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    DHRS2抑制肝細(xì)胞肝癌增殖和轉(zhuǎn)移的功能研究①

    2021-08-21 04:36:12沈陽(yáng)市第六人民醫(yī)院介入科沈陽(yáng)110006
    中國(guó)免疫學(xué)雜志 2021年11期
    關(guān)鍵詞:細(xì)胞系細(xì)胞周期克隆

    馬 軼 滕 穎 劉 慧 畢 爽(沈陽(yáng)市第六人民醫(yī)院介入科,沈陽(yáng)110006)

    肝癌是最常見(jiàn)的惡性腫瘤之一,其發(fā)病率在全球排名第六,死亡率排名第四,每年約有84萬(wàn)例新發(fā)病例和78萬(wàn)例死亡病例,其死亡率僅低于發(fā)病率[1]。肝細(xì)胞肝癌(hepatocellular carcinoma,HCC)是最常見(jiàn)的原發(fā)性肝癌類(lèi)型,占肝癌的90%以上。盡管HCC的治療有所改善,但由于其疾病診斷時(shí)常處于晚期,導(dǎo)致治療具有較大局限性,HCC患者的預(yù)后和生存率仍然令人沮喪[2]。因此更徹底地了解HCC的發(fā)病分子機(jī)制,并找到更有效的治療策略至關(guān)重要。脫氫酶∕還原酶SDR家族成員2(dehydrogenase∕reductase SDR family member 2,DHRS2)也稱HEP27,最初由GABRIELLI等[3]專家從HepG2細(xì)胞系中克隆而來(lái),并發(fā)現(xiàn)組蛋白脫乙?;敢种苿┒∷徕c處理HepG2細(xì)胞后,DHRS2在細(xì)胞核中積累,并誘導(dǎo)細(xì)胞停滯在G1期。同時(shí)有研究表明,DHRS2在結(jié)直腸癌、鼻咽癌和卵巢癌等多種腫瘤中表達(dá)異常,其表達(dá)水平與腫瘤增殖、轉(zhuǎn)移和耐藥等惡性生物學(xué)行為密切相關(guān)[4-6]。但DHRS2在HCC中發(fā)揮的具體作用目前還未見(jiàn)報(bào)道,因此本文對(duì)此進(jìn)行研究,并發(fā)現(xiàn)DHRS2抑制HCC細(xì)胞的增殖和轉(zhuǎn)移能力,可能是HCC新的治療靶點(diǎn)。

    1 材料與方法

    1.1 材料HCC細(xì)胞系Huh-7、HepG2和SK-hep-1及正常肝細(xì)胞系LO2購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院;DMEM高糖培養(yǎng)基和FBS購(gòu)于美國(guó)Hyclone公司;DHRS2過(guò)表達(dá)質(zhì)粒購(gòu)于上海吉?jiǎng)P基因公司;CCK8試劑購(gòu)自美國(guó)GlpBio公司;6孔板、96孔板和Transwell小室購(gòu)自美國(guó)BD公司;細(xì)胞周期檢測(cè)試劑盒購(gòu)自上海碧云天生物技術(shù)有限公司;蛋白裂解液和BCA蛋白濃度檢測(cè)試劑盒購(gòu)自中國(guó)北京索萊寶試劑公司;Toll樣受體4(Toll-like receptor 4,TLR4)和人髓性分化原發(fā)反應(yīng)蛋白88(myeloid differentiation primary response 88,MyD88)抗體購(gòu)自英國(guó)Abcam公司;ECL化學(xué)發(fā)光試劑盒購(gòu)于美國(guó)Thermo公司。

    1.2 方法

    1.2.1 生物信息學(xué)分析 于http:∕∕ualcan.path.uab.edu∕index.html網(wǎng)站頁(yè)面中選擇“HCC”,并輸入“DHRS2”基因進(jìn)行分析,得出TCGA數(shù)據(jù)庫(kù)中HCC組織和正常肝組織中DHRS2的表達(dá)水平。于http:∕∕kmplot.com∕analysis∕index.php?p=service網(wǎng)站頁(yè)面中腫瘤類(lèi)型選擇“HCC”,并輸入“DHRS2”基因,點(diǎn)擊總生存期分析,得出kaplan meier plotter數(shù)據(jù)庫(kù)中DHRS2的表達(dá)對(duì)HCC患者預(yù)后的影響。

    1.2.2 細(xì)胞培養(yǎng)及過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HCC細(xì)胞系Huh-7、HepG2和SK-hep-1及正常肝細(xì)胞系LO2復(fù)蘇后重懸至含10%FBS的DMEM高糖培養(yǎng)基,置于37℃、5%CO2全濕培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。將呈對(duì)數(shù)生長(zhǎng)的Huh-7細(xì)胞以2×105個(gè)∕孔接種于6孔板,分為對(duì)照組(NC組)和DHRS2過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染組(oe-DHRS2組),鋪板12 h,采用脂質(zhì)體2000將質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)染至各組Huh-7細(xì)胞,12 h后更換新鮮培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。

    1.2.3 CCK8實(shí)驗(yàn) 取生長(zhǎng)狀態(tài)良好的Huh-7細(xì)胞以1 500個(gè)∕孔鋪至96孔板,分為NC組和oe-DHRS2組,每組設(shè)置6個(gè)復(fù)孔,按上述過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染方法轉(zhuǎn)染。分別在細(xì)胞轉(zhuǎn)染后的第24 h、48 h、72 h和96 h,加入CCK8試劑,繼續(xù)孵育2 h后,酶標(biāo)儀檢測(cè)各孔在波長(zhǎng)450 nm處的吸光度(OD)值。

    1.2.4 平板克隆實(shí)驗(yàn) 取生長(zhǎng)狀態(tài)良好的Huh-7細(xì)胞,以500個(gè)∕孔鋪至6孔板,分為NC組和oe-DHRS2組,每組設(shè)置3個(gè)復(fù)孔,按上述過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染方法轉(zhuǎn)染。細(xì)胞在培養(yǎng)箱中培養(yǎng)2周左右時(shí),形成肉眼可見(jiàn)的克隆團(tuán)。PBS洗去培養(yǎng)基后,加入甲醇固定,吉姆薩染色,干燥掃描后計(jì)數(shù)克隆團(tuán)。

    1.2.5 細(xì)胞周期實(shí)驗(yàn) 取上述轉(zhuǎn)染NC和oe-DHRS2 48 h的Huh-7細(xì)胞,加入預(yù)冷的無(wú)水乙醇固定過(guò)夜,PBS洗3次后,按照細(xì)胞周期檢測(cè)試劑盒染色,流式細(xì)胞儀分析各組細(xì)胞周期比例。

    1.2.6 Transwell實(shí)驗(yàn) 取上述轉(zhuǎn)染NC和oe-DHRS2 48 h的Huh-7細(xì)胞,無(wú)血清培養(yǎng)基洗3次后,取1×105個(gè)細(xì)胞加入Transwell小室,下室加入500 μl完全培養(yǎng)基。培養(yǎng)24 h后,PBS洗去Transwell小室上室面細(xì)胞,甲醇固定下室面細(xì)胞,吉姆薩染色,顯微鏡下拍照,計(jì)數(shù)穿膜細(xì)胞數(shù)。

    1.2.7 Western blot取上述轉(zhuǎn)染NC和oe-DHRS2 48 h的Huh-7細(xì)胞,PBS洗3次后,加入蛋白裂解液,超聲儀裂解破碎細(xì)胞,14 000 r∕min、4℃離心30 min。獲取上清液,并檢測(cè)蛋白濃度。采用10% SDSPAGE 80 V電泳分離蛋白,350 mA濕轉(zhuǎn)至PVDF膜,5%BSA室溫孵育PVDF膜1 h,TLR4和MyD88一抗4℃孵育過(guò)夜,二抗室溫孵育1 h,ECL試劑曝光條帶。Image J軟件測(cè)定蛋白條帶灰度值。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS21.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。數(shù)據(jù)以±s表示,t檢驗(yàn)統(tǒng)計(jì)兩組間差異,單因素方差統(tǒng)計(jì)多組間的差異。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 DHRS2在HCC組織中的表達(dá)水平TCGA數(shù)據(jù)庫(kù)分析DHRS2在HCC組織中的表達(dá)水平,分析結(jié)果顯示DHRS2 mRNA在371例HCC組織中的表達(dá)低于在50例正常肝組織中的表達(dá)水平(P<0.05),見(jiàn)圖1。

    圖1 TCGA數(shù)據(jù)庫(kù)分析DHRS2在HCC組織中表達(dá)減少Fig.1 TCGA database analysis of reduced expression of DHRS2 in HCC tissues

    2.2 DHRS2對(duì)HCC患者預(yù)后的影響Kaplan meier plotter數(shù)據(jù)庫(kù)分析DHRS2的表達(dá)對(duì)HCC患者預(yù)后的影響。結(jié)果顯示1 307例低表達(dá)DHRS2的HCC患者較3 792例高表達(dá)DHRS2的HCC患者的預(yù)后差,見(jiàn)圖2。

    圖2 Kaplan-meier plotter數(shù)據(jù)庫(kù)分析低表達(dá)DHRS2的HCC患者預(yù)后差Fig.2 Kaplan-meier plotter database analyzed poor prog?nosis of HCC patients with low expression of DHRS2

    2.3 DHRS2在HCC細(xì)胞系中的表達(dá)水平Western blot檢測(cè)DHRS2在HCC細(xì)胞系Huh-7、HepG2和SK-hep-1及正常肝細(xì)胞系LO2中的表達(dá)水平,結(jié)果顯示,DHRS2在HCC細(xì)胞中的表達(dá)均低于在正常肝細(xì)胞系LO2中的表達(dá),在Huh-7細(xì)胞中的表達(dá)最低(P<0.05),見(jiàn)圖3A。選擇Huh-7進(jìn)行DHRS2過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染,用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)。Western blot結(jié)果顯示,DHRS2在oe-DHRS2組細(xì)胞中的表達(dá)高于在NC組細(xì)胞中的表達(dá),DHRS2過(guò)表達(dá)質(zhì)??娠@著增加Huh-7細(xì)胞中DHRS2的表達(dá)(P<0.05),見(jiàn)圖3B。

    圖3 DHRS2在各細(xì)胞系中的表達(dá)Fig.3 Expressions of DHRS2 in each cell lines

    2.4 CCK8檢測(cè)細(xì)胞增殖能力DHRS2過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HCC細(xì)胞Huh-7后,與NC組相比,oe-DHRS2組細(xì)胞增殖能力降低(P<0.05),見(jiàn)圖4。

    圖4 CCK8實(shí)驗(yàn)檢測(cè)DHRS2抑制HCC細(xì)胞增殖能力Fig.4 CCK8 assay detected ability of DHRS2 to inhibit proliferation of HCC cells

    2.5 平板克隆實(shí)驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞克隆形成能力DHRS2過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HCC細(xì)胞Huh-7后,NC組細(xì)胞克隆團(tuán)數(shù)目為(54.65±10.15)%,oe-DHRS2組細(xì)胞克隆團(tuán)數(shù)目為(18.42±3.51)%。與NC組相比,oe-DHRS2組細(xì)胞克隆形成能力降低(P<0.05),見(jiàn)圖5。

    2.6 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞周期DHRS2過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HCC細(xì)胞Huh-7后,NC組G2∕M期細(xì)胞比率為(13.52±3.58)%,oe-DHRS2組G2∕M期細(xì)胞比率為(28.68±7.58)%。與NC組相比,oe-DHRS2組G2∕M期細(xì)胞比率增加(P<0.05),見(jiàn)圖6。

    圖6 細(xì)胞周期實(shí)驗(yàn)檢測(cè)DHRS2誘導(dǎo)HCC細(xì)胞阻滯在G2/M期Fig.6 Cell cycle assay detected DHRS2 induction of HCC cell arrest in G2/M phase

    2.7 Transwell實(shí)驗(yàn)檢測(cè)細(xì)胞轉(zhuǎn)移能力DHRS2過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HCC細(xì)胞Huh-7后,NC組細(xì)胞穿膜數(shù)目為(70.67±3.79)%,oe-DHRS2組細(xì)胞穿膜數(shù)目為(32.67±3.78)%。與NC組相比,oe-DHRS2組細(xì)胞轉(zhuǎn)移能力降低(P<0.05),見(jiàn)圖7。

    圖7 Transwell實(shí)驗(yàn)檢測(cè)DHRS2抑制HCC細(xì)胞轉(zhuǎn)移能力Fig.7 Transwell assay detected ability of DHRS2 to inhibit HCC cell metastasis

    2.8 Western blot檢 測(cè)TLR4∕MyD88信 號(hào) 通 路 活性DHRS2過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染HCC細(xì)胞Huh-7后,與NC組相比,oe-DHRS2組細(xì)胞TLR4和MyD88蛋白表達(dá)降低(P<0.05),見(jiàn)圖8。

    圖8 Western blot檢測(cè)DHRS2抑 制TLR4和MyD88蛋白的表達(dá)Fig.8 Western blot detected DHRS2 inhibit expressions of TLR4 and MyD88 proteins

    3 討論

    HCC是消化系統(tǒng)惡性腫瘤之一,其在亞洲發(fā)病尤為普遍,約有一半的HCC新發(fā)患者來(lái)自中國(guó)[1]。HCC的主要危險(xiǎn)因素是乙型肝炎病毒或丙型肝炎病毒感染,以及黃曲霉毒素暴露和重度飲酒等,我國(guó)乙肝患病率較高,HCC發(fā)病率具有增高趨勢(shì)[7]。目前HCC的治療主要包括手術(shù)切除、放化療和靶向治療,其中腫瘤切除和肝臟移植是早期肝癌的主要治療策略,但近40%的患者在肝切除術(shù)后的第一年內(nèi)復(fù)發(fā),且肝臟移植來(lái)源困難[8]。晚期肝癌的治療主要取決于經(jīng)導(dǎo)管動(dòng)脈化療栓塞、放療、化學(xué)療法和索拉非尼的靶向治療,腫瘤細(xì)胞對(duì)于放化療及靶向藥物的抵抗性,仍然是不可攻克的難題[9]。HCC的高度侵襲性和治療方法的局限性促使HCC長(zhǎng)期預(yù)后仍然不能令人滿意[2]??尚星矣行У闹委煼椒ㄊ荋CC的研究重點(diǎn)。目前HCC的發(fā)病機(jī)制尚未完全明確。因此探索HCC進(jìn)展的詳細(xì)機(jī)制有助于確定HCC新的治療靶點(diǎn)。

    短鏈醇脫氫酶∕還原酶(SDR)超家族參與多種中間代謝過(guò)程和脂質(zhì)信號(hào)分子代謝,結(jié)構(gòu)中含有一些常見(jiàn)的序列基序,如NAD∕NADP輔因子結(jié)合結(jié)構(gòu)域的甘氨酸共有序列,作為催化結(jié)構(gòu)域的氨基酸和分布在序列之間高度保守的氨基酸序列,這些結(jié)構(gòu)使SDR酶在生理和病理過(guò)程中發(fā)揮重要功能[10]。SDR酶超家族的成員SDR25C1,又稱DHRS2,位于染色體14q11.2,該區(qū)域在許多腫瘤中具有高頻雜合性缺失,在腫瘤的發(fā)生和惡性進(jìn)展中發(fā)揮重要功能[11]。DHRS2在奧沙利鉑耐藥的結(jié)直腸癌細(xì)胞HCT116中表達(dá)增加,而沉默DHRS2的表達(dá)可通過(guò)p53依賴性途徑有效地恢復(fù)奧沙利鉑的敏感性,抑制DHRS2的表達(dá)可能是預(yù)防結(jié)直腸癌奧沙利鉑耐藥的有效策略[4]。鼻咽癌中DHRS2在體內(nèi)和體外抑制腫瘤細(xì)胞的生長(zhǎng),并可作為抗腫瘤藥物天花霉素的靶點(diǎn)治療鼻咽癌[5]。由此可見(jiàn),DHRS2在不同類(lèi)型腫瘤中發(fā)揮的作用可能不一致,而DHRS2在HCC中的具體作用未知。本文采用TCGA和Kaplan meier plotter兩大數(shù)據(jù)庫(kù)分析得出,DHRS2在HCC中表達(dá)下調(diào),且DHRS2表達(dá)高的HCC患者具有較好的預(yù)后。與HAN等[6]報(bào)道的卵巢癌組織中DHRS2表達(dá)降低,卵巢癌患者中DHRS2的高表達(dá)與更好的預(yù)后相關(guān)結(jié)果一致。本文由于條件的限制,未在組織樣本上進(jìn)行分析,但在細(xì)胞水平上檢測(cè)了DHRS2的表達(dá),Western blot結(jié)果顯示DHRS2蛋白在HCC細(xì)胞系中的表達(dá)均低于在正常肝細(xì)胞系LO2中的表達(dá),提示DHRS2在HCC中可能發(fā)揮抑癌基因作用。

    進(jìn)一步選擇HCC表達(dá)低的Huh-7細(xì)胞進(jìn)行DHRS2過(guò)表達(dá)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染,研究其在HCC中發(fā)揮的具體生物學(xué)功能。ZHOU等[11]報(bào)道DHRS2表達(dá)的下調(diào)與食管癌的侵襲、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移、臨床分期晚期和患者預(yù)后較差有關(guān),且體外和體內(nèi)功能實(shí)驗(yàn)研究均表明,DHRS2可抑制食管癌細(xì)胞增殖和細(xì)胞轉(zhuǎn)移能力。本文功能實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,過(guò)表達(dá)DHRS2抑制HCC細(xì)胞的增殖活性、平板克隆形成和轉(zhuǎn)移能力,并使細(xì)胞阻滯在G2∕M期,其中細(xì)胞增殖活性、平板克隆形成能力和細(xì)胞周期均反映細(xì)胞的增殖能力,表明DHRS2在HCC中與細(xì)胞增殖和轉(zhuǎn)移惡性行為有關(guān)。Toll樣受體家族是重要的受體家族,在腫瘤免疫抑制中發(fā)揮重要功能,其家族成員TLR4介導(dǎo)的炎癥在宿主防御入侵病原體和對(duì)炎癥刺激的生理反應(yīng)中都至關(guān)重要,TLR4在慢性肝炎和肝硬化中增加,在HCC中維持高表達(dá)[12-14]。而MyD88是TLR4發(fā)揮作用的關(guān)鍵銜接分子,也是腫瘤發(fā)生過(guò)程中的關(guān)鍵分子,其調(diào)控的下游分子參與腫瘤的增殖和轉(zhuǎn)移,在HCC中MyD88呈高表達(dá)狀態(tài),TLR4∕MyD88信號(hào)通路是促進(jìn)腫瘤發(fā)生發(fā)展的重要相關(guān)途徑[15-17]。本研究發(fā)現(xiàn)DHRS2抑制HCC細(xì)胞中TLR4和MyD88蛋白表達(dá),表明DHRS2可能通過(guò)降低TLR4∕MyD88信號(hào)通路活性抑制HCC細(xì)胞增殖和轉(zhuǎn)移能力。

    綜上所述,DHRS2在HCC中發(fā)揮抑癌基因功能,其可能通過(guò)調(diào)控TLR4∕MyD88信號(hào)通路活性抑制HCC細(xì)胞增殖和轉(zhuǎn)移能力,DHRS2可能是治療HCC的新型有效治療靶標(biāo)。

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