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    TNF-α刺激下人牙周膜干細胞對CD3+T細胞功能的影響*

    2021-08-19 06:40:08劉娜李影王燕一張維劉洪臣
    口腔頜面修復學雜志 2021年4期
    關(guān)鍵詞:牙周膜免疫調(diào)節(jié)共培養(yǎng)

    劉娜 李影 王燕一 張維 劉洪臣

    近些年間充質(zhì)干細胞(Mesenchymal stem cells,MSCs)免疫調(diào)節(jié)能力受到廣泛關(guān)注,其可以與體內(nèi)微環(huán)境互相影響,分泌多種細胞因子從而發(fā)揮調(diào)控作用[1,2]。PDLSCs作為MSCs的一種同源性的干細胞,其免疫調(diào)節(jié)能力與間充質(zhì)干細胞相似,關(guān)于PDLSCs的免疫調(diào)節(jié)功能越來越受到關(guān)注[3]。近期相關(guān)研究結(jié)果表明炎癥微環(huán)境下PDLSCs的免疫調(diào)節(jié)能力也會降低[4]。Wada等的研究發(fā)現(xiàn)人牙周膜干細胞能通過分泌可溶性因子介導免疫調(diào)節(jié)功能[5]。

    T細胞能夠產(chǎn)生細胞免疫應答,是適應性免疫系統(tǒng)的主要細胞。免疫細胞在體外活化以后可以分泌IFNγ、TNFα等可溶性因子,能夠啟動MSCs的免疫抑制程序,從而導致IDO、iNOS等蛋白的大量分泌,它們的酶活性產(chǎn)物抑制了免疫細胞的功能及增殖[6-8]。此外,有研究表明在牙周組織的破壞及牙槽骨吸收中T細胞扮演重要的角色。Tian M等發(fā)現(xiàn)在慢性牙周炎患者外周血T淋巴細胞中PD-1和PDL-1呈高表達,其能夠通過負性免疫調(diào)節(jié)效應來增強炎癥反應,從而促進牙槽骨的吸收和破壞[9]。

    然而,T細胞參與牙周炎發(fā)生發(fā)展及其與PDLSCs之間相互作用的機制尚不明確。本實驗將通過外源性人重組腫瘤壞死因子構(gòu)建體外炎癥微環(huán)境,刺激PDLSCs,并與CD3+T細胞共培養(yǎng),檢測PDLSCs對CD3+T細胞生物學功能的影響。

    1.材料方法

    1.1 樣本來源 從解放軍總醫(yī)院第一醫(yī)學中心口腔頜面外科門診收集健康第三磨牙。所有患者身體健康,無近期急性感染及服藥史?;颊吣挲g在20-35歲之間,樣本量共8例。另外,從解放軍總醫(yī)院第一醫(yī)學中心輸血科獲取人外周血白膜層細胞濃縮血樣,所有捐獻者身體健康,無半年內(nèi)用藥史及系統(tǒng)性疾病。樣本量共8例。本研究經(jīng)中國人民解放軍總醫(yī)院倫理委員會批準(批準號:IACUC-2016067),所有患者均簽署了知情同意書。

    1.2 人牙周膜干細胞分離培養(yǎng) 將本課題組獲取的新鮮離體牙樣本,使用無菌鑷子將牙齒倒置,用提前配置的PBS(含1%青鏈霉素,北京Solarbio)小心沖洗5-7次,刮取根中1/3部分牙周膜,用眼科剪將組織小心剪碎,然后置于盛有5mL預制PBS的15mL離心管中,在室溫下使用水平離心機800r/min離心5min。使用胰酶消化法(1mL EDTA-胰蛋白酶消化液(北京Solarbio)消化2-4min后終止消化)處理組織碎塊,同樣的轉(zhuǎn)速離心5min后加入5mL含血清α-MEM培養(yǎng)液(含1%青鏈霉素、10%FBS,美國Gibco)重懸,置于直徑10cm的無菌培養(yǎng)皿中,放入孵箱連續(xù)培養(yǎng)7d左右,倒置顯微鏡下可見形似成纖維細胞的紡錘形細胞爬出。待細胞長至80%匯合時傳代。采用有限稀釋法進行克隆培養(yǎng)分離培養(yǎng)人牙周膜干細胞,具體方法步驟參考本課題組前期工作[10]。

    本課題組從人健康離體牙樣本中分離培養(yǎng)出健康牙周膜干細胞標記為:H-PDLSCs(Healthy-Periodontal ligament stem cells);本課題組將H-PDLSCs采用10ng/mL的TNFα(美國,Peprotech)提前刺激24h作為炎癥誘導條件下的牙周膜干細胞,標記為:I-PDLSCs(Inflammatory-Periodontal ligament stem cells)。

    1.3 CD3+T細胞的體外分離培養(yǎng) 將全血白膜層10mL加等量預冷PBS稀釋,緩慢加入20mL人外周血淋巴細胞分離液(天津灝洋生物技術(shù)有限公司),離心(2000rpm,15min)。白膜層吸取物用PBS(加入5mL的RPMI1640培養(yǎng)液,美國Gibco)洗2次,沉淀物富含單個核細胞,進行細胞計數(shù)。調(diào)整細胞密度1×107/100μL按照說明書(德國MiltenyiBiotec GmbH)流程進行CD3+T細胞提?。喊凑?07細胞添加10μL CD3e-biotin試劑并混勻;置于4℃避光孵育10min,加入預制冷卻的PBS清洗后離心棄上清;加入1mL預制冷卻的PBS重懸,每107細胞添加20μL anti-biotin磁珠混勻,重復上述孵育及清洗離心步驟,棄上清;重懸后使用適量預制緩沖液潤濕細胞分選柱,然后用1mL預制緩沖液加力沖洗2次;將分選柱撤離磁力架后預制緩沖液沖洗2次,可獲得CD3+T細胞。隨后進行CD3+T細胞的培養(yǎng)及活化:T細胞計數(shù)后分選適量的細胞置于離心管中,一部分按照實驗所需濃度加入配制的RPMI 1640刺激液4mL,調(diào)整細胞密度為8×105/100uL,另一部分加入配制的RPMI 1640培養(yǎng)液,分別混合均勻后置于兩個直徑6cm的培養(yǎng)皿中,標記,放入37℃,5%CO2孵箱內(nèi)進行培養(yǎng),用于下步實驗。

    1.4 PDLSCs與CD3+T細胞共培養(yǎng) 將第三代PDLSCs消化后重懸后進行細胞計數(shù):8×104/100μL,采用48孔板(美國,Corning),每孔液體量400μL,每孔CD3+T細胞的數(shù)量均為8×105個,PDLSCs與CD3+T細 胞 的 比 例 為1∶1、1∶10、1∶20、1∶50、1∶100[11,12]。共培養(yǎng)時間為48h。10ng/mL的TNFα(美國,Peprotech)提前刺激H-PDLSCs 24h作為I-PDLSCs,在刺激24h后PBS清洗3遍隨后按比例加入相應的CD3+T細胞。

    1.5 實時定量PCR檢測CD3+T細胞凋亡及炎癥相關(guān)基因表達 共培養(yǎng)48h后,Trizol裂解細胞提取RNA,反轉(zhuǎn)錄試劑盒(Takara,日本)逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,Sybr Green試劑盒進行qRT-PCR檢測(全式金,中國),在反應管中擴增目的基因及管家基因(華大基因,中國),反應體系為20μL。引物序列:TNFα,上游引物:5′-CACCACTTCGAAACCTGGGA-3′,下游引物:TGTAGGCCCCAGTGAGTTCT-3′;Caspase-3,上游引物:5′-CCTGGTTCATCCAGTCGCTT-3′,下游引物:5′-TCTGTTGCCACCTTTCGGTT-3′;Caspase-8,上 游 引 物:5′-CTGGTCTGAAGGCTGGTTGT-3′,下 游 引 物:5′-CAGGCTCAGGAACTTGAGGG-3′;IL-6,上游引物:5′-GCACAGCTCTGGCTTGTTCC-3′,下游引物:5′-TGAGGAGACTTGCCTGGTGA-3′GAPDH,上游引物:5′-TCTGACGACTCTGCTTCACG-3′,下游引物:5′-TTCAGGGCATGTGTGATGCT-3′;CCND-1,上游引物:5′-GATGCCAACCTCCTCAACGA-3′,下游引物:5′-ACTTCTGTTCCTCGCAGACC-3′;。反應條件:95℃變性20min,95℃30s,60℃1min,40個循環(huán)。采用實時熒光定量PCR儀(Applied Biosystems 7500,美國Life Technologies公司)監(jiān)測記錄數(shù)據(jù),重復3次。

    1.6 統(tǒng)計學處理 采用SPSS 22.0統(tǒng)計軟件進行數(shù)據(jù)分析,數(shù)據(jù)以均數(shù)±標準差表示。獨立樣本t檢驗進行兩組間比較;多組間比較時,P值進行Bonferroni校正。P<0.05、P<0.01為差異有統(tǒng)計學意義。

    2.結(jié)果

    2.1 CD3+T細胞分離培養(yǎng) 顯微鏡下T細胞被PHA活化后,CD3+T細胞呈圓形懸浮生長,細胞增殖活躍,活性良好(圖1)。

    圖1 CD3+T細胞鏡下觀(×200;×400)

    2.2 共培養(yǎng)對CD3+T細胞Caspase3、Caspase8基因表達的影響 將H-PDLSCs及I-PDLSCs分別與CD3+T細胞以1∶10、1∶20、1∶50及1∶100比例共培養(yǎng)48h后,進行RNA的提取及逆轉(zhuǎn)錄。按照protocol進行實時定量PCR檢測,本課題組的檢測結(jié)果表明:在1∶10-1∶100范圍內(nèi),隨H/I-PDLSCs與CD3+T細胞比例的降低,H-PDLSCs組Caspase3及Caspase8 mRNA的表達水平較對照組顯著降低,且呈逐級下降趨勢(圖2A、B)。而在1∶10-1∶100范圍內(nèi),隨PDLSCs與CD3+T細胞比例的降低,I-PDLSCs組Caspase3、Caspase8表達水平降低與其對照組相比顯著降低,在1∶20、1∶50時,表達較為穩(wěn)定(圖2C、D),而當I-PDLSCs與CD3+T細胞以1∶100比例共培養(yǎng)后Caspase3及Caspase8基因表達雖與對照組相比顯著降低但較1∶20、1∶50明顯升高(圖2A、B)。

    圖2 CD3+T細胞凋亡相關(guān)基因表達

    A:正常組共培養(yǎng)48h后Real Time PCR檢測Caspase3 mRNA的相對表達量(*P<0.05);B:正常組共培養(yǎng)48h后Real Time PCR檢測Caspase8 mRNA的相對表達量(*P<0.05);C:炎癥組共培養(yǎng)48h后Real Time PCR檢測Caspase3 mRNA的相對表達量(*P<0.05,#P<0.01);D:炎癥組共培養(yǎng)48h后Real Time PCR檢測Caspase8 mRNA的相對表達量(*P<0.05,#P<0.01)。

    2.3 牙周膜干細胞對CD3+T細胞IL-6、TNFα基因表達的影響 我們的研究結(jié)果顯示H-PDLSCs與CD3+T共培養(yǎng)比例為1∶10、1∶20、1∶50及1∶100時隨著濃度的降低其IL-6、TNFα均呈現(xiàn)隨濃度變化而降低的趨勢,在共培養(yǎng)比例為1∶20、1∶50時,表達較為穩(wěn)定(圖3A、B)。隨PDLSCs與CD3+T細胞比例的降低,I-PDLSCs組IL-6、TNFα表達水平顯著降低,1:50比例時IL-6、TNFα降低程度最高,而在共培養(yǎng)比例為1∶100時IL-6、TNFα的基因表達水平較1∶50有所增高(圖3C、D)。

    圖3 CD3+T細胞炎癥相關(guān)基因表達

    A:正常組共培養(yǎng)48h后Real Time PCR檢測IL-6 mRNA的相對表達量(*P<0.05);B:正常組共培養(yǎng)48h后Real Time PCR檢測TNFαmRNA的相對表達量(*P<0.05);C:炎癥組共培養(yǎng)48h后Real Time PCR檢測IL-6 mRNA的相對表達量(*P<0.05,#P<0.01);D:炎癥組共培養(yǎng)48h后Real Time PCR檢測TNFαmRNA的相對表達量(*P<0.05,#P<0.01)。

    2.4 H-PDLSCs、I-PDLSCs對CD3+T細胞增殖抑制作用 綜合上述研究結(jié)果,在牙周膜干細胞與CD3+T細胞共培養(yǎng)比例為1∶20時其基因檢測較為穩(wěn)定,因此此部分實驗檢測PDLSCs與CD3+T細胞在共培養(yǎng)比例1∶20時CD3+T細胞CCND1 mRNA表達水平。結(jié)果顯示,H-PDLSCs與CD3+T細胞共培養(yǎng)組相較對照組CCND-1表達水平降低(0.27倍,P<0.05);I-PDLSCs與CD3+T細胞共培養(yǎng)組CCND-1相較對照組表達水平降低(0.48倍,P<0.05)。而與I-PDLSCs共培養(yǎng)后CD3+T細胞CCND-1的表達水平高于與H-PDLSCs組共培養(yǎng)組(圖4)。

    圖4 H-PDLSCs/I-PDLSCs與CD3+T細胞以1∶20比例共培養(yǎng)48h后Real Time PCR檢測CCND1 mRNA的相對表達量(*P<0.05)

    3.討論

    PDLSCs近年來在牙周組織再生領(lǐng)域的研究中,受到了廣泛關(guān)注。其多向分化潛能已經(jīng)得到公認。MSCs可以釋放多種細胞因子,其條件培養(yǎng)基能夠有效增加骨缺損部位的組織愈合,促進纖維結(jié)締組織及骨組織增生。與MSCs類似,PDLSCs具有很強的免疫調(diào)節(jié)能力。PDLSCs在維持牙周組織內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定、創(chuàng)傷愈合及組織再生中發(fā)揮重要的作用。有學者通過對PDLSCs條件培養(yǎng)基及牙周炎動物模型的研究發(fā)現(xiàn),PDLSCs可以通過降低TNFα的水平,來抑制牙槽骨吸收,促進牙周組織再生[13,14]。LI等研究表明PDLSCs可以通過分泌可溶性因子的旁分泌途徑及直接接觸抑制來抑制PHA激活的外周血單核細胞的增殖,并可以抑制IL-2及IFNγ的分泌[15]。炎癥環(huán)境下,當免疫細胞被活化后,干細胞分泌的免疫調(diào)節(jié)蛋白增加,從而調(diào)控自身免疫調(diào)節(jié)能力。針對干細胞的免疫調(diào)節(jié)與組織再生的雙重功能本研究設計相關(guān)實驗以檢測炎癥條件下PDLSCs對免疫細胞生物學性能的影響。

    MSCs在機體微環(huán)境調(diào)控下,可以分泌特定的蛋白質(zhì),在多種細胞組織的抗炎和生長愈合中發(fā)揮重要的作用。其可以從多種組織中獲得,除優(yōu)異的分化能力外,其最顯著的特征是免疫調(diào)節(jié)及營養(yǎng)能力[16]。有報道證實MSCs可以促進調(diào)節(jié)性T細胞的產(chǎn)生[17]。組織駐留記憶T細胞(Tissue resident memory T cells,Trm)是一種新的長壽命記憶T細胞亞群,在先前的細菌或病毒感染后仍存在于屏障組織中,以支持早期/即時防御機制,提供針對病原體攻擊的位點特異性保護。有學者研究提示,Trm在維持牙周內(nèi)穩(wěn)態(tài)中發(fā)揮重要的作用。當牙周內(nèi)穩(wěn)態(tài)被打破,牙齦屏障的防護作用被破壞,細菌抗原進入更深的結(jié)締組織,激活記憶性T細胞,導致牙周炎的發(fā)生發(fā)展[18,19]。本實驗采用免疫磁珠法進行T細胞的分離培養(yǎng),磁珠分選系統(tǒng)分離的細胞純度可以達到80-99%,得率在60-90%左右[20],我們使用了CD3+磁珠從人外周血單個核淋巴細胞中特異性分離獲取了CD3+T細胞。

    雖然大部分的文獻報道間充質(zhì)干細胞具有較強的抗炎作用,但近期也有相關(guān)研究表明在炎癥也能反作用于干細胞,并提升其免疫調(diào)節(jié)性能。當使用外源性炎癥因子TNF-α及INF-γ刺激MSCs后其分泌的iNOS水平增高,從而使其對T淋巴細胞的增殖抑制能力增強,能夠更好的發(fā)揮免疫抑制作用[21]。INF-γ聯(lián)合Toll受體激動劑能共同介導PDLSCs產(chǎn)生IDO-1,從而增強PDLSCs在牙周炎疾病條件下的免疫應答。T淋巴細胞在人體細胞免疫中起著重要作用,研究證實PDLSCs不引起同種異體T淋巴細胞的增殖,卻能抑制絲裂原和混合淋巴細胞反應引起的T淋巴細胞增殖,其主要是由可溶性因子在PDLSCs介導的免疫抑制中發(fā)揮了主導作用[22]。Caspase-8在Caspases家族中舉足輕重,作為介導細胞凋亡的重要蛋白,可以在外界因素刺激下,啟動級聯(lián)反應,從而激活Caspase-3,釋放DNA降解酶,降解DNA,最終使細胞發(fā)生凋亡[23]。TNFα作為牙周炎發(fā)生發(fā)展中經(jīng)典的炎癥因子,在活動性牙周炎的牙周組織中呈高表達水平,在牙周膠原破壞以及骨質(zhì)吸收中發(fā)揮關(guān)鍵性作用。IL-6具有多種生物學活性,可以借助內(nèi)分泌途徑發(fā)揮全身功效,其中就包括強大的免疫調(diào)節(jié)及抗感染功能。本實驗結(jié)果表明,正常組PDLSCs與CD3+T細胞共培養(yǎng)時,在PDLSCs與CD3+T細胞比例1∶10至1∶100范圍內(nèi),隨著PDLSCs比例的降低,前者對后者的抑制作用增加,抑制了凋亡基因Caspase3/8、炎癥因子IL-6、TNFα的mRNA表達水平。在二者比例為1∶50時,抑制作用較為穩(wěn)定。炎癥因子組PDLSCs與CD3+T細胞共培養(yǎng)時,在PDLSCs與CD3+T細胞比例1∶10至1∶100范圍內(nèi),隨著PDLSCs比例的降低,前者對后者凋亡及炎癥因子分泌的抑制作用增加,抑制了凋亡基因Caspase3/8、炎癥因子IL-6、TNFα的mRNA表達水平。說明PDLSCs可以保護淋巴細胞數(shù)目的減少。在二者比例為1∶20及1∶50時,作用較為穩(wěn)定。這與Najar M等的研究結(jié)果相似,從各種來源中(骨髓、脂肪組織等)分離的MSCs以劑量依賴方式抑制CD4+T細胞和CD8+T細胞亞群[24]。H-PDLSCs在與CD3+T細胞按照1∶10、1∶20、1∶50及1∶100的比例共培養(yǎng)后CD3+T細胞的Caspase3、Caspase8、IL-6、TNF-α的表達呈逐步下降趨勢,說明正常情況下H-PDLSCs的免疫調(diào)節(jié)方面的能力呈穩(wěn)定趨勢。而在I-PDLSCs在與CD3+T細胞按照1∶10、1∶20、1∶50及1∶100的比例共培養(yǎng)后CD3+T細胞的Caspase3、Caspase8、IL-6、TNF-α的表達在1∶10、1∶20、1∶50時呈逐步降低趨勢,而在1∶100時出現(xiàn)反彈式增高趨勢,呈現(xiàn)這種不穩(wěn)定的趨勢的原因可能是由于在本實驗的檢測期間CD3+T Caspase3、Caspase8表達水平增高致使細胞呈現(xiàn)顯著凋亡趨勢,而鑒于CD3+T的免疫執(zhí)行能力進而反饋性的轉(zhuǎn)錄合成大量IL-6、TNF-α。另一方面,慢性炎癥導致的干細胞生物學功能的變化機理較為復雜,炎癥刺激可導致干細胞內(nèi)關(guān)鍵蛋白的自分泌及旁分泌功能發(fā)生變化,這些蛋白可影響干細胞的自噬、凋亡、增殖、分化等功能,本研究的結(jié)果在而在I-PDLSCs在與CD3+T細胞按照1∶100時出現(xiàn)反彈式增高趨勢這與上述因素有一定的關(guān)系,其具體分子生物學機制尚待深入研究。

    此外,我們的研究還證實無論正常還是炎癥條件下的牙周膜干細胞對CD3+T細胞均有一定的增殖抑制能力。CCND1在細胞周期調(diào)控中發(fā)揮重要的作用。細胞周期蛋白依賴性激酶與細胞周期蛋白結(jié)合后被激活,促進細胞周期G1、S、G2、M的定向轉(zhuǎn)變。本實驗數(shù)據(jù)表明,在共培養(yǎng)后,與H-PDLSCs組共培養(yǎng)的CD3+T細胞CCND1基因的表達水平是與I-PDLSCs共培養(yǎng)的0.5倍,說明I-PDLSCs對CD3+T細胞增殖的抑制作用減弱。提示在炎癥狀態(tài)下PDLSCs的免疫調(diào)節(jié)能力下降。我們證實了正常及炎癥因子組PDLSCs均可呈濃度依賴性抑制CD3+T細胞的增殖及炎癥因子分泌。但是具體的機制尚不清楚,仍待我們進一步探究。

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