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    趨化因子誘導(dǎo)的T細(xì)胞對(duì)結(jié)直腸癌微環(huán)境的影響①

    2021-05-25 10:25:16唐言華劉繼武貴陽市第一人民醫(yī)院胃腸外科貴陽550002
    中國免疫學(xué)雜志 2021年9期
    關(guān)鍵詞:趨化因子亞群細(xì)胞因子

    徐 輝 唐言華 劉繼武 王 亮(貴陽市第一人民醫(yī)院胃腸外科,貴陽550002)

    結(jié)直腸癌(colorectal cancer,CRC)是胃腸道常見惡性腫瘤,隨人口老齡化及生活飲食習(xí)慣改變,其發(fā)病率與死亡率呈上升趨勢[1]。醫(yī)療技術(shù)進(jìn)步使化療及靶向治療廣泛應(yīng)用于CRC治療,但患者5年生存率僅為49%左右,研究認(rèn)為與其侵襲及轉(zhuǎn)移無法被有效抑制相關(guān)[2-3]。近期研究報(bào)道,控制CRC侵襲與轉(zhuǎn)移需抑癌基因、癌基因及其基因產(chǎn)物等基因調(diào)控及免疫細(xì)胞、細(xì)胞因子等應(yīng)答細(xì)胞亞群參與[4]。CRC大鼠體內(nèi)研究發(fā)現(xiàn),獲得性免疫細(xì)胞CD4+T細(xì)胞、CD8+T細(xì)胞、T輔助細(xì)胞1(Thelper cell 1,Th1)、Foxp3+調(diào)節(jié)性T細(xì)胞(regulatory T cells,Tregs)在CRC大鼠癌組織中呈高表達(dá),且與腸道細(xì)胞損傷密切相關(guān)[5]。臨床研究指出,CRC患者腫瘤組織中可檢測到各種應(yīng)答細(xì)胞亞群及趨化因子CXCL12、CCL20-CCR6、CX3CLI-CX3CR1和CX3CL1,提示趨化因子與應(yīng)答細(xì)胞亞群進(jìn)入癌組織相關(guān)[6]。進(jìn)一步探討CRC形成機(jī)制發(fā)現(xiàn),腸道共生細(xì)菌可刺激免疫細(xì)胞浸潤腸道固有層釋放促炎細(xì)胞因子形成應(yīng)答細(xì)胞亞群,對(duì)腫瘤細(xì)胞生長起抑制作用,但其與趨化因子的關(guān)系尚未闡明。因此,本研究探討CRC組織中應(yīng)答細(xì)胞亞群、趨化因子與腸道微環(huán)境間的關(guān)系,構(gòu)建微環(huán)境觸發(fā)的CRC細(xì)胞系以明確腸道微生物群過表達(dá)對(duì)趨化因子及對(duì)CRC細(xì)胞免疫應(yīng)答行為的影響。

    1 資料與方法

    1.1 資料

    1.1.1 研究對(duì)象 收集2017年1月至2019年1月我院收治的41例CRC患者的癌組織及癌旁正常組織,男性28例,女性13例,年齡40~79歲,平均年齡(66.14±10.67)歲;高分化6例,中分化27例,低分化8例;Dukes分期A/B期29例,C/D期12例;無淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移28例,有淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移13例。入選標(biāo)準(zhǔn):①符合《結(jié)直腸癌診療規(guī)范(2010年版)》診斷標(biāo)準(zhǔn)[7];②未接受放化療治療;③病例資料齊全;④入院前無重大出血病史;⑤肝、腎、心功能正常。排除標(biāo)準(zhǔn):①合并其他惡性腫瘤;②治療耐受性差;③術(shù)前接受生物學(xué)治療或內(nèi)分泌治療;④患者對(duì)本研究有異議;⑤近期使用過免疫調(diào)節(jié)劑或激素類藥物。本研究經(jīng)醫(yī)學(xué)倫理會(huì)批準(zhǔn),所有患者及家屬知情同意。

    1.1.2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 雄性SPF級(jí)NSG小鼠24只,體重15.32~19.67 g,6~8周齡,購自北京醫(yī)療器械檢驗(yàn)所,許可證號(hào):SCXK(青)2018-0031。動(dòng)物使用和處理符合《國家衛(wèi)生研究院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物保護(hù)法和使用指導(dǎo)》要求,經(jīng)過醫(yī)學(xué)動(dòng)物倫理委員會(huì)批準(zhǔn),審批號(hào):20180209,于醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物研究中心[SYXK(青)2018-0411]完成實(shí)驗(yàn),室溫18~22℃、濕度45%~50%、12 h明/12 h暗交替,自由攝食攝水。

    1.1.3 主要試劑 總RNA提取試劑盒(上海碩嘉生物);DNA提取試劑盒(邁瑞生物);反轉(zhuǎn)錄試劑盒(北京中生柏奧生物);miRNA-21引物(蘇州吉瑪基因);瓊脂糖(上??禎櫳铮?;PCR反應(yīng)液(北京索萊寶);DEPC水(四川康百瑞生物);Trizol溶液(北京百奧森泰生物);RT-PCR擴(kuò)增試劑盒(Sigma);Trizol裂解液(北京百奧森泰生物技術(shù)有限公司);氨芐青霉素鈉/氨芐西林鈉(先泰藥業(yè));鹽酸萬古霉素(浙江海正);BCA試劑盒(上海經(jīng)科化學(xué)科技有限公司);CXCL12、CCL20-CCR6、CX3CLI-CX3CR1、CX3CL1單克隆抗體一抗(北京百奧萊博科技有限公司):GAPDH單克隆抗體一抗(廈門研科);山羊抗兔二抗(武漢賽維爾生物);ECL發(fā)光試劑盒(上海古朵)。

    1.2 方法

    1.2.1 體內(nèi)實(shí)驗(yàn) NSG小鼠腹膜和腸內(nèi)注射LS180細(xì)胞生成腫瘤異種移植物構(gòu)建腸內(nèi)腫瘤模型;從第10天開始,將1 g/L氨芐青霉素鈉/氨芐西林鈉和0.2 g/L鹽酸萬古霉素溶于飲用水中給藥,第29天,將攜帶腫瘤小鼠采用CFSE標(biāo)記的CD4+和CD8+T細(xì)胞過繼轉(zhuǎn)移,從主要CRC樣品中分離并于體外擴(kuò)增(5×106個(gè)/只),2 d后采用流式細(xì)胞術(shù)在消化腫瘤的細(xì)胞懸浮液中評(píng)估轉(zhuǎn)移T細(xì)胞群頻率。

    1.2.2 RT-PCR 采用總RNA提取試劑盒提取CRC和癌旁正常組織中總RNA,RNA中基因組DNA消除并除去DNase1后,采用反轉(zhuǎn)錄試劑盒逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,以cDNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,擴(kuò)增體系為:SYBR Green Mix 10μl,上游引物5 mol,下游引物5 mol,cDNA模板1μl,ddH2O ddH2O 8μl,總體積20μl;反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性3 min,95℃變性5 s,56℃退火10 s,72℃延伸25 s,39次循環(huán)。擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳,凝膠成像系統(tǒng)掃描分析,測定各擴(kuò)增帶吸光度,以目的基因與β-actin吸光度比值計(jì)算CD4+、CD8+、Th1、Foxp3+表達(dá)。

    1.2.3 Western blot 取CRC和癌旁正常組織細(xì)胞,裂解,勻漿,離心,提取蛋白,BCA試劑盒進(jìn)行蛋白定量,取總蛋白上樣,電泳,切膠,濕轉(zhuǎn),TBS-T封閉,加入CXCL12、CCL20-CCR6、CX3CLI-CX3CR1、CX3CL1單克隆抗體一抗(1:300)、GAPDH單克隆抗體一抗(1:1 000),4℃孵育過夜,洗膜,加入山羊抗兔二抗,37℃孵育60 min,洗膜,ECL發(fā)光試劑盒顯色,洗片,顯影、定影,以GAPDH為內(nèi)參,成像掃描分析系統(tǒng)測定內(nèi)參和目的條帶灰度值。

    1.2.4 腸道菌群檢測 取濕重糞便樣品反復(fù)離心,去除雜質(zhì),洗滌獲取菌體,L棒均勻涂抹于不同培養(yǎng)基,采用細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒提取細(xì)菌總DNA,引物根據(jù)目標(biāo)細(xì)菌16SrRNA設(shè)計(jì);糞便細(xì)菌DNA樣品與標(biāo)準(zhǔn)品(1:10稀釋)同時(shí)進(jìn)行RT-PCR反應(yīng),每次反應(yīng)條件及反應(yīng)體系相同,反應(yīng)結(jié)束后采用溶解曲線分析PCR產(chǎn)物特異性,每g糞便樣品待測細(xì)菌基因的拷貝數(shù)采用標(biāo)準(zhǔn)曲線及Ct值,通過菌落形態(tài)、格蘭染色鏡檢、生化反應(yīng)等鑒定菌落數(shù)作為定量結(jié)果。

    1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS22.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,基因表達(dá)水平比較采用Wilcoxon符號(hào)秩檢驗(yàn);根據(jù)公式(Spearmanr值×對(duì)應(yīng)趨化因子受體陽性細(xì)胞百分比)計(jì)算T細(xì)胞標(biāo)志物顯著相關(guān)趨化因子得分;USEARCH軟件(V.8.1.1861)分析序列;DESeq2軟件(V.1.12.4)進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化豐度計(jì)數(shù)的操作分類單位差異分析;Microsynth AG進(jìn)行基因庫、測序和數(shù)據(jù)分析。P<0.05表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 T細(xì)胞群表達(dá)比較 本研究在62個(gè)CRC和相應(yīng)無腫瘤結(jié)腸組織中分析了編碼免疫細(xì)胞標(biāo)志物的基因表達(dá),包括總T細(xì)胞(CD3)、T輔助細(xì)胞(CD4)、細(xì)胞毒性T淋巴細(xì)胞(CTL)(CD8)、Th1(Tbet和IRF-1)、Th2(IL-4、IL-5和IL-13)、Th17(IL-17)、Tfh(CXCR5)及Tregs(Foxp3+),結(jié)果發(fā)現(xiàn)CD8+、Th1、Foxp3+T細(xì)胞標(biāo)志物均有表達(dá),IL-4、IL-5在所有樣品中均未檢測到表達(dá)(數(shù)據(jù)未顯示),其余僅在少數(shù)樣品中表達(dá),表明CRC中Th1、Th2、Tfh細(xì)胞的CRC浸潤微弱。CD4+、CD8+、Th1、Foxp3+在CRC組織中均有表達(dá);CRC組織中CD4+表達(dá)低于癌旁正常組織(P<0.05),CD8+、Th1、Foxp3+表達(dá)高于癌旁正常組織(P<0.05),見表1。

    2.2 趨化因子表達(dá)比較 CXCL12、CCL20-CCR6、CX3CLI-CX3CR1、CX3CL1在CRC組織中均有表達(dá);CRC組織CXCL12表達(dá)低于癌旁正常組織(P<0.05),CCL20-CCR6、CX3CLI-CX3CR1、CX3CL1表達(dá)高于與癌旁正常組織(P<0.05),見表2。

    2.3 T細(xì)胞群與趨化因子過表達(dá)相關(guān)性分析 CD4+、CD8+、Th1、Foxp3+與CXCL12、CCL20-CCR6、CX3CLICX3CR1、CX3CL1均呈顯著正相關(guān)(P<0.05),見表3。無監(jiān)督層次分析中,樣本聚集于3個(gè)主要組:第1組特征為多數(shù)T細(xì)胞標(biāo)志物過度表達(dá)(簇高),第2組顯示異質(zhì)表達(dá)(簇中),第3組特征為所有T細(xì)胞標(biāo)記基因表達(dá)下調(diào)(簇低),見圖1。

    2.4 趨化因子與T細(xì)胞亞群CRC浸潤的關(guān)系 CD4+相關(guān)趨化因子特征主要包括CXCL12、CCL20-CCR6、CX3CLI-CX3CR1,CD8+相關(guān)趨化因子特征主要包括CXCL12、CX3CLI-CX3CR1、CX3CL,Th1相關(guān)趨化因子特征主要包括CX3CLI-CX3CR1、CX3CL,F(xiàn)oxp3+相關(guān)趨化因子特征主要包括CXCL12、CCL20-CCR6(圖2)。

    表1 T細(xì)胞群表達(dá)比較(±s,n=41,%)Tab.1 Comparison of T cell subgroups expressions(±s,n=41,%)

    表1 T細(xì)胞群表達(dá)比較(±s,n=41,%)Tab.1 Comparison of T cell subgroups expressions(±s,n=41,%)

    Groups CRCtissue Adjacent tissue t P CD4+0.22±0.08 2.69±0.63 24.904<0.001 CD8+4.11±1.33 0.48±0.30 17.048<0.001 Th1 6.77±2.03 3.02±0.59 11.358<0.001 Foxp3+4.32±1.26 0.69±0.05 18.433<0.001

    表2 趨化因子表達(dá)比較(±s,n=41)Tab.2 Comparison of chemokineexpressions(±s,n=41)

    表2 趨化因子表達(dá)比較(±s,n=41)Tab.2 Comparison of chemokineexpressions(±s,n=41)

    Groups CRCtissue Adjacent tissue t P CXCL12 0.16±0.05 3.67±1.10 20.411<0.001 CCL20-CCR6 4.53±1.20 2.02±0.64 11.818<0.001 CX3CLI-CX 3CR1 2.69±0.54 0.23±0.09 28.773<0.001 CX3CL1 4.77±1.32 3.35±1.01 5.471<0.001

    表3 T細(xì)胞群與趨化因子過表達(dá)相關(guān)性分析Tab.3 Correlation analysis between T cell subsets and chemokine overexpression

    圖1 無監(jiān)督層次聚類圖Fig.1 Unsupervised hierarchical clustering image

    圖2 趨化因子與T細(xì)胞亞群CRC浸潤的關(guān)系Fig.2 Relationship between chemokines and infiltration of CRC in T cell subsets

    2.5 T細(xì)胞匯聚趨化因子圖 體內(nèi)培養(yǎng)CRC細(xì)胞中趨化因子均呈高表達(dá),體內(nèi)CRC組織中CRCCXCL12、CCL20-CCR6、CX3CLI-CX3CR1、CX3CL表達(dá)高于體外CRC組織中基因表達(dá)水平(P<0.05),見圖3。

    2.6 腸道微生物群對(duì)CRC細(xì)胞趨化因子表達(dá)的影響 本研究假設(shè)腫瘤細(xì)胞中趨化因子的產(chǎn)生可能由腸道菌群衍生微生物刺激引發(fā),采用T細(xì)胞激動(dòng)劑刺激正常細(xì)胞系和CRC細(xì)胞系誘導(dǎo)其趨化因子基因重新表達(dá),結(jié)果發(fā)現(xiàn),激動(dòng)劑刺激CRC細(xì)胞系后 趨 化 因 子CXCL12、CCL20-CCR6、CX3CLICX3CR1、CX3CL與腸道微生物群各因子可同時(shí)表達(dá),且趨化因子表達(dá)水平與腸道微生物群因子相關(guān),見圖4。

    2.7 腸道微生物群與T細(xì)胞浸潤的關(guān)系 體內(nèi)腫瘤T細(xì)胞群遷移率高于體外腫瘤(P<0.05),見圖5。

    圖3 T細(xì)胞募集趨化因子圖Fig.3 Imagesof chemokines recruited by T cells

    圖4 腸道微生物群對(duì)CRC細(xì)胞趨化因子表達(dá)的影響Fig.4 Effect of intestinal microflora on expressions of che?mokines in CRC cells

    圖5 腸道微生物群與T細(xì)胞浸潤的關(guān)系Fig.5 Relationship between intestinal microflora and T cell infiltration

    3 討論

    作為常見消化道惡性腫瘤,CRC發(fā)病率與病死率均顯著上升[8]。REX等[9]回顧性分析顯示,CRC患者中位無進(jìn)展生存期為89.0個(gè)月,中位總生存期為129.0個(gè)月,與歐美國家相比總生存期延長。但腫瘤侵襲與轉(zhuǎn)移為多步驟、多因素、多階段的復(fù)雜過程,CRC細(xì)胞脫落后沿組織間隙侵襲蔓延至淋巴管,在淋巴循環(huán)中轉(zhuǎn)運(yùn)、滯留、擴(kuò)散并增殖,單個(gè)或幾個(gè)CRC細(xì)胞發(fā)展為微轉(zhuǎn)移灶,導(dǎo)致CRC患者短期生存率逐年下降。TIAN等[10]認(rèn)為抑制CRC發(fā)生、侵襲及轉(zhuǎn)移應(yīng)關(guān)注其內(nèi)環(huán)境及細(xì)胞因子水平變化。

    研究證實(shí),趨化因子是維持腸道正常菌群的必需因子,與患者生存改善相關(guān)[11];多個(gè)研究結(jié)果顯示,C類因子在多種惡性腫瘤發(fā)生、進(jìn)展中發(fā)揮重要作用[12-13];趨化因子為腫瘤相關(guān)因子,C類因子是由效應(yīng)細(xì)胞分泌的具有生物活性的小分子蛋白,CXCL蛋白為cl-2原癌基因編碼產(chǎn)物,是促細(xì)胞存活因子,通過組織細(xì)胞色素c從線粒體釋放至細(xì)胞質(zhì)抑制細(xì)胞凋亡[14]。cl-2為細(xì)胞凋亡重要通路,研究表明,cl-2抑制劑已成為CRC治療的新型藥物[15]。CCL-CCR是一種能使細(xì)胞無限增殖并促進(jìn)細(xì)胞分裂的基因,與多種腫瘤發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)。HAN等[16]研究發(fā)現(xiàn),CCL20-CCR6因子在肺癌患者中高表達(dá),并與TNM分期、組織學(xué)分級(jí)、淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移及術(shù)后復(fù)發(fā)密切相關(guān),其過度表達(dá)的患者術(shù)后復(fù)發(fā)轉(zhuǎn)移風(fēng)險(xiǎn)明顯升高。QIAN等[17]研究發(fā)現(xiàn),結(jié)直腸腺癌患者體內(nèi)CX3類蛋白呈低表達(dá),參與癌癥發(fā)生發(fā)展過程,主要機(jī)制為降解細(xì)胞內(nèi)蛋白導(dǎo)致其死亡。SHIBUTANI等[18]采用免疫組化方法分析CRC細(xì)胞體內(nèi)外細(xì)胞因子發(fā)現(xiàn),體內(nèi)細(xì)胞因子水平更高,考慮細(xì)胞因子參與癌細(xì)胞免疫機(jī)制、可抑制細(xì)胞生長誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡。CRC細(xì)胞在生長過程中快速增殖,代謝異常,機(jī)體供血不足導(dǎo)致CRC細(xì)胞耗氧量增加發(fā)生病理性缺氧,而病理性缺氧可刺激CD4+T細(xì)胞、CD8+T細(xì)胞、Th1細(xì)胞表達(dá)上調(diào),從而調(diào)節(jié)微環(huán)境生成以緩解病理性缺氧[19]。提示趨化因子通過募集特定T細(xì)胞群共同作用于癌組織發(fā)揮作用。

    本研究選取CRC組織和癌旁正常組織進(jìn)行檢測,通過分析趨化因子、T細(xì)胞亞群表達(dá)水平及其與腸道微生物群關(guān)系闡明其可促進(jìn)T細(xì)胞亞群激活CRC細(xì)胞浸潤。關(guān)于CRC微環(huán)境觸發(fā)因素的報(bào)道較少,但對(duì)糞便樣本進(jìn)行腸道微生物群分析可將CRC或癌前息肉檢出率提高5倍,說明腸道微生物群是CRC的作用機(jī)制[20]。腸道微生物群可控制人體對(duì)癌癥治療藥物的反應(yīng)[21]。腫瘤可破壞腸道黏液層,腸道細(xì)菌進(jìn)入循環(huán)系統(tǒng),部分可募集至淋巴結(jié)的細(xì)菌可促進(jìn)趨化因子生成,促進(jìn)免疫細(xì)胞形成并攻擊癌細(xì)胞[22]。本研究顯示,CRC組織T細(xì)胞標(biāo)志物和趨化因子表達(dá)水平高于癌旁正常組織,提示T細(xì)胞亞群和趨化因子在CRC檢測中的特異性,與既往研究結(jié)果相似。本研究通過受體譜間相關(guān)性分析確定CRC組織中顯著趨化因子特征及與免疫細(xì)胞群水平,在2個(gè)蛋白相對(duì)表達(dá)的隊(duì)列中可見,CCL、CXCR配體與CD4+T細(xì)胞、CD8+T細(xì)胞、Th1、Foxp3+、Tregs可同時(shí)表達(dá),說明趨化因子與T細(xì)胞亞群浸潤相平行。CCL、CXCR配體表達(dá)與CD4+T細(xì)胞、CD8+T細(xì)胞、Th1、Foxp3+、Tregs顯著相關(guān),提示趨化因子與T細(xì)胞亞群受某種因素影響募集,對(duì)CRC發(fā)生發(fā)展具有重要意義。細(xì)胞亞群因子間表達(dá)特征相似,且T細(xì)胞因子與Tregs、Th1顯示趨化因子受體譜相似,提示CRC組織中T細(xì)胞與趨化因子具有相同募集,進(jìn)一步驗(yàn)證其相關(guān)性。而趨化因子吸引有益T細(xì)胞群,共同抑制癌細(xì)胞增殖和分化,有助于CRC預(yù)后改善。本研究證實(shí)了T細(xì)胞群和趨化因子表達(dá)的相關(guān)性及其對(duì)療效改善具有重要價(jià)值;但受前瞻性分析的限制,未對(duì)預(yù)后進(jìn)行評(píng)估。為研討T細(xì)胞募集趨化因子的細(xì)胞來源,腫瘤細(xì)胞對(duì)趨化因子的表達(dá)研究發(fā)現(xiàn),從體內(nèi)和體外分離的CRC細(xì)胞并對(duì)其沉默RNA進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)體內(nèi)培養(yǎng)的CRC原代細(xì)胞顯示出更高的趨化因子基因表達(dá)水平。體內(nèi)細(xì)胞因子表達(dá)主要受內(nèi)環(huán)境影響;湯鈺琪等[23]在小樣本實(shí)驗(yàn)中證實(shí),腸道腫瘤細(xì)胞中,微環(huán)境刺激對(duì)調(diào)節(jié)趨化因子表達(dá)作用更強(qiáng)。腸道微環(huán)境與趨化因子有一定相關(guān)性,可能促進(jìn)其表達(dá)上調(diào)。既往研究表明,腫瘤上皮細(xì)胞中轉(zhuǎn)移的腸道共生細(xì)菌可能與腫瘤細(xì)胞相互作用并誘導(dǎo)腫瘤生成,也可釋放促腫瘤生成細(xì)胞因子[24]。T細(xì)胞群在促腫瘤生成中起重要作用,本研究也證明腸道細(xì)菌可使更多T細(xì)胞募集至腫瘤異種移植物中,可能與腸道共生細(xì)菌可控制有益免疫細(xì)胞腫瘤浸潤有關(guān)。體外實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,不同種類CRC相關(guān)細(xì)菌均可在不同程度促進(jìn)T細(xì)胞募集趨化因子基因表達(dá),進(jìn)一步說明腸道微環(huán)境與T細(xì)胞群、趨化因子的相關(guān)性。于鑫等[25]研究顯示,趨化因子誘導(dǎo)的T細(xì)胞主要通過影響腸癌微環(huán)境相關(guān)因子分泌而導(dǎo)致腸道失衡,本研究體外實(shí)驗(yàn)可證實(shí)該觀點(diǎn)。本研究假設(shè)腫瘤細(xì)胞中趨化因子產(chǎn)生可能由腸道菌群衍生微生物刺激引發(fā),T細(xì)胞激動(dòng)劑刺激正常細(xì)胞系和CRC細(xì)胞系,誘導(dǎo)其趨化因子基因重新表達(dá),發(fā)現(xiàn)激動(dòng)劑刺激CRC細(xì)胞系后趨化因子CXCL12、CCL20-CCR6、CX3CLICX3CR1、CX3CL與腸道微生物群各因子可同時(shí)表達(dá),且趨化因子表達(dá)水平與腸道微生物群因子具有一定相關(guān)性,證實(shí)趨化因子誘導(dǎo)的T細(xì)胞對(duì)腸癌微環(huán)境的影響機(jī)制為T細(xì)胞誘導(dǎo)的結(jié)果。綜合本研究結(jié)果,考慮可重點(diǎn)關(guān)注CRC患者腸道微環(huán)境,根據(jù)既往研究可采用相關(guān)生物制劑或益生菌改善腸道微生態(tài)紊亂。另CRC組織中趨化因子表達(dá)水平可輔助判斷CRC患者腸道微生態(tài)變化。

    綜上,微生物群可觸發(fā)CRC趨化因子產(chǎn)生,募集T細(xì)胞而改善預(yù)后,為臨床研究提供依據(jù)。但本研究受時(shí)間限制,收集病例數(shù)有限,有待擴(kuò)大樣本數(shù)進(jìn)一步研究。

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