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    6-羧基殼寡糖清除活性氧的能力及作用機理

    2021-08-26 01:05:38楊曉莉唐延東張方東裴繼誠
    天津科技大學學報 2021年4期
    關鍵詞:羧基寡糖螯合

    楊曉莉,唐延東,張方東,裴繼誠

    (天津市制漿造紙重點實驗室,天津科技大學輕工科學與工程學院,天津 300457)

    活性氧(ROS)是氧通過單電子還原產(chǎn)生的一類含氧且化學性質活潑的物質,主要包括羥基自由基、烷氧自由基、超氧陰離子自由基、過氧化氫等自由基與非自由基物質,其中羥基自由基和超氧陰離子自由基的數(shù)量最多、分布最廣泛、攻擊性最強[1].活性氧的產(chǎn)生與紫外光老化有關,紫外線照射產(chǎn)生的 ROS會攻擊磷脂雙分子層、核酸和細胞器,造成細胞損傷,從而導致皮膚衰老[2].過多的ROS還會引發(fā)血管疾病、阿茲海默癥、癌癥等疾病,因此,清除多余的ROS很有必要[3-5].研究表明:使用外源性自由基清除劑二丁基羥基甲苯(BHT)、丁基羥基茴香醚(BHA)、維生素 C(VC)等可有效清除 ROS,但 BHT和 BHA這類化學合成的自由基清除劑溶解性受限,且長期使用可能會對健康造成危害[6];VC是天然高效自由基清除劑,但具有光敏性,暴露在光照下刺激皮膚且容易失效.因此,尋找安全、高效的天然自由基清除劑成為趨勢.

    殼寡糖(COS)主要來源于蝦蟹殼等海洋資源,是世界上最豐富的可再生資源之一,它由 β-(1-4)-2-氨基-2-脫氧-D-葡萄糖單體組成,分子鏈上有較為活潑的—OH及—NH2基團,易發(fā)生氧化、醚化、季銨化和烷基化等反應[7].同時,殼寡糖具有生產(chǎn)成本低、無毒非致敏性、溶解性好等優(yōu)良特點[8-9],還具有抗菌、抗肥胖、抗炎癥等功能,在醫(yī)藥、食品等領域得到了廣泛的應用[10].因此,通過改性殼寡糖提高其性能及開發(fā)新功能產(chǎn)品成為研究熱點之一.

    6-羧基殼寡糖(C-COS)作為一種殼寡糖改性后得到的水溶性衍生物,其分子骨架含有大量陰離子和陽離子基團.近年來,本課題組對 C-COS的保濕性、抗黑色素沉積及抗菌性能進行研究[11-12],但對 ROS的清除能力尚未系統(tǒng)研究.有實驗表明,殼寡糖相對分子質量大小和脫乙酰度對清除自由基具有重要影響,相對分子質量越小、脫乙酰度越高的殼寡糖具更好的清除自由基效果[13].此外,有報道[14-15]指出 O-羧甲基殼聚糖和 N-羧甲基殼聚糖相比殼聚糖具有較高的抗氧化活性,表明羧甲基基團的出現(xiàn)提高了殼聚糖的抗氧化活性,這對選擇 6-羧基殼寡糖(C-COS)清除ROS提供重要研究思路.

    本文選擇低相對分子質量、高脫乙酰度的殼寡糖為原材料,用一種綠色環(huán)保的方法將殼寡糖 C6伯羥基(—OH)氧化成羧基(—COOH),制備出 6-羧基殼寡糖(C-COS),并采用紅外光譜、核磁共振等方法對6-羧基殼寡糖進行表征.通過體外實驗探究 6-羧基殼寡糖清除 ROS的能力,并與殼寡糖及 VC進行對比.根據(jù)實驗結果并結合自由基產(chǎn)生途徑,對清除ROS的機理進行分析.

    1 材料與方法

    1.1 原料與儀器

    漆酶,酶活 1072U/mL,諾維信生物技術有限公司;殼寡糖,相對分子質量約為 1000,脫乙酰度90.5%,上海源葉生物科技有限公司;2,2,6,6-四甲基哌啶-1-氧基(TEMPO),Sigma-Aldrich 公司;其他試劑及溶劑純度為分析純.

    N-1100型旋轉蒸發(fā)儀,東京理化儀器有限公司;VERTEX 70型傅里葉變換紅外光譜儀,德國布魯克公司;AVANCE Ⅲ400型核磁共振波譜儀,瑞士布魯克拜厄斯賓有限公司;AT-510型自動電位滴定儀,日本京都電子工業(yè)株式會社;UV-2550型紫外分光光度計,日本島津公司.

    1.2 制備方法

    取 0.08g 2,2,6,6-四甲基哌啶-1-氧基(TEMPO)溶于 250mL pH=4.7的乙酸-乙酸鈉緩沖溶液,加入4g殼寡糖充分攪拌,放置30℃水浴鍋中反應 15min;添加 0.4mL漆酶,進行持續(xù) 18h的通氧反應;通氧結束后調節(jié)反應液至中性;將反應液進行旋蒸,旋蒸至 15mL時,轉移至燒杯中并加入300mL無水乙醇,靜置 60min;待反應產(chǎn)物析出后,進行真空抽濾,反復醇洗過濾產(chǎn)物至醇洗液澄清;將濾餅放置真空干燥箱 40℃烘干 48h,烘干后研磨得樣品粉末.

    1.3 表征方法

    1.3.1 傅里葉變換紅外光譜(FTIR)檢測

    稱取干燥的0.001g樣品和0.1g溴化鉀,在瑪瑙研缽中快速充分研磨后壓片 1min,以空氣作為采樣背景,將壓好的樣品立刻放入紅外光譜儀中進行掃描.設定掃描范圍為 400~4000cm-1,分辨率為4cm-1,掃描次數(shù)為 32次.

    1.3.2 核磁共振(13C NMR)檢測

    稱取150mg樣品溶于0.55mL的D2O中,設置采樣條件為30°脈沖序列,掃描時間1.36s,弛豫時間1.89s,累積掃描1024次.

    1.3.3 酸堿電導滴定檢測

    稱取0.2g樣品,溶于10mL 0.1mol/L的HCl溶液中進行酸化,溶解后再加入 90mL水稀釋,靜置待測.打開自動電位滴定儀,使用 0.1mol/L的 NaOH標準溶液進行滴定,記錄 NaOH的消耗體積和電導率,通過式(1)計算出樣品的羧基含量.

    式中:V1、V2和 V3、V4分別為殼寡糖溶液和樣品溶液滴定曲線的計量點,代表 NaOH 的消耗體積,mL;c為氫氧化鈉溶液的濃度,mol/L;m 為樣品質量,g;45為羧基的相對分子質量.

    1.4 清除ROS能力的檢測

    1.4.1 羥基自由基的清除

    FeSO4與 H2O2反應產(chǎn)生羥基自由基(·OH),·OH氧化水楊酸產(chǎn)生有色物質,·OH 越多,生成紫色顏色越深.參考 Zhang等[16]的方法,實驗設樣品組、空白組、對照組.樣品組:添加 2mL 6mmol/L的 FeSO4溶液和 2mL 6mmol/L的 H2O2溶液后,再分別添加2mL不同濃度的樣品溶液(6-羧基殼寡糖溶液、殼寡糖溶液、抗壞血酸溶液),靜置 10min,加入 2mL 6mmol/L的水楊酸溶液搖勻,37℃溫水浴 30min,5000r/min離心5min,取上清液于波長510nm處測其吸光度.用蒸餾水代替樣品為空白組,用蒸餾水代替水楊酸為對照組.按照式(2)計算·OH的清除率.

    式中:I表示清除率,%;A為樣品組吸光度;Ai為對照組吸光度;A0為空白組吸光度.

    1.4.2 過氧化氫的清除[17]

    用 100mL pH 7.4的磷酸鹽緩沖溶液配制20mmol/L過氧化氫(H2O2)溶液.取 3組試管,分別添加l mL不同濃度的6-羧基殼寡糖樣品液、殼寡糖樣品液、抗壞血酸樣品液,同時各加入 2mL H2O2均勻混合,避光 10min后用紫外分光光度計測定其在230nm處的吸光度.用蒸餾水代替樣品液為空白組,用蒸餾水代替 H2O2為對照組.按照式(2)計算 3種樣品液對過氧化氫的清除率.

    1.4.3 烷氧自由基的清除[18]

    鐵離子可誘導脂質物質產(chǎn)生烷氧自由基(RO·),在加熱情況下硫代巴比妥酸(TBA)與過氧化物產(chǎn)生紅色化合物.脂質體 PBS分散體系(LLS)的配制:用PBS溶液(0.01mol/L、pH 7.4)溶解 30mg卵磷脂配制 10mg/mL的溶液,標記為 LLS待用.取 100mL燒杯,依次加入 40mL蒸餾水、15g三氯乙酸(TCA)、0.37g硫代巴比妥酸(TBA)、2mL的濃HCl,攪拌至溶解后移液至 100mL容量瓶并用蒸餾水定容,標為 TCA-TBA-HCl.向試管中依次加入1mL LLS、1mL 400μmol/L FeCl3、1mL 不同濃度的樣品溶液,混勻后放置暗室 37℃水浴 1h,再加入2mL配制完成的TCA-TBA-HCl混合液,90~100℃水浴 15min,水浴結束后置于冰水冷卻,混合液在4000r/min條件下離心 10min,測定上清液在波長532nm處的吸光度.用蒸餾水代替樣品液為空白組,用蒸餾水代替 TCA-TBA-HCl為對照組,按式(2)計算3種樣品液對烷氧自由基的清除率.

    1.4.4 超氧陰離子自由基的清除

    鄰苯三酚在堿性條件下可生成有色的中間產(chǎn)物超氧陰離子自由基(),產(chǎn)物顏色越深代表超氧陰離子自由基生成越多,可用分光光度法進行檢測.參考Acker等[19]的方法取3組試管分別加入0.5mL不同濃度的 6-羧基殼寡糖樣品液、殼寡糖樣品液、抗壞血酸樣品液,再均加入6mL Tris-HCl(50mmol/L,pH 8.1)緩沖溶液,混勻后 37℃水浴處理 10min,然后各加入 lmL經(jīng) 37℃預熱過的鄰苯三酚鹽酸溶液(7mmol/L),搖勻,精確反應 4min后加 0.5mL濃HCl終止反應,在 325nm 波長處測定吸光度.用蒸餾水代替樣品液為空白組,用蒸餾水代替鄰苯三酚溶液為對照組,按照式(2)計算 3種樣品溶液對·O2-的清除率.

    1.5 螯合亞鐵離子能力的檢測[20]

    取 1mL 5mmol/L COS、C-COS溶液分別與0.05mL 2mmol/L 的 FeSO4溶液混合,靜置 3min,然后加入 0.1mL 5mmol/L菲洛嗪溶液,37℃靜置15min 使反應達到平衡后測定在 562nm 處的吸光度.用蒸餾水代替樣品溶液為空白組,用蒸餾水代替FeSO4溶液為對照組.通過式(3)計算COS與C-COS兩種溶液螯合Fe2+的能力.

    式中:R表示螯合能力,%;A0為空白組吸光度;A為樣品組吸光度;Ai為對照組吸光度.

    2 結果與討論

    2.1 結構表征分析

    2.1.1 傅里葉變換紅外光譜(FTIR)分析

    殼寡糖(COS)和 6-羧基殼寡糖(C-COS)的紅外光譜如圖1所示.由圖1可知:兩者出峰位置大致相同,在 3400cm-1至 3200cm-1處,C-COS比 COS的吸收譜帶明顯變寬,說明 C-COS的—OH與—NH2強度增加;2880cm-1和 2930cm-1處為 C—H 的伸縮振動峰,主要代表了 C6位的亞甲基和 C2位所連接的乙酰氨基上的甲基;1640cm-1的 N—H彎曲振動峰仍然存在,說明兩者均殘留部分乙酰胺基;CCOS的 1600cm-1與 1410cm-1處出現(xiàn)了新的較為明顯的C=O不對稱伸縮振動吸收峰[21],說明殼寡糖氧化后新生成了羧基或醛基.

    圖1 COS與C-COS的紅外光譜圖Fig.1 Infrared spectra of COS and C-COS

    2.1.2 核磁共振(13C NMR)分析

    COS與 C-COS溶于 D2O后所得的核磁共振(13C NMR)譜圖如圖2所示.由圖2可知:圖中共有6處較為明顯的共振峰,從左往右依次位于化學位移101.35、76.54、74.66、72.04、60.16 和 55.52 處,分別代表 COS 與 C-COS 結構上的 C1、C4、C5、C3、C6和 C2[22],表明 COS與 C-COS的吡喃環(huán)未被破壞;COS與C-COS分別在化學位移174.78處和174.38處出現(xiàn)較強共振峰,代表COS與C-COS存在部分乙酰氨基(CH3CONH—)[23];COS、C-COS 在化學位移181.61處出現(xiàn)了新的共振峰,與羧酸根(—COO-)的共振峰在 170~190范圍內相吻合[24],證明產(chǎn)生新的羧基官能團.綜上所述,鑒于吡喃環(huán)結構未破壞,C3位仲羥基不能被氧化,C6位伯羥基依然存在,又有新官能團羧基的出現(xiàn),溶液中又有 Na+存在,推斷出漆酶/TEMPO體系是將殼寡糖部分C6位伯羥基氧化成羧酸根后,以羧酸的鈉鹽形式存在,結合紅外光譜檢測的結果,說明6-羧基殼寡糖制備成功.

    圖2 COS與C-COS的核磁共振(13C NMR)譜圖Fig.2 13C NMR spectra of COS and C-COS

    2.1.3 酸堿電導滴定分析

    利用酸堿電導滴定得到 COS與 C-COS相關數(shù)據(jù)繪制曲線,計算 C-COS中羧基含量,結果如圖3所示.由圖3可知:兩者第一階段均是溶液中的 HCl與 NaOH 反應,隨著滴定的進行,H+與 OH-不斷結合生成不導電的 H2O,電導率下降;第二階段,殼寡糖(COS)的—NH2會與 HCl反應生成氨基鹽酸鹽(RNH3Cl),氨基鹽酸鹽與 NaOH反應過程中溶液內的 Na+等離子不斷增加,故電導率有短暫上升,而 6-羧基殼寡糖(C-COS)除了氨基鹽酸鹽,還有RCOONa在HCl溶液下生成的RCOOH、RCOOH與NaOH反應,電導率緩慢上升;第三階段,當溶液中的羧酸和氨基鹽酸鹽與 NaOH完全反應后,隨著NaOH溶液消耗體積的增加,電導率會快速增大.

    圖3 COS與C-COS的酸堿電導滴定分析圖Fig.3 Acid-base conductance titration analysis of COS and C-COS

    將圖3電導滴定曲線中的 4個化學計量點對應的體積(V1、V2、V3、V4)代入式(1),計算后得到了 6-羧基殼寡糖的羧基含量為1.68%,這說明氧化只是將部分C6位羥基氧化為羧基.

    2.2 C-COS體外清除ROS能力

    2.2.1 對羥基自由基的清除活性

    亞鐵離子與過氧化氫反應可產(chǎn)生大量羥基自由基,添加不同質量濃度的 COS和 C-COS,考察樣品對羥基自由基的清除作用,并與天然抗氧化劑VC進行比較,得到清除曲線,如圖4所示.由圖4可知:在0~6mg/mL范圍內,COS、C-COS及VC的羥基自由基清除率均隨濃度增大顯著提高;當質量濃度升至4mg/mL時,此時COS、C-COS及VC對羥基自由基的清除率分別為 32%、93%、99%,之后曲線趨于平緩,清除率較為穩(wěn)定;且質量濃度為 6mg/mL時,CCOS的羥基自由基清除率高達98%,其清除率與VC幾乎相同,此時的 COS的羥基自由基清除率僅為33%.可見,C-COS對羥基自由基的清除能力為COS的 2~3倍.這些結果表明,相比殼寡糖(COS),6-羧基殼寡糖(C-COS)有更好的羥基自由基清除效果.

    圖4 COS與C-COS對羥基自由基的清除作用Fig.4 Scavenging effect of COS and C-COS on hydroxyl radicals

    2.2.2 對過氧化氫的清除活性

    用定量的過氧化氫,考察不同質量濃度的 COS、C-COS、VC對過氧化氫的清除效果,清除曲線如圖5所示.

    圖5 COS與C-COS對過氧化氫的清除作用Fig.5 Scavenging effect of COS and C-COS on hydrogen peroxide

    由圖5可知:在樣品質量濃度范圍為 1~5mg/mL時,COS與 C-COS清除過氧化氫能力隨濃度上升而增強;在 5mg/mL質量濃度下,C-COS與COS對過氧化氫的清除率分別為 99%和 64%,CCOS較COS過氧化氫清除率顯著提高35%,且接近VC的清除率.結果表明,6-羧基殼寡糖較殼寡糖對過氧化氫的清除活性有所提高,且清除效果顯著.

    2.2.3 對烷氧自由基的清除活性

    氧化卵磷脂可產(chǎn)生烷氧自由基,考察不同質量濃度的COS、C-COS與VC對烷氧自由基的清除效果,清除曲線如圖6所示.由圖6可知:COS與 C-COS對烷氧自由基具有清除作用,且在 1~5mg/mL范圍內,隨著COS與 C-COS濃度的增加,清除烷氧自由基能力逐漸增強.在質量濃度為 5mg/mL時,COS、C-COS、VC對烷氧自由基的清除率分別為 37%、59%、98%,C-COS較 COS清除率增加 22%,較 VC清除率減少 39%.這說明 6-羧基殼寡糖對烷氧自由基的清除效果強于殼寡糖,與VC相比還有差距.

    圖6 COS與C-COS對烷氧自由基的清除作用Fig.6 Scavenging effect of COS and C-COS on alkoxy radicals

    2.2.4 對超氧陰離子自由基的清除活性

    通過鄰苯三酚自氧化法制備出超氧陰離子自由基,配制不同質量濃度的 COS進行超氧陰離子清除實驗,并與同質量濃度下的 C-COS、VC進行對比,得清除曲線如圖7所示.

    圖7 COS與C-COS對超氧陰離子自由基的清除作用Fig.7 Scavenging effect of COS and C-COS on superoxide anion radical

    由圖7可知:COS與C-COS對超氧陰離子自由基存在清除作用,在樣品濃度梯度為 0~5mg/mL時,COS與 C-COS清除超氧陰離子自由基能力均隨濃度上升有緩慢提高,但提高效率明顯不如清除羥基自由基;在 1mg/mL時,COS與 C-COS對超氧陰離子自由基的清除率分別是29%、35%,C-COS對超氧陰離子自由基的清除率僅比 COS多 6%,即 6-羧基殼寡糖較殼寡糖有小幅度的清除增強效果,效果不顯著的原因可能與清除不同自由基機制有關.

    2.3 螯合亞鐵離子的能力

    亞鐵離子等金屬離子被認為是影響活性氧自由基產(chǎn)生的重要因素之一,亞鐵離子越多,促進產(chǎn)生的自由基越多.通過對比COS與C-COS螯合亞鐵離子的能力大小,可進一步對其螯合作用官能團進行判斷.COS與 C-COS螯合亞鐵離子能力如圖8所示.由圖8可見:在 1~5mg/mL質量濃度范圍間,隨樣品溶液濃度的升高,COS與C-COS對亞鐵離子的螯合能力逐漸增強.在質量濃度為 5mg/mL時,COS與 C-COS對亞鐵離子的螯合能力分別為 25%和58%,C-COS較 COS螯合亞鐵離子能力增強 33%.由于C-COS與COS的唯一區(qū)別是C6位官能團的變化,推測出螯合能力的增強可能與 C-COS中 C6位羧基的出現(xiàn)有關.

    圖8 COS與C-COS螯合亞鐵離子的能力Fig.8 Ability of COS and C-COS chelating ferrous ions

    3 清除自由基機理

    自由基的生成為一系列連鎖反應,包括引發(fā)、增值、終止3個階段,因此對應有3種清除自由基的途徑.一是盡可能避免紫外線、輻射等自由基引發(fā)條件;二是減少 Fe2+等可以促進自由基生成的金屬離子;三是促使帶電子物質與自由基結合生成穩(wěn)定大分子自由基[25-26].通過對比 6-羧基殼寡糖和殼寡糖清除活性氧(ROS)實驗,發(fā)現(xiàn) 6-羧基殼寡糖清除活性氧的能力相比殼寡糖均有不同程度的提高,即殼寡糖C6位羥基氧化為羧基后,清除活性氧能力增強.結合2.3節(jié)螯合亞鐵離子實驗結果,推測機理如圖9所示.圖9(a)、(b)為COS清除ROS機理,作用基團為C6位羥基、C3位羥基和 C2氨基,作用基團結合自由基(R·),生成穩(wěn)定大分子物質;同時溶液中氨基發(fā)生質子化過程,所以氨基清除 ROS能力減弱,此過程羥基清除占主導地位.圖9(c)、(d)、(e)為 C-COS清除 ROS機理,作用基團為 C3位羥基、C2氨基和C6羧酸根.由于C-COS的C6位有羧酸根(—COO-)的存在,羧酸根質子化抑制氨基(—NH2)形成,進而更多氨基的孤電子對提供電子給自由基(R·),生成穩(wěn)定的自由基大分子;同時羧酸根本身具有螯合金屬離子能力[29],多組 6-羧基殼寡糖的—COO-與 F e2+等金屬離子螯合,進而阻止金屬離子催化氧化生成ROS.所以,此過程氨基清除和羧酸根清除起主要作用,兩者共同作用大于 COS羥基的清除效果,所以整體評價C-COS清除ROS效果強于COS清除ROS效果.綜上所述,可看作6-羧基殼寡糖抑制氨基質子化與螯合金屬離子兩者協(xié)同作用,即通過第二、第三途徑提高了清除ROS的能力.

    圖9 COS和C-COS清除ROS機理圖Fig.9 ROS scavenging mechanism diagram of COS and C-COS

    4 結 論

    (1)利用漆酶/TEMPO 體系對殼寡糖(COS)分子結構的C6位進行氧化修飾,成功制備出6-羧基殼寡糖(C-COS).

    (2)通過體外實驗法發(fā)現(xiàn) 6-羧基殼寡糖(CCOS)較殼寡糖(COS)具有更高的清除 ROS能力,并且隨濃度的升高清除率逐漸提高,表明羧酸根的加入和濃度的大小可以影響清除活性氧的能力.其中不同氧自由基清除效果不一,清除能力大小為H2O2≥·OH>RO·>,清除自由基能力不同可能與自由基產(chǎn)生機制不同有關.

    (3)羥基自由基(·OH)作為最常見、最活躍、高流動性的自由基,6-羧基殼寡糖對其和過氧化氫的清除效果最佳,清除率可達 98%以上,最接近天然抗氧化劑 VC的清除效果,說明 6-羧基殼寡糖在抗氧化方面也有較大的應用價值.

    (4)根據(jù)羧酸根具有質子化和螯合金屬離子的特點,結合自由基產(chǎn)生的機理,可進一步分析 6-羧基殼寡糖提高清除活性氧的原因,說明 C6位羧基和 C2氨基在清除自由基方面起積極作用,這也為殼寡糖類似結構物質的改性及應用提供了重要思路.

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