張 波,王正峰,朱 駿,嚴 俊,陳浩斐,張寶騰,周文策,2
胰腺癌是一種高度致命的惡性腫瘤,發(fā)病率和病死率持續(xù)上升,5年生存率僅為9%,預計在未來20~30年其將成為癌癥相關死亡的第二大病因[1-2];手術切除是唯一治愈的機會,但由于胰腺癌早期癥狀不典型且易轉移,缺乏有效的診療手段,大多數(shù)患者確診時已失去手術根治機會。因此,尋找有效的早期診斷生物標志物及治療靶點成為臨床研究的重點。Legumain(LGMN)是半胱氨酸蛋白酶C13家族的一員,最初發(fā)現(xiàn)于豆科植物中,也存在于人體內,其定位于人第14號染色體上,編碼433個氨基酸[3]。研究顯示LGMN為促癌基因,能夠促進多種腫瘤的發(fā)生和轉移,并參與調節(jié)患者的預后[4-5]。但是關于LGMN與胰腺癌的關系鮮有報道。慢性胰腺炎是胰腺癌的主要危險因素,研究發(fā)現(xiàn)[6],LGMN通過激活TGF-β1促進慢性胰腺炎纖維的形成,作者推測LGMN參與胰腺癌的進展。本文通過檢測胰腺癌組織和癌旁組織中LGMN的表達,分析其臨床意義;并在細胞水平進行驗證,探討LGMN在胰腺癌中的作用情況,以期為胰腺癌的治療和預后提供理論依據(jù)。
1.1 材料
1.1.1組織學標本 收集2015年6月~2019年12月蘭州大學第一醫(yī)院普外科實施根治性手術切除并經(jīng)病理證實的胰腺癌組織67例及其對應癌旁組織61例,其中男性47例,女性20例,年齡30~79歲,平均60歲。所有病例臨床資料均完整,術前均未行放、化療等抗腫瘤治療。
1.1.2細胞及病毒 人胰腺癌細胞株AsPC-1和胰腺正常上皮細胞HPNE購自上海中科院,Legumain shRNA慢病毒和陰性對照組由上海漢尹生物公司合成。
1.1.3主要試劑 DAB試劑盒和SP試劑盒購自福州邁新生物公司,胎牛血清(FBS)和RPMI-1640培養(yǎng)基購自以色列BI公司,DMEM培養(yǎng)基購自美國Gibco公司,反轉錄和PCR擴增試劑盒購自日本Takara公司,引物GAPDH和Legumain購自上海生工公司,CCK-8試劑購自日本同仁公司,Transwell小室購自美國Corning公司,BCA蛋白定量試劑盒購自江蘇碧云天公司,BCL-2抗體購自美國Abcam公司,Bax、Legumain以及GAPDH抗體購自美國CST公司,二抗購自美國SAB公司,PVDF膜和ECL發(fā)光液購自美國Millipore公司。
1.2 方法
1.2.1免疫組化 采用免疫組化SP法檢測LGMN的表達,操作步驟嚴格按照試劑盒說明書進行。將4 μm厚切片用二甲苯脫蠟,梯度乙醇脫水,使用檸檬酸鹽緩沖液(pH 6.0)在壓力鍋中進行抗原修復,冷卻后PBS洗3次,加入100 μL兔抗人LGMN一抗(1 ∶800),4 ℃冰箱過夜。待一抗復溫、PBS洗滌后,加入二抗,室溫孵育20 min,DAB顯色,蘇木精復染,中性樹脂封固。
結果判定:每張切片由兩名資深病理科醫(yī)師根據(jù)切片陽性細胞染色比例及染色強度綜合判定LGMN染色結果。(1)按染色強度計分:不著色為0分,淡黃色(弱陽性)為1分,棕黃色(中等陽性)為2分,棕褐色(強陽性)為3分;(2)按陽性細胞染色比例計分:無陽性腫瘤細胞為0分,陽性細胞數(shù)<20%為1分,20%~50%為2分,51%~70%為3分,>70%為4分;將上述兩項得分結果相乘作為最終結果:≥4分為高表達,≤3分為低表達。
1.2.2細胞培養(yǎng)與慢病毒轉染 AsPC-1細胞用含10%FBS的RPMI-1640培養(yǎng)基,HPNE細胞用含10%FBS的DMEM培養(yǎng)基,置于恒溫培養(yǎng)箱(37 ℃、5%CO2)中培養(yǎng)。將處于對數(shù)生長期的AsPC-1細胞消化后鋪在6孔板中,待細胞匯合度在30%~40%時進行病毒感染。共分為3組:以未干預的細胞作為空白對照組,轉染空白載體細胞為陰性對照組,LGMN敲低細胞為實驗組。根據(jù)慢病毒轉染指南,按MOI=20加入慢病毒液感染24 h,3天后在陰性對照組和實驗組中加入2 μg/mL的嘌呤霉素,隔天換液,篩選10天獲得穩(wěn)定轉染的細胞株。
1.2.3RNA提取和RT-PCR TRIzol試劑盒提取細胞的總RNA,逆轉錄合成為cDNA,將此原液稀釋5倍后采用TB Green Premix Ex Taq Ⅱ進行RT-PCR反應,每組設3個復孔。引物序列如下:Legumain引物序列:上游5′-CGTTGTGATGATGTACGATGAC-3′,下游5′-GACTCCCTGATAGACATCTGTG-3′;GAPDH引物序列:上游5′-GTCTCCTCTGACTTCAA CAGCG-3′,下游5′-ACCACCCTGTTGCTGTAGCCAA-3′,運用2-ΔΔCt計算mRNA的相對表達量。
1.2.4CCK-8實驗 胰酶消化對數(shù)生長期的細胞,計數(shù)后調整密度為每毫升2×104個細胞,按每孔100 μL細胞懸液接種于96孔板,每組重復5次。將CCK-8溶液和無血清RPMI-1640培養(yǎng)基按1 ∶10配置,棄掉原液后,每孔加100 μL配置液,培養(yǎng)箱中孵育2 h,酶標儀測450 nm波長處的吸光度(OD)值,每天測1次,連測4天。采用GraphPad 7.00軟件繪增殖曲線。
1.2.5Transwell實驗 三組細胞胰酶消化后用無血清的培養(yǎng)基重懸;取600 μL RPMI-1640培養(yǎng)基(含30%FBS)加入Transwell下室、200 μL細胞懸液(含3×104個細胞)接種于上室,隨后將該24孔板移至孵箱中培養(yǎng)36 h;4%多聚甲醛固定、結晶紫染色,PBS洗滌后倒置顯微鏡下多視野拍照(200×)。
1.2.6Western blot法 提取各組細胞總蛋白,使用BCA法測其濃度,定量后100 ℃沸水中煮10 min使蛋白變性。配膠,上樣進行SDS-PAGE凝膠電泳,切膠,轉膜,5%脫脂牛奶室溫封閉1 h,加入一抗(LGMN、BCL-2、Bax及GAPDH,稀釋比均為1 ∶1 000),4 ℃孵育過夜。復溫,TBST洗膜10 min×3次,加入HRP標記的二抗(稀釋比1 ∶2 000)室溫孵育1 h,TBST洗膜10 min×3次,ECL曝光顯影。采用Image J軟件行條帶灰度分析。
1.3 統(tǒng)計學分析利用SPSS 22.0軟件進行統(tǒng)計學分析,兩個樣本計數(shù)資料間差異采用四格表χ2檢驗,兩組間比較采用t檢驗,三組間比較采用單因素方差分析。每個實驗至少重復3次,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 胰腺癌及癌旁組織中LGMN的表達LGMN主要定位于細胞質,67例胰腺癌組織中44例(65.7%)高表達,23例(34.3%)低表達;61例癌旁組織中僅3例(4.9%)高表達,其余58例(95.1%)均為低表達;胰腺癌組織中LGMN的高表達率明顯高于癌旁組織(χ2=50.720,P<0.01)。高表達LGMN的胰腺癌組織可見腫瘤上皮細胞胞質呈棕黃色或棕褐色,染色面積大;癌旁組織胰腺正常上皮細胞中LGMN為陰性或呈淡黃色,同時發(fā)現(xiàn)LGMN在部分胰腺腺泡中也有一定的表達(圖1)。
ABC
2.2 LGMN表達與胰腺癌臨床病理特征的關系LGMN蛋白表達與胰腺癌患者性別、年齡、腫瘤大小、腫瘤位置、TNM分期、血管侵犯、CA19-9水平無關(P>0.05),與腫瘤分化程度、淋巴結轉移有關(P<0.05);腫瘤分化程度越低或有淋巴結轉移者,LGMN的表達量越高(表1)。
表1 胰腺癌中LGMN表達與臨床病理特征的關系[n(%)]
2.3 胰腺細胞系中LGMN的表達及其在AsPC-1細胞中的敲低情況RT-PCR結果顯示,LGMN mRNA在AsPC-1細胞中的相對表達量(2.159 0±0.108 2)顯著高于HPNE細胞(1.000 0±0.020 2),差異有統(tǒng)計學意義(t=10.52,P=0.000 5);同時發(fā)現(xiàn)AsPC-1細胞中的LGMN蛋白相對表達量(0.952 8±0.049 0)亦高于HPNE細胞(0.503 5±0.063 7),差異有統(tǒng)計學意義(t=7.152,P=0.002,圖2A)。轉染慢病毒后,實驗組LGMN mRNA和蛋白相對表達量較對照組均顯著下降,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.001),對照組間差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05,圖2B~D)。
圖2 胰腺細胞系中LGMN的表達及其在AsPC-1細胞中的敲低情況:A、B.LGMN蛋白表達電泳圖;C、D.LGMN mRNA和蛋白相對表達量直方圖;與陰性對照組相比,***P<0.001,****P<0.000 1
2.4 LGMN敲低對AsPC-1細胞增殖能力的影響CCK-8法比較24 h、48 h及72 h三組細胞的OD值,與空白對照組相比,陰性對照組細胞的OD值減小(P24 h=0.059 9,余P<0.01);與空白、陰性對照組相比,LGMN敲低組細胞的OD值均明顯減小(P<0.001,圖3);表明下調LGMN可抑制AsPC-1細胞的增殖能力。
圖3 LGMN敲低對AsPC-1細胞增殖能力的影響:與陰性對照組相比,**P<0.01,****P<0.000 1
2.5 LGMN敲低對AsPC-1細胞遷移能力的影響Transwell實驗檢測AsPC-1細胞遷移能力變化,與空白對照組相比,陰性對照組穿過的細胞數(shù)目略有減少(P=0.011 8);與空白、陰性對照組相比,LGMN敲低組穿過的細胞數(shù)目明顯減小(P<0.000 1,圖4);表明下調LGMN可抑制AsPC-1細胞的遷移能力。
圖4 LGMN敲低對AsPC-1細胞遷移能力的影響:與陰性對照組相比,*P<0.05,****P<0.000 1
2.6 LGMN敲低對凋亡相關蛋白的影響與空白、陰性對照組相比,LGMN敲低組BCL-2蛋白表達降低,BCL-2/Bax比值顯著降低,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01);LGMN敲低組中Bax蛋白表達雖有升高,與對照組相比差異無統(tǒng)計學意義(P>0.05,圖5);表明下調LGMN可促進細胞凋亡。
圖5 LGMN敲低對凋亡相關蛋白的影響:與陰性對照組相比,**P<0.01,***P<0.001
2003年,研究人員首次報道LGMN在多種實體腫瘤中高表達,其結構相當保守,多由腫瘤細胞或腫瘤相關巨噬細胞表達并分泌,過表達LGMN可增強癌細胞的遷移和侵襲活性[7]。在腫瘤中,LGMN可能作為一種應激反應蛋白,在缺氧或熱休克等極端條件下產(chǎn)生,參與腫瘤的進展。LGMN是一種pH依賴性蛋白酶,在酸性溶酶體中活性最高,其活性升高可促進腫瘤的生長和轉移,并與患者預后不良呈正相關[3],揭示了LGMN作為腫瘤治療靶標的潛力。LGMN在卵巢癌[8]、前列腺癌[9]、乳腺癌[10]、子宮頸癌[11]、胃癌[5,12]等癌組織或細胞中高表達;而且在卵巢癌[8]、乳腺癌[10]、胃癌[5]中,LGMN表達可作為獨立預后危險因素,其高表達患者預后更差。在治療方面,埃索美拉唑可通過抑制LGMN酶的活性來預防腫瘤轉移[13];口服LGMN激活修飾的聚合物納米載體,負載索拉非尼,可增強口服給藥到腫瘤的能力,已被用于胃癌的光熱聯(lián)合化療[14]。通過GEPIA網(wǎng)站分析發(fā)現(xiàn),LGMN mRNA在胰腺癌組織中的表達顯著高于胰腺正常組織,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01)[15]。提示LGMN可能作為促癌因素參與胰腺癌的進展。然而,LGMN在胰腺癌組織和細胞中的表達和作用尚未見報道。
本組實驗發(fā)現(xiàn),LGMN在67例胰腺癌組織中的表達明顯高于癌旁組織;腫瘤分化程度和淋巴結轉移是影響胰腺癌患者預后的重要因素,LGMN表達越高,腫瘤分化程度越低或更易發(fā)生淋巴結轉移,提示LGMN與胰腺癌預后密切相關。Guo等[16]的實驗發(fā)現(xiàn)LGMN在282例胃癌組織中高表達,其高表達與TNM分期、遠處轉移顯著相關,LGMN表達越高,患者總生存期越短。這與本組實驗結果基本一致。在細胞水平,胰腺癌AsPC-1細胞中LGMN表達顯著高于胰腺正常上皮細胞。下調LGMN后,細胞增殖和遷移能力均明顯減弱,說明LGMN在胰腺癌中是一種腫瘤促進因子。Zhu等[9]研究發(fā)現(xiàn)LGMN在前列腺癌細胞中差異表達,敲低LGMN后,凋亡細胞比例明顯增加,通過激活PI3K/Akt信號通路抑制前列腺癌細胞的增殖和侵襲能力,過表達則相反。Meng等[11]研究發(fā)現(xiàn)子宮頸癌細胞中LGMN高表達,下調LGMN可以抑制子宮頸癌細胞的遷移和侵襲,其機制可能是通過抑制基質金屬蛋白酶(MMP-2、MMP-3)的激活。在胃癌中也發(fā)現(xiàn)類似的情況[12]。本組實驗在培養(yǎng)AsPC-1細胞時,發(fā)現(xiàn)LGMN敲低組死亡細胞較多,為探究其原因,遂檢測了凋亡相關蛋白的變化。Western blot法實驗結果顯示,與空白、陰性對照組相比,實驗組抑凋亡蛋白BCL-2表達顯著下降,凋亡相關蛋白Bax表達上升不明顯,但BCL-2/Bax比值顯著下降。Sun等[17]研究發(fā)現(xiàn)下調LGMN可顯著增加氧化低密度脂蛋白誘導的巨噬細胞凋亡及Caspase-3、Caspase-9和Bax的表達。何開明等[18]在肺癌細胞中研究發(fā)現(xiàn)Cyr61過表達可通過促進凋亡蛋白Bax和Caspase-3表達、抑制BCL-2表達來激活Caspase-3通路,從而抑制細胞的增殖。陳筱雪等[19]在破骨前體細胞中也發(fā)現(xiàn)了類似研究。表明下調LGMN可能通過BCL-2/Bax激活凋亡通路從而誘導胰腺癌細胞凋亡,造成實驗組和對照組死亡細胞差異。
綜上所述,LGMN在胰腺癌組織及細胞中高表達,下調LGMN可顯著抑制胰腺癌細胞AsPC-1的增殖和遷移能力,并通過調控BCL-2/Bax的表達,激活凋亡通路,促進AsPC-1細胞凋亡。LGMN對胰腺癌的發(fā)生、發(fā)展起重要促進作用,在分化程度更低或有淋巴結轉移的胰腺癌患者中預測更好,其可能成為胰腺癌治療和預后的新靶點,但其具體的作用機制仍待深入探究。