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    鏈格孢侵染采后甜瓜病程相關(guān)蛋白基因表達(dá)及酶活性變化規(guī)律

    2021-07-28 08:34:26白羽嘉馮作山朱婉彤曾禹???/span>蔣莉瑩
    食品科學(xué) 2021年14期
    關(guān)鍵詞:伽師鏈格果皮

    王 瑾,白羽嘉,2,,馮作山,朱婉彤,曾禹睿慷,蔣莉瑩

    (1.新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科學(xué)與藥學(xué)學(xué)院,新疆果品采后科學(xué)與技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,新疆 烏魯木齊 830052;2.新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)作物學(xué)博士后科研流動(dòng)站,新疆 烏魯木齊 830052)

    厚皮甜瓜(Cucumis meloL.)是一年生蔓性草本植物,是西北地區(qū)效益較好的一種經(jīng)濟(jì)作物[1]。伽師瓜是新疆特有的晚熟型厚皮甜瓜品種,耐貯藏[2]。86-1甜瓜為中晚熟厚皮甜瓜,貯藏性一般。兩種甜瓜肉質(zhì)松脆,甘甜爽口,果肉顏色相近,呈橘紅色。果皮存在較大差異,伽師瓜果皮呈墨綠色,表面致密,無(wú)網(wǎng)紋或兩端覆少網(wǎng)紋;86-1甜瓜果皮呈黃色夾雜綠色,通體布有網(wǎng)紋。

    真菌病原菌是引起我國(guó)甜瓜腐爛的主要原因[3-4]。其中鏈格孢是采后甜瓜貯藏期間的優(yōu)勢(shì)致病菌,引起甜瓜黑斑病[5],甜瓜感染鏈格孢后,果實(shí)初期呈水漬狀濕腐,果面變軟腐爛,后在爛果表面產(chǎn)生大量黑霉,即病菌分生孢子梗和分生孢子,最終導(dǎo)致采后甜瓜腐爛變質(zhì)[6-7]。真菌細(xì)胞壁以幾丁質(zhì)、纖維素為骨架,以β-1,3葡聚糖及蛋白質(zhì)為主要填充物,保持真菌細(xì)胞壁的結(jié)構(gòu)完整性[8-9]。病原菌侵染后,植物細(xì)胞分泌幾丁質(zhì)酶(chitinase,CHT)和β-1,3-葡聚糖酶(β-1,3-glucanase,GLU)消化真菌細(xì)胞壁中的幾丁質(zhì)和β-1,3-葡聚糖,破壞并裂解真菌細(xì)胞壁骨架,影響其形態(tài)建成、生長(zhǎng)發(fā)育和致病力等[10]。目前,研究人員對(duì)甜瓜病程相關(guān)蛋白基因的研究?jī)H針對(duì)于甜瓜果肉,如研究采后鏈格孢侵染甜瓜果肉CHT和GLU基因的變化規(guī)律[11-12];對(duì)果皮的研究多集中在CHT、GLU活性,如研究采后損傷接種鏈格孢菌,甜瓜果皮和果肉CHT、GLU活性變化規(guī)律[13-14],對(duì)甜瓜果皮和果肉CHT、GLU基因和酶活綜合性研究鮮見報(bào)道。而果皮是甜瓜抵御病原菌侵染的第一道防線,也是最重要的物理抗病結(jié)構(gòu)[15],具有重要的研究?jī)r(jià)值。

    本研究以伽師瓜和86-1甜瓜為材料,損傷接種鏈格孢,測(cè)定病斑直徑,觀察病斑組織顯微結(jié)構(gòu),實(shí)時(shí)聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(real-time polymerase chain reaction,realtime PCR)比較CmGLU、CmCHT1、CmCHT2相對(duì)表達(dá)量,測(cè)定CHT和GLU活性。研究鏈格孢侵染采后伽師瓜和86-1甜瓜果皮和果肉組織的抗病性差異,旨在為甜瓜采后貯藏保鮮提供一定的理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    伽師瓜、86-1甜瓜采摘自新疆喀什地區(qū)伽師縣,伽師瓜單果質(zhì)量(4.12±0.55)kg,邊緣可溶性固形物>12 °Brix,86-1甜瓜單果質(zhì)量(3.5±0.5)kg,邊緣可溶性固形物>12 °Brix。

    鏈格孢菌:從自然發(fā)病的伽師瓜果實(shí)分離,馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基(potato dextrose agar,PDA)保存。

    30% H2O2、3,5-二硝基水楊酸、丙酮、冰乙酸、結(jié)晶酚、酒石酸鉀鈉、L-抗壞血酸、濃鹽酸、氫氧化鈉、無(wú)水乙醇、無(wú)水乙酸鈉、五水合四硼酸鉀 、亞硫酸鈉(均為分析純) 天津市致遠(yuǎn)化學(xué)試劑有限公司;二甲苯、中性樹膠(均為分析純) 國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;幾丁質(zhì)、昆布多糖(均為分析純) 美國(guó)西格瑪奧德里奇公司;焦碳酸二乙酯(diethypyrocarbonate,DEPC)、乙二胺四乙酸(ethylenediaminetetraacetic acid,EDTA)、脫鹽蝸牛酶、β-巰基乙醇、瓊脂糖生工生物工程(上海)股份有限公司;PDA培養(yǎng)基北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司;六銨銀染液 武漢谷歌生物科技有限公司;Trans2K DNA Marker、TransZol北京全式金生物技術(shù)有限公司;5×All-In-One Master Mix(with Accu RT Genomic DNA Removal Kit)、EvaGreen 2×qPCR Master Mix-Low ROX 加拿大ABM公司。

    1.2 儀器與設(shè)備

    MyCycler Thermal Cycler型PCR儀 美國(guó)Bio-Rad公司;QuantStudioTM6 Flex real-time PCR Syste 美國(guó)ABI公司;Nefuqe 15R型高速冷凍離心機(jī) 上海力申科學(xué)儀器有限公司;TGL-16G型高速冷凍離心機(jī) 上海安亭科學(xué)儀器廠;DYCZ-21型電泳槽、DYY-6C型電泳儀電源北京市六一儀器廠;2500型凝膠成像系統(tǒng) 上海天能科技有限公司;K5500型核酸蛋白定量?jī)x 北京凱奧科技發(fā)展有限公司;ME204型電子天平、FE20型pH計(jì)上海梅特勒-托利多儀器有限公司;XHF-DY型高速分散器寧波新芝生物科技股份有限公司;TU-1810紫外-可見分光光度計(jì) 北京普析通用公司;RM2016型病理切片機(jī)上海徠卡儀器有限公司;DS-U3成像系統(tǒng) 日本尼康公司。

    1.3 方法

    1.3.1 甜瓜預(yù)處理

    甜瓜表面用2% H2O2溶液浸泡殺菌,晾干待用[16]。

    1.3.2 鏈格孢侵染

    沿甜瓜果實(shí)赤道等距穿刺打孔(直徑3.5 mm,深度5 mm),每孔接入鏈格孢孢子懸浮液20 μL(1×106spores/mL,含0.01%吐溫-20)[17],對(duì)照組接入等量無(wú)菌水,(7±1)℃、相對(duì)濕度85%~90%冷庫(kù)貯藏。

    1.3.3 取樣

    處理后第0、3、6、9、12、15、18、21、24、27、30天取樣。隨機(jī)選擇6 個(gè)甜瓜,測(cè)量病斑大?。òㄟ^(guò)敏反應(yīng)組織)[18],取發(fā)病與健康組織交界5 mm處果皮和果肉組織,液氮速凍,-80 ℃保存。

    處理后第0、6、9、21、30天各取1 個(gè)甜瓜隨機(jī)選擇3 處病斑,取發(fā)病與健康組織交界處果皮和果肉組織(10 mm×10 mm),甲醛-乙酸-乙醇(formaldehyde-acetic acid-ethanol fixative,F(xiàn)AA)固定液固定,4 ℃保存。

    1.3.4 組織切片顯微結(jié)構(gòu)觀察

    采用過(guò)碘酸六胺銀(periodic acid-silver metheramine,PASM)染色法。FAA固定液中取出甜瓜組織→修整→脫水→石蠟包埋→切片→脫蠟→高碘酸染色→蒸餾水沖洗→六胺銀染色液孵育染色→硫代硫酸鈉處理→蒸餾水沖洗→復(fù)染伊紅→脫水→中性樹膠封片→全自動(dòng)數(shù)字玻片掃描系統(tǒng)(Pannoramic DESK)獲取圖像文件→Caseviewer(C.V 2.3)軟件分析。

    1.3.5 鏈格孢侵染采后甜瓜病程相關(guān)蛋白基因表達(dá)變化分析

    1.3.5.1 real-time PCR引物設(shè)計(jì)

    CmCHT1-F/R參考甜瓜CHT基因序列(MG823396、MG823397、MELO3C023247T1),CmCHT2-F/R參考甜瓜CHT基因序列(MG823398;MG823399、MELO3C006069T1),CmGLU-F/R參考甜瓜GLU基因序列(MG823400、MG823402、MELO3C022133T1),內(nèi)參基因CmGAPDH-F/R參考甜瓜甘油醛-3-磷酸脫氫酶(GAPDH)基因序列(XM_008441195.2)。引物信息見表1。

    表1 熒光定量mRNA檢測(cè)引物信息Table 1 Primer sequences used for quantitative fluorescent PCR

    1.3.5.2 總RNA的提取

    甜瓜組織液氮研磨,總RNA提取試劑盒(TransZol,ET101)提取總RNA。核酸蛋白定量?jī)x檢測(cè)RNA濃度,瓊脂糖電泳檢測(cè)RNA完整性。

    1.3.5.3 檢測(cè)mRNA的cDNA合成

    使用5×All-In-One MasterMix(with AccuRT Genomic DNA Removal Kit)反轉(zhuǎn)錄試劑盒合成cDNA??俁NA 1 mg、Random Primer(0.1 μg/μL)1 μL、2×TS Reaction Mix 10 μL、TransScript?RT/RI Enzyme Mix 1 μL、gDNA Remover 1 μL、RNase-Free Water補(bǔ)足至20 μL?;靹颍?5 ℃反應(yīng)10 min,42 ℃反應(yīng)30 min,85 ℃反應(yīng)5 s取出,結(jié)束反轉(zhuǎn)錄實(shí)驗(yàn)。將反轉(zhuǎn)錄得到的cDNA置于-80 ℃保存。

    1.3.5.4 real-time PCR條件

    real-time PCR體系:2×SYBR Green Select Mix 5 μL、Forward Primer 0.7 μL、Reverse Primer 0.7 μL、ROX 0.05 μL、cDNA 1 μL,RNase-Free Water補(bǔ)足至10 μL,輕輕混勻。95 ℃反應(yīng)2 min;95 ℃反應(yīng)15 s,60 ℃反應(yīng)30 s(40 個(gè)循環(huán))。以CmGAPDH為內(nèi)參基因,用2-ΔΔCt法計(jì)算甜瓜不同時(shí)間內(nèi)CmCHT1、CmCHT2、CmGLU的相對(duì)表達(dá)量。

    1.3.6 CHT和GLU活性的測(cè)定

    參照文獻(xiàn)[19]進(jìn)行測(cè)定。

    1.4 數(shù)據(jù)處理

    采用IBM SPSS Statistics 23.0進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,采用最小顯著性差異法多重比較進(jìn)行差異顯著性分析(P<0.05,差異顯著),Origin 2018軟件進(jìn)行繪圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 鏈格孢侵染甜瓜果實(shí)病斑發(fā)生規(guī)律

    鏈格孢菌侵染采后伽師瓜和86-1甜瓜果實(shí),86-1甜瓜第6天時(shí)出現(xiàn)病斑,伽師瓜第9天時(shí)出現(xiàn)病斑,病斑直徑隨貯藏時(shí)間呈不斷擴(kuò)大的趨勢(shì)(圖1),且86-1甜瓜病斑直徑始終大于伽師瓜。第30天時(shí),86-1甜瓜果皮和果肉病斑直徑是伽師瓜的1.28 倍和1.29 倍,差異顯著(P<0.05)。表明伽師瓜抵抗鏈格孢侵染的能力高于86-1甜瓜。

    圖1 鏈格孢侵染甜瓜果實(shí)病斑直徑變化趨勢(shì)Fig.1 Change in lesion diameter in two melon cultivars after infection by Alternaria alternata

    鏈格孢菌侵染甜瓜果實(shí),果皮及果肉組織病斑直徑存在差異,果肉病斑直徑始終大于果皮。侵染第30天時(shí),伽師瓜果肉和果皮病斑直徑分別為2.50 cm和2.21 cm,86-1甜瓜果肉和果皮病斑直徑分別為3.20 cm和2.86 cm,差異顯著(P<0.05)。表明甜瓜果皮抗病能力高于果肉。

    鏈格孢侵染甜瓜果實(shí)階段,研究發(fā)現(xiàn)接種深度5 mm,接種量20 μL,侵染9 d出現(xiàn)病斑;侵染15~30 d病斑直徑幾乎呈線性擴(kuò)大。根據(jù)病斑出現(xiàn)時(shí)間和大小,確定0~9 d為侵染潛伏期,6~15 d為侵染初期,15~24 d為侵染中期,24~30 d(>30 d)為侵染末期。

    2.2 鏈格孢侵染對(duì)伽師瓜和86-1甜瓜果實(shí)組織切片觀察

    選擇侵染發(fā)生的關(guān)鍵時(shí)期(包括未侵染0 d、侵染初期6 d/9 d、侵染中期21 d、侵染末期30 d)的組織樣品,進(jìn)行PASM染色,觀察病斑及周圍組織顯微結(jié)構(gòu),了解真菌菌絲的侵入情況。

    圖3 鏈格孢侵染甜瓜果肉PASM染色(×200)Fig.3 PASM staining of muskmelon pulp after infection by A.alternata (× 200)

    鏈格孢侵染甜瓜顯微結(jié)構(gòu)觀察(圖2、3),伽師瓜和86-1甜瓜在0 d果皮和果肉組織切片結(jié)構(gòu)完整,沒(méi)有被侵染的現(xiàn)象;伽師瓜和86-1甜瓜侵染9 d和6 d出現(xiàn)病斑,此時(shí)病斑為組織過(guò)敏反應(yīng),呈輕微水漬狀濕腐,但細(xì)胞結(jié)構(gòu)基本完整,沒(méi)有觀察到菌絲;侵染21 d,伽師瓜和86-1甜瓜的病斑直徑分別為1.76、2.26 cm,病斑周圍組織結(jié)構(gòu)被明顯破壞,存在明顯的菌絲侵入,并存在少量孢子,細(xì)胞形態(tài)遭到破壞,部分細(xì)胞壁出現(xiàn)空泡現(xiàn)象,果肉細(xì)胞菌絲入侵現(xiàn)象較為嚴(yán)重,86-1甜瓜比伽師瓜情況嚴(yán)重;侵染30 d,伽師瓜和86-1甜瓜的病斑直徑分別為2.50、3.20 cm。細(xì)胞結(jié)構(gòu)被嚴(yán)重破壞,細(xì)胞壁出現(xiàn)分層、皺縮現(xiàn)象,大量菌絲侵入,并存在大量孢子,孢子萌發(fā)成菌絲,再次產(chǎn)生孢子,重復(fù)著侵染過(guò)程。病斑周圍部分未出現(xiàn)肉眼可見病斑的果肉組織(圖4),其細(xì)胞結(jié)構(gòu)完整,形態(tài)飽滿,但實(shí)際上已被鏈格孢侵入。

    圖2 鏈格孢侵染甜瓜果皮PASM染色(×200)Fig.2 PASM staining of muskmelon peel after infection by A.alternata (× 200)

    圖4 鏈格孢侵染兩種甜瓜第30天時(shí)非病斑果肉PASM染色(×200)Fig.4 PASM staining of non-lesion muskmelon pulp on day 30 after infection by A.alternata (× 200)

    鏈格孢侵入甜瓜后,通過(guò)顯微結(jié)構(gòu)觀察伽師瓜和86-1甜瓜病斑組織,發(fā)現(xiàn)果皮和果肉組織的細(xì)胞結(jié)構(gòu)都遭到了不同程度的破壞,通過(guò)細(xì)胞壁增厚抵御鏈格孢侵染,果肉組織細(xì)胞壁抵抗能力較弱,侵染末期果皮與果肉組織細(xì)胞壁分層、皺縮,細(xì)胞內(nèi)侵入大量菌絲體和分生孢子,果肉組織細(xì)胞部分解體,無(wú)法辨認(rèn)細(xì)胞結(jié)構(gòu)。

    2.3 電泳檢測(cè)結(jié)果

    電泳檢測(cè)CmCHT1、CmCHT2、CmGLU和CmGAPDH的PCR產(chǎn)物片段大小,片段大小符合檢測(cè)基因的片段長(zhǎng)度,條帶單一(圖5)。

    圖5 real-time PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.5 Real-time quantitative PCR pattern

    2.4 鏈格孢侵染對(duì)伽師瓜和86-1甜瓜CmCHT1相對(duì)表達(dá)量的變化

    鏈格孢侵染采后伽師瓜和86-1甜瓜,果皮CmCHT1相對(duì)表達(dá)量隨貯藏時(shí)間呈升高-降低的變化趨勢(shì)(圖6A)。伽師瓜果皮CmCHT1相對(duì)表達(dá)量始終高于86-1甜瓜,接種組始終高于對(duì)照組。潛伏期至侵染初期(0~15 d)伽師瓜和86-1甜瓜果皮CmCHT1相對(duì)表達(dá)量呈升高趨勢(shì),侵染中期(15~24 d)伽師瓜和86-1甜瓜果皮CmCHT1相對(duì)表達(dá)量在第15天和第18天最高,分別為7.20和4.18,是其對(duì)照組的3.85 倍和3.51 倍,伽師瓜是86-1甜瓜的1.72 倍,差異顯著(P<0.05);侵染末期(24~30 d)伽師瓜和86-1甜瓜果皮CmCHT1相對(duì)表達(dá)量降低,第30天CmCHT1相對(duì)表達(dá)量分別是2.47和2.11,是峰值的34%和51%。

    圖6 鏈格孢侵染甜瓜果皮(A)和果肉(B)CmCHT1相對(duì)表達(dá)量變化Fig.6 Relative expression of CmCHT1 in melon peel (A) and pulp (B)infected by A.alternata

    鏈格孢侵染采后伽師瓜和86-1甜瓜,果肉CmCHT1相對(duì)表達(dá)量隨貯藏時(shí)間呈升高-降低的變化趨勢(shì)(圖6B)。伽師瓜果肉CmCHT1相對(duì)表達(dá)量始終高于86-1甜瓜,接種組始終高于對(duì)照組。潛伏期(0~6 d)伽師瓜和86-1甜瓜果肉CmCHT1相對(duì)表達(dá)量緩慢升高,與對(duì)照組差異不顯著(P>0.05);侵染初期(9~15 d),伽師瓜和86-1甜瓜CmCHT1相對(duì)表達(dá)量迅速升高,伽師瓜CmCHT1相對(duì)表達(dá)量在第15天出現(xiàn)峰值為5.60,是對(duì)照組的4.17 倍,差異顯著(P<0.05);侵染中期(15~24 d),86-1甜瓜CmCHT1相對(duì)表達(dá)量在第18天出現(xiàn)峰值為3.80,是對(duì)照組的3.32 倍,伽師瓜峰值是86-1甜瓜的1.47 倍;侵染末期(24~30 d),伽師瓜和86-1甜瓜果肉CmCHT1相對(duì)表達(dá)量降低,30 dCmCHT1相對(duì)表達(dá)量分別為1.56和1.33,是峰值的28.00%和35.00%。

    鏈格孢侵染采后伽師瓜和86-1甜瓜,兩種甜瓜果皮組織CmCHT1相對(duì)表達(dá)量均高于果肉組織,接種組高于對(duì)照組。

    2.5 鏈格孢侵染對(duì)伽師瓜和86-1甜瓜CmCHT2相對(duì)表達(dá)量的變化

    鏈格孢侵染采后伽師瓜和86-1甜瓜,果皮CmCHT2相對(duì)表達(dá)量隨貯藏時(shí)間呈升高-降低的變化趨勢(shì)(圖7A)。伽師瓜果皮CmCHT2相對(duì)表達(dá)量始終高于86-1甜瓜,接種組始終高于對(duì)照組。潛伏期(0~6 d),伽師瓜和86-1甜瓜果皮CmCHT2相對(duì)表達(dá)量緩慢升高;侵染初期(9~15 d),伽師瓜和86-1甜瓜果皮CmCHT2相對(duì)表達(dá)量迅速升高,在第15天出現(xiàn)峰值,分別為5.19和3.67,是對(duì)照組的3.46 倍和2.83 倍,差異顯著(P<0.05),伽師瓜是86-1甜瓜的1.41 倍;侵染中期(15~24 d)和侵染末期(24~30 d),伽師瓜和86-1甜瓜果皮CmCHT2相對(duì)表達(dá)量迅速降低,第30天CmCHT2相對(duì)表達(dá)量分別為1.86和1.27,是峰值的36%和35%。

    圖7 鏈格孢侵染甜瓜果皮(A)和果肉(B)CmCHT2相對(duì)表達(dá)量變化Fig.7 Relative expression of CmCHT2 in melon peel (A) and pulp (B)infected by A.alternata

    鏈格孢侵染采后伽師瓜和86-1甜瓜,果肉CmCHT2相對(duì)表達(dá)量隨貯藏時(shí)間呈升高-降低的變化趨勢(shì)(圖7B)。伽師瓜果肉CmCHT2相對(duì)表達(dá)量始終高于86-1甜瓜(第15天除外),接種組始終高于對(duì)照組。潛伏期(0~6 d)伽師瓜和86-1甜瓜果肉CmCHT2相對(duì)表達(dá)量緩慢升高,與對(duì)照組差異不顯著(P>0.05);侵染初期(9~15 d),伽師瓜和86-1甜瓜果肉CmCHT2相對(duì)表達(dá)量持續(xù)升高,86-1甜瓜果肉在第15天出現(xiàn)峰值為2.71,是對(duì)照組的2.71 倍;侵染中期(15~24 d),伽師瓜果肉在第21天出現(xiàn)峰值為3.18,是對(duì)照組的2.23 倍,伽師瓜峰值是86-1甜瓜的1.17 倍;侵染末期(24~30 d),伽師瓜和86-1甜瓜果肉CmCHT2相對(duì)表達(dá)量持續(xù)降低,30 dCmCHT2相對(duì)表達(dá)量分別是1.44和1.35,是峰值的45%和48%。

    鏈格孢侵染采后伽師瓜和86-1甜瓜,兩種甜瓜果皮組織CmCHT2相對(duì)表達(dá)量均高于果肉組織,接種組高于對(duì)照組。CmCHT1相對(duì)表達(dá)量在侵染初期至侵染中期較高,CmCHT2相對(duì)表達(dá)量在侵染中期表達(dá)量較高,表明病原菌在侵染初期至侵染中期誘導(dǎo)了CHT基因的表達(dá)。

    2.6 鏈格孢侵染對(duì)伽師瓜和86-1甜瓜CmGLU相對(duì)表達(dá)量的變化

    鏈格孢侵染采后伽師瓜和86-1甜瓜,果皮CmGLU相對(duì)表達(dá)量隨貯藏時(shí)間呈升高-降低的變化趨勢(shì)(圖8A)。伽師瓜果皮CmGLU相對(duì)表達(dá)量始終高于86-1甜瓜,接種組始終高于對(duì)照組。潛伏期(0~6 d)伽師瓜和86-1甜瓜果皮CmGLU相對(duì)表達(dá)量緩慢升高;侵染初期(9~15 d)伽師瓜和86-1甜瓜果皮CmGLU相對(duì)表達(dá)量在第15天迅速升高,分別是其對(duì)照組的3.77 倍和2.71 倍,差異顯著(P<0.05);侵染中期(15~24 d)伽師瓜和86-1甜瓜果皮CmGLU相對(duì)表達(dá)量在第18天和第21天最高,分別為5.77和4.47,分別是對(duì)照組的4.52 倍和3.60 倍,伽師瓜是86-1甜瓜的1.29 倍;侵染末期(24~30 d)伽師瓜和86-1甜瓜果皮CmGLU相對(duì)表達(dá)量降低,第30天CmGLU相對(duì)表達(dá)量分別為2.83和2.37,是峰值的49%和53%。

    圖8 鏈格孢侵染甜瓜果皮(A)和果肉(B)CmGLU相對(duì)表達(dá)量變化Fig.8 Relative expression of CmGLU in melon peel (A) and pulp (B)infected by A.alternata

    鏈格孢侵染采后伽師瓜和86-1甜瓜,果肉CmGLU相對(duì)表達(dá)量隨貯藏時(shí)間呈升高-降低的變化趨勢(shì)(圖8B)。伽師瓜果肉CmGLU相對(duì)表達(dá)量始終高于86-1甜瓜,接種組始終高于對(duì)照組,差異顯著(P<0.05)。潛伏期(0~6 d)伽師瓜和86-1甜瓜果肉CmGLU相對(duì)表達(dá)量緩慢升高;侵染初期(9~15 d),伽師瓜和86-1甜瓜果肉CmGLU相對(duì)表達(dá)量持續(xù)升高;侵染中期(15~24 d),伽師瓜和86-1甜瓜果肉CmGLU相對(duì)表達(dá)量在第18天和第24天出現(xiàn)峰值,分別為4.29和2.68,是對(duì)照組的3.49 倍和2.37 倍;侵染末期(24~30 d)伽師瓜和86-1甜瓜果肉CmGLU相對(duì)表達(dá)量降低,第30天時(shí)CmGLU相對(duì)表達(dá)量分別為2.27和1.32,是最高峰值的53%和49%。

    鏈格孢侵染采后伽師瓜和86-1甜瓜,兩種甜瓜果皮組織CmGLU相對(duì)表達(dá)量均高于果肉組織,接種組高于對(duì)照組。CmGLU相對(duì)表達(dá)量在侵染中期至侵染后期表達(dá)量較高,表明病原菌在侵染中期至侵染末期誘導(dǎo)了GLU基因的表達(dá)。

    2.7 鏈格孢侵染伽師瓜和86-1甜瓜CHT活性的變化

    鏈格孢侵染采后伽師瓜和86-1甜瓜,果皮CHT活性隨貯藏時(shí)間呈升高-降低的變化趨勢(shì)(圖9A),伽師瓜果皮CHT活性始終高于86-1甜瓜,接種組始終高于對(duì)照組,差異顯著(P<0.05)。侵染中期(15~24 d)伽師瓜和86-1甜瓜分別于第18天和第21天出現(xiàn)CHT活性峰值,分別為166.65 U和89.49 U,是其對(duì)照組的2.23 倍和2.86 倍,差異顯著(P<0.05)。

    圖9 鏈格孢侵染甜瓜果皮(A)和果肉(B)CHT活性變化規(guī)律Fig.9 Changes in CHT activity in melon peel (A) and pulp (B) infected by A.alternaria

    鏈格孢侵染采后伽師瓜和86-1甜瓜,果肉CHT活性隨貯藏時(shí)間呈升高-降低的變化趨勢(shì)(圖9B),伽師瓜果肉CHT活性始終高于86-1甜瓜,接種組始終高于對(duì)照組,差異顯著(P<0.05)。侵染中期(15~24 d)伽師瓜和86-1甜瓜果肉CHT活性持續(xù)升高,第21天出現(xiàn)活性峰值,分別為92.46 U和53.10 U,是其對(duì)照組的2.48 倍和2.34 倍,差異顯著(P<0.05)。

    鏈格孢侵染采后伽師瓜,果皮組織CHT活性高于果肉,接種組高于對(duì)照組,差異顯著(P<0.05)。侵染中期(15~24 d)果皮和果肉組織在第18天和第21天出現(xiàn)活性峰值,果皮是果肉組織活性峰值的1.80 倍,差異顯著(P<0.05)。鏈格孢侵染采后86-1甜瓜,果皮組織CHT活性高于果肉,接種組高于對(duì)照組,差異顯著(P<0.05)。侵染中期(15~24 d),果皮和果肉組織CHT活性在第21天出現(xiàn)峰值,果皮是果肉組織的1.69 倍,差異顯著(P<0.05)。

    2.8 鏈格孢侵染甜瓜果實(shí)GLU活性變化規(guī)律

    鏈格孢侵染采后伽師瓜和86-1甜瓜,果皮GLU活性隨貯藏時(shí)間呈升高-降低的變化趨勢(shì)(圖10A)。伽師瓜果皮GLU活性始終高于86-1甜瓜,接種組始終高于對(duì)照組,差異顯著(P<0.05)。侵染中期(15~24 d),伽師瓜和86-1甜瓜于第18天和第21天出現(xiàn)GLU活性峰值27.73 U和14.73 U,是對(duì)照組的2.89 倍和2.86 倍,差異顯著(P<0.05)。

    圖10 鏈格孢侵染甜瓜果皮(A)和果肉(B)GLU活性變化規(guī)律Fig.10 Changes in GLU activity in melon peel (A) and pulp (B)infected by A.alternata

    鏈格孢侵染采后伽師瓜和86-1甜瓜,果肉GLU活性隨貯藏時(shí)間呈升高-降低的變化趨勢(shì)(圖10B)。伽師瓜果肉GLU活性始終高于86-1甜瓜,接種組始終高于對(duì)照組,差異顯著(P<0.05)。潛伏期(0~6 d)果肉GLU活性緩慢升高,伽師瓜與對(duì)照組差異顯著(P<0.05),86-1甜瓜與對(duì)照組差異不顯著(P>0.05);侵染中期(15~24 d),伽師瓜和86-1甜瓜果肉GLU活性持續(xù)升高,第21天出現(xiàn)活性峰值分別為15.35 U和5.58 U,是對(duì)照組的2.98 倍和2.85 倍,差異顯著(P<0.05)。

    鏈格孢侵染采后伽師瓜,果皮組織GLU活性高于果肉,接種組高于對(duì)照組,差異顯著(P<0.05)。侵染中期(15~24 d),果皮和果肉組織分別在第18天和第21天出現(xiàn)活性峰值,果皮是果肉組織活性峰值的1.76 倍,差異顯著(P<0.05)。鏈格孢侵染采后86-1甜瓜,果皮組織GLU活性高于果肉,接種組高于對(duì)照組,差異顯著(P<0.05)。侵染中期(15~24 d)果皮和果肉組織GLU活性在第21天出現(xiàn)活性峰值,果皮是果肉組織的2.64 倍,差異顯著(P<0.05)。說(shuō)明與86-1甜瓜相比,伽師瓜能更迅速啟動(dòng)防御反應(yīng)。

    3 討 論

    鏈格孢菌為卵形或橢圓形分生孢子,一些有細(xì)的淺棕色喙,單孢子培養(yǎng)物會(huì)產(chǎn)生黑褐色[20]。研究發(fā)現(xiàn),采后自然發(fā)?。ê诎卟。烘湼矜咔秩荆┑奶鸸瞎麑?shí)表皮褐色,有稍凹陷的圓斑,外有淡褐色暈環(huán),有的內(nèi)生輪紋,病斑呈黑褐色至黑色的霉?fàn)钗?,果肉壞死,黑色,海綿狀,與健肉易分離[21]。本研究伽師瓜和86-1甜瓜病斑組織發(fā)病規(guī)律與其相似。本研究鏈格孢侵染采后甜瓜,伽師瓜病斑直徑小于86-1甜瓜,果皮病斑直徑小于果肉,說(shuō)明較86-1甜瓜而言,伽師瓜具有更強(qiáng)的抵御鏈格孢侵染的能力,果皮比果肉組織具有更高的抗菌能力,與鏈格孢侵染對(duì)厚皮甜瓜抗菌物質(zhì)及活性氧代謝相關(guān)酶活性研究結(jié)果相似[22-23]。

    細(xì)胞壁是植物病原真菌進(jìn)入寄主植物并與之直接接觸的先鋒結(jié)構(gòu)[24]。通過(guò)病斑組織顯微結(jié)構(gòu)觀察,發(fā)現(xiàn)鏈格孢侵染甜瓜中后期,果皮細(xì)胞壁增厚,果肉細(xì)胞壁部分解體,而與病斑組織交界處的果肉組織未出現(xiàn)肉眼可見病斑,但實(shí)際上已被鏈格孢分生孢子梗和分生孢子侵入。采后甜瓜果實(shí)一旦發(fā)生了黑斑?。ㄦ湼矜咔秩荆≡鷷?huì)借助果實(shí)充足的營(yíng)養(yǎng)環(huán)境,慢慢延伸擴(kuò)散,導(dǎo)致霉菌毒素的積累,即使肉眼觀察看似未被感染,但病菌毒素已擴(kuò)散,從而導(dǎo)致其致病性和毒力[25]。研究發(fā)現(xiàn),鏈格孢毒素在溫州蜜橘果實(shí)中日益積累,除了在病斑周圍,在非病斑部位也能檢測(cè)出[26]。表明看似健康正常的果肉,也存在嚴(yán)重的食品安全風(fēng)險(xiǎn),在鮮食和加工過(guò)程中削去了霉?fàn)€部分,菌絲極有可能已經(jīng)侵入果實(shí)的內(nèi)部。

    植物通過(guò)細(xì)胞表面受體識(shí)別“植物-病原菌”相關(guān)分子模式并啟動(dòng)防衛(wèi)反應(yīng)[27-28],抵抗病原菌的侵入與擴(kuò)展[29]。在正常情況下,植物體內(nèi)的CHT和GLU基因以低水平表達(dá),但在病原菌侵染、誘導(dǎo)物刺激及各種傷害下可誘導(dǎo)植物CHT和GLU基因表達(dá),引起病原菌菌絲裂解表現(xiàn)出抗病性[10]。研究表明,霜霉病菌接種處理顯著誘導(dǎo)了CHT基因在大白菜抗病品種中的表達(dá)[30],哈密瓜受到青霉菌侵染后,CHT基因在侵染前期發(fā)揮積極作用[31]。在本研究中,與對(duì)照組比較,受到鏈格孢侵染的伽師瓜和86-1甜瓜的果皮和果肉組織,CmCHT1、CmCHT2、CmGLU相對(duì)表達(dá)量都不同程度升高,表明病原菌刺激了病程相關(guān)蛋白CHT和GLU基因的表達(dá),而在健康植物中不存在或者微弱表達(dá)。

    CHT和GLU作為兩類重要的病程相關(guān)蛋白[32-33],鏈格孢侵染采后伽師瓜和86-1甜瓜,伽師瓜CHT和GLU活性明顯高于86-1甜瓜,果皮CHT和GLU活性高于果肉,在侵染中期和末期保持較高水平,說(shuō)明病原菌在侵染中期和末期刺激了CHT和GLU的產(chǎn)生,使其提高自身活力降解病原菌細(xì)胞壁中的多糖,從而起到抗病作用。

    在甜瓜收獲時(shí),農(nóng)戶為了縮短采摘時(shí)間,通常一人在田間摘下甜瓜,采取投、拋的方式運(yùn)送至另一人手中,其果皮可能伴隨著肉眼難以察覺的破壞,如完整的蠟質(zhì)層、角質(zhì)層被劃傷,出現(xiàn)裂縫,而病原微生物能夠通過(guò)這些傷口侵入果實(shí)內(nèi)部,使甜瓜發(fā)生病害,在本研究中,通過(guò)顯微結(jié)構(gòu)觀察果皮和果肉組織受病原菌侵染后病斑擴(kuò)展情況,分析病程相關(guān)蛋白基因表達(dá)及酶活性變化規(guī)律,明確了果皮在抵抗病原菌侵染過(guò)程中的首要作用,因此在采收甜瓜時(shí),應(yīng)適當(dāng)增加對(duì)甜瓜果皮結(jié)構(gòu)的保護(hù),減少甜瓜病害發(fā)生。

    4 結(jié) 論

    鏈格孢侵染采后甜瓜,伽師瓜和86-1甜瓜分別在第9天和第6天出現(xiàn)病斑,之后不斷擴(kuò)大,86-1甜瓜病斑直徑始終大于伽師瓜,果肉大于果皮,侵染30 d,86-1甜瓜果肉和果皮的病斑直徑是伽師瓜的1.28 倍和1.29 倍,伽師瓜抵抗鏈格孢侵染的能力強(qiáng)于86-1甜瓜。

    鏈格孢侵入甜瓜后,果皮和果肉組織通過(guò)細(xì)胞壁增厚抵御鏈格孢侵染,果肉組織抵抗能力較弱,侵染末期果皮與果肉組織細(xì)胞內(nèi)侵入大量菌絲體和分生孢子,部分細(xì)胞解體,無(wú)法辨認(rèn)細(xì)胞結(jié)構(gòu)。

    鏈格孢侵染采后甜瓜,CmCHT1、CmCHT2、CmGLU相對(duì)表達(dá)量和CHT活性、GLU活性明顯提高,呈升高-降低趨勢(shì),伽師瓜峰值均高于86-1甜瓜,果皮高于果肉,峰值多在15~21 d出現(xiàn),因此相比于86-1甜瓜,伽師瓜能夠更迅速響應(yīng)鏈格孢菌侵染,果皮抵抗能力更強(qiáng),能快速、大量產(chǎn)生抗病蛋白,在侵染中期(15~24 d)作用顯著。證實(shí)病程相關(guān)蛋白在甜瓜抗鏈格孢侵染中的關(guān)鍵作用。

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