孫清瑞,申哲偉,李晶,趙雪龍,郝冬雪
(黑龍江八一農(nóng)墾大學食品學院,大慶 163319)
葉黃素是一種重要的具有多種生理活性的含氧類胡蘿卜素,其具有降低多種慢性疾病的發(fā)病風險的功效。其生理活性主要有防治因老年黃斑變性病引起的視力下降與失明、抗氧化、抗癌、抗誘變、延緩動脈硬化等作用[1-4]。因其分子含18 個碳原子的共軛長鏈和位于兩側(cè)的兩個不同的紫羅酮環(huán),葉黃素易受光、熱、氧及加工條件的影響而降解,此外,其還具有水分散性差和生物利用度低的缺陷,從而限制了其應用范圍[3]。
近年來,納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體(Nanostructured Lipid Carriers,NLC)作為一種包埋食品功能成分的技術(shù),已引起越來越多的關(guān)注[5-9]。作為在固體脂質(zhì)納米?;A(chǔ)上發(fā)展而來的新一代載運技術(shù),納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體是以液體脂質(zhì)部分地取代固體脂質(zhì),這樣其固體脂質(zhì)中大量的無序晶格可更多地容納生物活性物質(zhì)[10-12]。NLC 技術(shù)具有生物相容性好、生物利用度高、物理穩(wěn)定性高、良好緩釋特性及易于規(guī)?;a(chǎn)的優(yōu)點[8],從而該技術(shù)在載運功能性食品成分方面極具應用前景。目前,食品領(lǐng)域的納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體相關(guān)文獻報道主要集中在運載β-胡蘿卜素、DHA、輔酶Q10、姜黃素、蝦青素、番茄紅素。這些被脂質(zhì)包埋的活性成分都具有生物利用度較低,水分散性及穩(wěn)定性較差的共同特點。通過納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體技術(shù)可提高這些活性成分的生物利用度、水分散性及理化穩(wěn)定性。因此,研究通過葉黃素納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體(L-NLC)包埋技術(shù)的研究,以期提高葉黃素的水分散性和生物利用度。
目前,國內(nèi)尚未見有關(guān)葉黃素納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體(L-NLC)的報道。研究旨在為L-NLC 工業(yè)化生產(chǎn)提供前期的理論和技術(shù)參考,這對拓寬葉黃素在功能性食品等領(lǐng)域的應用具有十分重要的意義。
葉黃素原料(純度92%),華北制藥股份有限公司;葉黃素標品(貨號X6250),Sigma-Aldrich 公司;分析純試劑正己烷、無水乙醇、丙酮、化學純試劑吐溫80,國藥集團化學試劑有限公司;山崳酸甘油酯(ATO),嘉法獅有限公司;辛癸酸甘三酯(MCT),上海通用藥業(yè)有限公司。
Zetasizer Nano-ZS90 型激光粒度儀,英國Malvern 公司;Dimension Icon 型掃描探針顯微鏡(AFM),美國Bruker 公司;D8 型X-射線衍射儀(XRD),Bruker AXS(德國)有限公司;IS10 型傅立葉變換紅外光譜儀,Nicolet(美國)公司;LabRAM HR Evolution 型共聚焦顯微拉曼光譜儀,Horiba Jobin Yvon(法國)公司;UV765 型紫外-可見分光光度計,上海儀電分析儀器有限公司。
DF-101S 型集熱磁力攪拌器,常州金壇良友儀器有限公司;TGL-16M 型離心機,湘儀離心機儀器有限公司;Alpha 1-2 LD plus 型冷凍干燥機,德國CHRIT 公司;FS450N 超聲波細胞破碎儀:上海生析超聲儀器有限公司。
在預試驗的基礎(chǔ)上,葉黃素納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體的制備采用溶劑擴散-超聲分散聯(lián)用法:首先,在回流裝置中,于磁力攪拌條件下,基于100 mL 質(zhì)量分數(shù)為2%的吐溫80 水溶液,將一定量的固體脂質(zhì)ATO、葉黃素、液體脂質(zhì)MCT 及5 mL 無水乙醇加熱回流(75 ℃,10 min),使其呈均一相;然后,快速加入100 mL 同溫的質(zhì)量濃度為2%的吐溫80 水溶液,磁力攪拌(200 r·min-1)5 min,再經(jīng)超聲分散(超聲功率350 W,脈沖為每運行20 s 間歇5 s)5 min;最后,用冰水浴將其迅速冷卻至室溫,得到L-NLC 溶液,置于冰箱(4 ℃),備測。
葉黃素總含量的測定采用丙酮增溶法[13-14]。取適量葉黃素納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體(L-NLC)放入10 mL 刻度試管中,加入1 mL 丙酮,漩渦震蕩1 min,用丙酮定容至10 mL。同法以空白-NLC 為對照,用紫外-可見光分光光度計測定其波長440 nm 下的吸光值并計算葉黃素含量。葉黃素含量測定的標準曲線方程為y=0.229 73 x-0.032 67。其中,y 為吸光值;x 為試樣的濃度,μg·mL-1;線性范圍為0.5~4.5 μg·mL-1,R2=0.996 89。同條件下試樣平行測定3 次,取其算數(shù)平均值。
游離葉黃素的測定采用改進的有機溶劑萃取法[14-15]。取適量L-NLC 放入15 mL 刻度試管中,加入1 mL 正己烷,漩渦震蕩1 min,離心(5 000 r·min-1)2 min,取上層正己烷萃取液。重復萃取2 次,合并正己烷萃取液,再用正己烷定容至10 mL。用紫外—可見分光光度法測游離葉黃素含量。標準曲線方程為y=0.254 57 x+0.008 71,其中,y 為440 nm 處吸光值;x為試樣的濃度,μg·mL-1;線性范圍為0.5~4.5 μg·mL-1,R2=0.996 05。同條件下的試樣平行測定3 次,取其算數(shù)平均值。
包封率、載量及有效載量分別按公式(1)、(2)和(3)計算。
首先,用去離子水稀釋葉黃素納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體(L-NLC)試樣至適當倍數(shù)。接著將稀釋后的試樣置于聚苯乙烯比色皿(折光指數(shù)1.33)中,在(25±0.1)℃恒溫3 min,用配有He/Ne 激光器(λ=633 nm)的Nano-ZS90 粒徑分析儀測定粒徑(散射角為90 °),記錄平均粒徑和多分散指數(shù)PDI 值。PDI 數(shù)值越小,表明粒徑分布越集中,數(shù)值在0~0.3 之間表明具有較好的分散均勻性[16]。
表征葉黃素納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體(L-NLC)微觀結(jié)構(gòu)時所用的原子力顯微鏡(AFM)、X-射線衍射儀(XRD)、紅外光譜儀(IR)及拉曼光譜儀的分析操作采用文獻[14]的方法,具體方法如下:
原子力顯微鏡(AFM):首先將適量L-NLC 用超純水稀釋2 000 倍,隨后取1 μL 樣品在新解離的云母表面鋪展,接著將其于室溫下放置30 min,使LNLC 顆粒充分吸附于云母表面。待樣品室溫干燥24 h 后,將其置于原子力顯微鏡的掃描探頭(Si 探針)下,以ScanAsyst 模式掃描(頻率320 kHz,彈簧系數(shù)42 N·m-1),進行檢測。圖像采集采用高度模式,設(shè)置參數(shù)如下:0.977 Hz 掃描速率,512×512 分辨率,5 μm×5 μm 掃描尺寸。圖像處理采用NanoScopeTM 軟件。
X-射線衍射(XRD):L-NLC 及空白-NLC 凍干粉的晶相用D8 X-射線衍射儀分析,輻射源為Cu Kɑ,管電壓為45 kV,管電流為40 mA,掃描范圍為0 °~40 °,掃描速率為2 °·min-1。
紅外光譜(IR):L-NLC 及空白-NLC 凍干粉的IR 譜圖采用IS10 傅立葉變換紅外光譜儀(美國,Nicolet 公司)測試,測試分辨率為2 cm-1,掃描次數(shù)為36 次,測試范圍為400~4 000 cm-1,測試溫度范圍為23~25 ℃。
拉曼光譜:取適量L-NLC 或空白-NLC 樣品滴于覆有錫箔紙的載玻片上,選用50 倍物鏡將激光束聚焦于凸起的球狀液滴上,并觀測和記錄譜線。測定條件:以He-Ne 激光器為光源,激發(fā)波長為632.81 nm,掃描范圍為600~3 000 cm-1,由CCD 多道探測,積分時間為30 s×1。
L-NLC 產(chǎn)品中葉黃素構(gòu)型變化,參照文獻[21]的HPLC 法進行分析,柱溫25 ℃;流動相為甲醇-水(98∶2,V·V-1);流速1.0 mL·min-1;進樣量20 μL。
在預試驗的基礎(chǔ)上,重點考察葉黃素載量和液脂MCT 質(zhì)量分數(shù)(基于固液總脂質(zhì)的質(zhì)量)對葉黃素納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體(L-NLC)品質(zhì)的影響,試驗結(jié)果如圖1 所示。
圖1 制備條件對L-NLC 品質(zhì)的影響Fig.1 Effects of preparation parameters on quality of L-NLC
包封率和有效載量是評價L-NLC 品質(zhì)與應用價值的兩個重要參數(shù)。固定總脂質(zhì)質(zhì)量濃度為5%(g·mL-1)和MCT 質(zhì)量分數(shù)為30%的條件下,測定所得樣品的包封率、粒徑和PDI。圖1(A1)顯示,隨載量的升高,葉黃素的包封率有一定程度的下降,當載量為3%時,包封率降至73.6%。有效載量可以直觀評價葉黃素載入脂質(zhì)的能力。葉黃素的有效載量隨載量增大而逐漸增加的趨勢表明,在所試載量范圍內(nèi),葉黃素能夠有效地載入到NLC 中。圖1(A2)表明,隨載量的提高,L-NLC 的平均粒徑逐漸增加,當載量為2%時,平均粒徑為168.2 nm。PDI 值隨載量的升高呈逐漸增大的趨勢,載量2.5%時,PDI 值已大于0.3,表明此時體系分散性較差。因此,在后續(xù)研究中固定葉黃素載量為2%。
固定總脂質(zhì)質(zhì)量濃度為5%和載量為2%的條件下,測定所得樣品的包封率、粒徑和PDI。圖1(B1)顯示,液脂MCT 含量為30%時,包封率最高均值達到88.9%。圖1(B2)表明,MCT 含量在15%~40%范圍內(nèi),L-NLC 粒子的平均粒徑先減小后增大,PDI 值呈逐漸增大趨勢。在MCT 含量為30%時,對應的平均粒徑最小值為168.2 nm,PDI 值為0.28(小于0.3)。平均粒徑的先下降,可能是液態(tài)脂質(zhì)和固態(tài)脂質(zhì)黏度不同,脂相的黏度隨液態(tài)脂質(zhì)含量的增加而降低,從而降低了NLC 粒子的內(nèi)部黏度,也相應地降低了固-液界面張力,易于生成粒徑小且表面光滑的粒子[13]。平均粒徑隨后的增大,說明除了黏度因素影響外,還有表面能隨分散度增高而增大的影響。初始生成的小粒子表面能高,未及時吸附其他物質(zhì)或未及時被包覆時,可能自發(fā)地聚集成較大粒子,導致NLC 粒子的粒徑增加。
固定MCT 質(zhì)量分數(shù)為30%和載量為2%的條件下,測定所得樣品的包封率、粒徑和PDI。圖1(C1)顯示,隨著L-NLC 中總脂質(zhì)質(zhì)量濃度的增加,包封率出現(xiàn)先上升后下降的趨勢,相比較而言,在總脂質(zhì)質(zhì)量濃度為5%時,包封率具有最高值88.9%。同時圖1(C2)顯示,隨著總脂質(zhì)質(zhì)量濃度的增加,L-NLC 粒子的平均粒徑呈逐漸增加的趨勢,PDI 值亦呈不斷增加的趨勢,當總脂質(zhì)質(zhì)量濃度為5%時,平均粒徑為168.9 nm,PDI 值仍小于0.3。為進一步優(yōu)化L-NLC的制備工藝,后續(xù)進行了正交試驗。
葉黃素納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體(L-NLC)制備的正交試驗因素水平表見表1,正交試驗結(jié)果及極差分析見表2,正交試驗結(jié)果方差分析見表3。
表1 正交試驗因素與水平表Table 1 Factors and levels of the orthogonal experiments
表2 正交試驗結(jié)果表Table 2 Design and the results of the orthogonal experiments
表3 正交試驗方差分析結(jié)果Table 3 Analysis of variance of orthogonal test
極差分析結(jié)果表明,各因素對葉黃素納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體的影響大小依次為MCT 質(zhì)量分數(shù)>葉黃素載量>總脂質(zhì)質(zhì)量濃度,方差分析結(jié)果表明,MCT 質(zhì)量分數(shù)對包封率有顯著影響(P<0.05)。制備葉黃素納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體的最佳反應組合為A2B2C2。為得到較高含量的葉黃素納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體水溶液,并綜合單因素試驗的結(jié)果,該工藝確定為:葉黃素載量為2%,總脂質(zhì)質(zhì)量濃度5%(g·mL-1),MCT 質(zhì)量分數(shù)(液體脂質(zhì)占總脂質(zhì)的比率)為30%,表面活性劑質(zhì)量濃度2%(g·mL-1),超聲功率337.5 W,脈沖為每運行20 s間歇5 s,總時長5 min。按最佳組合方案A2B2C2作驗證試驗,經(jīng)3 次重復試驗,包封率均值為89.0%,表明正交試驗得出的最佳工藝符合實際試驗要求。
圖2(A)為葉黃素納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體(L-NLC)的粒徑分布圖。該圖顯示,L-NLC 粒子的平均粒徑為168.2 nm,PDI 值為0.28,小于0.3,表明L-NLC 試樣的粒子分散較均一。圖2(B)表明,L-NLC 膠體體系的丁達爾效應明顯(試樣B2和B3),這體現(xiàn)了膠體體系中納米粒子的共有光學特征。
圖2 L-NLC 的粒徑分布與光學特征Fig.2 The size distribution and the outer appearance of L-NLC sample
3.4.1 形貌
圖3 是試樣的AFM 分析圖像,在5 μm×5 μm的掃描范圍內(nèi),可觀測到類球形的粒子的平均粒徑為162 nm,這些粒子無聚集、融合現(xiàn)象,分散均勻。相比較而言,AFM 測得的平均粒徑略小于動態(tài)光散射(DLS)法測的結(jié)果(168 nm),這因DLS 法測得的是L-NLC 水化粒子的粒徑,而AFM 法觀測的是其經(jīng)干燥后的試樣粒徑。
圖3 新制得的L-NLC 試樣的AFM 分析圖Fig.3 AFM image of fresh L-NLC sample
3.4.2 晶態(tài)
在NLC 粒子中,NLC 的載量和包封率由起到骨架作用的固體脂質(zhì)晶型所影響[17];液體脂質(zhì)的加入可促進固體脂質(zhì)非完美晶格生成,從而增大NLC 的包埋空間。L-NLC 凍干粉、空白-NLC 凍干粉及山崳酸甘油酯(ATO)的XRD 分析結(jié)果如圖4 所示。3 種試樣在2 θ 值為21.2 °和23.5 °處均出現(xiàn)較強的衍射峰,反映出ATO 的β 晶型特征[7]。此外,在該圖中未發(fā)現(xiàn)葉黃素晶體的衍射峰,說明葉黃素分子以非晶態(tài)形式分散于NLC 脂質(zhì)中,這有利于葉黃素的穩(wěn)定包埋。
圖4 ATO、L-NLC 凍干粉和空白-NLC 凍干粉的XRD 譜圖Fig.4 XRD patterns of L-NLC freeze-dried powders,Blank-NLC freeze-dried powders and ATO
3.4.3 紅外光譜特性
圖5 是采用FTIR 技術(shù)研究NLC 包埋葉黃素的狀況。圖中顯示,L-NLC 凍干粉和空白-NLC 凍干粉的紅外光譜幾乎一致?,F(xiàn)有的研究[18-19]表明,葉黃素分子在964 cm-l左右存有一個典型的特征吸收峰,該峰為葉黃素共軛多烯鏈中C-H 面外彎曲振動所產(chǎn)生。而L-NLC 凍干粉的紅外光譜中,964 cm-l處吸收峰幾近消失,這表明葉黃素已被包埋于NLC 中。
圖5 L-NLC 凍干粉、空白-NLC 凍干粉及葉黃素的紅外光譜Fig.5 FTIR spectra of L-NLC freeze-dried powders and Blank-NLC freeze-dried powders
3.4.4 拉曼光譜特性
拉曼光譜法具有試樣無需前處理和破壞、分析結(jié)果不受溶劑水分子振動干擾的優(yōu)點。如圖6 所示,利用拉曼光譜技術(shù)對NLC 粒子中的葉黃素分子包埋狀況進行了研究。葉黃素的拉曼光譜主要由4 個峰組成,即分子中多烯鏈的C=C 鍵的同相伸縮振動(ν1)、C-C 鍵的同相伸縮振動(ν2)、甲基的平面內(nèi)擺動(ν3)和氫原子的平面外擺動(ν4)[20]。圖6 中,LNLC 凍干粉試樣在波數(shù)1 532、1 197、1 164 cm-l處分別對應葉黃素的ν1、ν2和ν3的3 個主要拉曼峰。結(jié)合3.4.3 的紅外光譜分析結(jié)果,可認為葉黃素分子已被包埋于NLC 的固液脂基粒子中。
圖6 L-NLC 試樣和空白-NLC 試樣的拉曼光譜Fig.6 Roman spectra of L-NLC sample and Blank-NLC sample
3.4.5 產(chǎn)品中葉黃素構(gòu)型變化
為了進一步鑒定葉黃素納米結(jié)構(gòu)脂質(zhì)載體(LNLC)中葉黃素異構(gòu)體的組成,采用配有DAD 檢測器的HPLC 對L-NLC 進行分析,結(jié)果如圖7 所示。試驗結(jié)果表明,L-NLC 制備前(圖7B)所用原料葉黃素99%以上為全反式結(jié)構(gòu)(All-E),僅含有少量9 順式異構(gòu)體(9Z);而L-NLC 制備后,圖7A 顯示,其載運的葉黃素發(fā)生了部分構(gòu)型轉(zhuǎn)化現(xiàn)象,依據(jù)李大婧等[21]的研究,可鑒別出13Z 葉黃素和13`Z 葉黃素明顯增加,且經(jīng)峰面積歸一化法可得總順式葉黃素異構(gòu)體占比達到8.5%,這是由于制備L-NLC 過程的熱致全反式葉黃素異構(gòu)化所導致。
圖7 L-NLC 的液相色譜圖Fig.7 Liquid chromatography of L-NLC
葉黃素的載量和液脂MCT 含量和總脂質(zhì)濃度影響著L-NLC 的包封率、平均粒徑和分散均勻性。在葉黃素載量2%、MCT 質(zhì)量分數(shù)30%及總脂質(zhì)質(zhì)量濃度5%(g·mL-1)的條件下,通過溶劑擴散-超聲分散聯(lián)用法可制備出粒徑較?。ǖ陀?70 nm)、體系分散性良好(PDI<0.3)的L-NLC,被包埋的葉黃素分子以非晶態(tài)形式分散到其固液脂基體系中。在載運葉黃素方面,該NLC 制備方法輔以少量綠色試劑乙醇為擴散助劑,具有操作簡單、設(shè)備要求不高的優(yōu)勢,所得產(chǎn)品有望應用到功能性食品等領(lǐng)域。此外,關(guān)于LNLC 中葉黃素生物利用度變化及在貯藏過程中化學穩(wěn)定性方面的研究,有待下一步開展。