王洪偉 林娟 (海南醫(yī)學院第二附屬醫(yī)院婦產科,海南 ???570311)
宮頸癌是女性第二大常見惡性腫瘤,更是導致女性癌癥相關死亡的主要原因〔1,2〕。目前,隨著手術、放化療等診療手段的不斷進展,宮頸癌的診療取得一定效果,但由于腫瘤的轉移和復發(fā),宮頸癌患者的長期生存率仍不理想。因此,迫切需要探索宮頸癌發(fā)生和轉移的分子機制。長鏈非編碼RNA(LncRNA)是一類長度超過200個核苷酸非編碼RNA,沒有或僅有有限的蛋白編碼潛能〔3〕。研究表明,LncRNA通過調控腫瘤細胞增殖、侵襲和存活從而發(fā)揮癌基因或抑癌基因作用〔4〕。溶質載體有機陰離子轉運蛋白家族成員4A1反義RNA1(SLCO4A1-AS1)是近年發(fā)現的一個LncRNA,其在結腸癌中發(fā)揮致癌基因作用,敲減SLCO4A1-AS1在體外可抑制結腸癌細胞的增殖、遷移、侵襲及上皮間質轉化,促進細胞凋亡,在體內抑制腫瘤的生長〔5〕。但目前并無SLCO4A1-AS1和宮頸癌的相關報道。miR-876-3p是一種抑癌基因,研究發(fā)現miR-876-3p在胰腺癌中表達下調,過表達miR-876-3p可抑制胰腺癌細胞的增殖和轉移〔6〕。生物信息學分析顯示,miR-876-3p是SLCO4A1-AS1的潛在靶基因,但SLCO4A1-AS1能否調控miR-876-3p表達進而影響宮頸癌的生物學行為尚未可知。因此,本研究旨在探討SLCO4A1-AS1對宮頸癌細胞增殖、遷移和侵襲的影響,并初步探討其可能分子機制。
1.1實驗材料 宮頸癌細胞(SiHa、HeLa、C33a、Caski)和正常的永生化宮頸上皮細胞系Ect1/E6E7均購自美國ATCC;RPMI1640培養(yǎng)基和胎牛血清均購自美國Gibco公司;LipofectamineTM2000購自美國Invitrogen公司;si-con、si-SLCO4A1-AS1、miR-con、miR-876-3p mimics、anti-miR-con、anti-miR-876-3p、pcDNA、pcDNA-SLCO4A1-AS1、WT-SLCO4A1-AS1、MUT-SLCO4A1-AS1的構建測序及聚合酶鏈反應(PCR)引物均購自上海生工公司;逆轉錄試劑盒和SYBR Green PCR試劑盒均購自大連TaKaRa生物技術有限公司;四甲基偶氮唑藍(MTT)試劑盒購自美國APExBIO公司;Transwell小室和基質膠均購自美國Corning公司產品;TRIzol試劑、放射免疫沉淀試驗(RIPA)裂解液、Western洗滌液、Western封閉液、硝酸纖維素(NC)膜、辣根過氧化酶(HRP)標記山羊抗兔的Ⅱ抗均購自中國碧云天公司;兔源細胞周期素(Cyclin)D1抗體、兔源P21抗體、兔源基質金屬蛋白酶(MMP)-2抗體、兔源MMP-9抗體、兔源GAPDH抗體均購自美國Abcam公司。
1.2方法
1.2.1細胞培養(yǎng)和分組 采用RPMI1640培養(yǎng)基分別培養(yǎng)宮頸癌細胞和正常宮頸細胞,培養(yǎng)基中均添加10%的胎牛血清,在37℃,含5%CO2的細胞培養(yǎng)箱中進行細胞培養(yǎng)。實驗分組:本實驗選取HeLa細胞進行后續(xù)研究,將HeLa細胞隨機分為NC組(正常培養(yǎng)的HeLa細胞)、si-con組(轉染si-con)、si-SLCO4A1-AS1組(轉染si-SLCO4A1-AS1)、miR-con組(轉染miR-con)、miR-876-3p組(轉染miR-876-3p mimics)、si-SLCO4A1-AS1+anti-miR-con組(共轉染si-SLCO4A1-AS1和anti-miR-con)和si-SLCO4A1-AS1+ anti-miR-876-3p組(共轉染si-SLCO4A1-AS1和anti-miR-876-3p)。轉染方法嚴格按照LipofectamineTM2000使用說明書進行。
1.2.2qRT-PCR檢測 采用TRIzol試劑分別提取4種宮頸癌細胞和正常宮頸細胞Ect1/E6E7的總RNA,逆轉錄試劑盒將RNA逆轉為cDNA,以cDNA為擴增模板進行qRT-PCR擴增。分別以U6和β-actin為內參,2-ΔΔCt法計算miR-876-3和SLCO4A1-AS1的相對表達水平。
1.2.3雙熒光素酶報告基因檢測 采用生物信息軟件starbase在線預測SLCO4A1-AS1的靶基因,發(fā)現SLCO4A1-AS1和miR-876-3存在部分連續(xù)互補的核苷酸序列。隨后對二者的靶向關系進行驗證。構建野生型WT-SLCO4A1-AS1和突變型MUT-SLCO4A1-AS1的SLCO4A1-AS1-3′UTR熒光素酶報告基因載體,分別將WT-SLCO4A1-AS1和突變型MUT-SLCO4A1-AS1與miR-876-3 mimics或miR-con共轉染至HeLa細胞,轉染48 h,采用雙熒光素酶報告基因檢測系統檢測熒光素酶活性。
1.2.4MTT法檢測細胞活力 采用MTT法檢測細胞活力,將HeLa細胞按照2×103個/孔(200 μl)接種到96孔板,進行相應轉染后,分別于轉染24 h、48 h、72 h時向每孔內添加20 μl的MTT溶液(5 mg/ml),繼續(xù)孵育4 h,終止培養(yǎng),小心吸棄孔內培養(yǎng)上清液,每孔加入150 μl的DMSO,搖床震蕩10 min,使結晶物充分溶解。選擇490 nm波長,在酶聯免疫檢測儀上測定各孔吸光度值。
1.2.5Transwell法檢測細胞遷移和侵襲能力 侵襲實驗:轉染48 h時消化細胞,離心棄去細胞培養(yǎng)液,用磷酸鹽緩沖液(PBS)洗滌細胞2次,采用不含血清的RPMI1640重懸細胞,調整細胞密度約為1×106個/ml。取200 μl細胞懸液加入鋪有基質膠的Transwell上室內,向下室加入500 μl含10%血清的RPMI1640培養(yǎng)液,常規(guī)培養(yǎng)24 h后,用棉簽擦去基質膠和上室內的細胞,用甲醇固定下室膜30 min,0.1%結晶紫染色20 min,用33%醋酸脫色后,倒置于顯微鏡下隨機選擇3個視野,記錄細胞總數,拍照,取其均值即為侵襲細胞數。遷移實驗采用未鋪有基質膠的小室,其他步驟同侵襲實驗。
1.2.6Western印跡檢測 使用RIPA裂解液各組細胞,收集蛋白樣品,BCA蛋白濃度測定試劑盒測定蛋白濃度。配制十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)液,按照1∶1比例將蛋白樣品與蛋白上樣緩沖液(2×)混合,沸水浴加熱3~5 min,以充分變性蛋白。冷卻到室溫后,直接上樣到SDS-PAGE膠加樣孔。停止電泳后,用標準濕式轉膜裝置將蛋白轉移至硝酸纖維素(NC)膜,轉膜完畢后,立即用Western洗滌液洗膜2 min,滴管吸盡洗滌液,加入Western封閉液室溫搖床封閉1 h,吸盡封閉液后,立即加入稀釋好的Ⅰ抗室溫搖床孵育1 h,Western洗滌液洗膜3次(5 min/次),加入相應的已稀釋二抗室溫搖床孵育1 h,再次用Western洗滌液洗膜后,加入電化學發(fā)光(ECL)顯色試劑在暗室內顯色,Image J分析目的條帶灰度值。
1.3統計學方法 采用SPSS20.0軟件進行t檢驗、單因素方差分析。
2.1宮頸癌細胞系中SLCO4A1-AS1和miR-876-3p的表達 與Ect1/E6E7組相比,其余各組SLCO4A1-AS1表達水平均顯著升高,miR-876-3p表達水平均顯著降低(均P<0.05)。選取SLCO4A1-AS1表達水平升高和miR-876-3p表達水平降低最明顯的HeLa細胞進行后續(xù)研究。見表1。
表1 宮頸癌細胞系中SLCO4A1-AS1和miR-876-3p的表達
2.2沉默SLCO4A1-AS1對宮頸癌細胞HeLa增殖的影響 與NC組和si-con組比較,si-SLCO4A1-AS1組HeLa細胞SLCO4A1-AS1的表達水平顯著下降(P<0.05),表明沉默SLCO4A1-AS1的宮頸癌細胞株構建成功。與NC組和si-con組比較,si-SLCO4A1-AS1組HeLa細胞p21蛋白表達水平顯著升高,CyclinD1蛋白表達水平顯著降低,細胞增殖活力顯著降低(均P<0.05),見圖1、表2。提示沉默SLCO4A1-AS1抑制宮頸癌細胞的增殖能力。
圖1 檢測宮頸癌細胞HeLa中p21和CyclinD1蛋白的表達
組別SLCO4A1-AS1細胞活力(OD490 nm)24 h48 h72 hp21CyclinD1NC組1.00±0.110.36±0.040.65±0.081.12±0.110.57±0.070.79±0.08si-con組0.97±0.090.35±0.050.63±0.071.08±0.090.61±0.050.81±0.09si-SLCO4A1-AS1組0.23±0.311)2)0.28±0.031)2)0.45±0.051)2)0.87±0.071)2)0.83±0.091)2)0.36±0.051)2)F值P值44.1640.00010.2600.00123.7390.00019.3980.00034.1420.000102.6530.000
2.3沉默SLCO4A1-AS1對宮頸癌細胞HeLa遷移和侵襲的影響 與NC組和si-con組比較,si-SLCO4A1-AS1組HeLa細胞MMP-2和MMP-9蛋白的表達均顯著降低,遷移和侵襲細胞數目均顯著較少(P<0.05)。見圖2、表3。提示沉默SLCO4A1-AS1抑制宮頸癌細胞的侵襲和遷移能力。
圖2 宮頸癌細胞HeLa遷移和侵襲及轉移相關蛋白的表達(結晶紫染色,×200)
組別遷移細胞數目(個)侵襲細胞數目(個)MMP-2MMP-9NC組176.37±15.2185.73±9.480.83±0.090.64±0.05si-con組172.86±12.3891.33±9.560.88±0.080.69±0.07si-SLCO4A1-AS1組75.46±8.461)2)25.28±4.561)2)0.46±0.051)2)0.31±0.041)2)F值194.153179.24083.594127.900P值0.0000.0000.0000.000
2.4SLCO4A1-AS1靶向調控miR-876-3p的表達 生物信息學分析發(fā)現,SLCO4A1-AS1和miR-876-3p存在部分連續(xù)特異性互補的核苷酸序列,見圖3。miR-876-3p組SLCO4A1-AS1-WT水平顯著低于miR-con組(P<0.001),見表4。si-con組HeLa細胞miR-876-3p的表達水平(1.00±0.09)顯著低于si-SLCO4A1-AS1組(4.36±0.44,P<0.05);pcDNA組HeLa細胞miR-876-3p的表達水平(0.96±0.08)顯著高于pcDNA-SLC04A1-AS1組(0.53±0.05,P<0.05)。提示miR-876-3p是SLCO4A1-AS1的靶基因,SLCO4A1-AS1能夠靶向負調控miR-876-3p的表達。
圖3 SLCO4A1-AS1與miR-876-3p互補的核苷酸序列
表4 雙熒光素酶報告實驗
2.5過表達miR-876-3p對宮頸癌細胞HeLa增殖、遷移、侵襲的影響 與NC組和miR-con組比較,miR-876-3p組HeLa細胞miR-876-3p的表達水平顯著升高(P<0.05),表明過表達miR-876-3p的宮頸癌細胞株構建成功。與NC組和miR-con組比較,miR-876-3p組HeLa細胞p21蛋白的表達水平顯著升高,CyclinD1、MMP-9、MMP-2蛋白的表達水平顯著下降,細胞增殖活力顯著降低,遷移和侵襲數目顯著減少(均P<0.05),見圖4、表5。提示過表達miR-876-3p抑制宮頸癌細胞的增殖、遷移和侵襲能力。
圖4 過表達miR-876-3p對宮頸癌細胞HeLa中p21、CyclinD1、MMP-2和MMP-9蛋白表達的影響
組別CyclinD1MMP-9MMP-2遷移細胞數目(個)侵襲細胞數目(個)NC組0.84±0.080.92±0.090.84±0.08180.92±15.5781.64±7.84miR-con組0.81±0.080.94±0.070.78±0.09176.84±15.6778.68±8.52miR-876-3p組0.42±0.041)2)0.51±0.061)2)0.47±0.051)2)72.63±7.681)2)32.35±4.761)2)F值102.93895.80162.629185.964131.650P值0.0000.0000.0000.0000.000
2.6抑制miR-876-3p部分逆轉沉默SLCO4A1-AS1對宮頸癌細胞HeLa增殖、遷移、侵襲的作用 與si-con組比較,si-SLCO4A1-AS1組HeLa細胞miR-876-3p和p21表達顯著升高,CyclinD1、MMP-9、MMP-2蛋白表達水平顯著下降,細胞增殖活力顯著降低,遷移和侵襲數目顯著減少(均P<0.05);與si-SLCO4A1-AS1+anti-miR-con組比較,si-SLCO4A1-AS1+anti-miR-876-3p組HeLa細胞miR-876-3p和p21表達顯著降低,CyclinD1、MMP-9、MMP-2蛋白表達水平顯著升高,細胞增殖活力顯著升高,遷移和侵襲數目顯著增加(P<0.05),見圖5、表6。提示抑制miR-876-3p表達部分逆轉沉默SLCO4A1-AS1對宮頸癌細胞增殖、遷移、侵襲的影響。
1~4:si-con組、si-SLCO4A1-AS1組、si-SLCO4A1-AS1+anti-miR-con組、si-SLCO4A1-AS1+ anti-miR-876-3p組圖5 抑制miR-876-3p對宮頸癌細胞HeLa中p21、CyclinD1、MMP-2和MMP-9蛋白表達的影響
宮頸癌是全球最嚴重的女性惡性腫瘤之一,轉移性宮頸癌患者的生存率較低〔3〕。研究表明,LncRNA在宮頸癌中發(fā)揮細胞調節(jié)因子作用,參與宮頸癌的發(fā)生發(fā)展〔7〕。
SLCO4A1-AS1定位于人類20q13.33位點,是一種新型的LncRNA。研究顯示,SLCO4A1-AS1在惡性腫瘤的進展中發(fā)揮關鍵作用。Wang等〔8〕研究發(fā)現,SLCO4A1-AS1在結腸癌組織和細胞中表達上調,SLCO4A1-AS1通過調控miR-508-3p/分離缺陷基因(PARD)3軸誘導保護性自噬促進結腸癌細胞增殖;Yang等〔9〕指出在膀胱癌組織中SLCO4A1-AS1也呈高表達,SLCO4A1-AS1的表達水平與膀胱癌晚期和轉移呈正相關,SLCO4A1-AS1表達上調提示膀胱癌患者預后不良,沉默SLCO4A1-AS1可抑制膀胱癌細胞的增殖、遷移和侵襲能力,抑制腫瘤在體內的生長;此外,Yang等〔6〕研究表明,SLCO4A1-AS1還可通過激活Wnt/β-catenin信號通路促進結腸癌腫瘤的生長和轉移。本研究結果表明,SLCO4A1-AS1在宮頸癌中可能發(fā)揮致癌基因作用。
許多研究報道LncRNA可阻斷miRNA在腫瘤進展中的功能,恢復靶基因的表達,參與宮頸癌的發(fā)生發(fā)展。Shao等〔10〕研究發(fā)現,LncRNA STXBP5-AS1通過靶向miR-96-5p/PTEN軸抑制宮頸癌細胞的增殖和遷移能力;Jin等〔11〕認為,LncRNA小核仁RNA宿主基因(SNHG)12可抑制miR-125b活性,促進信號轉導和轉錄活化因子(STAT)3在宮頸癌細胞中的表達,進而促進腫瘤的形成。然而SLCO4A1-AS1能否通過類似的機制調控宮頸癌的發(fā)生發(fā)展尚不清楚。生物信息學分析顯示,SLCO4A1-AS1可能在宮頸癌中與miR-876-3p直接相互作用。miR-876-3p位于人9號染色體p21.1位點,研究顯示,miR-876-3p在人膠質母細胞瘤中表達下調,可能與膠質母細胞瘤的耐藥有關〔12〕;在胃癌細胞中miR-876-3p呈低表達,其表達下調與胃癌患者不良預后呈負相關,過表達miR-876-3p靶向p24跨膜轉運蛋白(TMED)3可增加胃癌順鉑耐藥細胞的藥物敏感性〔13〕。本研究結果表明,SLCO4A1-AS1可能直接靶向miR-876-3p參與宮頸癌的發(fā)生發(fā)展。
本研究結果提示,SLCO4A1-AS1通過靶向miR-876-3p促進宮頸癌的惡性進展。已有的研究表明,STAT3在宮頸癌中顯著上調,抑制STAT3進而抑制宮頸癌細胞的侵襲和轉移〔14,15〕。環(huán)狀RNA-0006988通過調控miR-876-3p/STAT3促進胰腺癌細胞增殖、遷移和侵襲〔16〕。在后續(xù)研究中,我們將進一步探究SLCO4A1-AS1調控miR-876-3p/STAT3通路在宮頸癌進展中的作用。
綜上,SLCO4A1-AS1在宮頸癌細胞中表達上調,miR-876-3p表達下調。沉默SLCO4A1-AS1通過靶向miR-876-3p抑制宮頸癌細胞的增殖、遷移和侵襲。SLCO4A1-AS1有望成為一種新型的宮頸癌治療靶點。