• <tr id="yyy80"></tr>
  • <sup id="yyy80"></sup>
  • <tfoot id="yyy80"><noscript id="yyy80"></noscript></tfoot>
  • 99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

    造血干細胞發(fā)育過程中的信號通路調(diào)控

    2021-04-22 07:23:26張春霞劉峰
    遺傳 2021年4期
    關(guān)鍵詞:信號

    張春霞,劉峰

    優(yōu)博專欄

    造血干細胞發(fā)育過程中的信號通路調(diào)控

    張春霞1,2,劉峰1

    1. 中國科學(xué)院動物研究所,膜生物學(xué)國家重點實驗室,北京 100101 2. 波士頓兒童醫(yī)院,波士頓 02115

    血液系統(tǒng)是維持機體生命活動最重要的系統(tǒng)之一,為機體提供所需的氧氣和營養(yǎng)物質(zhì),通過物質(zhì)交換維持內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)態(tài),同時為機體提供免疫防御與保護。血細胞是血液的重要組成成分,機體中成熟血細胞類型起源于具有自我更新及分化潛能的多能成體干細胞—造血干細胞(hematopoietic stem cells, HSCs)。造血干細胞及各類血細胞產(chǎn)生、發(fā)育及成熟的過程稱為造血過程,該過程開始于胚胎發(fā)育早期并貫穿整個生命過程,任一階段出現(xiàn)異常都可能導(dǎo)致血液疾病的發(fā)生。因此,深入探究造血發(fā)育過程及其調(diào)控機制對于認識并治療血液疾病至關(guān)重要。近年來,以小鼠()和斑馬魚()作為動物模型來研究造血發(fā)育取得了一系列的進展。其中,BMP、Notch和Wnt等信號通路對造血干細胞的命運決定和產(chǎn)生發(fā)揮了重要作用。本文對這些信號通路在小鼠和斑馬魚造血過程中的調(diào)控作用進行系統(tǒng)總結(jié),以期能夠完善造血發(fā)育過程的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)并為臨床應(yīng)用提供指導(dǎo)。

    造血干細胞;信號通路;BMP;Notch;Wnt

    造血干細胞(hematopoietic stem cells, HSCs)是一群具有自我更新及分化潛能的多能干細胞,可以產(chǎn)生所有類型的血細胞[1]。血細胞可以分為髓系和淋系兩大類,其中髓系細胞包括紅系細胞、粒系細胞、巨核系細胞和單核系細胞,淋系細胞主要包括T淋巴細胞、B淋巴細胞和自然殺傷性細胞(NK細胞)。造血干細胞及各類血細胞產(chǎn)生、發(fā)育和成熟的過程稱為造血過程。脊椎動物的造血過程起始于胚胎期,可以分為初級造血和次級造血兩個階段。造血干細胞以內(nèi)皮-造血轉(zhuǎn)化的形式產(chǎn)生于次級造血階段。造血干細胞發(fā)育在脊椎動物中是高度保守的過程,該過程受到多種信號通路和調(diào)控因子的精密調(diào)控。一些信號通路,如ERK、Notch以及β-Catenin介導(dǎo)的Wnt信號通路,在造血干細胞產(chǎn)生過程中的作用是動態(tài)變化的,也是濃度和時間依賴的。深入了解這些信號通路在造血干細胞發(fā)育過程中的調(diào)控網(wǎng)絡(luò)和作用機制,不僅能夠幫助理解體內(nèi)造血干細胞的產(chǎn)生過程,也能為體外造血提供理論依據(jù)。小鼠()和斑馬魚()是目前最常用的研究造血發(fā)育的動物模型。從胚胎發(fā)育早期到成體,盡管發(fā)生部位有所不同,造血發(fā)育的階段性過程在兩種動物模型中是相似的。本文以BMP、Notch和Wnt信號通路為例,詳細介紹信號通路在造血發(fā)育過程中的調(diào)控作用。

    1 脊椎動物造血發(fā)育過程

    1.1 小鼠造血發(fā)育

    哺乳動物的造血發(fā)生起源于胚胎的腹側(cè)中胚層,其中部分細胞特化為成血成血管細胞(hemangioblast),這類細胞同時具有向血細胞和血管細胞分化的能力[2]。在小鼠中,成血成血管細胞最早出現(xiàn)在卵黃囊的血島區(qū)(blood island in the yolk sac),胚胎期7.5天(E7.5)左右此處可檢測到血細胞的產(chǎn)生,這一過程稱為初級造血(primitive hematopoiesis),主要產(chǎn)生初級紅系(primitive erythroid)和初級髓系(primitive myeloid)血細胞,為胚胎早期發(fā)育供氧氣和免疫防御[3]。E9.5卵黃囊區(qū)能夠產(chǎn)生一群具有分化成紅細胞、巨核細胞和巨噬細胞等多項潛能的紅系–髓系前體細胞(erythro-myeloid progenitors, EMPs)[4,5]。近期研究發(fā)現(xiàn)特定組織定居的巨噬細胞,如肝臟的Kupffer細胞、腦部的小膠質(zhì)細胞、上皮的郎格罕氏細胞及肺部的肺泡巨噬細胞等,都來源于卵黃囊的紅系–髓系前體細胞,并不依賴于造血干細胞[6,7]。除紅系和髓系細胞之外,在造血干細胞產(chǎn)生之前,卵黃囊還能產(chǎn)生一群具有淋系(lymphoid)分化潛能的前體細胞,可以分化為B淋巴細胞和T淋巴細胞,為機體供免疫防御[8]。

    初級造血是一個短暫的階段,其產(chǎn)生的血細胞類型和數(shù)目不足以維持胚胎發(fā)育和成體需要,因此很快就被次級造血(definitive hematopoiesis)代替[4]。造血干細胞產(chǎn)生于次級造血階段,主要在E10.5小鼠胚胎的動脈–性腺–中腎區(qū)(aorta-gonad-mesone-phros, AGM)產(chǎn)生[9],在小鼠的胎盤[10]等區(qū)域也能檢測到造血干細胞。隨著研究的深入,造血干細胞的產(chǎn)生過程已經(jīng)逐漸明晰。在主動脈腹側(cè)壁的一群內(nèi)皮細胞可以特化成具有造血潛能的生血內(nèi)皮(hemogenic endothelium, HE),隨后細胞形態(tài)發(fā)生變化,形成造血簇(hematopoietic clusters),逐漸脫離動脈內(nèi)皮形成造血干細胞進入主動脈,這一過程稱為內(nèi)皮–造血轉(zhuǎn)化(endothelial-to-hematopoietic transition, EHT)[11]。新產(chǎn)生的造血干細胞在E12左右進入胎肝(fetal liver, FL)并進行大量擴增并逐漸成熟,其中一部分造血干細胞隨后進入胸腺,分化為T淋巴細胞。最終,造血干細胞定位到終生造血器官骨髓(bone marrow, BM)。正常狀態(tài)下骨髓中的造血干細胞處于靜息狀態(tài),一旦機體需要,造血干細胞將會迅速動員起來并分化成各種血細胞以補充機體需要[1]。

    1.2 斑馬魚造血發(fā)育

    在過去的20年里,斑馬魚憑借其獨特的優(yōu)勢,已經(jīng)成為研究發(fā)育的經(jīng)典動物模型。首先,斑馬魚是體外受精,從受精卵到發(fā)育至成體的整個過程都可以在體外直接觀察,而且便于進行操控;其次,斑馬魚胚胎是透明的,利用各種轉(zhuǎn)基因或活體標(biāo)記技術(shù),能夠?qū)Ω鹘M織器官的發(fā)育進行實時觀察和追蹤;再次,斑馬魚產(chǎn)卵的周期比較短,并且較易獲得大量胚胎,這樣有利于進行高通量篩選實驗;最重要的是斑馬魚的基因組與哺乳動物高度保守,斑馬魚中的很多成果可以為哺乳動物的相關(guān)研究提供參考[12]。

    斑馬魚的造血發(fā)育過程與哺乳動物相似,均起源于胚胎的腹側(cè)中胚層。在發(fā)育過程中,后部的側(cè)板中胚層(posterior lateral mesoderm, PLM)逐漸向中間遷移形成中間細胞團(intermediate cell mass, ICM),并在此處產(chǎn)生初級紅系細胞。同時前部側(cè)板中胚層(anterior lateral mesoderm, ALM)能夠產(chǎn)生初級髓系細胞[12,13]。斑馬魚的紅系–髓系前體細胞出現(xiàn)在受精后36小時(36 hours post fertilization, 36 hpf)左右的尾部造血組織(caudal hematopoietic tissue, CHT),并且能夠在此處進行分化[14]。斑馬魚的造血干細胞也是在AGM區(qū)域經(jīng)過內(nèi)皮–造血轉(zhuǎn)化過程產(chǎn)生。利用轉(zhuǎn)基因熒光標(biāo)記的方法對斑馬魚造血干細胞的產(chǎn)生過程進行實時追蹤觀察發(fā)現(xiàn),主動脈腹側(cè)壁的部分內(nèi)皮細胞可以特化成為生血內(nèi)皮,其形態(tài)也由扁平逐漸變成圓形,最后以出芽的形式脫離主動脈[14,15]。與小鼠不同的是,斑馬魚的造血干細胞不形成血細胞簇,而是以單個細胞的形式產(chǎn)生,并在產(chǎn)生后直接進入動靜脈之間的間充質(zhì),隨后進入靜脈。斑馬魚的內(nèi)皮–造血轉(zhuǎn)化過程起始于32 hpf,在60 hpf之前結(jié)束。新產(chǎn)生的造血干細胞隨后會遷移到CHT區(qū)域進行擴增和分化,部分細胞會遷移到胸腺分化成T淋巴細胞。造血干細胞最終會進入斑馬魚的終生造血器官—腎臟(Kidney Marrow),為胚胎和成體提供各類血細胞。

    2 造血干細胞產(chǎn)生過程的關(guān)鍵轉(zhuǎn)錄因子

    在造血發(fā)育過程中,轉(zhuǎn)錄因子Scl (stem cell leukemia,也稱作T-cell acute lymphocytic leukemia 1, TAL1)是成血成血管細胞的標(biāo)記基因之一,對主動脈和造血干細胞的發(fā)育都有重要的調(diào)控作用[16,17]。斑馬魚的基因有兩個轉(zhuǎn)錄本—和,雖然這兩個轉(zhuǎn)錄本都能夠參與調(diào)控造血干細胞的產(chǎn)生,但是它們分別調(diào)控內(nèi)皮-造血轉(zhuǎn)化過程的不同階段。通過構(gòu)建熒光標(biāo)記的和轉(zhuǎn)基因斑馬魚并進行實時觀察發(fā)現(xiàn),在生血內(nèi)皮細胞中特異表達,對生血內(nèi)皮的命運決定至關(guān)重要,而則在新產(chǎn)生的造血干細胞中特異表達,對造血干細胞在AGM區(qū)的維持發(fā)揮作用[18]。

    作為常用的造血干細胞標(biāo)記基因之一,轉(zhuǎn)錄因子Runx1(RUNX family transcription factor 1,也稱作acute mylogenous leukemia 1, AML1)可以標(biāo)記所有的胚胎造血干細胞[19]。在小鼠胚胎中進行的功能實驗發(fā)現(xiàn),缺失后次級造血過程被阻斷[20]。進一步的條件性敲除實驗發(fā)現(xiàn),內(nèi)皮細胞中的Runx1對于造血干細胞的產(chǎn)生必不可少,而造血干細胞產(chǎn)生之后,Runx1對造血維持并不重要[21]。近年來,對于Runx1在造血干細胞產(chǎn)生過程中的作用有了進一步認識。通過觀察斑馬魚內(nèi)皮–造血轉(zhuǎn)化過程發(fā)現(xiàn),缺失后,部分內(nèi)皮細胞可以發(fā)生形變并開始出芽,但在形成造血干細胞過程中這群細胞會發(fā)生破裂,導(dǎo)致造血干細胞無法產(chǎn)生[15]。隨后的研究發(fā)現(xiàn),Runx1可以保證造血特性的獲得,而其下游靶基因Gfi1/Gfi1b (growth factor independent 1A transcription repressor 1)能夠在生血內(nèi)皮細胞中抑制內(nèi)皮基因的表達,并促進細胞發(fā)生形變,進而保證造血干細胞的正常產(chǎn)生[22]。

    除此之外,Gata2 (GATA binding protein 2)也是造血干細胞產(chǎn)生的關(guān)鍵調(diào)控因子。在小鼠的造血發(fā)育過程中,Gata2在主動脈及造血干細胞簇中特異表達[23]。在內(nèi)皮細胞中特異性敲除Gata2發(fā)現(xiàn),生血內(nèi)皮可以正常產(chǎn)生,但是內(nèi)皮-造血轉(zhuǎn)化過程不能發(fā)生[24],與Runx1不同的是,在造血干細胞產(chǎn)生之后,血細胞中的Gata2對于造血干細胞的生存和維持也非常重要[24,25]。斑馬魚的有兩個同源基因—,和。其中,在受精后11小時就開始表達于成血成血管細胞中[26],而特異性表達在生血內(nèi)皮中[27]。在功能上,Gata2a和Gata2b都能通過調(diào)控的表達來促進生血內(nèi)皮的特化,同時又受到Gata2a的調(diào)控[27,28]。

    3 調(diào)控造血干細胞發(fā)育的信號通路

    3.1 BMP信號通路

    骨形態(tài)發(fā)生蛋白(bone morphogenesis proteins, BMPs)是轉(zhuǎn)化生長因子(transforming growth factor β, TGF-β)超家族的一員[29]。作為一種形態(tài)發(fā)生素,BMP信號在胚胎發(fā)生、發(fā)育以及成體組織穩(wěn)態(tài)的維持中都發(fā)揮著重要作用[30]。經(jīng)典的BMP信號通路是Smads依賴性的。BMP配體先與I型受體(BMPRIs) 結(jié)合,形成復(fù)合體后再與II型受體(BMPRII)結(jié)合。II型受體是持續(xù)激活型的,能夠磷酸化I型受體。激活的I型受體隨后磷酸化下游的Smad蛋白。作為細胞內(nèi)的信號分子,脊椎動物中的8種Smad蛋白可以分為3類:受體調(diào)節(jié)型Smads (receptor-regulated Smads, R-Smads)、共配體型Smads (common-mediator Smads, Co-Smads)以及抑制型Smads (inhibitory Smads, I-Smads)。Co-Smads (Smad4)和I-Smads (Smad6和Smad7)在TGF-β超家族中是通用的,而R-Smads中能夠參與BMP信號傳導(dǎo)的主要包括Smad1、Smad5和Smad8[31]。

    經(jīng)受體激活后的R-Smads從細胞膜上脫離,在胞內(nèi)與Smad4結(jié)合并進入細胞核。在細胞核內(nèi),Smads可以結(jié)合DNA,同時可以招募共同作用因子調(diào)控基因表達,如Smad1/5–Smad4與OAZ (Olf-1/ EBF-associated zinc finger)形成復(fù)合體后能夠招募共激活因子p300/CBP等促進基因表達[32];Smad1- Smad4與Nkx3.2形成復(fù)合體后能夠招募共抑制因子mSin3/HDAC1等抑制基因表達[33]。作為抑制型Smads,Smad6能夠抑制Smad4與磷酸化Smad1的結(jié)合從而阻斷BMP信號的傳遞[34];Smad7能夠競爭性地結(jié)合TGF-β或BMP受體,并能夠與Smurf1/2共同作用通過泛素化途徑降解受體進而阻斷信號的傳遞[35,36]。

    3.1.1 經(jīng)典的BMP-Smad1/5在HSC發(fā)育過程的調(diào)控作用

    脊椎動物的造血發(fā)育起源于腹側(cè)中胚層, BMP蛋白(尤其是BMP4)能夠誘導(dǎo)腹側(cè)中胚層的形成[37,38]。為了進一步研究BMP信號通路在造血發(fā)育中的作用,研究人員用轉(zhuǎn)基因的方法在時間和空間上來控制BMP信號的活性。首先,為避免BMP信號缺失對早期中胚層發(fā)育的影響,研究人員利用造血、血管及前腎前體細胞特異性的啟動子在斑馬魚胚胎側(cè)板中胚層中過表達功能缺失的BMP受體,發(fā)現(xiàn)BMP信號在這些前體細胞中的缺失能夠促進血管和造血的發(fā)育但抑制前腎發(fā)育,說明BMP信號在細胞命運決定中起到重要的調(diào)控作用[39]。隨后,為避免對動脈發(fā)育的影響,研究人員利用熱激蛋白(heat shock protein 70, hsp70)啟動子特異性地在斑馬魚動脈發(fā)育完成之后過表達功能缺失的BMP受體來抑制BMP信號通路,結(jié)果發(fā)現(xiàn)造血干細胞的產(chǎn)生和維持不能正常進行[40],說明BMP信號在造血發(fā)育中具有不可缺少的作用。雖然BMP4在24hpf的斑馬魚胚胎中表達于腹側(cè)間充質(zhì)(ventral mesenchyme)中,但是BMP受體Bmpr2a在主動脈內(nèi)皮中可以檢測到[41],暗示著BMP受體可以將BMP信號傳遞到主動脈中,進而調(diào)控造血干細胞的產(chǎn)生。在小鼠胚胎中,BMP4在腹側(cè)間充質(zhì)中表達,BMP受體Alk3、Alk6和BmprII,以及BMP下游效應(yīng)因子Smad1、4、5在AGM區(qū)動脈和血細胞中表達用小分子藥物抑制BMP信號后,小鼠造血活性明顯降低[42]。以上這些研究說明BMP信號對造血干細胞的產(chǎn)生和維持都發(fā)揮重要作用。

    要讓加油站站點、庫存發(fā)揮作用,就要有足夠的運力保障?!昂瓦^去幾年相比,現(xiàn)在農(nóng)民用油都比較理性了。以前油價低時,農(nóng)民喜歡集中一起買很多油儲備起來,現(xiàn)在油價變化頻繁,農(nóng)民用油比較均衡,隨用隨買?!眲⒀涌蛴浾呓榻B道。

    對于BMP信號通路調(diào)控造血發(fā)育過程的分子機制,近年來也有深入研究。作為BMP信號通路下游的關(guān)鍵信號分子,Smad1和Smad5對于斑馬魚的初級造血過程發(fā)揮著不同的作用。Smad1缺失能夠增加初級紅細胞的數(shù)目,而成熟巨噬細胞的產(chǎn)生受到抑制;Smad5缺失導(dǎo)致初級紅細胞的缺陷,巨噬細胞不受影響;但是Smad1或Smad5的缺失都會導(dǎo)致次級造血前體細胞的減少[43,44]。在小鼠成血成血管前體細胞中,缺失Smad1可以促進后續(xù)造血基因的表達,同時能夠使胞核內(nèi)的磷酸化Smad2 (pSmad2)信號增強,這也暗示著BMP和TGF-β信號通路在造血發(fā)育調(diào)控中存在互作[45]。另外,作為TGF-β超家族共用的Co-Smad,Smad4在小鼠內(nèi)皮細胞而不是血細胞中的缺失能夠增加造血動脈內(nèi)造血簇的產(chǎn)生,也能夠促進體外造血前體細胞的產(chǎn)生[46],意味著內(nèi)皮細胞的Smad4在小鼠造血發(fā)育過程中發(fā)揮著抑制作用。但是Smad5敲除的小鼠,造血干細胞的產(chǎn)生明顯減少,內(nèi)皮細胞的特性有所增強[44]。體外實驗發(fā)現(xiàn)Smad1直接結(jié)合到啟動子區(qū)域,促進其表達;同時,Smad6可以在Smurf1的協(xié)助下抑制Runx1的活性[47],暗示著BMP信號通路可能通過Smad1直接調(diào)控造血基因的表達;但在體內(nèi)造血過程中是否存在直接調(diào)控還有待進一步驗證。

    3.1.2 造血干細胞發(fā)育過程中BMP信號通路與FGF信號通路的相互作用

    在脊椎動物早期胚胎發(fā)育,包括神經(jīng)特化、初級造血和胚胎干細胞命運維持等過程中,BMP信號通路和ERK介導(dǎo)的FGF信號通路都發(fā)揮作用[48~50],共同對細胞命運的選擇進行調(diào)控。通過啟動子驅(qū)動的遺傳學(xué)控制以及特異性的化學(xué)抑制劑處理,研究人員發(fā)現(xiàn)在造血干細胞的產(chǎn)生過程中BMP信號通路持續(xù)發(fā)揮作用,而ERK信號通路的作用是動態(tài)變化的。在血管發(fā)生過程中,ERK信號通路是動脈分化所必須的,一旦動靜脈分化完成,ERK信號就需要下調(diào)至閾值范圍內(nèi)以保證造血干細胞的產(chǎn)生。BMP信號通路在Smad1/5介導(dǎo)下調(diào)控ERK信號。Smad1/5招募共抑制因子HDAC1到啟動子區(qū),使其乙?;较陆?,從而在轉(zhuǎn)錄水平上抑制的表達。進一步研究發(fā)現(xiàn),在斑馬魚造血發(fā)育過程中,過度激活的ERK信號能夠增強動脈內(nèi)皮細胞的特性以及內(nèi)皮細胞間的緊密連接,最終導(dǎo)致生血內(nèi)皮的產(chǎn)生及內(nèi)皮–造血轉(zhuǎn)化過程受到抑制,進而影響造血干細胞的產(chǎn)生[44]。在小鼠造血發(fā)育過程中,研究人員在內(nèi)皮細胞內(nèi)特異性敲除Smad4,發(fā)現(xiàn)動脈內(nèi)皮中的BMP4表達增加,而增加的BMP4能夠通過非Smad依賴的方式激活ERK通路,從而增加造血細胞簇的產(chǎn)生[46]。這兩項研究說明BMP信號通路可以在蛋白水平和轉(zhuǎn)錄水平上通過調(diào)控ERK信號的活性來影響造血干細胞的產(chǎn)生,而ERK信號對造血干細胞的調(diào)控是動態(tài)變化的(圖1)。

    3.2 Notch信號通路

    Notch蛋白是一個在進化上非常保守的跨膜受體蛋白,能夠介導(dǎo)細胞-細胞間的信號傳導(dǎo),對于細胞命運決定非常重要[51]。在哺乳動物和斑馬魚中,Notch信號是由多個蛋白之間的相互關(guān)聯(lián)進行信號傳遞的,包括信號接收細胞表面的Notch信號的跨膜受體(小鼠Notch1、Notch2、Notch3和Notch4,斑馬魚Notch1a、Notch1b、Notch2和Notch3)與信號釋放細胞所釋放的Notch配體(Jagged和Delta)結(jié)合[52,53]。隨后,在ADAM TACE金屬蛋白酶(ADAM metalloprotease)的作用下,Notch受體S2位點被切割,在γ-分泌酶(γ-Secretase)的作用下S3位點被切割,釋放出Notch細胞內(nèi)結(jié)構(gòu)域(Notch intracellular domain, NICD)。而在無Notch信號激活的情況下,細胞核內(nèi)的RBPj能夠招募轉(zhuǎn)錄共抑制復(fù)合物(nuclear corepressor, NCoR)以及組蛋白去乙?;?histone deacetylase, HDACs)抑制Notch信號靶基因的轉(zhuǎn)錄。Notch信號激活后,NICD可以入核,替換RBPj并且招募轉(zhuǎn)錄共激活復(fù)合物從而激活Notch信號靶基因的轉(zhuǎn)錄[54]。

    圖1 斑馬魚造血干細胞發(fā)育過程中的信號通路調(diào)控示意圖

    3.2.1 Notch信號通路在HSC發(fā)育過程的調(diào)控作用

    Notch信號是造血干細胞發(fā)育過程中非常重要,也是研究較多的信號通路。Notch信號缺失的突變體中動脈血管不能正常分化[55],作為造血干細胞的來源,動脈血管的缺陷會導(dǎo)致造血干細胞異常產(chǎn)生,這一功能是由Notch1介導(dǎo)的[56]。動脈特異性標(biāo)記基因作為靶基因,可以直接受Notch1調(diào)控[57]。進一步研究發(fā)現(xiàn),Notch信號通路對造血干細胞命運決定及其產(chǎn)生過程也發(fā)揮著細胞自主性調(diào)控作用。利用hsp70:gal4;uas:NICD轉(zhuǎn)基因斑馬魚品系,在不同時期進行熱激處理來控制動脈標(biāo)記基因的表達,發(fā)現(xiàn)Notch通過Runx1調(diào)控造血干細胞的產(chǎn)生與動脈發(fā)育是兩個獨立的過程[58]。小鼠中的實驗也證明,Jagged1介導(dǎo)的Notch1信號的激活可以通過調(diào)節(jié)Gata2和Cdca7調(diào)控基因的表達,進而調(diào)控造血干細胞的產(chǎn)生,這也不依賴于動脈發(fā)育[27,59~61]。整體來講,不同的Notch配體可以介導(dǎo)不同強度的Notch信號,Jagged1能夠介導(dǎo)生血內(nèi)皮細胞中低強度的Notch信號來維持造血干細胞的產(chǎn)生,而Dll4維持內(nèi)皮細胞中高強度的Notch信號來保證動脈的分化[62]。

    近年來,隨著研究的深入,越來越多的結(jié)果證明Notch信號通路在造血發(fā)育過程中的作用是動態(tài)變化的,而且也是劑量依賴性的。在斑馬魚中,利用Notch信號的報告基因轉(zhuǎn)基因和造血干細胞標(biāo)記基因以及轉(zhuǎn)基因魚系,追蹤斑馬魚造血過程,發(fā)現(xiàn)tp1cmybtp1runx1細胞不會發(fā)生內(nèi)皮-造血轉(zhuǎn)化,是因為這些細胞首先要失去Notch活性轉(zhuǎn)變成tp1細胞后才能產(chǎn)生造血特性,最終轉(zhuǎn)變成造血干細胞。另外,應(yīng)用轉(zhuǎn)基因魚系Tg (hsp70:dn- MAML)和Tg (hsp70:GAL4/UAS:NICD)胚胎,通過在不同時期熱激處理控制Notch信號強度,研究者發(fā)現(xiàn)在動靜脈分化之前,激活Notch信號能夠促進造血干細胞的產(chǎn)生。在動靜脈發(fā)育完成后,動脈內(nèi)皮細胞中的Notch信號的持續(xù)激活則會抑制造血干細胞的產(chǎn)生,而降低Notch信號強度,能夠促進造血干細胞的產(chǎn)生[63]。在雞胚造血干細胞產(chǎn)生過程中,隨著表達的增加,Notch信號會逐漸降低,而抑制Notch信號后會在一定程度上促進造血干細胞的產(chǎn)生[64]。

    3.2.2 Notch信號通路上游調(diào)控因子

    隨著對造血干細胞產(chǎn)生中Notch信號動態(tài)調(diào)控機制的認識越來越清楚,越來越多的研究闡釋了Notch信號通路的上游調(diào)控機制(圖1)。首先,為保證動脈內(nèi)皮的分化及造血干細胞的產(chǎn)生,Notch信號需要正確的激活。在動靜脈分化階段,脊索分泌的Hedgehog信號能夠促進體節(jié)中血管內(nèi)皮生長因子(Vascular endothelial growth factor, Vegf)的表達,Vegf可以與具有動脈特性的成血管細胞表面的Vegf受體結(jié)合,進而激活動脈內(nèi)皮中的Notch信號,促進動脈的分化[65]。炎性信號也可以激活Notch信號并且特異性地調(diào)控造血干細胞的產(chǎn)生,而對動脈發(fā)育沒有影響。初級中性粒細胞分泌的腫瘤壞死因子a (tumor necrosis factor a, TNFa)和粒細胞集落刺激因子(granulocyte colony-stimulating factor, G-CSF)可以與內(nèi)皮細胞表面的受體TNFR2,Toll樣受體(Toll-like receptor 4, TLR4)結(jié)合,通過經(jīng)典的炎性信號通路使得內(nèi)皮細胞內(nèi)的NFkB進入細胞核,進而調(diào)控Notch受體Jagged1的表達[66,67]。除此之外,內(nèi)皮細胞內(nèi)的初級纖毛發(fā)生也能夠促進Notch信號在動脈內(nèi)皮的激活,從而促進生血內(nèi)皮細胞的特化,保障造血干細胞的正常產(chǎn)生[68]。

    另一方面,動脈內(nèi)皮分化完成后,生血內(nèi)皮細胞內(nèi)Notch信號的下降也受到嚴(yán)密的調(diào)控。在轉(zhuǎn)錄水平上,NcoR2作為一個轉(zhuǎn)錄共抑制因子,特異表達在斑馬魚AGM區(qū),通過調(diào)控啟動子的乙酰化水平抑制其轉(zhuǎn)錄,進而抑制Vegfd及其下游的Notch信號,以保證內(nèi)皮-造血轉(zhuǎn)化過程中內(nèi)皮特性的降低及造血特性的獲得[69]。在轉(zhuǎn)錄后調(diào)控水平上,內(nèi)皮細胞表達的N6-methyladenosine (m6A)甲基轉(zhuǎn)移酶Mettl3能夠在mRNA的3′UTR區(qū)域進行m6A修飾,從而使得mRNA能被Ythdf2識別并降解。Mettl3或Ythdf2的缺失都會導(dǎo)致mRNA水平的升高,最終導(dǎo)致內(nèi)皮細胞特性的增強而阻止造血干細胞的產(chǎn)生[70]。在蛋白水平上,生血內(nèi)皮細胞中的G蛋白偶聯(lián)受體183 (G protein- coupled receptor 183, Gpr183)在內(nèi)皮-造血轉(zhuǎn)化開始之前能夠通過招募β-Arrestin1和E3連接酶Nedd4來降解Notch1蛋白從而降低Notch信號的活性,以保證造血干細胞的正常產(chǎn)生[63]。此外,在生血內(nèi)皮特化過程中,Rab5c通過精密調(diào)控Notch信號通路配體和受體的內(nèi)吞運輸,最終促進了造血干細胞的發(fā)育[71]。

    3.3 Wnt信號通路

    Wnt信號通路可以分為β-Catenin依賴的經(jīng)典Wnt信號通路(canonical pathway),非典型平面細胞極性途徑(planar cell polarity pathway)以及非經(jīng)典Wnt信號/鈣通路(Wnt/Ca2+pathway)。這3種信號通路都依賴于Wnt配體與細胞膜表面受體Frizzled (Fzd)的結(jié)合以及細胞內(nèi)Dishevelled的招募。Wnt信號通路的激活對于胚胎早期形態(tài)發(fā)生,體軸發(fā)育以及干細胞自我更新都至關(guān)重要[72]。

    在β-Catenin依賴的經(jīng)典Wnt信號通路中,無Wnt配體的情況下,細胞內(nèi)的β-Catenin被降解復(fù)合物(destruction complex, Dishevelled-Axin-GSK3)結(jié)合并磷酸化,磷酸化的β-Catenin被β-TrCP識別并泛素化,從而被進一步降解。在Wnt配體與細胞膜上的受體Frizzled (通常為Fzd1或Fzd4)以及共受體LRP5或LRP6結(jié)合后使得LRP蛋白發(fā)生磷酸化,磷酸化的LRP能夠結(jié)合降解復(fù)合物,阻止β-TrCP對β-Catenin的泛素化及降解,最終細胞漿內(nèi)的β-Catenin得以穩(wěn)定存在。部分β-Catenin進入細胞核與TCF/LEF轉(zhuǎn)錄因子家族共同調(diào)控下游基因的表達,進而調(diào)控胚胎體軸建立、組織發(fā)生、干細胞的自我更新、增殖和分化,以及成體組織穩(wěn)態(tài)等過程[73]。

    在非典型平面細胞極性途徑(Wnt/PCP pathway)中,Wnt配體(如Wnt5a、Wnt7、Wnt11等)與受體Frizzled (通常為Fzd3、Fzd6和Fzd7)及共受體(如PTK7、ROR2和RYK)或細胞表面蛋白(CD146、VANGL2、Syndecan和Glypican)結(jié)合后,進一步招募Dishevelled與受體復(fù)合物結(jié)合,激活下游的Rho家族的小G蛋白(如Cdc42、Rac1和RhoA)來調(diào)控細胞骨架的形成,并通過JNK通路調(diào)控下游基因的轉(zhuǎn)錄,進而調(diào)控細胞極性及細胞遷移[74]。在非經(jīng)典Wnt信號/鈣通路(Wnt/Ca2+pathway)中,Wnt配體(如Wnt5a)與受體Frizzled結(jié)合后能夠通過G蛋白將信號傳遞給PLCr從而促進Ca2+的釋放。Ca2+的增加一方面能通過CaMKII激酶來調(diào)控下游信號,另一方面能夠通過NFAT來調(diào)控下游基因的表達[75]。Wnt信號/鈣通路對于胚胎背腹分化和體軸形成以及細胞分化都有重要作用[76]。

    3.3.1 Wnt信號通路在HSC發(fā)育過程的調(diào)控作用

    在斑馬魚中,過表達Wnt信號通路下游的抑制因子和能夠抑制造血干細胞的產(chǎn)生,而前列腺素E2 (prostaglandin E2, PGE2)可以調(diào)控Wnt信號通路中β-Catenin的磷酸化進而調(diào)控造血發(fā)育[77]。斑馬魚體節(jié)中Wnt9a的缺失雖然對造血干細胞的命運決定沒有影響,但卻導(dǎo)致造血干細胞整體數(shù)目減少。進一步的實驗說明體節(jié)中的Wnt9a能夠為造血干細胞的增殖提供有利微環(huán)境,從而保證造血干細胞的正常作用。Wnt信號通路可以和BMP信號通路共同激活Cdx-Hox,進而調(diào)控造血過程[78]。在小鼠中,利用GSK3的抑制劑來增強Wnt信號能夠增加造血干細胞的數(shù)目;相反,β-Catenin的小分子拮抗劑處理能夠減少造血干細胞的數(shù)目。另外,在小鼠的胚胎造血過程中發(fā)現(xiàn),Wnt對造血干細胞產(chǎn)生的作用也是動態(tài)變化的[79]。在內(nèi)皮–造血轉(zhuǎn)化發(fā)生之前,β-Catenin在內(nèi)皮細胞中的激活可以促進造血干細胞的產(chǎn)生,一旦造血的命運決定完成之后,β-Catenin的活性就會下調(diào)[79]。近期對于視黃酸(retinoic acid, RA)信號通路的研究發(fā)現(xiàn),它能夠下調(diào)生血內(nèi)皮細胞或造血前體細胞中的Wnt信號通路,以促進造血干細胞的產(chǎn)生[80]。

    除經(jīng)典的Wnt/β-Catenin信號通路之外,β-Catenin非依賴性的Wnt信號通路也能夠調(diào)控造血發(fā)育過程(圖1)。在受精后14~17小時左右斑馬魚胚胎中,體節(jié)中的Wnt16可以促進Notch配體DeltaC和DeltaD的表達,體節(jié)中的Notch3能夠接受DeltaC和DeltaD傳遞的信號,進而促進生骨節(jié)(sclerotome)和造血干細胞的特化,以細胞非自主性的方式調(diào)控造血干細胞的產(chǎn)生[81,82]。鑒于斑馬魚胚胎發(fā)育中Wnt16與FGF的活性有時間和空間上的相似性,研究人員對兩個信號通路進行檢測后發(fā)現(xiàn),Wnt16對DeltaC的調(diào)控作用是由FGF信號通路介導(dǎo)的[83]。另外,Rspondin1作為Wnt信號的激活因子,可以通過調(diào)控Wnt16的表達來調(diào)控造血干細胞的產(chǎn)生[84]。但是目前對于體節(jié)如何調(diào)控造血干細胞命運決定的分子機制還有待進一步研究。

    4 結(jié)語與展望

    造血干細胞能夠自我更新并分化產(chǎn)生各種類型的血細胞,其重建造血的能力是臨床上利用骨髓移植治療血液疾病的基礎(chǔ)。因此全面系統(tǒng)地研究造血發(fā)育過程的分子機制和復(fù)雜的信號調(diào)控網(wǎng)絡(luò),有助于突破臨床上造血干細胞匱乏的瓶頸,對血液疾病的治療和新藥的研發(fā)都有非常重要的意義。目前,對于造血干細胞的產(chǎn)生過程已經(jīng)有清晰的認識,但是該過程的調(diào)控機制還有待進一步完善。

    近年來,隨著對造血干細胞產(chǎn)生過程中各個信號通路調(diào)控機制的研究越來越多,人們也越來越意識到在內(nèi)皮-造血轉(zhuǎn)化過程中,調(diào)控因子的動態(tài)平衡非常重要。例如:ERK和Notch信號的激活在這個過程中的作用都是動態(tài)變化的。在內(nèi)皮細胞中ERK和Notch的激活都是動脈分化所必需的,但是隨著內(nèi)皮-造血轉(zhuǎn)化的開始,內(nèi)皮細胞若要獲得造血特性,細胞內(nèi)調(diào)控內(nèi)皮特性的ERK和Notch信號活性需要下調(diào),以保證造血特性的獲得及維持。一旦這些信號沒有及時下調(diào),那么內(nèi)皮-造血轉(zhuǎn)化過程就不能完成,也不能產(chǎn)生造血干細胞。在體外造血過程中,能否通過調(diào)控這些信號通路的活性來促進造血干細胞的產(chǎn)生和維持還需要進一步研究。

    致謝

    感謝中國科學(xué)院動物研究所馬東媛博士和中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院血液病醫(yī)院(中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院血液學(xué)研究所)王璐博士對本文的仔細閱讀和修改。

    [1] Orkin SH, Zon LI. Hematopoiesis: an evolving paradigm for stem cell biology.,2008, 132(4): 631–644.

    [2] Choi K, Kennedy M, Kazarov A, Papadimitriou JC, Keller G. A common precursor for hematopoietic and endothelial cells.,1998, 125(4): 725–732.

    [3] Palis J, Robertson S, Kennedy M, Wall C, Keller G. Development of erythroid and myeloid progenitors in the yolk sac and embryo proper of the mouse.,1999, 126(22): 5073–5084.

    [4] Chen MJ, Li Y, De Obaldia ME, Yang Q, Yzaguirre AD, Yamada-Inagawa T, Vink CS, Bhandoola A, Dzierzak E, Speck NA. Erythroid/myeloid progenitors and hemato-poietic stem cells originate from distinct populations of endothelial cells.,2011, 9(6): 541–552.

    [5] McGrath KE, Frame JM, Fegan KH, Bowen JR, Conway SJ, Catherman SC, Kingsley PD, Koniski AD, Palis J. Distinct sources of hematopoietic progenitors emerge before HSCs and provide functional blood cells in the mammalian embryo.,2015, 11(12): 1892–1904.

    [6] Schulz C, Gomez Perdiguero E, Chorro L, Szabo-Rogers H, Cagnard N, Kierdorf K, Prinz M, Wu BS, Jacobsen SEW, Pollard JW, Frampton J, Liu KJ, Geissmann F. A lineage of myeloid cells independent of Myb and hema-topoietic stem cells.,2012, 336(6077): 86–90.

    [7] Gomez Perdiguero E, Klapproth K, Schulz C, Busch K, Azzoni E, Crozet L, Garner H, Trouillet C, de Bruijn MF, Geissmann F, Rodewald HR. Tissue-resident macrophages originate from yolk-sac-derived erythro-myeloid progeni-tors.,2015, 518(7540): 547–551.

    [8] B?iers C, Carrelha J, Lutteropp M, Luc S, Green JCA, Azzoni E, Woll PS, Mead AJ, Hultquist A, Swiers G, Perdiguero EG, Macaulay IC, Melchiori L, Luis TC, Kharazi S, Bouriez-Jones T, Deng QL, Ponten A, Atkinson D, Jensen CT, Sitnicka E, Geissmann F, Godin I, Sandberg R, de Bruijn MFTR, Jacobsen SEW. Lymphomyeloid contribution of an immune-restricted progenitor emerging prior to definitive hematopoietic stem cells.,2013, 13(5): 535–548.

    [9] Müller AM, Medvinsky A, Strouboulis J, Grosveld F, Dzierzak E. Development of hematopoietic stem cell activity in the mouse embryo.,1994, 1(4): 291–301.

    [10] Gekas C, Dieterlen-Lievre F, Orkin SH, Mikkola HKA. The placenta is a niche for hematopoietic stem cells.,2005, 8(3): 365–375.

    [11] Boisset JC, van Cappellen W, Andrieu-Soler C, Galjart N, Dzierzak E, Robin C. In vivo imaging of haematopoietic cells emerging from the mouse aortic endothelium.,2010, 464(7285): 116–120.

    [12] Chen AT, Zon LI. Zebrafish blood stem cells.,2009, 108(1): 35–42.

    [13] Detrich HW, Kieran MW, Chan FY, Barone LM, Yee K, Rundstadler JA, Pratt S, Ransom D, Zon LI. Intrae-mbryonic hematopoietic cell migration during vertebrate development.,1995, 92(23): 10713–10717.

    [14] Bertrand JY, Kim AD, Violette EP, Stachura DL, Cisson JL, Traver D. Definitive hematopoiesis initiates through a committed erythromyeloid progenitor in the zebrafish embryo.,2007, 134(23): 4147–4156.

    [15] Kissa K, Herbomel P. Blood stem cells emerge from aortic endothelium by a novel type of cell transition.,2010, 464(7285): 112–115.

    [16] Patterson LJ, Gering M, Patient R. Scl is required for dorsal aorta as well as blood formation in zebrafish embryos.,2005, 105(9): 3502–3511.

    [17] Ren X, Gomez GA, Zhang B, Lin S. Scl isoforms act downstream of etsrp to specify angioblasts and definitive hematopoietic stem cells.,2010, 115(26): 5338– 5346.

    [18] Zhen FH, Lan YH, Yan B, Zhang WQ, Wen ZL. Hemogenic endothelium specification and hematopoietic stem cell maintenance employ distinct Scl isoforms.,2013, 140(19): 3977–3985.

    [19] North TE, Goessling W, Walkley CR, Lengerke C, Kopani KR, Lord AM, Weber GJ, Bowman TV, Jang IH, Grosser T, Fitzgerald GA, Daley GQ, Orkin SH, Zon LI. Prostag-landin E2 regulates vertebrate haematopoietic stem cell homeostasis.,2007, 447(7147): 1007–1011.

    [20] Wang Q, Stacy T, Binder M, Marin-Padilla M, Sharpe AH, Speck NA. Disruption of the Cbfa2 gene causes necrosis and hemorrhaging in the central nervous system and blocks definitive hematopoiesis.,1996, 93(8): 3444–3449.

    [21] Chen MJ, Yokomizo T, Zeigler BM, Dzierzak E, Speck NA. Runx1 is required for the endothelial to haemato-poietic cell transition but not thereafter.,2009, 457(7231): 887–891.

    [22] Lancrin C, Mazan M, Stefanska M, Patel R, Lichtinger M, Costa G, Vargel O, Wilson NK, M?r?y T, Bonifer C, G?ttgens B, Kouskoff V, Lacaud G. GFI1 and GFI1B control the loss of endothelial identity of hemogenic endothelium during hematopoietic commitment.,2012, 120(2): 314–322.

    [23] Eich C, Arlt J, Vink CS, Solaimani Kartalaei P, Kaimakis P, Mariani SA, van der Linden R, van Cappellen WA, Dzierzak E. In vivo single cell analysis reveals Gata2 dynamics in cells transitioning to hematopoietic fate.,2018, 215(1): 233–248.

    [24] de Pater E, Kaimakis P, Vink CS, Yokomizo T, Yamada-Inagawa T, van der Linden R, Kartalaei PS, Camper SA, Speck N, Dzierzak E. Gata2 is required for HSC generation and survival.,2013, 210(13): 2843–2850.

    [25] Gao X, Johnson KD, Chang YI, Boyer ME, Dewey CN, Zhang J, Bresnick EH. Gata2 cis-element is required for hematopoietic stem cell generation in the mammalian embryo.,2013, 210(13): 2833–2842.

    [26] Patterson LJ, Gering M, Eckfeldt CE, Green AR, Verfaillie CM, Ekker SC, Patient R. The transcription factors Scl and Lmo2 act together during development of the heman-gioblast in zebrafish.,2006, 109(6): 2389–2398.

    [27] Butko E, Distel M, Pouget C, Weijts B, Kobayashi I, Ng K, Mosimann C, Poulain FE, McPherson A, Ni CW, Stachura DL, Del Cid N, Espín-Palazón R, Lawson ND, Dorsky R, Clements WK, Traver D. Gata2b is a restricted early regulator of hemogenic endothelium in the zebrafish embryo.,2015, 142(6): 1050–1061.

    [28] Dobrzycki T, Mahony CB, Krecsmarik M, Koyunlar C, Rispoli R, Peulen-Zink J, Gussinklo K, Fedlaoui B, de Pater E, Patient R, Monteiro R. Deletion of a conserved Gata2 enhancer impairs haemogenic endothelium progra-mming and adult Zebrafish haematopoiesis.,2020, 3(1): 71.

    [29] Massagué J. TGF-β SIGNAL TRANSDUCTION.,1998, 67(1): 753–791.

    [30] Wang RN, Green J, Wang ZL, Deng YL, Qiao M, Peabody M, Zhang Q, Ye JX, Yan ZJ, Denduluri S, Idowu O, Li M, Shen C, Hu A, Haydon RC, Kang R, Mok J, Lee MJ, Luu HL, Shi LL. Bone Morphogenetic Protein (BMP) signaling in development and human diseases.,2014, 1(1): 87–105.

    [31] Massagué J, Seoane J, Wotton D. Smad transcription factors.,2005, 19(23): 2783–2810.

    [32] Hata A, Seoane J, Lagna G, Montalvo E, Hemmati- Brivanlou A, Massagué J. OAZ uses distinct DNA- and protein-binding zinc fingers in separate BMP-Smad and Olf signaling pathways.,2000, 100(2): 229–240.

    [33] Kim DW, Lassar AB. Smad-dependent recruitment of a histone deacetylase/Sin3A complex modulates the bone morphogenetic protein-dependent transcriptional repressor activity of Nkx3.2.,2003, 23(23): 8704– 8717.

    [34] Hata A, Lagna G, Massagué J, Hemmati-Brivanlou A. Smad6 inhibits BMP/Smad1 signaling by specifically competing with the Smad4 tumor suppressor.,1998, 12(2): 186–197.

    [35] Nakao A, Afrakhte M, Morén A, Nakayama T, Christian JL, Heuchel R, Itoh S, Kawabata M, Heldin NE, Heldin CH, ten Dijke P. Identification of Smad7, a TGFbeta- inducible antagonist of TGF-beta signalling.,1997, 389(6651): 631–635.

    [36] Kavsak P, Rasmussen RK, Causing CG, Bonni S, Zhu H, Thomsen GH, Wrana JL. Smad7 binds to Smurf2 to form an E3 ubiquitin ligase that targets the TGF beta receptor for degradation.,2000, 6(6): 1365–1375.

    [37] Sadlon TJ, Lewis ID, D'Andrea RJ. BMP4: its role in development of the hematopoietic system and potential as a hematopoietic growth factor.,2004, 22(4): 457–474.

    [38] Pyati UJ, Webb AE, Kimelman D. Transgenic zebrafish reveal stage-specific roles for Bmp signaling in ventral and posterior mesoderm development.,2005, 132(10): 2333–2343.

    [39] Gupta S, Zhu H, Zon LI, Evans T. BMP signaling restricts hemato-vascular development from lateral mesoderm during somitogenesis.,2006, 133(11): 2177– 2187.

    [40] Wilkinson RN, Pouget C, Gering M, Russell AJ, Davies SG, Kimelman D, Patient R. Hedgehog and Bmp polarize hematopoietic stem cell emergence in the zebrafish dorsal aorta.,2009, 16(6): 909–916.

    [41] Monteiro R, van Dinther M, Bakkers J, Wilkinson R, Patient R, ten Dijke P, Mummery C. Two novel type II receptors mediate BMP signalling and are required to establish left-right asymmetry in zebrafish.,2008, 315(1): 55–71.

    [42] Durand C, Robin C, Bollerot K, Baron MH, Ottersbach K, Dzierzak E. Embryonic stromal clones reveal develop-mental regulators of definitive hematopoietic stem cells.,2007, 104(52): 20838–20843.

    [43] McReynolds LJ, Gupta S, Figueroa ME, Mullins MC, Evans T. Smad1 and Smad5 differentially regulate em-bryonic hematopoiesis.,2007, 110(12): 3881–3890.

    [44] Zhang CX, Lv JH, He QP, Wang SF, Gao Y, Meng AM, Yang X, Liu F. Inhibition of endothelial ERK signalling by Smad1/5 is essential for haematopoietic stem cell emergence.,2014, 5: 3431.

    [45] Cook BD, Liu S, Evans T. Smad1 signaling restricts hematopoietic potential after promoting hemangioblast commitment.,2011, 117(24): 6489–6497.

    [46] Lan Y, He WY, Li Z, Wang Y, Wang J, Gao J, Wang WL, Cheng T, Liu B, Yang X. Endothelial Smad4 restrains the transition to hematopoietic progenitorssuppression of ERK activation.,2014, 123(14): 2161–2171.

    [47] Pimanda JE, Donaldson IJ, de Bruijn MFTR, Kinston S, Knezevic K, Huckle L, Piltz S, Landry JR, Green AR, Tannahill D, G?ttgens B. The SCL transcriptional network and BMP signaling pathway interact to regulate RUNX1 activity.,2007, 104(3): 840–845.

    [48] Xu RH, Ault KT, Kim J, Park MJ, Hwang YS, Peng Y, Sredni D, Kung HF. Opposite effects of FGF and BMP-4 on embryonic blood formation: roles of PV.1 and GATA-2.,1999, 208(2): 352–361.

    [49] Pera EM, Ikeda A, Eivers E, De Robertis EM. Integration of IGF, FGF, and anti-BMP signals via Smad1 pho-sphorylation in neural induction.,2003, 17(24): 3023–3028.

    [50] Yu PZ, Pan G, Yu J, Thomson JA. FGF2 sustains NANOG and switches the outcome of BMP4-induced human embryonic stem cell differentiation.,2011, 8(3): 326–334.

    [51] Kopan R, Ilagan MXG. The canonical Notch signaling pathway: unfolding the activation mechanism.,2009, 137(2): 216–233.

    [52] Shawber CJ, Kitajewski J. Notch function in the vasculature: insights from zebrafish, mouse and man.,2004, 26(3): 225–234.

    [53] Lomeli H, Castillo-Castellanos F. Notch signaling and the emergence of hematopoietic stem cells.,2020, 249(11): 1302–1317.

    [54] Butko E, Pouget C, Traver D. Complex regulation of HSC emergence by the Notch signaling pathway.,2016, 409(1): 129–138.

    [55] Lawson ND, Scheer N, Pham VN, Kim CH, Chitnis AB, Campos-Ortega JA, Weinstein BM. Notch signaling is required for arterial-venous differentiation during embryonic vascular development.,2001, 128(19): 3675–3683.

    [56] Kumano K, Chiba S, Kunisato A, Sata M, Saito T, Nakagami-Yamaguchi E, Yamaguchi T, Masuda S, Shimizu K, Takahashi T, Ogawa S, Hamada Y, Hirai H. Notch1 but not Notch2 is essential for generating hematopoietic stem cells from endothelial cells.,2003, 18(5): 699–711.

    [57] Grego-Bessa J, Luna-Zurita L, del Monte G, Bolós V, Melgar P, Arandilla A, Garratt AN, Zang H, Mukouyama YS, Chen HY, Shou WN, Ballestar E, Esteller M, Rojas A, Pérez-Pomares JM, de la Pompa JL. Notch signaling is essential for ventricular chamber development.,2007, 12(3): 415–429.

    [58] Burns CE, Traver D, Mayhall E, Shepard JL, Zon LI. Hematopoietic stem cell fate is established by the Notch- Runx pathway.,2005, 19(19): 2331–2342.

    [59] Robert-Moreno A, Guiu J, Ruiz-Herguido C, López ME, Inglés-Esteve J, Riera L, Tipping A, Enver T, Dzierzak E, Gridley T, Espinosa L, Bigas A. Impaired embryonic haematopoiesis yet normal arterial development in the absence of the Notch ligand Jagged1.,2008, 27(13): 1886–1895.

    [60] Robert-Moreno A, Espinosa L, de la Pompa JL, Bigas A. RBPjkappa-dependent Notch function regulates Gata2 and is essential for the formation of intra-embryonic hemato-poietic cells.,2005, 132(5): 1117–1126.

    [61] Guiu J, Bergen DJM, De Pater E, Islam ABMMK, Ayllón V, Gama-Norton L, Ruiz-Herguido C, González J, López-Bigas N, Menendez P, Dzierzak E, Espinosa L, Bigas A. Identification of Cdca7 as a novel Notch transcriptional target involved in hematopoietic stem cell emergence.,2014, 211(12): 2411–2423.

    [62] Gama-Norton L, Ferrando E, Ruiz-Herguido C, Liu ZY, Guiu J, Islam ABMMK, Lee SU, Yan MH, Guidos CJ, López-Bigas N, Maeda T, Espinosa L, Kopan R, Bigas A. Notch signal strength controls cell fate in the haemogenic endothelium.,2015, 6: 8510.

    [63] Zhang PP, He QP, Chen DB, Liu WX, Wang L, Zhang CX, Ma DY, Li W, Liu B, Liu F. G protein-coupled receptor 183 facilitates endothelial-to-hematopoietic transition via Notch1 inhibition.,2015, 25(10): 1093–1107.

    [64] Richard C, Drevon C, Canto PY, Villain G, Bollérot K, Lempereur A, Teillet MA, Vincent C, Rosselló Castillo C, Torres M, Piwarzyk E, Speck NA, Souyri M, Jaffredo T. Endothelio-mesenchymal interaction controls runx1 expression and modulates the notch pathway to initiate aortic hematopoiesis.,2013, 24(6): 600–611.

    [65] Swift MR, Weinstein BM. Arterial-venous specification during development.,2009, 104(5): 576–588.

    [66] He QP, Zhang CX, Wang L, Zhang PP, Ma DY, Lv JH, Liu F. Inflammatory signaling regulates hematopoietic stem and progenitor cell emergence in vertebrates.,2015, 125(7): 1098–1106.

    [67] Espín-Palazón R, Stachura DL, Campbell CA, García- Moreno D, Del Cid N, Kim AD, Candel S, Meseguer J, Mulero V, Traver D. Proinflammatory signaling regulates hematopoietic stem cell emergence.,2014, 159(5): 1070–1085.

    [68] Liu ZB, Tu HQ, Kang YS, Xue YY, Ma DY, Zhao CT, Li HY, Wang L, Liu F. Primary cilia regulate hematopoietic stem and progenitor cell specification through Notch signaling in zebrafish.,2019, 10(1): 1839.

    [69] Wei YL, Ma DY, Gao Y, Zhang CX, Wang L, Liu F. Ncor2 is required for hematopoietic stem cell emergence by inhibiting Fos signaling in zebrafish.,2014, 124(10): 1578–1585.

    [70] Zhang CX, Chen YS, Sun BF, Wang L, Yang Y, Ma DY, Lv JH, Heng J, Ding YY, Xue YY, Lu XY, Xiao W, Yang YG, Liu F. m(6)A modulates haematopoietic stem and progenitor cell specification.,2017, 549(7671): 273–276.

    [71] Heng J, Lv P, Zhang YF, Cheng XJ, Wang L, Ma DY, Liu F. Rab5c-mediated endocytic trafficking regulates hemato-poietic stem and progenitor cell development via Notch and AKT signaling.,2020, 18(4): e3000696.

    [72] Steinhart Z, Angers S. Wnt signaling in development and tissue homeostasis.,2018, 145(11).

    [73] Clevers H, Nusse R. Wnt/β-catenin signaling and disease.,2012, 149(6): 1192–1205.

    [74] Daulat AM, Borg JP. Wnt/Planar cell polarity signaling: new opportunities for cancer treatment.,2017, 3(2): 113–125.

    [75] De A. Wnt/Ca2+signaling pathway: a brief overview.,2011, 43(10): 745–756.

    [76] Kohn AD, Moon RT. Wnt and calcium signaling: beta-catenin-independent pathways.,2005, 38(3–4): 439–446.

    [77] Goessling W, North TE, Loewer S, Lord AM, Lee S, Stoick-Cooper CL, Weidinger G, Puder M, Daley GQ, Moon RT, Zon LI. Genetic interaction of PGE2 and Wnt signaling regulates developmental specification of stem cells and regeneration.,2009, 136(6): 1136–1147.

    [78] Lengerke C, Schmitt S, Bowman TV, Jang IH, Maouche-Chretien L, McKinney-Freeman S, Davidson AJ, Hammerschmidt M, Rentzsch F, Green JBA, Zon LI, Daley GQ. BMP and Wnt specify hematopoietic fate by activation of the Cdx-Hox pathway.,2008, 2(1): 72–82.

    [79] Ruiz-Herguido C, Guiu J, D'Altri T, Inglés-Esteve J, Dzierzak E, Espinosa L, Bigas A. Hematopoietic stem cell development requires transient Wnt/β-catenin activity.,2012, 209(8): 1457–1468.

    [80] Chanda B, Ditadi A, Iscove NN, Keller G. Retinoic acid signaling is essential for embryonic hematopoietic stem cell development.,2013, 155(1): 215–227.

    [81] Clements WK, Kim AD, Ong KG, Moore JC, Lawson ND, Traver D. A somitic Wnt16/Notch pathway specifies haematopoietic stem cells.,2011, 474(7350): 220–224.

    [82] Kim AD, Melick CH, Clements WK, Stachura DL, Distel M, Panákova D, MacRae C, Mork LA, Crump JG, Traver D. Discrete Notch signaling requirements in the specification of hematopoietic stem cells.,2014, 33(20): 2363–2373.

    [83] Lee Y, Manegold JE, Kim AD, Pouget C, Stachura DL, Clements WK, Traver D. FGF signalling specifies haematopoietic stem cells through its regulation of somitic Notch signalling.,2014, 5: 5583.

    [84] Genthe JR, Clements WK. R-spondin 1 is required for specification of hematopoietic stem cells through Wnt16 and Vegfa signaling pathways.,2017, 144(4): 590–600.

    Regulatory signaling pathways in hematopoietic stem cell development

    Chunxia Zhang1,2, Feng Liu1

    The blood system provides the body with oxygen and nutrients, maintains the homeostasis of the internal environment through material exchange, and keeps the body with immune defense and protection. Hematopoietic stem cells (HSCs), which are pluripotent adult stem cells with self-renewal and differentiation potential, are the origin of mature blood cells in the body. The production, development and maturation processes of HSCs and their derivatives are the so-called ‘hematopoiesis’, which begins in the early embryonic development and throughout the life course; any abnormality during these processes can cause the occurrence of hematological diseases. Therefore, a deeper understanding of hematopoietic development and its regulation is important to the diagnosis and treatment of blood diseases. In recent years, a series of advances have been made in studying hematopoietic development using mice and zebrafish as animal models. It has been shown that BMP, Notch and Wnt signaling pathways play an important role in the fate determination and generation of HSCs. In this review, we systematically summarize the regulatory roles of these signaling pathways in the hematopoietic process of mice and zebrafish embryos, to improve our understanding on the underlying regulatory network of hematopoietic development and provide guidance for clinical application.

    hematopoietic stem cell; signaling pathways; BMP; Notch; Wnt

    張春霞,2010—2017年就讀于中國科學(xué)院動物研究所,在血液與心血管發(fā)育研究組攻讀博士學(xué)位,目前在美國哈佛醫(yī)學(xué)院/波士頓兒童醫(yī)院做博士后。博士期間,主要研究斑馬魚造血干細胞發(fā)育的調(diào)控機制,闡明了BMP與ERK信號通路在造血干細胞產(chǎn)生過程中的相互關(guān)聯(lián)(, 2014年),發(fā)現(xiàn)了炎性信號通路可以通過Notch信號來調(diào)控造血干細胞的產(chǎn)生(, 2015年),首次揭示了m6A修飾在胚胎造血干細胞命運決定中的關(guān)鍵作用(, 2017年)。這些工作不僅增加了人們對造血干細胞產(chǎn)生機制的認識,而且對體外誘導(dǎo)擴增造血干細胞提供了理論指導(dǎo)。博士論文《BMP-ERK信號通路以及炎性信號調(diào)控斑馬魚造血干細胞產(chǎn)生的分子機制》獲得2020年中國科學(xué)院優(yōu)秀博士生論文。

    2021-01-20;

    2021-03-01

    國家重點研發(fā)計劃項目(編號:2018YFA0800200,2018YFA080100),中國科學(xué)院戰(zhàn)略性科技先導(dǎo)專項(編號:XDA16010207)和國家自然科學(xué)基金重點項目(編號:32030032,31830061)資助[Supported by the National Key Research and Development Program of China (Nos.2018YFA0800200, 2018YFA080100), the Strategic Priority Research Program of the Chinese Academy of Sciences, China (No. XDA16010207), and the National Natural Science Foundation of China (Nos. 32030032, 31830061)]

    張春霞,博士,研究方向:造血干細胞發(fā)育。E-mail: zhangchxa@163.com

    劉峰,研究員,博士生導(dǎo)師,研究方向:造血干細胞發(fā)育。E-mail: liuf@ioz.ac.cn

    10.16288/j.yczz.21-026

    2021/3/16 11:16:44

    URI: https://kns.cnki.net/kcms/detail/11.1913.R.20210315.0942.003.html

    (責(zé)任編委: 張雷)

    猜你喜歡
    信號
    信號
    鴨綠江(2021年35期)2021-04-19 12:24:18
    完形填空二則
    7個信號,警惕寶寶要感冒
    媽媽寶寶(2019年10期)2019-10-26 02:45:34
    孩子停止長個的信號
    《鐵道通信信號》訂閱單
    基于FPGA的多功能信號發(fā)生器的設(shè)計
    電子制作(2018年11期)2018-08-04 03:25:42
    基于Arduino的聯(lián)鎖信號控制接口研究
    《鐵道通信信號》訂閱單
    基于LabVIEW的力加載信號采集與PID控制
    Kisspeptin/GPR54信號通路促使性早熟形成的作用觀察
    欧美少妇被猛烈插入视频| 在线播放无遮挡| 丝袜在线中文字幕| 大香蕉97超碰在线| av又黄又爽大尺度在线免费看| 国产免费又黄又爽又色| 99热这里只有精品一区| 亚洲国产色片| 久久久久网色| 国产高清国产精品国产三级| 九九久久精品国产亚洲av麻豆| 国产一区二区三区综合在线观看 | 中文字幕人妻熟人妻熟丝袜美| 观看美女的网站| 91午夜精品亚洲一区二区三区| 中文资源天堂在线| 国产成人精品一,二区| 三上悠亚av全集在线观看 | 久久亚洲国产成人精品v| 丁香六月天网| 男人狂女人下面高潮的视频| 能在线免费看毛片的网站| 日本爱情动作片www.在线观看| 777米奇影视久久| 亚洲精品乱久久久久久| av免费观看日本| 日韩av不卡免费在线播放| 久久久久国产网址| 亚洲国产精品999| 亚洲精品一二三| 久久久国产欧美日韩av| 午夜精品国产一区二区电影| 日韩 亚洲 欧美在线| 日韩免费高清中文字幕av| 久久午夜福利片| 热re99久久国产66热| 日本av手机在线免费观看| 免费久久久久久久精品成人欧美视频 | 欧美精品亚洲一区二区| 午夜福利视频精品| av在线播放精品| 中文字幕av电影在线播放| 2018国产大陆天天弄谢| 国产精品成人在线| 男的添女的下面高潮视频| 交换朋友夫妻互换小说| 伦理电影大哥的女人| 国产毛片在线视频| 尾随美女入室| 午夜免费男女啪啪视频观看| 中国美白少妇内射xxxbb| 人人妻人人看人人澡| 精品视频人人做人人爽| 国产免费又黄又爽又色| 日韩精品免费视频一区二区三区 | 人人妻人人看人人澡| 色5月婷婷丁香| 亚洲,欧美,日韩| 亚洲久久久国产精品| 99re6热这里在线精品视频| 熟女av电影| 国产伦理片在线播放av一区| 赤兔流量卡办理| 夜夜爽夜夜爽视频| 99热这里只有是精品50| 欧美3d第一页| 国产精品伦人一区二区| 国产精品久久久久久精品古装| 啦啦啦视频在线资源免费观看| 成人影院久久| 亚洲情色 制服丝袜| 中国国产av一级| av天堂久久9| 国产综合精华液| 一级毛片久久久久久久久女| 观看美女的网站| 久久99热这里只频精品6学生| 丰满乱子伦码专区| 激情五月婷婷亚洲| 国产高清国产精品国产三级| 一级毛片久久久久久久久女| 日本av手机在线免费观看| 精品国产国语对白av| 啦啦啦视频在线资源免费观看| 国产男女内射视频| 噜噜噜噜噜久久久久久91| 一级a做视频免费观看| 亚洲欧洲日产国产| 国产亚洲午夜精品一区二区久久| 亚洲欧美成人综合另类久久久| 美女主播在线视频| 3wmmmm亚洲av在线观看| 亚洲精品亚洲一区二区| 亚洲精品,欧美精品| 免费人妻精品一区二区三区视频| 日本免费在线观看一区| 国产男女超爽视频在线观看| 成人免费观看视频高清| h日本视频在线播放| 亚洲成色77777| 伊人久久精品亚洲午夜| 在线精品无人区一区二区三| 免费看光身美女| 夜夜看夜夜爽夜夜摸| 国产在线免费精品| 国产欧美亚洲国产| 大香蕉久久网| 免费观看在线日韩| 纵有疾风起免费观看全集完整版| 亚洲欧美精品自产自拍| 男人舔奶头视频| 亚洲精品,欧美精品| 看非洲黑人一级黄片| 最近最新中文字幕免费大全7| 少妇被粗大猛烈的视频| 极品人妻少妇av视频| 日韩中文字幕视频在线看片| 久久久精品94久久精品| 国产精品欧美亚洲77777| 在线观看国产h片| 在线观看免费高清a一片| 热99国产精品久久久久久7| 99热这里只有是精品在线观看| 免费黄色在线免费观看| 亚洲成人一二三区av| a级毛色黄片| 在线亚洲精品国产二区图片欧美 | 美女内射精品一级片tv| 18禁在线无遮挡免费观看视频| 人人妻人人添人人爽欧美一区卜| 校园人妻丝袜中文字幕| 国产在视频线精品| 男人和女人高潮做爰伦理| 国产片特级美女逼逼视频| 欧美精品亚洲一区二区| 99热这里只有是精品在线观看| 日韩 亚洲 欧美在线| 女的被弄到高潮叫床怎么办| 中文字幕人妻熟人妻熟丝袜美| 国产精品秋霞免费鲁丝片| 大片电影免费在线观看免费| 国产日韩一区二区三区精品不卡 | 免费av不卡在线播放| 人体艺术视频欧美日本| 欧美精品一区二区大全| 亚洲精品久久久久久婷婷小说| 成年人免费黄色播放视频 | 亚洲精品视频女| 成人黄色视频免费在线看| 十分钟在线观看高清视频www | 国产精品久久久久久av不卡| 一本大道久久a久久精品| 下体分泌物呈黄色| 中文字幕制服av| 精品一品国产午夜福利视频| 亚洲,欧美,日韩| 国产高清不卡午夜福利| 午夜日本视频在线| 久久久久精品久久久久真实原创| 熟女电影av网| 黄片无遮挡物在线观看| www.色视频.com| 亚洲av.av天堂| 免费av中文字幕在线| 国产av国产精品国产| 插阴视频在线观看视频| 在线免费观看不下载黄p国产| a 毛片基地| 亚洲人成网站在线播| 丁香六月天网| 久久毛片免费看一区二区三区| 中文资源天堂在线| 国产av码专区亚洲av| 亚洲精品视频女| 人人妻人人澡人人看| 搡老乐熟女国产| 日本vs欧美在线观看视频 | 高清欧美精品videossex| 日韩 亚洲 欧美在线| 中文字幕亚洲精品专区| 成人美女网站在线观看视频| 国产精品一区二区三区四区免费观看| 全区人妻精品视频| 日韩精品有码人妻一区| 久久久久人妻精品一区果冻| 99九九线精品视频在线观看视频| 观看美女的网站| 国内精品宾馆在线| 成人二区视频| 久久婷婷青草| 女性生殖器流出的白浆| 午夜日本视频在线| 亚洲av.av天堂| 丰满迷人的少妇在线观看| 欧美 亚洲 国产 日韩一| 久热久热在线精品观看| 精品一区二区三卡| 日韩,欧美,国产一区二区三区| 免费观看av网站的网址| 国产熟女午夜一区二区三区 | av免费观看日本| 日韩中文字幕视频在线看片| av卡一久久| 曰老女人黄片| 亚洲不卡免费看| 国产又色又爽无遮挡免| 国产精品一区二区在线观看99| 免费观看av网站的网址| 免费播放大片免费观看视频在线观看| 大片电影免费在线观看免费| 观看美女的网站| a 毛片基地| 伊人久久国产一区二区| 精品人妻熟女毛片av久久网站| 色94色欧美一区二区| freevideosex欧美| 97超视频在线观看视频| 午夜免费鲁丝| 午夜激情福利司机影院| 韩国高清视频一区二区三区| 美女福利国产在线| 欧美日韩综合久久久久久| 国产熟女欧美一区二区| 久久久久人妻精品一区果冻| 内射极品少妇av片p| 亚洲人成网站在线观看播放| 精品国产露脸久久av麻豆| 欧美日韩精品成人综合77777| 最近最新中文字幕免费大全7| 狂野欧美激情性xxxx在线观看| 日日爽夜夜爽网站| 国产成人aa在线观看| 久久久久久人妻| 国产午夜精品一二区理论片| 国产av码专区亚洲av| 久久国产乱子免费精品| 九色成人免费人妻av| av国产久精品久网站免费入址| 精品久久久精品久久久| 狂野欧美白嫩少妇大欣赏| 十八禁高潮呻吟视频 | 国产熟女午夜一区二区三区 | 日韩不卡一区二区三区视频在线| 免费不卡的大黄色大毛片视频在线观看| 精品午夜福利在线看| 一区二区三区四区激情视频| 51国产日韩欧美| 精品亚洲成国产av| 黄色一级大片看看| av在线观看视频网站免费| 夫妻午夜视频| 插阴视频在线观看视频| 自线自在国产av| 午夜福利,免费看| 久久免费观看电影| 自拍欧美九色日韩亚洲蝌蚪91 | 欧美成人午夜免费资源| kizo精华| 国产免费福利视频在线观看| 精品国产乱码久久久久久小说| 亚洲自偷自拍三级| 少妇猛男粗大的猛烈进出视频| 欧美日韩av久久| 日本91视频免费播放| 国产精品一区二区在线观看99| 在线观看av片永久免费下载| 一本色道久久久久久精品综合| 综合色丁香网| 99热这里只有是精品在线观看| 亚洲第一av免费看| 人体艺术视频欧美日本| 欧美精品一区二区免费开放| 又粗又硬又长又爽又黄的视频| 久久精品久久精品一区二区三区| 狂野欧美白嫩少妇大欣赏| 亚洲国产毛片av蜜桃av| 色网站视频免费| 国产欧美日韩综合在线一区二区 | 亚洲精品日本国产第一区| 午夜精品国产一区二区电影| 午夜福利,免费看| 欧美亚洲 丝袜 人妻 在线| 精品久久久久久久久av| 一区二区三区乱码不卡18| 丝瓜视频免费看黄片| 久久久久国产网址| 一区二区三区精品91| 99九九线精品视频在线观看视频| 在现免费观看毛片| 一个人免费看片子| 九九在线视频观看精品| 最近最新中文字幕免费大全7| 久久影院123| 久久人人爽人人片av| 国产色婷婷99| 一级毛片黄色毛片免费观看视频| 国产精品无大码| 久久影院123| 国产日韩欧美视频二区| 国产成人一区二区在线| 日产精品乱码卡一卡2卡三| 国产精品一区二区在线不卡| 在线免费观看不下载黄p国产| 亚洲精品国产av蜜桃| 久久久久国产网址| 在线观看免费日韩欧美大片 | 亚洲精品乱久久久久久| 国产亚洲精品久久久com| 国产爽快片一区二区三区| 十八禁网站网址无遮挡 | 亚洲精品国产av成人精品| 丁香六月天网| 九九在线视频观看精品| 亚洲综合色惰| 能在线免费看毛片的网站| 丁香六月天网| 插逼视频在线观看| 爱豆传媒免费全集在线观看| 日韩免费高清中文字幕av| 99热这里只有是精品50| 插逼视频在线观看| 又粗又硬又长又爽又黄的视频| 99久久综合免费| 久久久久久久亚洲中文字幕| 我的老师免费观看完整版| 十分钟在线观看高清视频www | 精品亚洲乱码少妇综合久久| 久久久久久久久久久免费av| 我的女老师完整版在线观看| 夜夜骑夜夜射夜夜干| 欧美一级a爱片免费观看看| 久久久亚洲精品成人影院| 青春草亚洲视频在线观看| 日本黄色片子视频| 久久久久久久久久成人| 嫩草影院新地址| 亚洲四区av| 精品一品国产午夜福利视频| 亚洲一区二区三区欧美精品| 久久人人爽av亚洲精品天堂| 狠狠精品人妻久久久久久综合| www.av在线官网国产| 精品一区二区免费观看| 国语对白做爰xxxⅹ性视频网站| 一个人免费看片子| 久久99一区二区三区| 伦理电影免费视频| 国产精品久久久久久精品古装| 99国产精品免费福利视频| 桃花免费在线播放| 国产精品嫩草影院av在线观看| 熟妇人妻不卡中文字幕| 中文字幕人妻丝袜制服| 黑人猛操日本美女一级片| 久久精品久久久久久久性| 色5月婷婷丁香| 日韩中字成人| 久久国内精品自在自线图片| a级一级毛片免费在线观看| 如日韩欧美国产精品一区二区三区 | 国产精品久久久久久精品古装| 九草在线视频观看| 各种免费的搞黄视频| 久久精品夜色国产| 国产欧美亚洲国产| 日韩大片免费观看网站| 熟女人妻精品中文字幕| 尾随美女入室| 精品久久久久久电影网| 精品人妻熟女av久视频| 亚洲久久久国产精品| 精品一区二区免费观看| 黄色视频在线播放观看不卡| 欧美人与善性xxx| 国产欧美另类精品又又久久亚洲欧美| 久久国内精品自在自线图片| 亚洲人成网站在线观看播放| 亚洲熟女精品中文字幕| 国产成人免费无遮挡视频| 又爽又黄a免费视频| 交换朋友夫妻互换小说| 国产亚洲最大av| 狠狠精品人妻久久久久久综合| 免费看光身美女| 26uuu在线亚洲综合色| 日韩免费高清中文字幕av| 人人妻人人看人人澡| 最新中文字幕久久久久| 18禁在线无遮挡免费观看视频| 亚洲国产成人一精品久久久| 99视频精品全部免费 在线| 欧美另类一区| 熟妇人妻不卡中文字幕| 国产免费一级a男人的天堂| 成人漫画全彩无遮挡| 亚洲不卡免费看| 国产免费福利视频在线观看| 亚洲av电影在线观看一区二区三区| 日本黄色片子视频| 精品酒店卫生间| av又黄又爽大尺度在线免费看| 国产精品99久久99久久久不卡 | 亚洲综合精品二区| 久久狼人影院| 日韩av在线免费看完整版不卡| 我要看日韩黄色一级片| 中文字幕制服av| 午夜福利网站1000一区二区三区| 18禁在线播放成人免费| 亚洲不卡免费看| 亚洲av中文av极速乱| 国精品久久久久久国模美| 午夜视频国产福利| 久久久久精品久久久久真实原创| 六月丁香七月| 国产又色又爽无遮挡免| 少妇人妻 视频| 国产老妇伦熟女老妇高清| 99国产精品免费福利视频| 中国三级夫妇交换| 99视频精品全部免费 在线| 黄片无遮挡物在线观看| 国产免费一区二区三区四区乱码| 免费黄频网站在线观看国产| 汤姆久久久久久久影院中文字幕| 色视频在线一区二区三区| 91成人精品电影| 黄片无遮挡物在线观看| 老司机亚洲免费影院| 麻豆成人av视频| 91精品国产九色| 成人免费观看视频高清| 欧美另类一区| 精品人妻一区二区三区麻豆| 欧美亚洲 丝袜 人妻 在线| 热99国产精品久久久久久7| 伊人久久精品亚洲午夜| av又黄又爽大尺度在线免费看| 少妇熟女欧美另类| 天堂中文最新版在线下载| 成人18禁高潮啪啪吃奶动态图 | 亚洲av国产av综合av卡| 国产精品女同一区二区软件| 99热这里只有是精品50| av免费观看日本| 51国产日韩欧美| av.在线天堂| 亚洲,一卡二卡三卡| 另类亚洲欧美激情| 日日撸夜夜添| 亚洲av综合色区一区| 成人毛片a级毛片在线播放| 一区二区三区四区激情视频| 日韩欧美一区视频在线观看 | 国产中年淑女户外野战色| 欧美日韩综合久久久久久| 在线播放无遮挡| 欧美性感艳星| 老女人水多毛片| 日本av免费视频播放| 精品久久久精品久久久| 国产精品99久久久久久久久| 啦啦啦在线观看免费高清www| 中文字幕av电影在线播放| 国产欧美日韩精品一区二区| 看非洲黑人一级黄片| 成年人午夜在线观看视频| 国产精品一区二区三区四区免费观看| 亚洲av福利一区| 自线自在国产av| 亚洲精品日韩av片在线观看| 亚洲国产精品成人久久小说| 久久久国产精品麻豆| 精品一区在线观看国产| 欧美精品高潮呻吟av久久| 国产极品粉嫩免费观看在线 | 最黄视频免费看| 狂野欧美激情性bbbbbb| 全区人妻精品视频| 人人澡人人妻人| 午夜免费男女啪啪视频观看| 99久久中文字幕三级久久日本| 国产亚洲一区二区精品| 午夜福利网站1000一区二区三区| 日日摸夜夜添夜夜爱| 国产欧美日韩精品一区二区| 国产精品国产三级国产av玫瑰| 麻豆精品久久久久久蜜桃| 我的老师免费观看完整版| 日韩欧美精品免费久久| 亚洲欧美日韩东京热| 18禁在线播放成人免费| 久久久精品免费免费高清| 中文精品一卡2卡3卡4更新| 乱人伦中国视频| 久久精品国产自在天天线| 狂野欧美白嫩少妇大欣赏| 免费观看av网站的网址| 丰满少妇做爰视频| 国产精品.久久久| 国精品久久久久久国模美| 久久久久久久久久成人| 在线观看国产h片| av专区在线播放| xxx大片免费视频| 日本91视频免费播放| 国产一区二区三区av在线| 最近2019中文字幕mv第一页| 最近中文字幕2019免费版| 高清不卡的av网站| 久久久久久久久久成人| 国产日韩一区二区三区精品不卡 | 国产免费视频播放在线视频| 国产精品99久久久久久久久| 国产精品欧美亚洲77777| 欧美97在线视频| 亚洲国产精品专区欧美| 高清毛片免费看| 国产一区二区在线观看日韩| 美女视频免费永久观看网站| 亚洲欧美精品专区久久| 最近的中文字幕免费完整| av网站免费在线观看视频| 麻豆成人午夜福利视频| 亚洲欧美一区二区三区黑人 | 日日摸夜夜添夜夜爱| 国产精品99久久久久久久久| av一本久久久久| a级一级毛片免费在线观看| 免费av中文字幕在线| 青春草视频在线免费观看| 亚州av有码| 国产乱人偷精品视频| www.色视频.com| 亚洲av在线观看美女高潮| 久久精品久久久久久噜噜老黄| 99热6这里只有精品| 亚洲精品久久久久久婷婷小说| 五月天丁香电影| 男女免费视频国产| 我要看黄色一级片免费的| 免费观看av网站的网址| 一级毛片我不卡| 一级毛片黄色毛片免费观看视频| 久久午夜综合久久蜜桃| 国产伦理片在线播放av一区| 国产日韩一区二区三区精品不卡 | 狂野欧美激情性bbbbbb| 国内少妇人妻偷人精品xxx网站| 久久国内精品自在自线图片| 国产熟女欧美一区二区| 99九九在线精品视频 | 18禁在线播放成人免费| 赤兔流量卡办理| 在线观看国产h片| 一边亲一边摸免费视频| 亚洲国产毛片av蜜桃av| 国产欧美另类精品又又久久亚洲欧美| 欧美成人精品欧美一级黄| 亚洲精品日韩av片在线观看| 亚洲欧美成人综合另类久久久| 建设人人有责人人尽责人人享有的| 亚洲欧美一区二区三区黑人 | 日韩一区二区三区影片| 最新的欧美精品一区二区| 99热这里只有是精品在线观看| 中文天堂在线官网| 亚洲国产精品成人久久小说| 久久热精品热| 亚洲欧美一区二区三区国产| 中文天堂在线官网| 亚洲欧美中文字幕日韩二区| 边亲边吃奶的免费视频| 国产黄色视频一区二区在线观看| 亚洲国产精品一区二区三区在线| 亚洲高清免费不卡视频| 国产有黄有色有爽视频| 国产精品熟女久久久久浪| 我的老师免费观看完整版| 简卡轻食公司| 2022亚洲国产成人精品| 超碰97精品在线观看| 精品国产乱码久久久久久小说| 亚洲国产欧美日韩在线播放 | 熟女人妻精品中文字幕| 在线观看av片永久免费下载| 国产精品国产三级国产专区5o| 久久久午夜欧美精品| 韩国高清视频一区二区三区| 国产一区二区在线观看日韩| 丝瓜视频免费看黄片| 日韩大片免费观看网站| 国产淫语在线视频| 精品一区在线观看国产| 午夜福利,免费看| 啦啦啦中文免费视频观看日本| 人人妻人人爽人人添夜夜欢视频 | 丰满饥渴人妻一区二区三| 日本午夜av视频| 久久精品国产亚洲av天美| 一本色道久久久久久精品综合| 国产日韩欧美亚洲二区| 国产成人精品婷婷| 91精品一卡2卡3卡4卡| 最近中文字幕高清免费大全6| 不卡视频在线观看欧美| 大片免费播放器 马上看| 免费观看av网站的网址| 欧美日韩av久久| 国产精品成人在线| 高清毛片免费看| 日韩大片免费观看网站| 人妻 亚洲 视频| 91在线精品国自产拍蜜月| 国产精品一区二区在线观看99|