(fā)現(xiàn),牡蠣酶解粉中蛋白質(zhì) (41.26%) 和糖類 (50.07%) 為主要組成成分,而經(jīng)過超濾分級,<3 ku超濾組分的蛋白質(zhì)比例達72.3%[27],結(jié)合分子量分布結(jié)果,說明<3 ku超濾組分中的主要成分為小分子肽和游離氨基酸。

    2.2 牡蠣酶解產(chǎn)物超濾組分的微量金屬元素含量

    各個牡蠣酶解超濾組分富含Cu、Zn、Mn、Se等微量金屬元素 (表2)。其中,Zn是影響男性生育的重要營養(yǎng)物質(zhì),精漿和前列腺中均具有高濃度的Zn。精液中適量的Zn對精子產(chǎn)生與維持精子正常形態(tài)、數(shù)量、功能均至關(guān)重要[31]。此外,睪丸的發(fā)育和類固醇生成都離不開Zn的參與,在性腺功能低下、少精癥、弱精癥和無精子癥患者體內(nèi)常見Zn缺乏。牡蠣中Zn含量高于其他食物,質(zhì)量分數(shù)一般為 61.33~616.98 mg·kg–1[32],而<3、3~5和5~10 ku超濾組分中Zn質(zhì)量分數(shù)分別高達3 019、2 998和 3 128 mg·kg–1。<3、3~5和 5~10 ku超濾組分中Cu、Zn、Mn的質(zhì)量分數(shù)均高于>10 ku超濾組分,說明小分子物質(zhì)與金屬元素的結(jié)合效率更高,更易富集金屬元素。本研究也發(fā)現(xiàn),牡蠣中的Zn可與牡蠣肉中的蛋白質(zhì)和氨基酸結(jié)合,而牡蠣肉中占比較高的谷氨酸 (Glu)、亮氨酸 (Leu)、精氨酸 (Arg) 和天冬氨酸 (Asp) 表現(xiàn)出很強的金屬結(jié)合親和力[33]。

    表2 牡蠣超濾組分微量金屬元素質(zhì)量分數(shù)Table 2 Mass fractions of trace metal elements in oyster ultrafiltration fractionsmg·kg–1

    2.3 牡蠣酶解超濾組分對TM4細胞生長的影響

    為確保本研究中牡蠣酶解超濾組分在質(zhì)量濃度范圍內(nèi)對TM4細胞存活率不存在抑制作用,將細胞與各質(zhì)量濃度的牡蠣酶解超濾組分 (<3、3~5、5~10和>10 ku) 孵育 12和 24 h,通過 MTT 法測定細胞存活率。結(jié)果顯示,分別作用12和24 h后,在 1 000 μg·mL?1質(zhì)量濃度范圍內(nèi),與空白對照組相比,TM4細胞存活率均有不同程度的增加 (P<0.05,圖1),說明各牡蠣酶解超濾組分對TM4細胞均無細胞毒性作用。

    圖1 牡蠣酶解超濾組分作用于TM4細胞12 h (a) 和24 h (b) 后的細胞存活率與空白對照組相比,*. 顯著差異 (P<0.05);**. 極顯著差異 (P<0.01)。Figure 1 Cell viability of oyster hydrolyzed ultrafiltration fractions after treatment on TM4 cells for 12 h (a) and 24 h (b)Compared with the control group, *. Significant difference (P<0.05); **. Very significant difference (P<0.01).

    2.4 TP對TM4細胞生長的抑制作用

    已有研究表明TP具有較強的生殖毒性作用,而睪丸支持細胞作為維持睪丸微環(huán)境、組成血睪屏障的主要功能細胞,對有毒物質(zhì)和藥物十分敏感[13]。用不同濃度 (125、250、500和 1 000 nmol·L?1)TP處理TM4細胞24 h,隨著TP濃度增加,TM4細胞存活率呈劑量依賴性降低,與空白對照組相比,各濃度TP對TM4細胞存活率的影響均差異顯著 (P<0.05,圖2)。Wang等[13]研究也表明,TP以劑量依賴和時間依賴性的方式顯著抑制TM4細胞的生長,24 h 的 50% 抑制濃度 (IC50) 為 (669.5±269.45) nmol·L?1。根據(jù)本實驗結(jié)果及前人[13,29-30]的研究方法,選取 500 nmol·L?1為后續(xù)造模損傷濃度。

    圖2 雷公藤甲素對TM4細胞的毒性作用上標不同字母表示具有顯著性差異 (P<0.05);圖3—圖5同此。Figure 2 Cytotoxic effect of TP on TM4 cellsDifferent superscript letters indicate significant difference (P<0.05).The same case in Figure 3?Figure 5.

    2.5 牡蠣酶解超濾組分對TP誘導TM4細胞毒性的保護作用

    牡蠣酶解超濾組分分別預(yù)處理TM4細胞6和12 h,TP (500 nmol·L?1) 作用 TM4細胞 24 h 進行毒性損傷,與TP模型組相比,牡蠣酶解超濾組分各劑量組的細胞存活率均顯著提高 (P<0.05,圖3),說明各牡蠣酶解超濾組分對TP損傷后TM4細胞的活力均具有保護作用,且呈現(xiàn)較好的劑量依賴性。其中,<3 ku 超濾組分在 250 μg·mL?1質(zhì)量濃度范圍內(nèi)各個劑量組的細胞存活率均具有顯著性差異 (圖 3-b);在 250和 500 μg·mL?1作用下,<3、3~5和5~10 ku超濾組分的細胞存活率顯著高于>10 ku超濾組分 (P<0.05),且與空白對照組無顯著性差異(P>0.05),說明<3、3~5和 5~10 ku 3個超濾組分對TP損傷TM4細胞活力具有很好的保護效果,且效果優(yōu)于>10 ku超濾組分。研究表明小分子物質(zhì)更容易被機體利用和吸收,且具有更高的生物利用率和生物活性[34],結(jié)合本研究結(jié)果,說明小分子物質(zhì)對TP損傷的TM4細胞活力具有更好的保護效果。

    圖3 牡蠣超濾組分對雷公藤甲素誘導TM4細胞毒性的保護作用 (預(yù)處理時間:a. 6 h;b. 12 h)Figure 3 Protective effect of oyster ultrafiltration fractions on TP-induced TM4 cytotoxicity (Pretreatment time: a. 6 h; b. 12 h)

    研究表明Zn具有保護睪丸組織毒性損傷的作用,可抑制鎘、乙醇等生殖毒性物質(zhì)對生殖細胞的影響[35-36]。本研究中牡蠣酶解超濾組分中富含Zn,且<3、3~5和5~10 ku超濾組分的Zn含量高于>10 ku超濾組分,結(jié)合細胞存活率實驗結(jié)果,推測牡蠣酶解超濾組分在改善TP誘導的TM4細胞凋亡過程中Zn可能起到了一定的協(xié)同作用。

    2.6 牡蠣酶解超濾組分對TP誘導TM4細胞氧化應(yīng)激損傷的生化檢測

    GSH作為一種低分子清除劑,可有效減少機體的氧化損傷,是衡量機體抗氧化能力的重要指標。TP顯著降低TM4細胞內(nèi)GSH含量,且具有劑量依賴性 (P<0.05,圖4-a),說明TP作用于TM4細胞會降低其細胞內(nèi)抗氧化能力。

    各牡蠣酶解超濾組分對TM4細胞的保護效果見圖5。與TP模型組相比,不同質(zhì)量濃度 (50、100、250 μg·mL?1) 的<3 ku 超濾組分均可顯著提高TM4細胞內(nèi)GSH含量,顯著抑制TP對TM4細胞的氧化損傷且呈現(xiàn)劑量依賴性 (P<0.05);此外,<3 ku 超濾組分 250 μg·mL?1劑量組的 GSH 含量均顯著高于其他超濾組分的各個劑量組 (P<0.05)。

    自由基作用于脂質(zhì)發(fā)生過氧化反應(yīng),生成的終產(chǎn)物則為MDA,其水平反映了機體脂質(zhì)過氧化的強度和速率,間接反映了組織過氧化損傷程度,還可影響細胞線粒體呼吸鏈復合物及線粒體內(nèi)關(guān)鍵酶活性,同時加劇細胞膜損傷,具有細胞毒性。與空白對照組相比,TP可顯著誘導TM4細胞中MDA含量的升高,且呈現(xiàn)劑量依賴性 (P<0.05,圖4-b),說明TP作用于TM4細胞會顯著增加細胞的脂質(zhì)過氧化程度。

    圖4 雷公藤甲素對TM4細胞內(nèi)還原型谷胱甘肽和丙二醇含量的影響Figure 4 Effect of TP on GSH and MDA content in TM4 cells

    與TP模型組相比,不同質(zhì)量濃度的各牡蠣超濾組分均不同程度地抑制TP對TM4細胞的脂質(zhì)過氧化損傷 (圖 5-b)。其中,<3 ku 和 5~10 ku 超濾組分在 100 μg·mL?1作用濃度下,抑制細胞內(nèi)脂質(zhì)過氧化效果最顯著 (P<0.05),且與空白對照組無顯著性差異,而在 50和 250 μg·mL?1質(zhì)量濃度下,<3 ku超濾組分抑制效果優(yōu)于 5~10 ku (P<0.05)。

    圖5 牡蠣超濾組分對雷公藤甲素誘導TM4細胞內(nèi)還原型谷胱甘肽和丙二醇含量的影響Figure 5 Effect of oyster ultrafiltration fractions on GSH and MDA content in TM4 cells induced by TP

    綜上,<3 ku超濾組分在各超濾組分中對TM4細胞抗氧化損傷的活性最強。劉姝等[37]和林海生[38]研究也表明,牡蠣酶解液中抗氧化活性物質(zhì)主要集中于<3 ku的小分子活性肽,而相關(guān)研究也表明TP主要通過誘導TM4細胞氧化應(yīng)激導致細胞凋亡[29],因此<3 ku超濾組分中對TP起主要拮抗作用的可能是具有抗氧化活性的小分子活性肽。

    2.7 牡蠣酶解超濾組分對TP誘導TM4細胞內(nèi)活性氧水平的影響

    活性氧 (Reactive oxygen species, ROS) 是指化學性質(zhì)活潑的具有含氧基團的化合物。有研究表明,TP對睪丸支持細胞的毒性作用機制與ROS的過量產(chǎn)生和抗氧化防御系統(tǒng)的失活有關(guān)[30]。ROS的過度積累或持續(xù)存在會導致線粒體功能障礙,釋放細胞色素C進入細胞質(zhì),從而導致細胞凋亡。TP可通過增加氧化應(yīng)激水平產(chǎn)生毒性作用?;钚匝跛脚c細胞分化以及精子發(fā)生的生理過程密切相關(guān),而活性氧水平的異常升高會導致生精細胞凋亡,影響正常的生精過程[39]。根據(jù)細胞內(nèi)GSH和MDA含量測定結(jié)果,對<3 ku超濾組分提前預(yù)處理 TM4細胞 6 h 后,TP (500 nmol·L?1) 作用 TM4細胞造模3 h,如DCFH-DA檢測所證實,在TP暴露下細胞內(nèi)ROS水平顯著增加,但經(jīng)<3 ku超濾組分預(yù)處理的各個劑量組,與TP模型組相比,可顯著抑制TP誘導的ROS積累 (圖6和圖7)。本實驗結(jié)果表明,<3 ku超濾組分可抑制過量ROS的生成,為其減少睪丸組織的氧化損傷提供實驗依據(jù)。

    圖6 DCFH-DA探針法檢測TM4睪丸支持細胞內(nèi)活性氧 (200×)Figure 6 Intracellular ROS in TM4 Sertoli cells indicated as green fluorescence by DCFH-DA

    圖7 <3 ku牡蠣超濾組分對雷公藤甲素誘導TM4細胞內(nèi)活性氧水平的影響與模型組相比,*. 顯著差異 (P<0.05);**. 極顯著差異 (P<0.01);與空白對照組相比,#. 顯著差異 (P<0.05);##. 極顯著差異 (P<0.01)。Figure 7 Effect of <3 ku ultrafiltration fractions from oyster on TP-induced reactive oxygen species in TM4 cellsCompared with the model group, *. Significant difference (P<0.05);**. Very significant difference (P<0.01). Compared with the control group, #. Significant difference (P<0.05);##. Very significant difference (P<0.01).

    3 結(jié)論

    本研究通過TP損傷TM4細胞構(gòu)建生殖細胞損傷模型,探究了牡蠣酶解超濾組分對TP誘導的氧化損傷的保護作用。結(jié)果表明,<3 ku超濾組分可有效抵抗TP對TM4小鼠睪丸支持細胞的毒性損傷,提高細胞存活率,減少細胞內(nèi)ROS的產(chǎn)生和脂質(zhì)過氧化,增強TM4細胞的抗氧化能力。本研究也提示小分子量的牡蠣酶解產(chǎn)物可用于抗生殖毒性損傷的保健食品利用和開發(fā)。在此基礎(chǔ)上,還有待通過動物模型來驗證<3 ku超濾組分對TP誘導的生殖損傷的保護作用及相關(guān)機制。

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