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    軟骨特異性敲除SIRT1 基因?qū)π∈笞刁w骨質(zhì)疏松的影響及機(jī)制分析*

    2021-06-25 02:30:18唐家國覃松王凱鄒凱何精選李晨芳于濱生
    生物骨科材料與臨床研究 2021年3期
    關(guān)鍵詞:骨量小梁骨質(zhì)疏松癥

    唐家國 覃松 王凱 鄒凱 何精選 李晨芳 于濱生

    骨質(zhì)疏松癥(osteoporosis)是絕經(jīng)后婦女和老年人常見的代謝性骨病[1]。骨質(zhì)疏松癥的病理特征包括骨量減少、骨微結(jié)構(gòu)異常、骨密度降低、骨脆性增加,導(dǎo)致骨折的風(fēng)險(xiǎn)增加[2]。據(jù)估計(jì),目前全球約有2 億人患有骨質(zhì)疏松癥,美國約有3400萬患者被診斷患有骨質(zhì)疏松癥或低骨量[3]。骨質(zhì)疏松癥可引起疼痛、脊柱畸形和脆性骨折。脆性骨折通常是由低能量的沖擊造成的,如從站立高度跌落、輕微碰撞或其他常規(guī)的輕傷。在50 歲的婦女中,發(fā)生骨質(zhì)疏松性骨折的風(fēng)險(xiǎn)可能高達(dá)50%[4]。椎體骨折是常見的骨質(zhì)疏松性骨折。椎體骨折可引起長期疼痛,嚴(yán)重影響患者的生活質(zhì)量,甚至可增加死亡的風(fēng)險(xiǎn)[4]。因此,骨質(zhì)疏松癥已成為世界范圍內(nèi)的一個(gè)主要公共健康問題[3]。但是,目前關(guān)于骨質(zhì)疏松癥的治療還沒有金標(biāo)準(zhǔn)。近年來,關(guān)于基因因素對骨質(zhì)疏松的影響研究成為了熱門話題。

    沉默信息調(diào)節(jié)因子1(silent information regulator 1,SIRT1)是一種Ⅲ型乙酰轉(zhuǎn)移酶基因,已在哺乳動(dòng)物中得到深入研究。最近的研究確定SIRT1 在代謝疾病、退行性疾病、癌癥和衰老的病理生理學(xué)中起著至關(guān)重要的作用[5]。有研究報(bào)道,SIRT1 基因在骨質(zhì)疏松患者的外周血單核細(xì)胞的細(xì)胞核及細(xì)胞質(zhì)中表達(dá)均增高[6]。目前有研究證實(shí),在前成骨細(xì)胞中特異性敲除SIRT1 基因,對骨松質(zhì)的體積沒有明顯影響,而在成熟的成骨細(xì)胞中特異性敲除SIRT1 基因,則會(huì)導(dǎo)致骨松質(zhì)的體積明顯地減少[7-9];相反,SIRT1 基因的激活或過表達(dá),會(huì)出現(xiàn)因年齡增加而導(dǎo)致的骨質(zhì)喪失減少。骨折作為骨質(zhì)疏松最常見的并發(fā)癥之一,嚴(yán)重椎體骨折可能導(dǎo)致截癱[10]。而手術(shù)是治療骨質(zhì)疏松性骨折的主要方法,雖然像椎體骨質(zhì)疏松性壓縮性骨折手術(shù)治療具有操作簡單、恢復(fù)迅速和手術(shù)時(shí)間短等優(yōu)點(diǎn)。但是并沒有解決骨質(zhì)疏松性骨折的根本問題[11]。因此,預(yù)防和早期治療骨質(zhì)疏松具有十分重要的臨床意義。

    骨質(zhì)疏松癥被廣泛認(rèn)為是一種典型的衰老相關(guān)疾病,而SIRT1 是細(xì)胞生存和壽命的重要調(diào)節(jié)因子[12]。SIRT1 參與了眾多的生物學(xué)過程,包括DNA 修復(fù)、能量代謝、腫瘤抑制和線粒體內(nèi)穩(wěn)定等,成為近年來的研究熱點(diǎn)[13]。有研究表明,SIRT1 基因與骨代謝和骨量關(guān)系密切[14]。

    在本研究中,筆者使用Cre-Lox系統(tǒng)對小鼠軟骨中SIRT1基因特異性敲除構(gòu)建(SIRT1 cKO)小鼠,分為SIRT1 基因未敲除與SIRT1 基因敲除的兩組小鼠模型,對兩組小鼠尾椎通過Micro-CT 掃描,對尾椎骨小梁數(shù)量、骨小梁的厚度、骨量體積百分比進(jìn)行量化比較。再采用HE 染色、Masson 染色評價(jià)椎體骨質(zhì)結(jié)構(gòu)的改變,通過比較兩組小鼠尾椎椎體骨質(zhì)改變情況,從而探討SIRT1 基因?qū)π∈笞刁w骨質(zhì)疏松的影響。

    1 材料與方法

    1.1 材料

    1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物

    用Col2a1-CreERT2轉(zhuǎn)基因小鼠與SIRTlCO/CO小鼠雜交獲得SIRT1+/+小鼠,兩種小鼠均從美國杰克遜實(shí)驗(yàn)室購買。實(shí)驗(yàn)中使用的小鼠被安置在北京大學(xué)香港科技大學(xué)醫(yī)學(xué)中心的實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心的單獨(dú)通風(fēng)鼠籠中特定的無病原體(specific pathogen free,SPF)屏障區(qū)域,處于12 h 光照/12 h 黑暗周期下,在環(huán)境控制的房間中進(jìn)行常規(guī)通風(fēng)。所有的小鼠都可以自由獲取食物和無菌水。所有實(shí)驗(yàn)程序和小鼠治療均按照實(shí)驗(yàn)動(dòng)物管理規(guī)定進(jìn)行。

    1.1.2 主要儀器

    高速冷凍離心機(jī)(SIMA 公司,德國),光學(xué)顯微鏡(Leica 公司,德國),PCR 熱循環(huán)儀(Eppendorf 公司,德國),凝膠成像系統(tǒng)Dolphin-DOC(Weahec 公司,美國),包埋切片機(jī)(Skura 公司,日本)。Micro-CT(SCANCO Medical AG 公司,瑞士,CT100,深圳市弗勞恩科技服務(wù)有限公司),ABIPrism 7000 型熒光定量PCR 儀(ABI 公司,美國)。

    1.1.3 主要試劑

    SIRT1 一抗(Abcam 公司,美國),他莫昔芬、玉米油(Sigma 公司,美國),TRE-trizol(Invitrogen 公司,美國),F(xiàn)astGreen Solution、Safranin OSolution(Scytek 公司,美國),PrimeScript II 1st Strand cDNA Synthesis Kit、SYBB Premix Ex Tap II(Takara 公司,日本)。

    1.2 方法

    1.2.1 建立軟骨特異性敲除SIRT1 基因小鼠模型

    實(shí)驗(yàn)小鼠的繁殖參考于菲等[15]在利用SIRT1 基因敲除建立小鼠膝骨關(guān)節(jié)炎模型的研究中的繁殖方法。通過SIRTlCO/CO小鼠和Col2a1-CreERT2轉(zhuǎn)基因小鼠先分別分籠進(jìn)行繁殖,按照1只SIRTlCO/CO雄鼠和1 只SIRTlCO/CO雌鼠合籠、1 只Col2a1-CreERT2雄鼠和1 只Col2a1-CreERT2雌鼠合籠的方式進(jìn)行繁殖。待SIRTlCO/CO小鼠和Col2a1-CreERT2小鼠繁殖到20 只以上,按照1 只SIRTlCO/CO雄鼠與1 只Col2a1-CreERT2雌鼠通過合籠的方式進(jìn)行繁殖得到SIRT1+/+小鼠,SIRT1+/+小鼠繁殖到20只以上時(shí)正常條件下飼養(yǎng),飼養(yǎng)至8 個(gè)月齡,然后向SIRT1+/+小鼠腹腔注射他莫昔芬10 mg/mL,75 mg/kg 體重,每日1次,連續(xù)注射5 d,即獲得SIRT1-/-小鼠。

    1.2.2 實(shí)驗(yàn)分組

    將14 只Col2a1-CreERT2轉(zhuǎn)基因小鼠按隨機(jī)數(shù)字表法分成A 組對照組(SIRT1+/+小鼠組)與B 組敲除組(SIRT1-/-小鼠組),每組7 只,B 組小鼠進(jìn)行上述方法進(jìn)行軟骨特異敲除性SIRT1 基因。同時(shí)對A 組小鼠進(jìn)行等劑量的玉米油腹腔注射。在他莫昔芬注射完畢8 周后,通過頸椎脫臼法處死,留取尾椎(Co5-Co9)標(biāo)本,10%福爾馬林溶液固定后石蠟包埋。

    1.2.3 軟骨特異性敲除SIRT1 基因小鼠的基因表型通過熒光定量PCR 反應(yīng)鑒定

    通過NCBI 網(wǎng)站GeneBank 查詢SIRT1 基因序列如表1所示,使用Primer Premier 5.0 軟件進(jìn)行引物合成。采用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒進(jìn)行cDNA 合成。根據(jù)SIRT1 基因的退火溫度選擇三步法完成擴(kuò)增,經(jīng)過44 次循環(huán)。擴(kuò)增產(chǎn)物的特異性依據(jù)溶解曲線判斷,內(nèi)參為GAPDH。以TaKaRa SYBR Premix Ex Taq II(Perfect Real Time)試劑盒說明作為反應(yīng)參數(shù),數(shù)據(jù)分析采用Bio-Rad CFX Manager Software1.6 系統(tǒng)及2-Ct的方法進(jìn)行。

    表1 軟骨特異性敲除SIRT1 基因小鼠熒光PCR反應(yīng)鑒定的引物

    1.2.4 Micro-CT 掃描檢測

    將兩組小鼠尾椎標(biāo)本保存于10%福爾馬林溶液中固定24 h,然后整潔擺放在Micro-CT 掃描專用管中,掃描參數(shù)為:55 kV 的峰值電壓,200 A 的電流,11.4 m 的掃描層分辨率,再采用計(jì)算機(jī)軟件對骨小梁數(shù)量、骨小梁的厚度以及骨量體積百分比進(jìn)行定量分析。

    1.2.5 骨組織比較

    組織標(biāo)本在10%多聚甲醛中固定24 h,脫鈣并石蠟包埋,連續(xù)切片,片厚5 m,行HE 染色和Masson 染色。

    1.2.6 免疫組化染色

    組織標(biāo)本在10%多聚甲醛中固定24 h,脫鈣并包埋在石蠟中。獲得了連續(xù)的5 m 切片。組織切片在65℃烤箱烘烤3 d,用蒸餾水沖洗2 次,然后進(jìn)行抗原修復(fù)。切片用PBS洗滌3 次,用過氧化物酶阻斷劑處理,再用PBS 洗滌3 次。切片用非免疫動(dòng)物血清處理,然后與SIRT1 抗體一起孵育。切片用PBS 洗滌3 次,然后用二抗孵育。切片用瓊脂溶液處理,然后用兩滴新鮮的瓊脂溶液處理。

    1.2.7 免疫組化結(jié)果評定

    免疫組化結(jié)果評定參考于斐等的研究[16],在顯微鏡下,對SIRT1 抗體呈免疫組化陽性的細(xì)胞被染成棕色。將染色強(qiáng)度分為4 級(見表2),以每張切片中所見的陽性細(xì)胞范圍分為5 級(見表3)。每張切片染色積分以兩者乘積表示。評分人員按評分標(biāo)準(zhǔn)均進(jìn)行雙盲評分,數(shù)據(jù)為兩次評估的平均值。

    表2 免疫組化染色強(qiáng)度分級表

    表3 免疫組化陽性細(xì)胞范圍分級表

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

    運(yùn)用SPSS 17.0 軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析。計(jì)量資料應(yīng)先進(jìn)行正態(tài)性檢驗(yàn),結(jié)果符合正態(tài)分布,用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用t 檢驗(yàn)對兩組數(shù)據(jù)進(jìn)行的統(tǒng)計(jì)學(xué)分析比較。P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 SIRT1 基因敲除的鑒定

    剪取兩組小鼠尾尖軟骨組織提取DNA,兩組小鼠基因表型采用熒光定量PCR 反應(yīng)鑒定。結(jié)果顯示A、B 兩組小鼠SIRT1 mRNA 表達(dá)量分別為(8.08±1.64)、(2.61±1.11),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)(見圖1)。兩組小鼠SIRT1 表達(dá)趨勢的電泳圖如圖2 所示。證實(shí)B 組小鼠軟骨組織中SITR1 基因敲除成功。

    圖1 基因在兩組小鼠中的表達(dá)

    圖2 實(shí)驗(yàn)中兩組小鼠SIRT1 基因表達(dá)的電泳圖

    2.2 SIRT1 的免疫組化結(jié)果

    SIRT1 抗體在小鼠尾椎椎間盤髓核內(nèi)免疫組化染色積分,A 組為(5.07±2.99)、B 組為(3.10±2.69)。B 組與A 組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,(P<0.01,見圖3)。

    圖3 椎間盤髓核組織免疫組化中SIRT1 的表達(dá)情況(×400):A.A 組小鼠模型中髓核組織中SIRT1 的表達(dá)情況;B.B 組小鼠模型髓核組織中SIRT1 的表達(dá)情況

    2.3 Micro-CT 結(jié)果

    兩組小鼠的尾椎標(biāo)本通過Micro-CT 掃描分析得出的骨量體積百分比(Bone volume/Total volume,BV/TV),骨小梁數(shù)目(Trabecular number,Tb.N),骨小梁厚度(Trabecular thickness,Tb.Th)相關(guān)數(shù)據(jù)(見表4)。B 組小鼠骨量體積百分比顯著高于A 組小鼠,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);B 組小鼠骨小梁數(shù)目均顯著高于A 組小鼠,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(見圖4);A、B 組小鼠骨小梁厚度比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。

    2.4 椎體骨改變情況

    Micro-CT掃描后三維重建得出A 組和B 組小鼠的椎體骨改變情況,可以看出B 組小鼠椎體中央或整個(gè)區(qū)域松質(zhì)骨密度較A 組減低,并成蜂窩狀或不規(guī)則片狀低密度改變(見圖5)。

    表4 Micro-CT 掃描下兩組小鼠尾椎BV/TV、Tb.N 及Tb.Th 結(jié)果比較(,n=7)

    表4 Micro-CT 掃描下兩組小鼠尾椎BV/TV、Tb.N 及Tb.Th 結(jié)果比較(,n=7)

    注:A 組為SIRT1 基因未敲除組,B 組為SIRT1 基因敲除組;*與A 組比較,P<0.05。

    圖4 兩組小鼠骨量體積百分比、骨小梁數(shù)目的比較

    圖5 MicroCT 三維重建圖:A.A 組小鼠模型的三維重建圖;B.B 組小鼠模型的三維重建圖

    2.5 骨組織切片結(jié)果

    骨的組織學(xué)切片對比,A 組小鼠椎體骨組織較B 組骨質(zhì)分布更密集(見圖6)。

    圖6 兩組小鼠椎體骨組織表現(xiàn):A.A 組在100 倍鏡下的HE 染色;B.A 組在200 倍鏡下的HE 染色;C.A 組在200 倍鏡下Masson 染色,椎體骨組織均表現(xiàn)為骨小梁變薄、骨間隙增大;D.B 組在100 倍鏡下的HE 染色;E.B 組在200 倍鏡下的HE 染色;F.B 組在200 倍鏡下Masson 染色,均可以顯示A 組小鼠椎體骨組織較B 組骨質(zhì)分布更密集

    3 討論

    隨著我國逐步進(jìn)入老年性社會(huì),骨質(zhì)疏松的發(fā)病人數(shù)逐年升高。由于骨量減少、骨微結(jié)構(gòu)破壞、骨強(qiáng)度降低及骨脆性增加,骨質(zhì)疏松患者極易發(fā)生骨折,嚴(yán)重者可引起患者股骨頭壞死、癱瘓,甚至死亡[17]。而手術(shù)是骨質(zhì)疏松性骨折目前最有效的治療方法,然而骨質(zhì)疏松性骨折患者以老年人居多,術(shù)后的恢復(fù)非常緩慢[18]。同時(shí),給患者家庭和社會(huì)帶來了沉重的經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)[3]。因此,從基因方面治療或者延緩骨質(zhì)疏松的進(jìn)展,以及減少骨質(zhì)疏松性骨折的發(fā)生具有十分重要的意義。

    有學(xué)者進(jìn)行體外實(shí)驗(yàn)證實(shí)特異性敲除間充質(zhì)干細(xì)胞的SIRT1 基因,可抑制間充質(zhì)干細(xì)胞向成骨和成軟骨方向分化[7]。而本實(shí)驗(yàn)研究中通過Micro-CT 掃描得到A、B 兩組小鼠的骨量體積百分比、骨小梁數(shù)目和厚度以及三維成像下等數(shù)據(jù)進(jìn)行相互比較,并通過椎體骨組織的HE 染色及Masson 染色進(jìn)行骨組織學(xué)對比,發(fā)現(xiàn)軟骨特異性敲除SIRT1 基因組小鼠導(dǎo)致骨微結(jié)構(gòu)惡化,表現(xiàn)為骨小梁變薄、骨間隙增大和骨密度降低。同時(shí),筆者的實(shí)驗(yàn)結(jié)果也證實(shí)了上述文獻(xiàn)報(bào)道的SIRT1 基因的敲除導(dǎo)致骨質(zhì)喪失的現(xiàn)象。

    近年來,與骨代謝相關(guān)的分子信號通路成為研究熱點(diǎn)。研究表明,與骨質(zhì)疏松相關(guān)的信號通路包括Wnt/ -catenin、RANKL/RANK/OPG、NF-B、PPAR-、PTH、MAPK、pi3k/Akt、Hedgehog 和Notch 信號通路[19]。白藜蘆醇作為SIRT1基因的激動(dòng)劑[20],目前在研究SIRT1 基因?qū)琴|(zhì)疏松的作用機(jī)制中得到廣泛應(yīng)用。有體外實(shí)驗(yàn)研究[21]報(bào)道,間充質(zhì)干細(xì)胞通過白藜蘆醇處理后會(huì)促進(jìn)細(xì)胞的成骨向分化。同時(shí),也有體內(nèi)實(shí)驗(yàn)研究表明[22],通過藥物激活SIRT1 保護(hù)絕經(jīng)后骨質(zhì)疏松癥和衰老相關(guān)骨質(zhì)疏松癥的小鼠模型的骨質(zhì)疏松癥。經(jīng)SIRT1 激動(dòng)劑治療后,骨量顯著改善。目前,SIRT1 基因激動(dòng)劑白藜蘆醇已用于人體試驗(yàn),可顯著增加老年肥胖男性的骨量[23]。第四軍醫(yī)大學(xué)西京醫(yī)院的研究通過白藜蘆醇對大鼠骨質(zhì)疏松模型的作用機(jī)制研究中證明了藜蘆醇調(diào)節(jié)SIRT1-NF-kB 信號通路,促進(jìn)成骨細(xì)胞分化,預(yù)防骨質(zhì)疏松癥[24]。近期也有研究報(bào)道,通過白藜蘆醇激活SIRT1/FoxO1 信號通路促進(jìn)小鼠骨質(zhì)疏松模型骨質(zhì)生成,對骨質(zhì)疏松起到保護(hù)作用[25]。本研究中利用特異性敲除軟骨SIRT1 基因,導(dǎo)致小鼠尾椎骨質(zhì)流失增加,可能阻斷或減少了SIRT1 基因?qū)IRT1-NF-kB 信號通路、SIRT1/FoxO1 信號通路及其他骨代謝通路的激活,減少成骨細(xì)胞分化,導(dǎo)致骨質(zhì)疏松的形成。然而,每個(gè)骨代謝的信號通路并不是單獨(dú)存在的,更常見的是多條通路相互交叉共同調(diào)節(jié)骨代謝。也有可能還存在未知、潛在的骨代謝信號通路,這需要我們下一步實(shí)驗(yàn)證實(shí)。

    然而,這項(xiàng)研究有一定的局限性。骨礦物質(zhì)形成和成骨細(xì)胞分化的調(diào)節(jié)是復(fù)雜的。在這項(xiàng)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)體內(nèi)研究中,筆者只檢測了SIRT1 基因敲除對小鼠尾椎骨質(zhì)疏松的影響,而沒有研究SIRT1 基因激動(dòng)劑對小鼠骨質(zhì)疏松的影響。另外,筆者未對骨質(zhì)疏松調(diào)節(jié)的分子通路進(jìn)行研究,我們需要進(jìn)一步探索SIRT1 基因?qū)橇空{(diào)的分子機(jī)制。

    綜上所述,筆者目前的研究證實(shí)SIRT1 基因?qū)π∈笪沧倒琴|(zhì)疏松具有保護(hù)的作用。這些發(fā)現(xiàn)提供了強(qiáng)有力的證據(jù),證明SIRT1 是骨量的積極調(diào)節(jié)者,是開發(fā)骨質(zhì)疏松癥的新療法的一個(gè)有希望的靶點(diǎn)。

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