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    超高壓處理優(yōu)化藜麥蛋白的乳化性能

    2021-07-16 03:02:32乜世成王志娟甘文梅
    高壓物理學(xué)報(bào) 2021年3期
    關(guān)鍵詞:乳化改性粒徑

    乜世成,張 煒,田 格,王志娟,甘文梅,高 紅

    (青海師范大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,青海 西寧 810008)

    藜麥(ChenopodiumquinoaWilld.)別名南美藜、印第安麥、奎藜等,一年生雙子葉藜科植物[1–2],因其具有豐富的營(yíng)養(yǎng)成分而成為印加土著居民的主要食物之一[3–4]。Kozio?[5]的研究表明,藜麥谷物中的蛋白質(zhì)(簡(jiǎn)稱藜麥蛋白)含量在13.8%~16.5%之間,平均含量為15%,含有10種人體必需的氨基酸。藜麥蛋白與牛乳酪蛋白的氨基酸模式相當(dāng)[6],并且藜麥不含麩質(zhì),迄今沒有已知的過敏原[7],因此在食品行業(yè)中,藜麥作為一種優(yōu)質(zhì)蛋白來源具有巨大的應(yīng)用潛能[8]。

    乳化性和乳化穩(wěn)定性是蛋白質(zhì)的重要功能性質(zhì)之一,對(duì)食品的感官、風(fēng)味和質(zhì)構(gòu)具有重要的影響。實(shí)驗(yàn)表明:質(zhì)量分?jǐn)?shù)為3%的蛋白乳液中,藜麥蛋白的平均乳化性指數(shù)為(2.10± 0.99)m2/g,遠(yuǎn)小于牛血清蛋白的54.4 m2/g;藜麥蛋白的乳化穩(wěn)定性指數(shù)平均值為(38.43 ± 7.22) min,略小于牛血清蛋白的45 min。可以看出,藜麥蛋白具有很好的乳化穩(wěn)定性,但乳化能力較差[9–10]。為了充分挖掘這種優(yōu)質(zhì)蛋白的潛能,需要對(duì)藜麥蛋白進(jìn)行改性,常用的蛋白改性方法有物理改性、化學(xué)改性、酶改性[11–13]。與傳統(tǒng)處理方法相比,超高壓處理(Ultra-high pressuretreatment,UHP)技術(shù)是一種更為優(yōu)越的處理方法,主要作用于相對(duì)較弱的非共價(jià)鍵,如氫鍵、疏水鍵和離子鍵,對(duì)食品的顏色、風(fēng)味、口味及質(zhì)地的影響都很小[14–15]。超高壓改性作為一種物理改性方法,具有加工成本低、安全性高、作用時(shí)間較短和營(yíng)養(yǎng)損失較少等優(yōu)點(diǎn)。近年來,UHP技術(shù)廣泛應(yīng)用于食品工業(yè)蛋白改性[16],許多學(xué)者對(duì)改性后蛋白的理化特性進(jìn)行了大量的研究。劉堅(jiān)等[17]研究發(fā)現(xiàn),鷹嘴豆超高壓處理后其分離蛋白的溶解性有不同程度的下降,而表面疏水性、乳化性和起泡性都顯著提高。

    目前,關(guān)于改性藜麥蛋白的相關(guān)研究較少,為此本研究將利用UHP技術(shù)對(duì)藜麥蛋白進(jìn)行改性,并分析UHP 對(duì)藜麥蛋白的乳化性及乳化穩(wěn)定性的影響。

    1 實(shí)驗(yàn)材料和方法

    1.1 材料及試劑

    藜麥種子購(gòu)于青??s初禾生態(tài)農(nóng)業(yè)科技有限公司,十二烷基硫酸鈉(SDS)購(gòu)于中國(guó)醫(yī)藥集團(tuán)北京公司,大豆油購(gòu)于益海嘉里糧油工業(yè)有限公司。

    1.2 儀器及設(shè)備

    實(shí)驗(yàn)主要儀器和設(shè)備:HPP 600 MPa/5 L 超高壓食品處理裝置(包頭科發(fā)高壓科技有限責(zé)任公司)、RCT加熱磁力攪拌器(IKA 儀器設(shè)備有限公司)、BSA224S-CW 電子天平(賽多利斯科學(xué)儀器有限公司)、VFD-2000冷凍干燥機(jī)(北京博醫(yī)康實(shí)驗(yàn)儀器有限公司)、T25數(shù)顯型均質(zhì)機(jī)(IKA 儀器設(shè)備有限公司)、DelsaMax PRO型激光粒度分析儀,X 射線粉末衍射儀(日本島津公司)及傅里葉變換紅外光譜儀(美國(guó)賽默飛公司)。

    1.3 實(shí)驗(yàn)方法

    1.3.1制備藜麥蛋白樣品

    選取飽滿的藜麥種子,粉碎,過60目篩,烘干,冷卻后脫脂,置于通風(fēng)櫥中24 h(揮發(fā)溶劑),得到脫脂藜麥粉,密封干燥后備用。稱取4.0 g 脫脂藜麥粉,加入復(fù)合酶(纖維素酶與糖化酶比例為4∶6)400 U/g 和100 mL 蒸餾水制成混合液。將酶解液的pH 值調(diào)至5.0,在50℃下酶解70 min,高溫滅酶活30 s,室溫冷卻后6 000 r /min 離心15 min,取上清液進(jìn)一步分離、濃縮、干燥,得到藜麥蛋白粉。

    1.3.2藜麥蛋白樣品的超高壓處理

    將藜麥蛋白粉溶于水中配置質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.4%的溶液,搖勻后裝入塑料小瓶?jī)?nèi),置于超高壓容器中。在室溫下進(jìn)行超高壓處理,250 MPa 保壓6 min。將超高壓處理后的樣品置于4℃冰箱中備用。

    1.3.3檢測(cè)藜麥蛋白的乳化性和乳化穩(wěn)定性

    優(yōu)化Jiang 等[18]的方法,向50 mL 藜麥蛋白溶液中加入12.5 mL 大豆油,以10 000 r/min 均質(zhì)2 min。吸取底部乳狀液0.05 mL,立即加入0.1%SDS溶液5 mL 充分搖勻。以0.1%SDS溶液為對(duì)照,檢測(cè)藜麥蛋白和SDS混合乳液在500 nm 處的吸光度A0;均質(zhì)藜麥蛋白和SDS混合乳液放置30 min 后,測(cè)定吸光度A1。乳化活力指數(shù)(aEAI,單位m2/g)和乳化穩(wěn)定指數(shù)(bESI,單位%)的計(jì)算公式分別為

    式中:D為溶液的稀釋倍數(shù),C為藜麥蛋白溶液的初始質(zhì)量分?jǐn)?shù),l為光程(1 cm),r為油相比例。

    1.3.4單因素實(shí)驗(yàn)分析

    分析蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)、超高壓處理保壓壓力及保壓時(shí)間對(duì)藜麥蛋白的乳化活力指數(shù)和乳化穩(wěn)定指數(shù)的影響,從而得出藜麥蛋白乳化的最優(yōu)實(shí)驗(yàn)條件。

    (1)藜麥蛋白的質(zhì)量分?jǐn)?shù)優(yōu)化:固定保壓壓力為250 MPa,保壓時(shí)間為6 min,檢測(cè)蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為0.2%、0.4%、0.6%、0.8%和1.0%時(shí),蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)變化對(duì)超高壓處理藜麥蛋白的乳化性及乳化穩(wěn)定性的影響。

    (2)超高壓處理保壓壓力優(yōu)化:固定蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.4%,保壓時(shí)間為6 min,檢測(cè)保壓壓力分別為100、150、200、250 和300 MPa 時(shí),保壓壓力變化對(duì)超高壓處理藜麥蛋白的乳化性及乳化穩(wěn)定性的影響。

    (3)超高壓處理保壓時(shí)間優(yōu)化:固定蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.4%,保壓壓力為250 MPa,檢測(cè)保壓時(shí)間分別為3、6、9、12和15 min 時(shí),不同保壓時(shí)間對(duì)超高壓處理藜麥蛋白的乳化性及乳化穩(wěn)定性的影響。

    1.3.5響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)

    應(yīng)用Design-Expert 8.0.6 響應(yīng)面分析軟件,根據(jù)Box-Behnken 實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)原理,以保壓壓力(p)250 MPa、保壓時(shí)間(t)6 min、蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)(M)0.4%為“0”水平進(jìn)行三因素三水平的響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì),對(duì)各因素的實(shí)驗(yàn)水平分別以–1、0、1進(jìn)行編碼(見表1)。

    表1 響應(yīng)面分析法的因素-水平表Table 1 Factors and levels of response surface method

    1.3.6傅里葉紅外譜分析

    應(yīng)用KBr 壓片法,通過Peakfit Version 軟件分析譜圖,采用Gauss峰形進(jìn)行擬合后估算子峰的位置和數(shù)量,根據(jù)各子峰與二級(jí)結(jié)構(gòu)的對(duì)應(yīng)關(guān)系,通過積分面積計(jì)算各二級(jí)結(jié)構(gòu)的相對(duì)含量[19]。

    1.3.7粒徑分布

    參考胡淼等[20]的方法進(jìn)行粒度分析測(cè)定。

    1.3.8X 射線衍射分析

    采用銅靶Kα射線(40 kV、30 mV),記錄膜樣品2 θ為5°~ 80°范圍內(nèi)的X 射線衍射(XRD)強(qiáng)度,并分析樣品的晶體結(jié)構(gòu)變化。

    2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析

    2.1 單因素對(duì)藜麥蛋白乳化性和乳化穩(wěn)定性的影響

    2.1.1蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)對(duì)藜麥蛋白乳化性和乳化穩(wěn)定性的影響

    如圖1所示,隨著藜麥蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)增大,乳化活力指數(shù)(蛋白乳化性)逐漸增大,這是因?yàn)橘|(zhì)量分?jǐn)?shù)增大時(shí),在超高壓作用下,聚集的蛋白質(zhì)肽鏈結(jié)構(gòu)得以展開和擴(kuò)散,蛋白質(zhì)被分解成更小的亞基,表面積隨之增大,蛋白質(zhì)內(nèi)部的兩性基團(tuán)外露增多,蛋白質(zhì)的結(jié)合水外露也增多,而蛋白質(zhì)的水化作用與溶解度息息相關(guān),此時(shí)水化作用增強(qiáng)有利于提高溶液的溶解度[21]。另外蛋白質(zhì)親水性和親油性的提高會(huì)促進(jìn)蛋白質(zhì)之間相互作用,因此其乳化能力增強(qiáng)[22]。當(dāng)質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.4%時(shí),乳化活力指數(shù)最大可達(dá)109 m2/g。繼續(xù)提高蛋白質(zhì)的質(zhì)量分?jǐn)?shù),乳化性反而降低。這可能是由于在高濃度下,蛋白質(zhì)的擴(kuò)散受到活化能屏障的阻礙[23],從而使得溶液的溶解度降低,導(dǎo)致乳化能力下降。同時(shí)由圖1可見,隨著蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)的增大,乳化穩(wěn)定指數(shù)變化不顯著。因此,本研究中0.4%為最適蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)。

    圖1 蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)對(duì)藜麥蛋白乳化性和乳化穩(wěn)定性的影響Fig. 1 Effect of protein massfraction on the emulsifying property and emulsion stability of quinoa protein

    2.1.2保壓壓力對(duì)藜麥蛋白乳化性和乳化穩(wěn)定性的影響

    如圖2所示,伴隨著保壓壓力增大,藜麥蛋白的乳化活力指數(shù)先增大后減小,而乳化穩(wěn)定指數(shù)變化不明顯。保壓壓力為100~250 MPa 時(shí),隨著保壓壓力增大,蛋白的乳化活力指數(shù)明顯變大,可能是由于外界高壓作用使得蛋白質(zhì)的分子結(jié)構(gòu)受到破壞從而導(dǎo)致肽鏈緩慢伸展開來[24],更多蛋白質(zhì)內(nèi)部的極性基團(tuán)和非極性基團(tuán)暴露出來,親水性和親油性提高,從而使其乳化能力提高。當(dāng)保壓壓力為250 MPa時(shí),乳化活力指數(shù)最大可達(dá)107 m2/g。研究表明,粒徑較小的乳液乳化性能更穩(wěn)定,超高壓處理可以改變?nèi)芤褐辛W拥牧?,使粒徑減小,從而增加溶液的黏度[22],表現(xiàn)為乳化能力增強(qiáng)。但繼續(xù)增大保壓壓力,之前吸附到油水界面上的蛋白質(zhì)在壓力的作用下會(huì)重新聚集而沉淀,表現(xiàn)為乳化性變?nèi)鮗25]。因此,本研究中250 MPa 為最適保壓壓力。

    圖2 保壓壓力對(duì)藜麥蛋白乳化性和乳化穩(wěn)定性的影響Fig.2 Effect of theholding pressure on the emulsifying property and emulsion stability of quinoa protein

    2.1.3保壓時(shí)間對(duì)藜麥蛋白乳化性和乳化穩(wěn)定性的影響

    如圖3所示,保壓時(shí)間在3~6 min 時(shí),隨著保壓時(shí)間延長(zhǎng),藜麥蛋白的乳化活力指數(shù)逐漸增大;保壓時(shí)間為6 min 時(shí),乳化活力指數(shù)達(dá)到最大(112 m2/g);保壓時(shí)間超過6 min 時(shí),乳化性顯著降低。隨著保壓時(shí)間延長(zhǎng),藜麥蛋白的乳化穩(wěn)定性變化不明顯。保壓時(shí)間是UHP對(duì)藜麥蛋白乳化性影響的重要因素之一,處理時(shí)間過短或者過長(zhǎng)都不利于乳化性的優(yōu)化。保壓時(shí)間對(duì)乳化性的影響與壓力對(duì)其的影響類似,當(dāng)保壓時(shí)間過長(zhǎng)時(shí),蛋白質(zhì)發(fā)生聚集,蛋白質(zhì)分子的伸展受到阻礙導(dǎo)致分子鏈向內(nèi)收縮,界面蛋白層的結(jié)構(gòu)發(fā)生改變,從而降低了蛋白質(zhì)在界面的吸附性和相互作用,表現(xiàn)為乳化性降低[26]。因此,本研究中6 min 為藜麥蛋白的最適保壓時(shí)間。

    圖3 保壓時(shí)間對(duì)藜麥蛋白乳化性和乳化穩(wěn)定性的影響Fig.3 Effect of holding pressure time on the emulsifying property and emulsion stability of quinoa protein

    2.2 響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)結(jié)果與分析

    2.2.1響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果

    根據(jù)表1所示的因素與水平進(jìn)行響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)。由于單因素水平實(shí)驗(yàn)中藜麥蛋白的乳化穩(wěn)定性未表現(xiàn)出顯著變化,故只以藜麥蛋白的乳化性作為響應(yīng)值進(jìn)行Box-Behnken 中心組合實(shí)驗(yàn)因素水平分析。共進(jìn)行了17次三因素分析實(shí)驗(yàn),分析方案及實(shí)驗(yàn)結(jié)果如表2所示。

    2.2.2線性回歸模型及檢驗(yàn)

    運(yùn)用Design-Expert 軟件對(duì)表2中的實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行多元線性回歸擬合后,得到乳化性與p、t及M3 個(gè)單因素之間的關(guān)系式

    表2 響應(yīng)面分析方案及實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 2 Experimental design and results of response surfacemethod

    由式(3)可以看出,其各項(xiàng)系數(shù)的絕對(duì)值與因素對(duì)響應(yīng)值的影響程度成正比,式(3)中各項(xiàng)系數(shù)的正、負(fù)也反映了因素對(duì)響應(yīng)值影響的方向[27]。

    對(duì)該模型進(jìn)行顯著性檢驗(yàn)及回歸模型系數(shù)顯著性結(jié)果分析,如表3所示,其中:上標(biāo)“*”表示顯著性水平P<0.05,上標(biāo)“**”表示顯著性水平P< 0.01[28]。表3中模型的P值為0.0002,F(xiàn)值為25.61,說明該模型是極顯著的;模型的調(diào)整確定系數(shù)R2= 0.9705,故該模型可解釋97.05%響應(yīng)值的變化;校正決定系數(shù)伴隨矩陣R*2=0.9326,說明該模型的擬合程度較好,實(shí)驗(yàn)誤差較小。因此,該模型可以用于設(shè)計(jì)范圍內(nèi)的預(yù)測(cè)。失擬項(xiàng)的F值為0.091,說明失擬項(xiàng)的純誤差不顯著。根據(jù)因素項(xiàng)的顯著性分析可知:M、p2、t2和M2表現(xiàn)為極顯著,p、t表現(xiàn)為顯著,說明保壓壓力、保壓時(shí)間及蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)與乳化性之間存在明顯的二次函數(shù)關(guān)系,影響乳化性因素的順序?yàn)榈鞍踪|(zhì)量分?jǐn)?shù)> 保壓壓力> 保壓時(shí)間。

    表3 線性回歸分析結(jié)果Table 3 Results of linear regression analysis

    2.2.3響應(yīng)面模型及最佳條件優(yōu)化

    三維響應(yīng)曲面模型能夠更直觀地看出兩因素對(duì)因變量的影響,響應(yīng)面坡度越陡表明各交互因素對(duì)響應(yīng)值的影響越顯著[29]。如圖4所示,乳化性隨著蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)和保壓時(shí)間的變化發(fā)生較大變化,蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)越低,保壓時(shí)間越短,乳化性越高;同理,由蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)和保壓壓力的響應(yīng)曲面可見,蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)越低,保壓壓力越小,乳化性越高;由保壓時(shí)間和保壓壓力的響應(yīng)曲面可見,保壓時(shí)間越短,保壓壓力越小,乳化性越高。兩因素交互作用對(duì)響應(yīng)值的影響順序從大到小為蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)-保壓時(shí)間>保壓時(shí)間-保壓壓力> 蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)-保壓壓力。

    圖4 響應(yīng)面模型Fig.4 Response surface model

    通過Design-Expert 8.0.6 軟件得到最佳的工藝優(yōu)化條件,即保壓壓力為235.54 MPa,保壓時(shí)間為5.18 min,蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.34%,預(yù)測(cè)藜麥蛋白的最優(yōu)乳化指數(shù)為124.887 m2/g。為驗(yàn)證本實(shí)驗(yàn)的最佳工藝條件并結(jié)合實(shí)際需求,在保壓壓力為235 MPa、保壓時(shí)間為5.2 min、蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.34%的實(shí)驗(yàn)條件下做3次平行實(shí)驗(yàn),測(cè)得的乳化指數(shù)為119 m2/g。實(shí)驗(yàn)結(jié)果比較接近預(yù)測(cè)值,說明該模型實(shí)驗(yàn)優(yōu)化的工藝條件是可行的。

    2.2.4傅里葉紅外分析

    如圖5所示,傅里葉紅外光譜提供了蛋白質(zhì)酰胺Ⅰ帶、酰胺Ⅱ帶、酰胺Ⅲ帶信息以及蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)中的C—C鍵和C=O鍵等振動(dòng)信息[30]。另外,傅里葉變換紅外光譜中蛋白質(zhì)酰胺Ⅰ帶(1 600~1 700 cm?1)頻率的遷移與蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)緊密相關(guān)。圖6是利用Peak fit 軟件對(duì)紅外圖譜進(jìn)行二次積分得到的擬合圖譜,每條曲線積分時(shí)的取值區(qū)間不同。采用Peak fit 軟件對(duì)蛋白質(zhì)紅外光譜酰胺Ⅰ帶(1 600~1 700 cm?1)進(jìn)行二階導(dǎo)數(shù)紅外去卷積光譜擬合,通過峰位歸屬確定二級(jí)結(jié)構(gòu)種類和相對(duì)含量,結(jié)果見表4。

    圖5 藜麥蛋白改性前、后的紅外光譜分析Fig.5 Infrared spectrum analysisof quinoa protein beforeand after modification

    圖6 藜麥蛋白改性前、后蛋白酰胺Ⅰ帶的擬合圖譜Fig.6 Protein amide Ⅰfitting map of quinoa protein before and after the modification

    表4給出了藜麥蛋白中β-折疊、無規(guī)則卷曲、α-螺旋和β-轉(zhuǎn)角4種二級(jí)結(jié)構(gòu)的含量。Choi 等[31]報(bào)道α-螺旋和β-折疊是比較有序的蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu),具有較高的穩(wěn)定性,β-轉(zhuǎn)角和無規(guī)卷曲是無序結(jié)構(gòu)。保壓壓力為250 MPa 時(shí),改性后蛋白β-轉(zhuǎn)角結(jié)構(gòu)的含量顯著增加,無規(guī)則卷曲結(jié)構(gòu)含量也有所增加,而α-螺旋結(jié)構(gòu)和β-折疊結(jié)構(gòu)含量均有所減少,蛋白分子的無序性增強(qiáng),說明改性后蛋白的乳化性提高。

    表4 藜麥蛋白改性前、后蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)的含量Table 4 Secondary structure content of quinoa protein before and after modification

    2.2.5粒度分布測(cè)定

    由圖7可知,原蛋白乳化顆粒粒徑比改性后蛋白乳化顆粒粒徑大。本研究中原蛋白粒徑為684 nm,而改性后蛋白粒徑為528 nm,表明超高壓作用使藜麥蛋白乳化顆粒的粒徑減小。其主要原因可能是超高壓作用于蛋白質(zhì)大分子,導(dǎo)致分子間的結(jié)合形式發(fā)生變化,各種鍵的破壞和重組改變了其高級(jí)空間結(jié)構(gòu)[32]。由于蛋白質(zhì)與油脂發(fā)生乳化作用時(shí),形成的乳化顆粒越小,蛋白質(zhì)的乳化性越好[33],本研究中改性蛋白乳化顆粒的粒徑減小,因此其乳化性增強(qiáng)。

    圖7 藜麥蛋白改性前、后的粒徑分布Fig.7 Particle size distribution of quinoa protein before and after modification

    2.2.6XRD分析

    如圖8所示,XRD分析中蛋白質(zhì)的α-螺旋和β-折疊結(jié)構(gòu)的峰角分別在10°和20°附近[34]。本研究中,改性前、后藜麥蛋白在約10°附近的峰強(qiáng)度有明顯不同。原蛋白在11.12°處的峰強(qiáng)度是377,而改性后蛋白在11.00°處的峰強(qiáng)度是342,說明改性后蛋白α-螺旋結(jié)構(gòu)的含量有所降低,無序性增加,乳化性增強(qiáng)[35]。

    圖8 藜麥蛋白改性前、后的XRD分析圖譜Fig.8 XRD patterns of quinoa protein before and after modification

    3 結(jié) 論

    探究了超高壓作用對(duì)藜麥蛋白乳化性能的影響,通過單因素實(shí)驗(yàn)得出,乳化性隨著蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)、保壓壓力和保壓時(shí)間的增大均呈現(xiàn)先增大后減小的趨勢(shì),而乳化穩(wěn)定性變化不明顯。根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,采用響應(yīng)面法進(jìn)行優(yōu)化,得到最佳的工藝條件,即保壓壓力為235.54 MPa,保壓時(shí)間為5.18 min,蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.34%,在此條件下藜麥蛋白的最優(yōu)乳化指數(shù)為124.887 m2/g。為驗(yàn)證本實(shí)驗(yàn)的最佳工藝條件并結(jié)合實(shí)際需求,設(shè)定保壓壓力為235 MPa、保壓時(shí)間為5.2 min、蛋白質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.34%,在此條件下測(cè)得乳化指數(shù)為119 m2/g,通過傅里葉紅外光譜、粒度儀、XRD等表征方法分析蛋白質(zhì)的表面性質(zhì)及結(jié)構(gòu)特征。結(jié)果表明,超高壓技術(shù)能夠有效改善藜麥蛋白的乳化性。

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