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    植物源香芹酮對青薯9號原種的貯藏效果評價

    2021-05-27 00:47:50李守強(qiáng)田甲春程建新田世龍
    保鮮與加工 2021年5期
    關(guān)鍵詞:青薯香芹芽長

    葛 霞,李守強(qiáng),田甲春,李 梅,程建新,田世龍

    (甘肅省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品貯藏加工研究所,甘肅 蘭州 730070)

    馬鈴薯是世界四大糧食作物之一,也是重要的工業(yè)原料和飼料作物,對世界糧食安全和扶貧等方面具有非常重要的意義。我國馬鈴薯產(chǎn)量位居世界第一,但其生產(chǎn)主要還是以家庭農(nóng)戶為單位進(jìn)行小規(guī)模操作運(yùn)行,由于缺乏科學(xué)有效的貯藏方法和技術(shù),導(dǎo)致我國每年至少有15%~30%的馬鈴薯在貯藏期間因發(fā)芽加快馬鈴薯生理老化、失水、腐爛而造成品質(zhì)劣變,經(jīng)濟(jì)損失巨大。特別是種薯如貯存在通風(fēng)不良、不能控溫的自然通風(fēng)窖中,過早打破休眠導(dǎo)致馬鈴薯產(chǎn)量下降[1]。氯苯胺靈(CIPC)是目前國內(nèi)外最常用的商品薯抑芽劑[2],因其抑芽作用不可逆,不能用于種薯的抑芽。一些植物精油對馬鈴薯具有抑制或誘導(dǎo)發(fā)芽的特性,Shukla等[3]研究發(fā)現(xiàn),玫瑰草和阿育魏實精油可抑制馬鈴薯發(fā)芽,檸檬草和丁香精油可誘導(dǎo)馬鈴薯發(fā)芽。Teper-bamnolker等[4]研究發(fā)現(xiàn),低濃度的薄荷精油可促進(jìn)馬鈴薯發(fā)芽,而高濃度的薄荷精油則抑制馬鈴薯發(fā)芽。S-(+)-香芹酮是從植物葛縷子草(Carum carvi L.)的種子精油中提取出的一種具有揮發(fā)性的單萜類化合物,因其對馬鈴薯中的3-羥甲基戊二酰輔酶A還原酶具有可逆抑制作用,因此香芹酮可作為一種種薯抑芽劑使用[5-6],但將其作為馬鈴薯種薯抑芽劑方面的研究尚少。本試驗采用香芹酮處理種薯,總劑量為0.6 mL/kg,每6周處理一次,每次處理劑量0.2 mL/kg,在種植前停藥6周,對青薯9號原種進(jìn)行貯藏保鮮試驗,通過考察香芹酮對種薯貯藏期間失重、發(fā)芽、腐爛等情況以及生理和田間種植指標(biāo)的影響,對香芹酮在種薯上的貯藏效果進(jìn)行評價,以期為馬鈴薯種薯貯藏保鮮新技術(shù)的開發(fā)提供理論依據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 材料與設(shè)備

    1.1.1 材料與試劑

    供試馬鈴薯材料為青薯9號原種,由甘肅一航薯業(yè)科技發(fā)展有限責(zé)任公司提供;S-(+)-香芹酮(含量≥98%),武漢大華偉業(yè)醫(yī)藥化工有限公司生產(chǎn);脫落酸(ABA)、赤霉素(GA3)和吲哚乙酸(IAA)標(biāo)樣,美國Sigma公司生產(chǎn);甲醇、乙腈和乙酸,天津光復(fù)化學(xué)試劑公司生產(chǎn);液相色譜測試用水為超純水,其余使用二次蒸餾水。

    1.1.2 儀器與設(shè)備

    L-1200高效液相色譜儀,配備Agilent G1356D MWD紫外檢測器,美國Agilent公司;Cary-100紫外-可見分光光度計,美國Agilent公司;電子數(shù)顯卡尺,上海恒量量具有限公司。

    1.2 方法

    1.2.1 貯藏處理

    青薯9號原種采收后運(yùn)至馬鈴薯恒溫貯藏庫,挑除腐爛、帶病蟲害的塊莖,在溫度18~20℃、相對濕度85%~95%的環(huán)境下愈合2周。種薯木栓化完全后,根據(jù)不同的試驗處理進(jìn)行分組貯藏。

    香芹酮處理總劑量為0.6 mL/kg,每6周處理一次,即分別在貯藏0周、6周、12周進(jìn)行香芹酮藥劑處理,每次處理劑量為0.2 mL/kg。試驗處理在尺寸1.8 m×1.0 m×1.0 m的木箱中進(jìn)行,木箱底部配備內(nèi)循環(huán)風(fēng)機(jī),木箱外使用塑料布包裹,以達(dá)到試驗密閉處理的效果。依據(jù)農(nóng)業(yè)行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)NY/T 2789—2015《薯類貯藏技術(shù)規(guī)范》[7]適宜貯藏量的推薦要求,貯藏木箱內(nèi)散裝入750 kg挑揀好的種薯,薯堆上方使用托盤并鋪好濾紙,每次在濾紙上加入香芹酮150 mL,之后扎緊塑料布,打開箱底部內(nèi)循環(huán)風(fēng)機(jī)作業(yè)24 h,密閉7 d后打開塑料布對種薯進(jìn)行通風(fēng)0.5 h,再扎緊塑料布,打開箱底部內(nèi)循環(huán)風(fēng)機(jī)0.5 h。每周對薯堆進(jìn)行1~2次通風(fēng),以保證種薯足夠的氧氣交換。同時以不做任何藥劑處理為對照(CK),每個處理3組重復(fù)。

    CK和香芹酮處理的貯藏箱分開放置,貯藏溫度為(10±1)℃。貯藏18周后,將種薯裝于網(wǎng)袋中置于通風(fēng)干燥處充分散除藥劑,繼續(xù)貯藏至24周后進(jìn)行田間種植。

    1.2.2 貯藏指標(biāo)和生理指標(biāo)的測定

    分別在貯藏0、6、12、18、24周考察種薯失重率、發(fā)芽率和平均芽長,在貯藏末期24周考察貯藏腐爛率;分別在貯藏0、18、24周考察種薯中內(nèi)源激素IAA、GA3、ABA的含量;在貯藏24周統(tǒng)計種薯腐爛率并考察種薯中超氧化物歧化酶(SOD)、過氧化氫酶(CAT)、丙二醛(MDA)和脯氨酸(Pro)的含量。

    1.2.3 田間種植試驗

    分別在定西市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院試驗基地和天水市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究所中梁試驗站進(jìn)行田間種植試驗。試驗采用露地平播方式,隨機(jī)區(qū)組設(shè)計,每個處理重復(fù)種植3個小區(qū),每個小區(qū)按5行20株種植,重復(fù)間設(shè)走道1.0 m。小區(qū)長6.67 m,寬3 m,面積20 m2。馬鈴薯株距0.33 m,行距0.6 m,播種密度3 333株/667 m2。分別考察香芹酮對種薯田間種植后的物候期、田間性狀(出苗率、株高和主莖數(shù))、產(chǎn)量、商品薯率以及收獲后馬鈴薯品質(zhì)(干物質(zhì)、還原糖、粗淀粉、VC、粗蛋白)的影響。

    1.2.4 測定項目與方法

    1.2.4.1 失重率

    每組處理固定30個種薯裝入網(wǎng)袋中進(jìn)行定期稱重。分別測定網(wǎng)袋中種薯的初始質(zhì)量(m1)與貯藏一段時間后的質(zhì)量(m2)。

    1.2.4.2 發(fā)芽率

    每組隨機(jī)取30個種薯進(jìn)行測定。貯藏期間種薯塊莖芽長大于2 mm時判定為發(fā)芽,發(fā)芽率為發(fā)芽塊莖數(shù)占塊莖總數(shù)的百分比[8]。

    1.2.4.3 平均芽長

    每組隨機(jī)取30個種薯進(jìn)行測定。使用游標(biāo)卡尺測量每個種薯頂芽的長度,測量后取其平均值。

    1.2.4.4 腐爛率

    按腐爛種薯的質(zhì)量占統(tǒng)計種薯總質(zhì)量的百分?jǐn)?shù)計算。

    1.2.4.5 內(nèi)源激素的提取與測定

    參照程建新等[9]的測定方法并稍微修改。每組隨機(jī)取種薯20個,使用打孔器取以種薯芽眼為中心,取直徑1 cm、長1 cm的塊莖樣品。稱取約0.1 g上述樣品放入研缽中加液氮磨碎,加入1.0 mL甲醇-水-冰醋酸(80∶20∶1,V/V/V)混合溶液,4℃浸提過夜。8 500 r/min離心10 min,離心后取出上清液,氮吹將有機(jī)溶劑去除。用0.1 mol/L檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖溶液調(diào)pH至2~3,用乙酸乙酯萃取3次,合并乙酸乙酯相,氮吹至干。最后用甲醇定容至0.5 mL,使用針頭式過濾器(0.22μm)過濾于帶有內(nèi)襯管的樣品瓶內(nèi)待測。ABA、IAA、GA3的含量采用高效液相色譜法(HPLC)進(jìn)行測定。色譜柱為Kromasil C18反相色譜柱(250 mm×4.6 mm,5μm),流動相為甲醇∶乙酸水溶液(1.0%)=40∶60(V/V),測試條件為:紫外檢測器,波長254 nm,流速0.8 mL/min,柱溫35℃,走樣時間40 min。

    1.2.4.6 生理指標(biāo)

    每組隨機(jī)取種薯20個,取種薯整薯樣品。SOD活性:采用核黃素-NBT光化還原法[10]進(jìn)行測定;CAT活性:采用H2O2紫外吸收法[11]進(jìn)行測定;MDA含量:采用硫代巴比妥酸法[12]進(jìn)行測定;Pro含量:采用磺酸性茚三酮法[13]進(jìn)行測定。

    1.2.4.7 田間調(diào)查指標(biāo)和馬鈴薯采后品質(zhì)

    參照文獻(xiàn)[14]中的方法進(jìn)行測定。

    1.2.5 數(shù)據(jù)處理

    數(shù)據(jù)采用Microsoft Excel 2007軟件進(jìn)行分析與作圖,并計算標(biāo)準(zhǔn)誤差。采用SPSS Statistics 19.0軟件進(jìn)行差異顯著性分析。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 香芹酮對青薯9號原種失重率的影響

    圖1為不同處理青薯9號原種失重率的變化,種薯失重率隨貯藏時間的延長而上升。種薯貯藏過程中造成質(zhì)量損失的主要原因是因塊莖的發(fā)芽而造成的,此外還有水分散發(fā)、呼吸及其他生理代謝進(jìn)程而引起的質(zhì)量損失。在整個貯藏期間,CK失重率顯著高于香芹酮處理(P<0.05)。貯藏0~18周,香芹酮處理失重率曲線緩慢上升,說明香芹酮處理期間種薯質(zhì)量損失緩慢,貯藏18周進(jìn)行停藥處理后,香芹酮處理失重率曲線變陡。24周貯藏期結(jié)束時,CK失重率為11.59%,香芹酮處理失重率為5.75%,說明香芹酮處理可延緩貯藏期間種薯的質(zhì)量損失。

    圖1 香芹酮處理對青薯9號原種失重率的影響Fig.1 Effects of carvone treatments on weight loss rates of‘Qingshu 9’seed potatoes

    2.2 香芹酮對青薯9號原種的發(fā)芽調(diào)控

    貯藏期間不同處理種薯發(fā)芽率和平均芽長變化見圖2,根據(jù)種薯發(fā)芽情況統(tǒng)計結(jié)果,CK貯藏6周后平均芽長達(dá)4.08 mm,發(fā)芽率為60.0%,說明此時CK種薯休眠被打破而呈萌芽狀態(tài),而此時香芹酮處理的種薯未見發(fā)芽;貯藏到18周時,CK和香芹酮處理芽長分別為33.59 mm和1.18 mm,發(fā)芽率分別為100%和3.33%,說明香芹酮處理可顯著抑制貯藏期間種薯的發(fā)芽(P<0.05),延長種薯的休眠期,這可能是因為香芹酮的分子結(jié)構(gòu)決定了它親脂性的生物活性,可損傷芽組織的細(xì)胞膜,使芽尖變黑,從而抑制種薯發(fā)芽(圖3右上);貯藏18周進(jìn)行停藥處理后,香芹酮處理的種薯逐漸開始發(fā)芽,貯藏24周時,CK、香芹酮處理的芽長分別為85.83 mm、4.98 mm,發(fā)芽率均達(dá)100%,說明進(jìn)行停藥處理6周后香芹酮不影響種薯薯芽的再次萌出,香芹酮對塊莖發(fā)芽具有可逆性抑制,且芽長可達(dá)到適宜種薯種植時的理想芽長(5 mm左右),這種香芹酮的處理方式可對種薯具有很好的發(fā)芽調(diào)控作用。

    圖2 香芹酮處理對青薯9號原種發(fā)芽率(A)和平均芽長(B)的影響Fig.2 Effects of carvone treatments on germination rates(A)and average sprout lengths(B)of‘Qingshu 9’seed potatoes

    圖3 香芹酮處理對青薯9號原種的發(fā)芽調(diào)控效果Fig.3 Effects of carvone treatments on sprouting regulations of‘Qingshu 9’seed potatoes

    2.3 香芹酮對青薯9號原種腐爛率的影響

    貯藏24周統(tǒng)計了各處理種薯的腐爛率(圖4),結(jié)果表明CK腐爛率高達(dá)42.23%,而香芹酮處理的種薯腐爛率為6.84%,顯著低于CK(P<0.05),說明香芹酮處理可在一定程度上抑制種薯腐爛,減少貯藏?fù)p失,這可能是因為香芹酮對種薯一些貯藏病害病原有抑制作用[15]。

    2.4 香芹酮對青薯9號原種IAA、GA3、ABA水平的影響

    圖4 香芹酮處理對青薯9號原種腐爛率的影響Fig.4 Effects of carvone treatments on rotting rates of‘Qingshu 9’seed potatoes

    塊莖的休眠發(fā)芽是由內(nèi)源激素促進(jìn)和抑制作用共同調(diào)控完成的,可通過使用外源物質(zhì)改變或調(diào)節(jié)特定內(nèi)源激素水平與平衡來調(diào)節(jié)塊莖的休眠[16]。ABA是最早發(fā)現(xiàn)可以誘導(dǎo)和維持馬鈴薯塊莖休眠的激素[17],其含量在塊莖處于深度休眠狀態(tài)較高,隨著塊莖休眠解除大幅下降。圖5A為不同處理對種薯ABA含量的影響,可以看出CK和香芹酮處理的ABA含量均呈整體降低的趨勢,在貯藏0~18周時香芹酮處理的種薯ABA下降比CK緩慢,貯藏18周時CK和香芹酮處理的ABA含量分別為1.99、2.30μg/g,說明香芹酮處理可延緩種薯ABA水平的降低。

    圖5 香芹酮處理對青薯9號原種ABA(A)、GA3(B)、IAA(C)含量的影響Fig.5 Effects of carvone treatments on ABA(A),GA3(B)and IAA(C)contents of‘Qingshu 9’seed potatoes

    GA3對于打破馬鈴薯休眠,促進(jìn)馬鈴薯萌發(fā)具有重要作用[18],內(nèi)源GA3在塊莖休眠期間含量很低,在頂芽快要萌發(fā)的時候其含量較高。圖5B為不同處理對種薯GA3含量的影響,從圖中CK的GA3曲線可以看出,CK在貯藏初期GA3含量最高,隨著貯藏時間的延長其含量逐漸降低,可能是因為CK在貯藏初期種薯薯芽就有萌發(fā)的趨勢,而香芹酮處理的GA3曲線呈先升高后降低的趨勢,這可能是因為香芹酮處理18周進(jìn)行停藥處理后,隨著種薯中香芹酮含量的降低薯芽逐漸萌發(fā),GA3含量及萌芽達(dá)到最大,說明香芹酮推遲了GA3峰值出現(xiàn)的時間,延長了種薯的休眠期。

    IAA對打破休眠后塊莖芽的生長有調(diào)控作用[19],隨著休眠打破,種薯逐漸發(fā)芽,IAA水平也將提高。從圖5C可以看出,隨著貯藏時間的延長,CK處理種薯IAA含量逐漸增加,而經(jīng)香芹酮處理的種薯IAA含量則呈先降低后增加的趨勢,即停藥前降低,停藥后增加,說明香芹酮在施藥期間抑制了種薯發(fā)芽,延長了種薯休眠期,其IAA水平較低;而18周停藥后到24周香芹酮處理種薯的IAA含量又升高,休眠打破,薯芽萌發(fā),證實了香芹酮對種薯抑芽的可逆性與發(fā)芽的可調(diào)控性。

    2.5 香芹酮對青薯9號原種SOD、CAT、MDA和Pro的影響

    SOD在植物抗氧化系統(tǒng)中起著關(guān)鍵的作用,它在植物體內(nèi)能夠調(diào)節(jié)細(xì)胞中超氧化物陰離子自由基O2·和H2O2的濃度,以防止對細(xì)胞膜系統(tǒng)造成傷害[20]。CAT是催化H2O2分解成氧和水的酶,存在于細(xì)胞的過氧化物體內(nèi),作為細(xì)胞中的抗氧化防御酶,在植物受外界環(huán)境脅迫時,可以清除由于植物體內(nèi)活性氧代謝加強(qiáng)而產(chǎn)生的H2O2,CAT受到H2O2誘導(dǎo),終止進(jìn)一步生物自由基連鎖反應(yīng),是植物重要的酶促防御系統(tǒng)之一,此外在馬鈴薯萌芽、發(fā)芽時,塊莖中CAT活性明顯降低,H2O2含量明顯增加[21]。由表1可見,貯藏24周時,香芹酮處理的SOD和CAT活性顯著高于CK,說明種薯經(jīng)香芹酮處理后SOD和CAT活性增加,延緩了種薯的生理老化,使得CAT清除H2O2能力較CK增強(qiáng)。MDA是植物衰老過程中膜脂過氧化最重要的產(chǎn)物之一,常被用來評價細(xì)胞膜系統(tǒng)受傷害的程度[22],其含量的增加是塊莖逐漸發(fā)生衰老的標(biāo)志。貯藏末期香芹酮處理種薯中的MDA含量為6.61 nmol/g FW,顯著低于CK(P<0.05),說明香芹酮通過延長種薯休眠、抑制種薯發(fā)芽,延緩了種薯的生理老化,降低了種薯中膜脂過氧化程度和MDA積累程度。Pro是植物體內(nèi)最重要和有效的滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)之一,當(dāng)植物受到脅迫時,細(xì)胞內(nèi)的Pro會增加以抵抗植物受到傷害。貯藏24周時,香芹酮處理的種薯Pro含量為240.91μg/g FW,顯著高于CK(P<0.05)。Coleman等[23]曾研究指出塊莖中Pro的含量與ABA水平呈正相關(guān),在塊莖發(fā)芽時,ABA水平降低,Pro含量也會降低。因此香芹酮誘導(dǎo)了Pro含量的增加,提高了塊莖中ABA的水平,延長了種薯的休眠期,延緩了塊莖的生理老化。

    表1 不同處理種薯的SOD、CAT活性及MDA、Pro含量(貯藏24周)Table 1 Antioxidant enzymes SOD,CAT activities and MDA,Pro contents of seed potatoes after different treatments

    2.6 香芹酮對青薯9號種薯田間種植的影響

    由表2可見,青薯9號原種在定西、天水兩地種植后,同一種植地點不同處理的出苗期、現(xiàn)蕾期、開花期和成熟期大體一致,用香芹酮處理種薯后,整個物候期沒有明顯差異。

    CK和香芹酮處理種薯種植后的田間性狀和產(chǎn)量指標(biāo)見表3。同一種植地點,CK和香芹酮處理的種薯田間出苗率、主莖數(shù)沒有顯著差異;定西大田試驗香芹酮處理的株高為83.30 cm,顯著高于CK(P<0.05);天水大田試驗CK的單株薯數(shù)顯著多于香芹酮處理(P<0.05),而單株薯質(zhì)量顯著低于香芹酮處理(P<0.05);天水香芹酮處理的商品薯率最高,為79.83%;定西、天水兩地香芹酮處理的產(chǎn)量分別比CK高7.63%、9.46%,但與CK相比均未達(dá)到顯著性差異。

    表4為不同處理對采后馬鈴薯營養(yǎng)品質(zhì)的影響,可以看出香芹酮處理采后馬鈴薯的干物質(zhì)、粗蛋白、粗淀粉、VC和還原糖與CK相比沒有顯著性差異。綜上,香芹酮在貯藏期間對種薯進(jìn)行抑芽保鮮處理后,對種薯后期的田間種植無不良影響。

    表2 不同處理種薯種植后的田間物候期Table 2 Phenological stages of potatoes under different treatments after planting

    表3 不同處理種薯種植后的田間性狀及產(chǎn)量指標(biāo)Table 3 Field traits and yields of potatoes under different treatments after planting

    表4 不同處理對采后馬鈴薯營養(yǎng)品質(zhì)的影響Table 4 Effects of different treatments on nutritional qualities of post-harvest potatoes

    3 結(jié)論

    種薯貯藏不同于商品薯貯藏,由于希望其在貯藏期間既能減少因發(fā)芽而造成的貯藏?fù)p失,又不影響其后期的馬鈴薯生產(chǎn)種植,因此不能使用抑芽作用不可逆的馬鈴薯抑芽劑。本研究采用香芹酮總劑量為0.6 mL/kg,每6周處理1次,每次處理劑量0.2 mL/kg,在種植前停藥6周的處理方式,對馬鈴薯原種的大量貯藏具有較好的保鮮效果。研究表明,通過香芹酮的施藥與停藥來調(diào)控種薯中內(nèi)源激素ABA、GA3和IAA水平,在香芹酮作用于種薯期間阻礙了IAA、GA3的合成,促進(jìn)ABA的合成,從而顯著抑制種薯發(fā)芽,延長種薯的休眠期;進(jìn)行停藥處理后,將香芹酮作用移除后,IAA、GA3合成不再受抑制而增加,ABA水平降低,休眠被解除,薯芽被激發(fā)而萌發(fā)至適宜種植芽長,并且對田間性狀、產(chǎn)量和采后馬鈴薯品質(zhì)無不良影響;此外,與對照相比,香芹酮處理降低了貯藏過程中種薯的失重率和腐爛率,使種薯中SOD、CAT保持較高活性,降低了種薯中MDA的積累和膜脂過氧化程度,延緩了種薯的生理老化,并誘導(dǎo)Pro含量的增加,提高種薯中ABA水平,使種薯休眠期延長。因此,香芹酮可作為一種馬鈴薯種薯貯藏發(fā)芽調(diào)控劑,以解決我國馬鈴薯種薯貯藏過程中因設(shè)施簡陋、貯藏保鮮技術(shù)不足而導(dǎo)致的發(fā)芽問題,減少貯藏?fù)p失,在種薯貯藏保鮮方面具有較好的潛在應(yīng)用價值。

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