李旭東,艾曉輝,劉永濤,童桂香,韋信賢*,楊移斌*
(1.中國水產(chǎn)科學研究院長江水產(chǎn)研究所,湖北 武漢 430223;2.河南省水產(chǎn)技術(shù)推廣站,河南 鄭州 450008;3.廣西水產(chǎn)科學研究院,廣西水產(chǎn)遺傳育種與健康養(yǎng)殖重點實驗室,廣西 南寧 530021)
克氏原螯蝦(Procambarusclarkii),俗稱小龍蝦,隸屬于節(jié)肢動物門、甲殼綱、十足目、螯蝦科、原螯蝦屬(Procambarus),原產(chǎn)于北美洲[1]。1930年經(jīng)日本引進到中國進行養(yǎng)殖,因其食性雜、生長速度快、環(huán)境適應能力強,并且肉質(zhì)鮮美、營養(yǎng)成分豐富等因素,使得克氏原螯蝦消費量呈現(xiàn)暴發(fā)式增長[2]。
據(jù)《中國小龍蝦產(chǎn)業(yè)發(fā)展報告(2019)》[3]顯示,2007—2018年,小龍蝦產(chǎn)量由26.55萬t激增至163.87萬t,增長率達517.21%,僅2018年與2017年相比,小龍蝦總產(chǎn)量增長45.07%。2018 年中國小龍蝦全社會經(jīng)濟總產(chǎn)值3 690億元,同比增長37.50%。以上數(shù)據(jù)表明小龍蝦正成為養(yǎng)殖戶重要經(jīng)濟收入來源。
隨著人們對小龍蝦消費需求的日益增長,其養(yǎng)殖面積及規(guī)模不斷擴大,致使小龍蝦養(yǎng)殖環(huán)境不斷惡化小龍蝦病害頻發(fā)。目前國內(nèi)報道引起小龍蝦死亡的病原有很多,包括細菌、病毒和寄生蟲等,這些疾病的暴發(fā)給快速發(fā)展的小龍蝦產(chǎn)業(yè)蒙上了一層陰影[4-6]。
近年來,在5月份的小龍蝦疾病多發(fā),且死亡率高,養(yǎng)殖戶稱此階段為小龍蝦“五月瘟”。為了解決實際生產(chǎn)問題,本研究深入湖北的多個小龍蝦養(yǎng)殖主產(chǎn)區(qū),對養(yǎng)殖戶口中的“五月瘟”疾病進行流行病學調(diào)查,并取樣進行分析,為小龍蝦“五月瘟”的防控提供技術(shù)支持。
1.1.1 實驗動物
患病克氏原螯蝦采自湖北荊州、孝感、咸寧、荊門及黃岡等地養(yǎng)殖場。健康克氏原螯蝦購自武漢白沙洲水產(chǎn)批發(fā)市場,體重(20±2)g,健康無傷病,活力強,暫養(yǎng)7 d無異常后用于試驗。
1.1.2 試劑
普通營養(yǎng)瓊脂及肉湯、MH瓊脂、藥敏紙片及細菌生化微量鑒定管均購自杭州微生物試劑有限公司;PCR 所用試劑、特異性引物及細菌基因組DNA 提取試劑盒均購自生工生物工程(上海)股份有限公司。
1.2.1 流行病學調(diào)查及臨床診斷
對患“五月瘟”的克氏原螯蝦主要癥狀、發(fā)病時養(yǎng)殖及周邊環(huán)境以及危害對象、程度及規(guī)模進行調(diào)查,了解用藥史及采取的防控措施等情況,并進行現(xiàn)場解剖診斷觀察。
1.2.2 細菌分離純化
取每批瀕死并具有典型癥狀的克氏原螯蝦10只,體表經(jīng)75%酒精擦拭后于無菌操作臺內(nèi)解剖,取其肝胰腺,利用無菌接種環(huán)取肝胰腺少許組織劃線于營養(yǎng)瓊脂平板上,置于恒溫培養(yǎng)箱中28 ℃培養(yǎng)24 h,挑取形態(tài)大小相近、顏色一致的菌落平板進一步純化培養(yǎng)。將分離純化得到的菌株與30%甘油混合均勻,保存于-80 ℃?zhèn)溆谩?/p>
1.2.3 回歸感染
根據(jù)Koch法則及鑒定結(jié)果[7],選擇2株(分別編號為:XX01和XX02)細菌進行回歸感染試驗以檢測其致病性。將分離株在28 ℃的液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)18 h,在4 ℃下4 000 r/min離心5 min收集菌體,然后用無菌PBS緩沖液重新懸浮,將細菌懸液濃度調(diào)整至試驗所需濃度4 ℃放置備用。
將600只健康克氏原螯蝦隨機分為6組,即實驗組A、B、C、D和E組,對照組F組,每組100只克氏原螯蝦。其中A組和B組,每只克氏原螯蝦注射0.1 mL的XX01菌液,每只劑量分別為103、106CFU;C組和D組,每只克氏原螯蝦注射0.1 mL的XX02菌液,每只劑量分別為103、106CFU;E組每只克氏原螯蝦注射0.1 mL的XX01與XX02 1∶1(V∶V)混合菌液,每只注射混合菌液總劑量為106CFU;對照組F,每只克氏原螯蝦注射相同劑量的無菌PBS。
在實驗過程中,溶解氧保持在7.5~8.5 mg/mL,水溫為24~26 ℃,用完全曝氣的自來水進行養(yǎng)殖,感染實驗周期為7 d。每天記錄臨床癥狀和死亡率。同時對死亡的克氏原螯蝦進行解剖,并進行細菌分離純化及鑒定。
1.2.4 分子鑒定
將分離菌株接種于腦心浸出液,置于搖床恒溫28 ℃培養(yǎng)24 h,菌液經(jīng)高速離心后收集菌體,提取DNA作為PCR擴增模板。細菌16S rRNA序列擴增通用引物為27F:5'-AGAGTTTGATC(C/A)TGGCTCAG-3′;1492R:5′-GGTTACCTTGTTACGACTT-3′。參照王小亮等[8]方法進行PCR反應擴增目的基因。擴增產(chǎn)物確定為目的片段后送上海生工進行純化及序列測定。
將分離株16S rDNA基因序列在NCBI數(shù)據(jù)庫中進行比對,根據(jù)比對結(jié)果下載同源性較高的序列,采用Clustal X軟件進行多序列匹配分析,通過MEGA5.1 軟件Neighbor-Joining法構(gòu)建系統(tǒng)進化樹,1 000次Bootstrap檢驗置信度。
1.2.5 生化鑒定
將分離菌株劃線于營養(yǎng)瓊脂平板上于28 ℃培養(yǎng)24 h后,挑菌落進行革蘭氏染色,參照文獻[9]測定,使用微量生化反應管測定分離菌株主要的理化指標。
1.2.6 藥敏特性分析
分離株XX01及XX02的藥敏特性分析參照NC-CLS抗微生物藥物敏感性實驗執(zhí)行標準采用K-B法進行[10]。將分離株XX01及XX02接種于營養(yǎng)肉湯中,28 ℃恒溫震蕩(200 r/min)培養(yǎng)24 h,用PBS稀釋成濃度為107CFU/mL的菌懸液,取100 μL菌液涂布于MH瓊脂上,在平板表面貼上選擇好的藥敏紙片,將平板置于28 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,測量抑菌圈大小。參照杭州微生物公司藥敏紙片說明書進行敏感度判定。
1.2.7 治療研究
根據(jù)分離株藥敏特性研究結(jié)果,選擇對二者高度敏感且允許使用的藥物進行臨床治療實驗。選擇自然發(fā)病的克氏原螯蝦養(yǎng)殖池A、B、C和D,使用所選定的藥物進行治療研究。A池使用選定藥物加黃芪多糖(質(zhì)量比為1∶1,20 mg/kg蝦體重)、B池僅使用選定藥物(20 mg/kg蝦體重)、C池僅使用黃芪多糖(20 mg/kg蝦體重)及D組對照組。在實驗過程中保證水質(zhì)指標均符合漁業(yè)用水標準(GB 11607— 1989),并將死亡克氏原螯蝦及時撈出。每天記錄克氏原螯蝦臨床表現(xiàn)、癥狀及死亡率。
調(diào)查發(fā)現(xiàn)克氏原螯蝦“五月瘟”發(fā)病周期較長,一般為每年3~7月,發(fā)病高峰期主要集中在5月,發(fā)病水溫一般為25~30 ℃,發(fā)病死亡率高,治療難度大,而此時也正好是克氏原螯蝦大規(guī)模上市及二次投苗的時間,給養(yǎng)殖戶造成的經(jīng)濟損失很大。發(fā)病克氏原螯蝦主要癥狀表現(xiàn)為活力低下、有肌無力癥、反應遲鈍,解剖后發(fā)現(xiàn)腸道及肝胰腺有出血點、鰓部發(fā)黑等癥狀。湖北各地克氏原螯蝦主養(yǎng)區(qū)均有暴發(fā)。
實驗共取樣137份帶回實驗室進行病原檢測,未發(fā)現(xiàn)寄生蟲等感染。細菌分離純化到的菌株2種,編號為XX01及XX02,其中僅檢出XX01的樣本占25.54%,僅檢出XX02占12.42%,二者均檢出的占62.04%。
經(jīng)回歸感染試驗,結(jié)果顯示XX01株在106CFU/只克氏原螯蝦劑量下,克氏原螯蝦全部死亡,而103CFU/只克氏原螯蝦劑量下,克氏原螯蝦發(fā)病率、死亡率均不高;而XX02分離株在106CFU/只克氏原螯蝦劑量時7 d內(nèi)死亡率僅31%,在103CFU/只克氏原螯蝦劑量下幾乎無死亡;XX01與XX02分離株1∶1混合后以106CFU/只劑量感染克氏原螯蝦,引起的死亡率與XX01單獨106CFU/只劑量感染克氏原螯蝦一致,但死亡速率更快;對照組F組未出現(xiàn)異常。分別從試驗組死亡的克氏原螯蝦體內(nèi)分離到與注射菌株形態(tài)特征及理化特性一致的菌株。
對分離株的16S rDNA基因序列與NCBI中已有序列比對,顯示分離株XX01與氣單胞菌屬種類同源性最高,而分離株XX02與檸檬酸桿菌屬種類同源性最高,構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(圖2),菌株XX01與嗜水氣單胞菌(Aeromonashydrophila)聚為一支,菌株XX02與弗氏檸檬酸桿菌(Citrobacterfreundii)聚為一支。分離株的主要理化特性見表1~2,顯示菌株XX01理化特性與嗜水氣單胞菌一致,菌株XX02理化特性與弗氏檸檬酸桿菌一致。結(jié)合分離株主要理化特性測定結(jié)果,綜合判定XX01為嗜水氣單胞菌,XX02為弗氏檸檬酸桿菌。
圖1 回歸感染實驗結(jié)果Fig.1 Regression infection test results
圖2 基于16S rRNA構(gòu)建的關(guān)于XX01 和 XX02的進化樹Fig.2 Phylogenetic tree for 16S rRNA sequence of XX01 and XX02
表1 菌株XX01的生化特性Tab.1 Physiologic and biochemical characteristics of XX01 bacterial strain
研究測定了分離株XX01及XX02對8類19種抗生素的敏感性。結(jié)果表明兩種分離株對新霉素、阿奇霉素、四環(huán)素、強力霉素、依諾沙星、諾氟沙星、氯霉素及氟苯尼考等8種抗生素高度敏感,其中氟苯尼考、強力霉素及新霉素在水產(chǎn)上允許使用,具體見表3。
表2 菌株XX02的生化特性Table 2 Physiologic and biochemical characteristics of XX02 bacterial strain
表3 菌株XX01及XX02的藥敏特性Table 3 Susceptibility of XX01 and XX02 to antibiotics
根據(jù)分離株藥敏特性結(jié)果,選擇氟苯尼考搭配黃芪多糖作為治療藥物。研究發(fā)現(xiàn)A組治愈率最高,一個療程內(nèi)死亡率明顯下降;B組與對照組死亡率接近;C組死亡率首先急劇下降,克氏原螯蝦活力增強,第5天左右死亡率出現(xiàn)反彈,治療效果一般。
本研究經(jīng)廣泛調(diào)查取樣,基本確定了克氏原螯蝦“五月瘟”典型癥狀。從所取137份樣品中分離到2株優(yōu)勢菌,二者混合感染率在62.04%。之所以會出現(xiàn)僅分離到單株優(yōu)勢菌的情況,本研究認為可能是取樣劃線的誤差以及感染菌量等導致的,實際很可能是所有樣品中都存在兩種菌株感染。經(jīng)回歸感染發(fā)現(xiàn),分離株均可導致克氏原螯蝦發(fā)病死亡,與以往研究結(jié)果一致[11-12],并能從發(fā)病死亡個體上再分離到感染菌株。研究結(jié)果在一定程度可證實此次分離株對克氏原螯蝦存在毒性,是克氏原螯蝦“五月瘟”的重要病原,而嗜水氣單胞菌是主要致死菌株。本研究也證明了“五月瘟”可能是多病原多重感染導致的,這與唐慶權(quán)[13]等研究結(jié)果一致。從回歸感染結(jié)果看,單獨的分離株XX02致病能力并不強,而低濃度XX01致病能力也不強,但二者1∶1混合后,毒力明顯增強,推測二者之間可能存在協(xié)同作用。
目前水產(chǎn)動物疾病防控仍然以化藥為主,抗生素是其中重要代表[14]。但是因抗生素大量無序、盲目使用,常導致水產(chǎn)動物病原菌耐藥株出現(xiàn),給水產(chǎn)動物病害治療帶來了極大的麻煩。因此為達到精準用藥的目的,必須準確診斷,確定病原病因,并根據(jù)病原的藥物敏感特性有針對性地選擇藥物。
本研究結(jié)果表明兩種分離株均對氟苯尼考、新霉素、阿奇霉素及四環(huán)素等8種抗生素高度敏感。因此本研究使用分離株共同敏感的藥物氟苯尼考進行治療研究,配合黃芪多糖共同使用取得了很好的療效。治療方案的制定做到了疾病準確診斷,根據(jù)病原藥敏特性選擇相應藥物可以達到高效治療疾病的目的。在研究治療效果時,配合黃芪多糖使用,則是因為黃芪多糖具有一定的排毒增強免疫的效果[15]。在實際水產(chǎn)動物細菌性疾病治療過程中,通常會在治療中后期出現(xiàn)一個死亡高峰,主要原因是水產(chǎn)動物細菌性疾病多為革蘭氏陰性菌,其死亡后會釋放大量的內(nèi)毒素,導致病魚加速死亡,此次治療研究添加黃芪多糖就是解決此關(guān)鍵問題,這項成果已經(jīng)得到廣大一線魚病技術(shù)人員的認可。細菌的耐藥性不同,其可能原因在于養(yǎng)殖環(huán)境、地域及用藥差異等造成的[16]。為此在水生動物病害防控時,有必要每次都測定其藥物敏感特性,選擇高度敏感而且允許使用的藥物,按照商品藥物說明書并在獸醫(yī)師指導下使用。