陳詠麗 董善武 蔣 姝 劉 娜 陶 雙
(武漢市第四醫(yī)院,華中科技大學(xué)同濟(jì)醫(yī)學(xué)院附屬普愛(ài)醫(yī)院兒科,武漢430030)
支氣管哮喘是近年備受關(guān)注的全球公共衛(wèi)生問(wèn)題,也是兒童最常見(jiàn)的慢性疾病,以氣道反應(yīng)性增強(qiáng)、氣道發(fā)炎和氣道重塑為特征[1]。近年來(lái),兒童哮喘發(fā)病率呈升高趨勢(shì),已嚴(yán)重影響兒童的健康和生長(zhǎng)發(fā)育[2]。因此,對(duì)兒童哮喘的早期診斷和干預(yù)具有重要意義。近年研究顯示,長(zhǎng)鏈非編碼RNA(long non-coding RNA,lncRNA)在哮喘的進(jìn)展中發(fā)揮重要生物學(xué)作用,靶向lncRNA是治療哮喘的新方向[3]。前列腺癌基因表達(dá)標(biāo)記物1(prostate can‐cer gene expression marker 1,PCGEM1)基因位于染色體2q32.3,研究顯示PCGEM1在前列腺癌、結(jié)腸癌等惡性腫瘤中表達(dá)上調(diào),干擾PCGEM1可抑制腫瘤細(xì)胞的增殖和遷移,是惡性腫瘤的潛在治療靶點(diǎn)[4-5]。對(duì)哮喘患者血清中差異性表達(dá)的lncRNA進(jìn)行初步篩選發(fā)現(xiàn),PCGEM1呈低表達(dá),是臨床檢測(cè)哮喘潛在的新型分子標(biāo)記物[6]。支氣管上皮細(xì)胞是氣道抵抗外部環(huán)境的物理屏障,其功能障礙在哮喘的發(fā)病機(jī)制中起重要作用,但PCGEM1對(duì)哮喘患者支氣管上皮細(xì)胞增殖、凋亡的影響尚未見(jiàn)報(bào)道。因此,本研究以塵螨抗原浸出物刺激支氣管上皮細(xì)胞,通過(guò)檢測(cè)PCGEM1的表達(dá)及細(xì)胞增殖、凋亡及炎癥反應(yīng)變化,初步探討PCGEM1在支氣管哮喘中的作用,以期為支氣管哮喘的治療提供新途徑。
1.1 材料 人支氣管上皮細(xì)胞16HBE購(gòu)于美國(guó)典型菌株保藏中心;MEM培養(yǎng)基和胎牛血清購(gòu)于美國(guó)Gibco公司;安脫達(dá)(塵螨抗原提取物)購(gòu)于丹麥ALKAbello A/S公司;LipofectamineTM2000購(gòu)于美國(guó)Invit‐rogen公司;小干擾RNA陰性對(duì)照(si-NC)、PCGEM1小干擾RNA(si-PCGEM1)、空載體(pcDNA3.1)、PC‐GEM1過(guò)表達(dá)載體(pcDNA3.1-PCGEM1)及PCR引物購(gòu)于南京金斯瑞生物科技有限公司;TRIzol試劑、RIPA裂解液、四甲基偶氮唑藍(lán)(methyl thiazolyl tetra‐zolium,MTT)試劑盒、膜聯(lián)蛋白V異硫氰酸熒光素/碘化丙啶(Annexin V-FITC/PI)細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒購(gòu)于北京索萊寶生物科技公司;胸腺基質(zhì)淋巴細(xì)胞生成素(thymostromal lymphocytin,TSLP)、ELISA試劑盒購(gòu)于武漢華美生物工程有限公司;兔源Cyclin D1、P21、B細(xì)胞淋巴瘤/白血病-2(B cell lymphoma/leu‐kaemia-2,Bcl-2)、Bcl-2相關(guān)X蛋白(Bcl-2 associated X protein,Bax)、磷酸甘油醛脫氫酶(phosphoglyceral‐dehyde dehydrogenase,GAPDH)抗體以及上樣抗兔Ⅱ抗為美國(guó)Abcam公司產(chǎn)品。
1.2 方法
1.2.1 細(xì)胞分組和處理 采用含有10%胎牛血清的MEM培養(yǎng)基培養(yǎng)16HBE,培養(yǎng)箱條件設(shè)置為37℃、CO2體積分?jǐn)?shù)5%。當(dāng)細(xì)胞生長(zhǎng)融合度為90%時(shí)進(jìn)行胰酶消化和傳代。取對(duì)數(shù)期16HBE進(jìn)行實(shí)驗(yàn),將16HBE以1×105個(gè)/孔接種于6孔板,當(dāng)細(xì)胞生長(zhǎng)融合度達(dá)到70%時(shí),采用300 U/L安脫達(dá)刺激細(xì)胞24 h標(biāo)記為塵螨抗原浸出物[7]。正常培養(yǎng)的16HBE細(xì)胞標(biāo)記為對(duì)照組。為證實(shí)PCGEM1對(duì)塵螨抗原浸出物刺激支氣管上皮細(xì)胞增殖、凋亡和炎癥因子分泌的影響,參照脂質(zhì)體LipofectamineTM2000使 用 說(shuō) 明 分 別 將si-NC、si-PCGEM1、pcD‐NA3.1、pcDNA3.1-PCGEM1轉(zhuǎn)染至16HBE,經(jīng)安脫達(dá)刺激24 h后,檢測(cè)細(xì)胞增殖、凋亡及炎癥因子分泌情況。
1.2.2 qRT-PCR檢測(cè)PCGEM1的表達(dá)水平 TRIzol法提取各組16HBE細(xì)胞的總RNA,紫外分光光度法測(cè)定RNA的濃度和純度,將RNA逆轉(zhuǎn)為cDNA,并以cDNA為模板進(jìn)行qRT-PCR擴(kuò)增。PCGEM1上游引物序列為5′-CACGTGGAGGACTAAGGGTA-3′,下游引物序列為5′-TTGCAACAAGGGCATTTCAG-3′;GAPDH上游引物序列為5′-AGAAGGCTGGGGCTCATTTG-3′,下游引物序列為5′-AGGGGCCATCCACAGTCTTC-3′。以GAPDH為內(nèi)參照,用2-ΔΔCt法計(jì)算PCGEM1的相對(duì)表達(dá)量。
1.2.3 MTT法檢測(cè)細(xì)胞活力 將16HBE以2×103個(gè)/孔接種于96孔板,按照1.2.1分組進(jìn)行相應(yīng)細(xì)胞處理后,分別在24、48、72 h時(shí)間點(diǎn)向各孔加入20μl質(zhì)量分?jǐn)?shù)為5 mg/ml的MTT試劑,培養(yǎng)箱繼續(xù)孵育4 h,棄去孔內(nèi)上清液,再向各孔加入150μl DMSO孵育2 h,當(dāng)結(jié)晶完全溶解后,全自動(dòng)酶標(biāo)儀檢測(cè)各孔吸光度值。
1.2.4 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞凋亡 收集按照1.2.1分組處理的各組細(xì)胞,PBS液洗滌細(xì)胞后,加入適量的結(jié)合緩沖液懸浮細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞濃度約為1×106個(gè)/ml,取100μl細(xì)胞懸液加入流式管,加入5μl Annexin V-FITC,輕輕地混勻后,室溫避光孵育10 min,加入5μl碘化丙啶(propidium iodide PI),室溫避光孵育5 min,補(bǔ)加結(jié)合緩沖液至500μl,輕輕混勻,1 h內(nèi)用流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞凋亡情況。
1.2.5 ELISA檢測(cè)TSLP和TNF-α水平 16HBE按照1.2.1分組進(jìn)行相應(yīng)處理后,分別收集各組細(xì)胞上清液,以3 000/rmin 4℃離心15 min,收集上清,參照ELISA試劑盒說(shuō)明書檢測(cè)TSLP和TNF-α水平。
1.2.6 Western blot檢測(cè)Cyclin D1、P21、Bax和Bcl-2的蛋白表達(dá) 收集按照1.2.1分組處理的各組細(xì)胞,RIPA裂解液提取各組細(xì)胞總蛋白,測(cè)定蛋白濃度和純度。取適量細(xì)胞蛋白和等體積上樣緩沖液混合后,煮沸5 min使細(xì)胞蛋白充分變性。取30μg已冷卻至室溫的蛋白進(jìn)行聚丙烯酰胺凝膠電泳分離細(xì)胞蛋白,結(jié)束后將蛋白濕法轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜。采用5%脫脂牛奶室溫條件封閉膜1 h,TBST洗膜后,加入已稀釋的Cyclin D1、P21、Bax、Bcl-2和GAPDH抗體室溫孵育2 h,TBST洗膜10 min,漂洗3次,加入相應(yīng)的二抗室溫孵育1 h,TBST洗膜10 min,漂洗3次,利用化學(xué)發(fā)光試劑進(jìn)行顯影,拍照后,以GAPDH為內(nèi)參照,圖像處理軟件分析各目的條帶的灰度值。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS20.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。所有實(shí)驗(yàn)分組均設(shè)置3個(gè)平行實(shí)驗(yàn)或復(fù)孔,實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次。所有實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)均采用±s表示。采用t檢驗(yàn)進(jìn)行組間比較,以P<0.05表示差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 哮喘過(guò)敏原作用于16HBE對(duì)細(xì)胞增殖、凋亡及炎癥因子表達(dá)的影響 見(jiàn)圖1、表1和表2,與對(duì)照組相比,塵螨抗原浸出物組16HBE在24、48、72 h細(xì)胞活力顯著降低,細(xì)胞凋亡率顯著升高,炎癥因子TNF-α和TSLP的表達(dá)顯著升高(P<0.001)。
2.2 PCGEM1在塵螨抗原浸出物刺激的16HBE中的表達(dá) 與對(duì)照組(1.01±0.10)相比,塵螨抗原浸出物組(0.24±0.02)16HBE細(xì)胞PCGEM1的表達(dá)水平顯著降低(t=22.651,P<0.001)。
圖1 塵螨抗原浸出物作用于16HBE對(duì)細(xì)胞凋亡的影響Fig.1 Effect of dust mite antigen extract on 16HBE on apoptosis
2.3 抑制PCGEM1對(duì)塵螨抗原浸出物作用于16HBE增殖的影響 與si-NC組相比,si-PCGEM1組16HBE中的PCGEM1表達(dá)顯著降低,Cyclin D1表達(dá)水平顯著降低,P21的表達(dá)水平顯著升高,細(xì)胞在24、48、72 h細(xì)胞活力顯著降低(P<0.001,圖2)。
2.4 抑制PCGEM1對(duì)塵螨抗原浸出物作用于16HBE中凋亡及炎癥因子表達(dá)的影響 與si-NC組相比,si-PCGEM1組16HBE中Bax蛋白表達(dá)水平顯著升高,Bcl-2蛋白表達(dá)水平顯著降低,細(xì)胞凋亡率顯著升高,細(xì)胞上清液中TNF-α和TSLP表達(dá)顯著升高(P<0.001)。見(jiàn)圖3、表3。
表2 塵螨抗原浸出物作用于16HBE對(duì)細(xì)胞炎癥因子表達(dá)的影響(±s,n=9)Tab.2 Effect of dust mite antigen extract on expression of cytokines in 16HBE(±s,n=9)
表2 塵螨抗原浸出物作用于16HBE對(duì)細(xì)胞炎癥因子表達(dá)的影響(±s,n=9)Tab.2 Effect of dust mite antigen extract on expression of cytokines in 16HBE(±s,n=9)
Note:Compared with control group,1)P<0.001.
GroupsTNF-α(pg/ml)TSLP(pg/ml)Control45.672±3.59427.182±2.685 Dust miteantigen extract144.582±12.5921)112.275±10.2721)t 22.66024.044 P 0.0000.000
圖2 抑制PCGEM 1對(duì)塵螨抗原浸出物作用于16HBE增殖蛋白表達(dá)的影響Fig.2 Effect of PCGEM 1 inhibition on expression of 16HBE proliferative protein by dust mite antigen extract
表1 塵螨抗原浸出物作用于16HBE對(duì)細(xì)胞增殖、凋亡的影響(±s,n=9)Tab.1 Effect of dust mite antigen extract on 16HBE on cell proliferation and apoptosis(±s,n=9)
表1 塵螨抗原浸出物作用于16HBE對(duì)細(xì)胞增殖、凋亡的影響(±s,n=9)Tab.1 Effect of dust mite antigen extract on 16HBE on cell proliferation and apoptosis(±s,n=9)
Note:Compared with control group,1)P<0.001.
Cell activity(490 nm)Apoptosis Groupsrate(%)24 h48 h72 h Control0.62±0.060.95±0.091.38±0.148.01±0.84 Dust mite antigen extract0.34±0.031)0.44±0.041)0.59±0.061)28.82±2.931)t 12.52215.53515.56020.482 P 0.0000.0000.0000.000
表3 抑制PCGEM 1對(duì)塵螨抗原浸出物作用的16HBE凋亡及炎癥因子表達(dá)的影響(±s,n=9)Tab.3 Effect of inhibition of PCGEM 1 on apoptosis of 16HBE and expression of inflammatory factors in dust mite antigen extract(±s,n=9)
表3 抑制PCGEM 1對(duì)塵螨抗原浸出物作用的16HBE凋亡及炎癥因子表達(dá)的影響(±s,n=9)Tab.3 Effect of inhibition of PCGEM 1 on apoptosis of 16HBE and expression of inflammatory factors in dust mite antigen extract(±s,n=9)
Note:Compared with si-NCgroup,1)P<0.001.
GroupsTNF-α(pg/ml)TSLP(pg/ml)BaxBcl-2Apoptosisrate(%)si-NC140.286±13.591113.511±11.2510.42±0.040.71±0.0728.11±2.82 si-PCGEM1178.110±16.2241)139.160±12.4281)0.71±0.071)0.35±0.031)34.12±3.511)t 5.3614.59010.79114.1814.004 P 0.0000.0000.0000.0000.000
表4 過(guò)表達(dá)PCGEM1對(duì)塵螨抗原浸出物作用的16HBE凋亡及炎癥因子表達(dá)的影響(±s,n=9)Tab.4 Effects of overexpressing PCGEM 1 on apoptosis of 16HBE and expression of inflammatory factors by dust mite an?tigen extract(±s,n=9)
表4 過(guò)表達(dá)PCGEM1對(duì)塵螨抗原浸出物作用的16HBE凋亡及炎癥因子表達(dá)的影響(±s,n=9)Tab.4 Effects of overexpressing PCGEM 1 on apoptosis of 16HBE and expression of inflammatory factors by dust mite an?tigen extract(±s,n=9)
Note:Compared with pcDNA3.1 group,1)P<0.001.
GroupsTNF-α(pg/ml)TSLP(pg/ml)BaxBcl-2Apoptosis rate(%)pcDNA3.1142.275±13.599113.046±12.0460.43±0.040.74±0.0728.43±2.85 pcDNA3.1-PCGEM159.671±6.1241)36.511±3.6141)0.09±0.011)1.07±0.111)12.24±1.321)t 16.61618.25724.7397.59316.759 P 0.0000.0000.0000.0000.000
圖3 抑制PCGEM 1對(duì)塵螨抗原浸出物作用于16HBE凋亡及凋亡蛋白表達(dá)的影響Fig.3 Effect of PCGEM 1 inhibition on apoptosis and apoptosis protein expression of 16HBE by dust mite antigen extract
2.5 過(guò)表達(dá)PCGEM1對(duì)塵螨抗原浸出物作用于16HBE增殖的影響 與pcDNA3.1組相比,pcD‐NA3.1-PCGEM1組16HBE中的PCGEM1表達(dá)顯著升高,Cyclin D1表達(dá)水平顯著升高,P21表達(dá)水平顯著降低,細(xì)胞在24、48、72 h細(xì)胞活力顯著升高(P<0.001,圖4)。
2.6 過(guò)表達(dá)PCGEM1對(duì)塵螨抗原浸出物作用的16HBE凋亡及炎癥因子表達(dá)的影響 與pcDNA3.1組相比,pcDNA3.1-PCGEM1組16HBE中Bax蛋白表達(dá)水平顯著降低,Bcl-2蛋白表達(dá)水平顯著升高,細(xì)胞凋亡率顯著降低,細(xì)胞上清液中TNF-α和TSLP表達(dá)顯著降低,(P<0.001,圖5、表4)。
圖4 過(guò)表達(dá)PCGEM 1對(duì)塵螨抗原浸出物作用的16HBE增殖蛋白表達(dá)的影響Fig.4 Effect of overexpressing PCGEM 1 on expression of 16HBE proliferative protein in role of dust mite an?tigen extract
圖5 過(guò)表達(dá)PCGEM1對(duì)塵螨抗原浸出物作用的16HBE凋亡及凋亡蛋白表達(dá)的影響Fig.5 Effects of overexpressing PCGEM 1 on apoptosis and expression of apoptotic proteins in 16HBE in?duced by dust mite antigen extract
lncRNA是一類長(zhǎng)度超過(guò)200個(gè)核苷酸的蛋白質(zhì)編碼能力有限的RNA,其可在轉(zhuǎn)錄、轉(zhuǎn)錄后和表觀遺傳學(xué)調(diào)節(jié)等多個(gè)水平調(diào)控生物過(guò)程。近年來(lái),lncRNA在哮喘患者中的作用被逐漸揭示。例如,哮喘大鼠模型生長(zhǎng)抑制特異性轉(zhuǎn)錄本5(growth arrestspecific 5,GAS5)的表達(dá)上調(diào),GAS5通過(guò)miR-10a促進(jìn)氣道平滑肌細(xì)胞增殖,敲除GAS5可顯著降低哮喘大鼠的氣道高反應(yīng)性[8];靶向人漿細(xì)胞瘤轉(zhuǎn)化遷移 基 因1(plasmacytoma variant translocation 1,PVT1)可控制重癥哮喘患者氣道平滑肌細(xì)胞增殖和炎癥因子釋放,有效減少氣道重塑,對(duì)哮喘患者具有積極意義[9];外周血Treg和Th17細(xì)胞失衡的程度與哮喘癥狀的嚴(yán)重程度呈正相關(guān),母系表達(dá)基因3(maternally expressed gene 3,MEG3)通過(guò)調(diào)控哮喘患者Treg/Th17平衡進(jìn)而緩解哮喘癥狀[10]。PC‐GEM1最早發(fā)現(xiàn)于前列腺癌,其在前列腺癌中表達(dá)上調(diào),抑制PCGEM1可抑制腫瘤細(xì)胞的增殖、遷移和侵襲,并誘導(dǎo)早期凋亡[11]。此外,PCGEM1在卵巢癌和子宮內(nèi)膜癌中也發(fā)揮癌基因作用,參與腫瘤的發(fā)生發(fā)展[12-13]。但PCGEM1在支氣管哮喘中的作用并未闡明。
本研究以過(guò)敏原刺激支氣管上皮細(xì)胞,探討PCGEM1對(duì)支氣管上皮細(xì)胞增殖、凋亡及炎癥反應(yīng)的影響。氣道上皮細(xì)胞是抵抗病原體的天然屏障,當(dāng)其受到病原體或過(guò)敏原刺激后,支氣管上皮細(xì)胞產(chǎn)生TSLP等炎癥細(xì)胞因子,TSLP通過(guò)與其受體相互作用,激活局部樹突細(xì)胞,促進(jìn)Th2免疫應(yīng)答炎癥反應(yīng),進(jìn)一步誘導(dǎo)支氣管上皮細(xì)胞凋亡,破壞上皮屏障的完整性[14-15]。TNF-α是支氣管哮喘研究中重要的檢測(cè)指標(biāo),正常情況下可參與抗組織感染和炎癥反應(yīng),但TNF-α的過(guò)度產(chǎn)生則促進(jìn)炎癥細(xì)胞聚集,加劇氣管炎癥反應(yīng)[16]。本研究顯示,塵螨抗原浸出物刺激后支氣管上皮細(xì)胞活力顯著降低,細(xì)胞凋亡率顯著升高,炎癥因子TNF-α和TSLP表達(dá)顯著升高,PCGEM1表達(dá)水平顯著降低。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn)抑制PCGEM1可促進(jìn)TNF-α和TSLP分泌,促進(jìn)P21和Bax蛋白表達(dá),抑制Cyclin D1和Bcl-2蛋白表達(dá),加劇塵螨抗原浸出物刺激對(duì)支氣管上皮細(xì)胞的增殖抑制和凋亡促進(jìn)作用;而過(guò)表達(dá)PCGEM1則逆轉(zhuǎn)塵螨抗原浸出物刺激對(duì)支氣管上皮細(xì)胞的增殖、凋亡及TNF-α和TSLP分泌的影響。提示PCGEM1在支氣管哮喘進(jìn)展中具有重要作用。然而,lncRNA調(diào)控通路復(fù)雜,PCGEM1下游是否存在miRNA/mRNA調(diào)控網(wǎng)絡(luò)是下一步研究重點(diǎn)[3]。
綜上所述,塵螨抗原浸出物刺激后支氣管上皮細(xì)胞中PCGEM1表達(dá)水平顯著下調(diào),過(guò)表達(dá)PC‐GEM1可促進(jìn)哮喘過(guò)敏原刺激條件下支氣管上皮細(xì)胞增殖,減少細(xì)胞凋亡,減輕炎癥,上調(diào)PCGEM1有望成為支氣管哮喘治療的新途徑。