張冉 石長林 茍小軍 何鴻晏
作者單位:四川省巴中市中心醫(yī)院胸心外科(四川省巴中市636000)
肺癌是嚴重威脅人類健康的惡性腫瘤之一,其發(fā)病率和死亡率呈現(xiàn)逐年上升趨勢[1]。肺癌是由肺部上皮細胞的異常增殖導(dǎo)致,但其具體機制尚未闡明,盡管手術(shù)、放化療等治療手段有了較為明顯的突破,但晚期肺癌患者的5年生存率仍未明顯改善。有研究[2]顯示,導(dǎo)致肺癌患者治療失敗的主要原因是淋巴、胃等器官的惡性轉(zhuǎn)移。因此,深入揭示肺癌的發(fā)病、發(fā)展以及轉(zhuǎn)移的分子機制,尋找腫瘤轉(zhuǎn)移的分子靶點,有助于臨床上開展個體化的靶向治療,提高晚期肺癌患者的生存[3]。
微小RNA(microRNA,miRNA)是包含19~22個核苷酸的單鏈非編碼的生物小分子。有研究顯示,miRNA 在癌細胞的惡性增殖與轉(zhuǎn)移過程發(fā)揮促癌或抑癌作用[4]。miR-302c 屬于miR-302 家族中的一員,在肝癌、膠質(zhì)瘤、胃癌等惡性腫瘤中發(fā)揮抑癌作用。Ye 等[5]研究報道m(xù)iR-302c 在肺癌中表達異常,與患者的不良預(yù)后關(guān)系密切。但并未詳細探討miR-302c在肺癌中的作用機制。轉(zhuǎn)錄因子環(huán)磷酸腺苷(cAMP)反應(yīng)元件結(jié)合蛋白-1(cAMP-responsive elementbinding protein-1,CREB-1)是細胞內(nèi)重要的轉(zhuǎn)錄調(diào)控基因[6]。Jiang 等[7]研究表明,作為機體內(nèi)重要的原癌基因,CREB-1 在白血病、腎癌、乳腺癌等腫瘤組織中的表達高于正常組織,且在腫瘤細胞的惡性轉(zhuǎn)移中發(fā)揮重要作用。但是有關(guān)CREB-1 在肺癌中的報道較少。本研究通過對在線數(shù)據(jù)庫以及肺癌細胞株A549的研究,探討miR-302c 和CREB-1 在肺癌中的作用機制,以期為臨床上肺癌的個體化治療提供潛在靶點。
1.1.1 細胞 永生化人肺支氣管上皮細胞BEAS-2B、人肺癌A549 細胞、人胚胎腎細胞293T 均購自美國ATCC,miR-302c-mimic 和miR-302c-mimic-NC 由生工生物工程(上海)股份有限公司提供。
1.1.2 試劑與儀器 鼠抗甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)單克隆抗體購自美國Jackson 公司;CCK-8試劑盒、Western blot 試劑盒均購自美國Invitrogen公司;Transwell 小室購自美國Sigma-Aldrich 公司;蘇凈Airtech 超凈工作臺購自美國Thermo Fisher 公司;BD-56 集成式恒溫恒濕細胞培養(yǎng)箱購自德國BINDER 公司;IXplore Standard 倒置顯微鏡購自日本Olympus 公司;Multiskan Sky 全波長酶標儀購自美國Thermo Fisher 公司;Hitachi H-600 透射電子顯微鏡購自日本日立公司。
1.1.3 在線生物數(shù)據(jù)庫信息 收集在線生物基因數(shù)據(jù)庫GEO 中GSE19945 和GSE136043 兩組肺癌數(shù)據(jù)集信息。GSE19945 為手術(shù)切除的肺癌組織樣本的miRNA 芯片數(shù)據(jù),包括8 例正常肺組織、4 例肺腺癌、11例大細胞神經(jīng)內(nèi)分泌癌、35 例小細胞肺癌、5例鱗狀細胞癌。GSE136043 為15 例肺腺癌組織、25例淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移組織以及5 例正常組織的miRNA 芯片數(shù)據(jù)。Kmplot 網(wǎng)站(https://kmplot.com/analysis/)用于評估數(shù)據(jù)庫中的肺癌樣本中的生存率,通過UALCAN數(shù)據(jù)庫分析TCGA 數(shù)據(jù)庫中獲得差異表達的基因,獲取靶標信息[8]。
通過Human Protein Atlas 數(shù)據(jù)庫(https://www.proteinatlas.org/)分析CREB1 在正常人體不同組織中的分布情況,以及CREB1 在正常肺組織以及肺癌中的表達情況[9]。
1.2.1 定量反轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)(qRT-PCR)檢測BEAS-2B 細胞和A549 細胞中miR-302c 和CREB1的mRNA 的表達 使用Trizol 試劑盒分別提取細胞總RNA,根據(jù)Prime Scrip TM 試劑要求逆轉(zhuǎn)錄生成反義cDNA,以此為模板采用PCR 儀進行擴增[10](95℃,5 s,單次循環(huán)后;95℃,5 s;60℃,60 s,采集熒光信號40 個循環(huán));各目的基因mRNA 的相對表達量采用2–△△CT表示。使用序列如下:
內(nèi)參U6 上游引物為 5’-GCCAAGGCTGTGGGC AAGGT-3’,下游引物為 5’-TCTCCAGGCGGCACG TCAGA-3’;miR-302c 上游引物為 5’-AGCCTTGCAG AAAAGAGAGC-3’,下游引物為5’-AGCTAGTTGTC ATCCTGCT-3’;CREB1 mRNA 上游引物為 5’-AGC TAGTTGTCATCCTGCT-3’,下游引物為5’-AGGAAG TCTTTCAGTGATGT-3’。
1.2.2 雙熒光素酶實驗 使用生物信息學(xué)數(shù)據(jù)庫miRactDB(https://ccsm.uth.edu/miRactDB)判斷miR-302c 和CREB1 存在特異性結(jié)合位點。推測CREB1可能為miR-302c 的靶基因。293T 細胞常規(guī)培養(yǎng),依次構(gòu)建突變型pGL3-CREB1-3-UTR-MUT 和野生型pGL3-CREB1-3-UTR-WT 質(zhì)粒,將100 ng 質(zhì)粒通過Lipofectamine2000分別共轉(zhuǎn)染至293T 細胞,按試劑盒要求培養(yǎng)細胞,48 h 后以PROMEGA 雙熒光素酶系統(tǒng)檢測螢火蟲熒光素酶活性/海腎熒光素酶的活性比值[11]。
1.2.3 細胞培養(yǎng)以及分組處理[12]將人A5491 接種于含有滅活的10%胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)基中,37℃,5%CO2培養(yǎng)。將細胞分為正常組、對照組和實驗組,正常組不加任何藥物,常規(guī)培養(yǎng);對照組將細胞轉(zhuǎn)染150 nmol/L 的miR-302c-mimic-NC 后常規(guī)培養(yǎng);實驗組將細胞轉(zhuǎn)染150 nmol/L 的miR-302c-mimic 后常規(guī)培養(yǎng)。
1.2.4 觀察細胞超微結(jié)構(gòu)改變 調(diào)整細胞的濃度至1×106個/mL 接種于6 孔板上,分組處理同上,將細胞在37℃,5%CO2細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h 后,固定,包埋,制成超薄切片,醋酸雙氧鈾-枸櫞酸鉛雙重染色[13],Hitachi H-600 透射電子顯微鏡下觀察各組細胞的超微結(jié)構(gòu)改變。
1.2.5 Transwell 實驗 在Transwell 小室平板平鋪一層Matrigel 基質(zhì)膠(約50 μL)并將以無血清培養(yǎng)基中的各組單細胞懸液加至上室(侵襲實驗中鋪Matrigel 膠,遷移實驗中不鋪膠),在小室下室平鋪含有滅活的10%胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)基,置入37℃,5%CO2培養(yǎng)箱常規(guī)培養(yǎng)24 h,清洗后,甲醛固定;染色后,顯微鏡下觀察并對穿過膜的細胞進行計數(shù)[14]。
1.2.6 小管形成實驗 在96 孔培養(yǎng)板上平鋪一層新鮮Matrigel 溶膠,迅速轉(zhuǎn)移進無菌培養(yǎng)箱(37℃),待Matrigel 溶膠凝固后,將HUMCEs 細胞以1×104個/mL接種在96 孔板中,分組同上,分別加入含A549 細胞的培養(yǎng)上清液,繼續(xù)培養(yǎng)48 h,倒置光學(xué)顯微鏡下觀察HUMCEs 的血管生成情況并拍照記錄[15]。
1.2.7 Western blot 檢測 胰酶消化細胞,離心稀釋成細胞懸液,分組處理同上,按1×105個/孔接種至6孔板中培養(yǎng)24 h,加入蛋白裂解液,常規(guī)提取總蛋白,測定濃度,置于沸水中變性,進行電泳分離,轉(zhuǎn)模,清洗后,在封閉液中孵育30 min,加入一抗(1∶500),孵育過夜,加入二抗(1∶1 000),二氨基聯(lián)苯胺(DAB)顯色[16],以GAPDH 作為內(nèi)參,Image J 圖像分析軟件統(tǒng)計分析各條帶的灰度值。
采用SPSS 19.0 軟件進行統(tǒng)計學(xué)分析。采用Graphpad5.01 繪制統(tǒng)計圖。兩組間比較采用t檢驗,多組間比較采用單因素方差分析。以P<0.05 為差異具有統(tǒng)計學(xué)意義。
針對數(shù)據(jù)集GSE19945 中的標本進行分析,結(jié)果顯示miR-302c 在肺癌中的表達最低(圖1);針對數(shù)據(jù)集GSE136043 的標本進行分析,結(jié)果顯示miR-302c在出現(xiàn)淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移的患者中的表達水平降低(圖2)。兩數(shù)據(jù)集經(jīng)Kmplot 分析顯示,miR-302c 高表達的肺癌患者的生存期為(77.52±8.45)個月,明顯高于miR-302c 低表達的肺癌患者(45.92±6.43)個月(圖3),提示miR-302c 在肺癌中的表達與患者的預(yù)后以及惡性轉(zhuǎn)移關(guān)系密切。
圖1 在GSE19945 樣本中表達差異明顯的miRNA 的熱圖
圖2 miR-302c 在GSE136043 樣本中表達差異明顯的miRNA 的熱圖
圖3 miR-302c 不同表達水平患者的生存期
Human Protein Atlas 數(shù)據(jù)庫顯示,CREB1 在腦、鼻咽、胃、肝、腎、支氣管、肺等組織和器官中廣泛存在,數(shù)據(jù)內(nèi)的組織樣本經(jīng)免疫組織化學(xué)法檢測后,與正常組織相比,肺癌組織中CREB1 的表達明顯升高(圖4)。
圖4 CREB1 在人體中以及肺臟和肺癌組織中的表達
qRT-PCR 結(jié)果顯示,與正常BEAS-2B 細胞相比,A549 細胞中miR-302c 的表達明顯下降,CREB1 的mRNA 表達明顯升高,差異均具有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05,圖5)。
圖5 細胞系中miR-302c 和CREB1 的mRNA 表達
上述研究結(jié)果提示,在肺癌中miR-302c 和CREB1 基因的表達具有一定的相關(guān)性;在線生物信息數(shù)據(jù)庫miRactDB 顯示miR-302c 和CREB1 基因存在特異性結(jié)合位點。雙熒光素酶報告基因結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染miR-302c 后,野生型CREB1 的熒光素酶活性被抑制(P<0.05),突變型CREB1 熒光素酶活性無明顯變化(P>0.05),提示miR-302c 與CREB1 具有靶向調(diào)控關(guān)系(表1,圖6)。
圖6 雙熒光素酶實驗
表1 miR-302c 和CREB1 基因的結(jié)合位點
電鏡觀察結(jié)果顯示,正常組細胞結(jié)構(gòu)完整,清晰可辨,細胞質(zhì)內(nèi)內(nèi)容物數(shù)量豐富,線粒體、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)、核糖體以及高爾基體等細胞器結(jié)構(gòu)完整,線粒體嵴結(jié)構(gòu)清晰可辨,核質(zhì)界限清晰;對照組細胞的細胞質(zhì)界限清晰,線粒體嵴結(jié)構(gòu)正常,核仁性狀穩(wěn)定;實驗組細胞的細胞質(zhì)界限不清,胞膜缺失嚴重,線粒體呈現(xiàn)空泡樣變性,嵴結(jié)構(gòu)數(shù)量明顯減少,染色質(zhì)固縮、聚集明顯,核膜凹陷缺失明顯,細胞超微結(jié)構(gòu)損傷嚴重(圖7)。
圖7 各組細胞超微結(jié)構(gòu)的改變(×8 000)
Transwell 小室結(jié)果顯示,與正常組相比,實驗組遷移和侵襲的細胞數(shù)量明顯下降,差異均具有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05);正常組與對照組相比,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05,圖8,9)。
圖8 Transwell 小室遷移實驗
小管形成實驗結(jié)果顯示,與正常組相比,實驗組細胞小管生成的數(shù)量明顯下降(P<0.05);正常組與對照組相比,差異無統(tǒng)計意義(P>0.05,圖10)。
圖10 小管形成實驗
從蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫中研究發(fā)現(xiàn),CREB1 和P53 存在調(diào)控位點(圖11),為進一步探索CREB1 基因的作用通路,采用Western blot 檢測各組細胞中P53、P21的磷酸化水平。結(jié)果顯示,與正常組相比,實驗組細胞中CREB1 的表達明顯下降,p-P53、p-P21 的表達明顯升高,差異均具有統(tǒng)計學(xué)意義(均P<0.05);正常組與對照組相比,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05,圖12)。
圖9 Transwell 小室侵襲實驗
圖11 CREB1 和P53 存在調(diào)控位點
圖12 各組細胞中CREB1、p-P53、p-P21 的表達
作為一種常見的呼吸系統(tǒng)疾病,肺癌的發(fā)病率和死亡率居所有惡性腫瘤前列。目前,臨床上主要以放療、化療、手術(shù)以及免疫治療為主,但在提高晚期肺癌患者的5年生存率方面,現(xiàn)有的治療手段均面臨嚴峻的挑戰(zhàn)[17]。大量的臨床數(shù)據(jù)顯示[18],肺癌患者死亡的主要原因是腫瘤細胞的靶器官侵襲以及惡性轉(zhuǎn)移。因此,研究肺癌細胞的侵襲與轉(zhuǎn)移的分子機制,尋找有效可靠的治療靶點,為患者尋找安全的分子靶向治療方案,成為該領(lǐng)域的研究熱點。
研究顯示[19],作為體內(nèi)重要的非編碼基因,miRNAs 參與調(diào)控腫瘤細胞的增殖、分化、凋亡、血管新生、化療耐藥以及侵襲與轉(zhuǎn)移等生物學(xué)過程。Guo等[20]研究證實miR-151a-5p、miR-23b 等多種miRNA在肺癌中表達異常,并影響腫瘤細胞的增殖與侵襲等。作為miR-302 家族中的一員,miR-302c 在肝癌、子宮內(nèi)膜癌等多種腫瘤中發(fā)揮抑癌作用,并引起廣泛關(guān)注[21]。Ma 等[22]研究表明miR-302c 靶向調(diào)控轉(zhuǎn)錄因子激活蛋白-4(AP-4)基因的表達,抑制大腸癌細胞的上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化以及癌細胞轉(zhuǎn)移。Wang 等[23]研究證實miR-302c 抑制細胞周期蛋白cyclin O(CCNO)基因的表達從而誘導(dǎo)宮頸鱗狀細胞癌的凋亡。本研究中通過對在線生物信息數(shù)據(jù)集GSE1994 和GSE 136043 研究發(fā)現(xiàn),miR-302c 在肺癌中存在低表達的現(xiàn)象,并且miR-302c 在肺癌中的表達與患者的預(yù)后以及惡性轉(zhuǎn)移關(guān)系密切;細胞實驗顯示,過表達miR-302c 后,A549 細胞超微結(jié)構(gòu)損傷嚴重,細胞的侵襲與轉(zhuǎn)移能力以及血管新生能力明顯下降。
有研究[24]顯示,腫瘤細胞的侵襲與轉(zhuǎn)移是肺癌發(fā)展中的重要的環(huán)節(jié),腫瘤血管新生是癌細胞進行侵襲和轉(zhuǎn)移的主要途徑。Ramadan 等[25]研究指出,眾多信號通路與靶基因參與或調(diào)控腫瘤細胞的侵襲與轉(zhuǎn)移過程。CREB1 是細胞內(nèi)功能明確的促癌基因。Hu 等[26]研究顯示,在乳腺癌中抑制CREB1 的表達能明顯抑制乳腺癌細胞的體內(nèi)生長與靶器官轉(zhuǎn)移。Cheng 等[27]研究顯示CREB1 高表達的結(jié)腸癌患者的預(yù)后不佳,并且發(fā)生多處靶器官的轉(zhuǎn)移。本研究通過對Human Protein Atlas 數(shù)據(jù)庫的數(shù)據(jù)進行研究顯示,CREB1 在肺癌中處于高表達的狀態(tài)。qRT-PCR 結(jié)果顯示,與正常肺組織細胞相比,在A549 細胞中miR-302c 的表達明顯下降,CREB1 的mRNA 表達明顯升高,驗證了數(shù)據(jù)庫的研究結(jié)果。雙熒光素酶結(jié)果顯示miR-302c 能靶向調(diào)控CREB1 的表達。
揭示靶基因的作用位點,能更深入地闡明腫瘤轉(zhuǎn)移與侵襲的分子機制。P53 信號是細胞內(nèi)重要的抑癌通路,Lacroix 等[28]研究顯示該通路中的P53、P21 經(jīng)磷酸化后具有生物活性,并廣泛影響腫瘤細胞的代謝、增殖、細胞周期以及轉(zhuǎn)移與侵襲等生理病理過程。Vennin 等[29]研究指出P53 信號通過調(diào)控下游相關(guān)基因的轉(zhuǎn)錄,推動P21 等相關(guān)抑癌分子的磷酸化,抑制胰腺癌細胞的上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化過程。Wang 等[30]研究顯示,在前列腺癌中,CREB1 能調(diào)控P53 的活性,抑制腫瘤細胞的血管生成。本研究結(jié)果顯示,P53 與靶基因CREB1 存在特異性結(jié)合位點。Western blot 結(jié)果顯示實驗組細胞CREB1 的表達明顯下降,p-P53、p-P21 的表達明顯升高。
綜合上述,miR-302c 在肺癌組織表達降低,過表達miR-302c 后能明顯抑制肺癌細胞的侵襲與轉(zhuǎn)移,這可能與抑制靶基因CREB1 的表達以及P53 信號激活有關(guān)。但miR-302c 在肺癌臨床治療的價值尚需更深入的研究。