張騰倩,張偉溪,丁昌俊,張 靜,胡贊民,蘇曉華*
(1.林木遺傳育種國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,國(guó)家林業(yè)和草原局林木培育重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,中國(guó)林業(yè)科學(xué)研究院林業(yè)研究所,北京 100091;2.中國(guó)科學(xué)院遺傳與發(fā)育生物學(xué)研究所,北京 100101)
近年來(lái),隨著RNAi、基因編輯技術(shù)的不斷發(fā)展,轉(zhuǎn)錄抑制因子基因挖掘已成為基因工程育種研究的熱點(diǎn)之一。迄今為止,在植物中鑒定的最具代表性的轉(zhuǎn)錄抑制基序?yàn)镋AR(ethylene-responsive element binding factor-associated amphiphilic repression)基序,其包含一段保守序列LxLxL或DLNxxP,廣泛存在于各種轉(zhuǎn)錄抑制因子中[1]。EAR基序介導(dǎo)的轉(zhuǎn)錄抑制被認(rèn)為是與轉(zhuǎn)錄激活并存且極為重要的一種基因調(diào)節(jié)機(jī)制,研究表明,含有EAR基序的蛋白可以通過(guò)負(fù)調(diào)控基因表達(dá)在植物器官發(fā)育、激素應(yīng)答、抗病反應(yīng)及干旱脅迫響應(yīng)等生物學(xué)過(guò)程發(fā)揮重要的作用[2]。
MODD(mediator of OsbZIP46 deactivation and degradation)是由Tang等[3]首次在水稻(Oryzasativa)中鑒定的具有典型EAR基序的轉(zhuǎn)錄抑制因子,屬于NINJA(novel interactor of JAZ)家族蛋白。NINJA家族蛋白序列一致性高,都含有A、B、C等3個(gè)保守區(qū)域,其中A保守區(qū)域?yàn)镋AR基序,該基序是NINJA家族蛋白與協(xié)同抑制因子TPL(TOPLESS)和TPRs(TPL-related proteins)的互作位點(diǎn);B區(qū)域含有一段核定位信號(hào)序列;C區(qū)域?yàn)镹INJA蛋白與JAZ(jasmonate zim-domain)互作的位點(diǎn)[4-7]。
研究表明,水稻MODD基因在ABA信號(hào)傳導(dǎo)和干旱脅迫應(yīng)答中具有負(fù)調(diào)控作用[3]:干旱脅迫下,MODD過(guò)表達(dá)株系的存活率顯著低于野生型,而突變株系增加了對(duì)ABA的敏感性和抗旱性;MODD可通過(guò)EAR基序結(jié)合OsTPR3蛋白招募表觀調(diào)控因子HDA702抑制OsbZIP46(ABA信號(hào)傳導(dǎo)正調(diào)控因子)活性,通過(guò)OsPUB70介導(dǎo)的泛素化抑制OsbZIP46穩(wěn)定性,進(jìn)而調(diào)節(jié)水稻ABA信號(hào)傳導(dǎo)和抗旱性[3,8]。此外,MODD還能與水稻中其他干旱正調(diào)控因子OsbZIP23[9]和OsbZIP72[10]相互作用。但是目前關(guān)于MODD基因在木本植物中的研究還鮮見(jiàn)報(bào)道。
‘渤豐3號(hào)’楊(Populus×euramaricana‘Bofeng 3 hao’),雌株,屬歐美楊,是中國(guó)林業(yè)科學(xué)研究院林業(yè)研究所自主培育的短輪伐期速生優(yōu)良品種,已通過(guò)國(guó)家林木良種審定,具有速生、適應(yīng)性強(qiáng)等特性,適于遼寧、山東、河南等地生長(zhǎng)。我國(guó)干旱、半干旱地區(qū)面積廣闊,生態(tài)環(huán)境惡劣,鹽堿地總面積達(dá)9 900萬(wàn)hm2[11],因此挖掘林木抗逆脅迫相關(guān)基因具有重要意義。本研究基于水稻MODD氨基酸序列,通過(guò)同源比對(duì)的方法在歐美楊中得到3條PdMODD基因,并對(duì)其序列特征、親緣進(jìn)化關(guān)系、組織特異性及NaCl和聚乙二醇(PEG)脅迫下的表達(dá)模式進(jìn)行分析,為進(jìn)一步探究楊樹(shù)MODD基因功能提供理論依據(jù),并為培育優(yōu)良抗逆楊樹(shù)新品種提供候選基因資源。
供試材料為中國(guó)林科院林業(yè)研究所楊樹(shù)課題組自主選育的優(yōu)良新品種‘渤豐3號(hào)’楊。將生長(zhǎng)40 d的組培苗煉苗后置于光照時(shí)間為16 h、平均溫度25 ℃、相對(duì)濕度70%~80% 的溫室內(nèi)進(jìn)行水培,培養(yǎng)液為1/10 Hoagland營(yíng)養(yǎng)液,培養(yǎng)1周后選取生長(zhǎng)狀態(tài)良好且長(zhǎng)勢(shì)一致的‘渤豐3號(hào)’楊,分別用含有200 mmol/L NaCl和質(zhì)量分?jǐn)?shù)20%聚乙二醇(PEG6000)的培養(yǎng)液進(jìn)行處理,同時(shí)設(shè)以正常培養(yǎng)液培養(yǎng)的對(duì)照,在處理0、3、6、12、24、48 h時(shí)進(jìn)行根、莖、葉組織的取材,材料用液氮速凍后于-80 ℃冰箱保存?zhèn)溆?。每個(gè)處理至少3株,3次重復(fù)。
基于水稻MODD氨基酸序列,以美洲黑楊(PopulusdeltoidesWV94v2.1)為參考基因組,利用JGI(https://phytozome.jgi.doe.gov/pz/portal.html#!search?show=BLAST)進(jìn)行BLAST,篩選出同源性較高(期望值<1×10-10)的3條基因Podel.08G114100、Podel.10G158900和Podel.17G098500,分別以3條基因的CDS序列為參考設(shè)計(jì)引物,引物序列見(jiàn)表1。以‘渤豐3號(hào)’楊cDNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,得到的基因序列分別命名為PdMODD1、PdMODD2和PdMODD3(GenBank登錄號(hào):MW255958、MW255959、MW255960)。其中PCR反應(yīng)體系為:PCR Mix 10 μL,上下游引物(10 μmol/L)各1 μL,模板2 μL,去離子水6 μL。反應(yīng)程序?yàn)椋?5 ℃ 3 min;95 ℃ 30 s,58 ℃ 30 s,72 ℃ 1 min,35個(gè)循環(huán);72 ℃ 10 min。擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè),回收純化后連接pMD18-T載體,轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)DH5α,挑取陽(yáng)性單克隆經(jīng)菌液PCR驗(yàn)證后進(jìn)行測(cè)序。
表1 研究設(shè)計(jì)的引物序列Table 1 Primer sequences related in this study
利用NCBI中CD-search(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/Structure/cdd/wrpsb.cgi)預(yù)測(cè)PdMODD蛋白序列的保守結(jié)構(gòu)域。用ProtParam(http://au.expasy.org/tools/protparam.html)計(jì)算推導(dǎo)PdMODD基因所編碼蛋白質(zhì)的分子質(zhì)量、理化等電點(diǎn)、不穩(wěn)定系數(shù)和親水性平均系數(shù)。用Plant-mPLoc(http://www.csbio.sjtu.edu.cn/bioinf/plant-multi/)預(yù)測(cè)PdMODD蛋白的亞細(xì)胞定位。利用BioEdit對(duì)PdMODD的同源蛋白序列進(jìn)行多序列比對(duì);通過(guò)MEGA 5.05 軟件使用Neighbor-Joining(NJ)法對(duì)PdMODD及其同源蛋白進(jìn)行系統(tǒng)進(jìn)化分析,構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)。
利用BioEdit 軟件分別對(duì)目的基因PdMODD1、PdMODD2、PdMODD3 CDS序列進(jìn)行酶切位點(diǎn)分析,結(jié)合pBI121-GFP載體(由花椰菜花葉病毒35S啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)),選用SmaI作為酶切位點(diǎn),根據(jù)同源融合的方法設(shè)計(jì)特異性引物,即在引物兩端插入pBI121-GFP載體SmaI酶切位點(diǎn)兩端的同源序列(表1)。以測(cè)序正確的pMD18-T-PdMODD質(zhì)粒為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,使用Seamless Assembly Cloning Kit(clone smarter,USA)連接目的片段與線性pBI121-GFP載體,轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)DH5α,測(cè)序驗(yàn)證pBI121-PdMODD-GFP融合表達(dá)載體是否構(gòu)建成功。
通過(guò)基因槍轟擊法[12]分別將構(gòu)建好的pBI121-PdMODD-GFP融合表達(dá)載體轟擊到在MS培養(yǎng)基上預(yù)培養(yǎng)12 h的洋蔥(Alliumcepa)表皮細(xì)胞中,暗培養(yǎng)24 h 后在激光共聚焦顯微鏡(model LSM410,Zeiss,Jena,Germany)下進(jìn)行觀察和拍照,空載pBI121-GFP作為對(duì)照。
采用RNAprep Pure Plant Plus Kit(TIANGEN BIOTECH,Beijing,China)提取‘渤豐3號(hào)’楊不同組織總RNA。使用PrimeScriptTMRT Master Mix(TaKaRa,Japan)將1 μg總RNA反轉(zhuǎn)錄為cDNA,稀釋10倍用作qRT-PCR模板。肌動(dòng)蛋白(actin)為內(nèi)參基因,所用引物序列見(jiàn)表1。
使用LightCycler? 480熒光定量PCR系統(tǒng)進(jìn)行qRT-PCR,其反應(yīng)體系為:2×TB GreenPremixExTaqII(Tli RNaseH Plus)10 μL(TaKaRa,Japan),上下游引物(10 μmol/L)各0.8 μL,模板2 μL,去離子水6.4 μL。反應(yīng)程序?yàn)椋?5 ℃ 30 s;95 ℃ 5 s,58 ℃ 20 s,72 ℃ 30 s,45個(gè)循環(huán);80 ℃ 1 s。為確保實(shí)驗(yàn)結(jié)果的重現(xiàn)性,每個(gè)樣品重復(fù)3次。將qRT-PCR獲得的結(jié)果使用2-△△Ct法計(jì)算基因的相對(duì)表達(dá)量[13-14],采用SPSS 19.0單因素方差分析法(ANOVA)進(jìn)行差異顯著性分析。
圖1 ‘渤豐3號(hào)’楊PdMODD基因的克隆Fig.1 Cloning of PdMODD genes from P.euramaricina ‘Bofeng 3 hao’
以‘渤豐3號(hào)’楊cDNA為模板,以在美洲黑楊基因組中篩選的3條基因(Podel.08G114100、Podel.10G158900和Podel.17G098500)CDS序列為參考設(shè)計(jì)引物,PCR擴(kuò)增得到3條基因,分別命名為PdMODD1~3,擴(kuò)增產(chǎn)物于瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)(圖1)。膠回收產(chǎn)物純化后連接pMD18-T,轉(zhuǎn)化大腸桿菌感受態(tài)DH5α,將菌液PCR檢測(cè)得到的陽(yáng)性克隆進(jìn)行測(cè)序,測(cè)序獲得的PdMODD1~3基因序列與美洲黑楊基因組中對(duì)應(yīng)的序列相似度很高,分別為97%、99%和99%。
對(duì)PdMODD基因序列進(jìn)行分析,結(jié)果顯示PdMODD1~3的開(kāi)放閱讀框(ORF)長(zhǎng)度分別為1 065、1 065和1 074 bp,分別編碼354、354和357個(gè)氨基酸(表2)。理化性質(zhì)分析顯示,PdMODD分子質(zhì)量分別為38.83、38.71和39.56 ku,理論等電點(diǎn)為7.66、8.20和6.05,不穩(wěn)定系數(shù)為60.31、64.18和64.12,親水性平均系數(shù)為-0.847、-0.873和-0.775,均為不穩(wěn)定的親水性蛋白。亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè)推斷3條PdMODD基因編碼產(chǎn)物均定位于細(xì)胞核。
表2 PdMODD基因特性分析Table 2 Sequence feature analysis of PdMODD
利用NCBI中CD-search分析PdMODD蛋白保守結(jié)構(gòu)域,結(jié)果表明PdMODD蛋白均含有EAR、NINJA_B和 Jas保守結(jié)構(gòu)域,屬于NINJA家族。通過(guò)NCBI網(wǎng)站進(jìn)行BLAST比對(duì),發(fā)現(xiàn)PdMODD與NINJA家族AFP蛋白同源性較高,選擇相似度較高的毛果楊(Populustrichocarpa)、麻瘋樹(shù)(Jatrophacurcas)、木薯(Manihotesculenta)等6種植物AFP氨基酸序列進(jìn)行比對(duì),結(jié)果顯示,PdMODD與其他6種植物AFP氨基酸序列長(zhǎng)度相近且相對(duì)保守,均具有NINJA家族所特有的3個(gè)結(jié)構(gòu)域:N-端高度保守的LxLxL型EAR基序,139~177位相對(duì)保守的NINJA_B結(jié)構(gòu)域及C-端Jas結(jié)構(gòu)域(圖2)。
為了進(jìn)一步研究PdMODD與其他AFP蛋白的親緣關(guān)系,利用MEGA 5.05軟件鄰接法構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù),結(jié)果(圖3)顯示,PdMODD1與毛果楊PtAFP2親緣關(guān)系最近,并與擬南芥AtAFP1、木薯MeAFP2聚成一個(gè)分支;PdMODD2與麻瘋樹(shù)JcAFP2親緣關(guān)系最近,與擬南芥AtAFP2位于一個(gè)分支;PdMODD3與毛果楊PtAFP3-1親緣關(guān)系最近,與栓皮櫧QsAFP3、擬南芥AtAFP4聚于同一分支。
PtAFP2,PtAFP3-1,PtAFP3-2.毛果楊(Populus trichocarpa);JcAFP2.麻瘋樹(shù)(Jatropha curcas);PpAFP3.碧桃(Prunus persica);MeAFP2.木薯(Manihot esculenta);QsAFP3.栓皮櫧(Quercus suber);AT1G69260,AtAFP2,AtAFP3,AtAFP4:擬南芥AtAFP1。下同。The same below.圖2 PdMODD與其他植物AFP氨基酸序列多重比對(duì)Fig.2 Multiple alignment of PdMODD with other plant AFP amino acid sequences
圖3 PdMODD與其他植物AFP蛋白系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)Fig.3 Phylogenetic tree of PdMODD and other plant AFP proteins
GFP.熒光場(chǎng)fluorescence field;Bright.明場(chǎng)bright field;Merged.疊加場(chǎng)superposition field of fluorescence field and bright field;35S::GFP.GFP空載體empty carrier;35S::PdMODD-GFP.帶有目的基因PdMODD與GFP的融合表達(dá)載體fusion expression vector containing target gene PdMODD and GFP。圖4 PdMODD在洋蔥表皮中的亞細(xì)胞定位Fig.4 Subcellular localization of pBI121-PdMODD-GFP in onion epidermal cells
為了研究PdMODD的亞細(xì)胞定位,將PdMODD基因與GFP綠色熒光蛋白基因融合后構(gòu)建植物融合表達(dá)載體pBI121-PdMODD-GFP,通過(guò)基因槍瞬時(shí)轉(zhuǎn)化,分別將pBI121-PdMODD-GFP質(zhì)粒轉(zhuǎn)入洋蔥表皮細(xì)胞,暗培養(yǎng)24 h后在激光共聚焦顯微鏡下觀察PdMODD基因的定位情況。結(jié)果顯示(圖4),對(duì)照pBI121-GFP(35S::GFP)在細(xì)胞膜和細(xì)胞核內(nèi)都有綠色熒光分布,PdMODD1、PdMODD2、PdMODD3只在細(xì)胞核內(nèi)有綠色熒光分布,說(shuō)明PdMODD1~3均定位在細(xì)胞核中,與預(yù)測(cè)結(jié)果相一致。
通過(guò)qRT-PCR分析正常生長(zhǎng)條件下PdMODD基因在‘渤豐3號(hào)’楊不同組織的表達(dá)模式,結(jié)果顯示PdMODD1、PdMODD2和PdMODD3的表達(dá)模式相似,均在葉中表達(dá)量最高,莖中次之,根中表達(dá)量最低,其中PdMODD1和PdMODD3在莖和葉中的表達(dá)量均顯著高于根中(圖5),表明PdMODD基因在不同組織間的表達(dá)存在差異,具有組織特異性。
x.相對(duì)表達(dá)量relative expression level;*.P <0.05.圖5 ‘渤豐3號(hào)’楊PdMODD基因的組織特異性表達(dá)Fig.5 The relative expression of PdMODD in different organizations
在NaCl和PEG處理?xiàng)l件下,3 h時(shí)‘渤豐3號(hào)’楊頂端葉片開(kāi)始出現(xiàn)萎蔫下垂,隨著脅迫時(shí)間的推移,葉片萎蔫程度逐漸加重,48 h時(shí)萎蔫現(xiàn)象最明顯。為了探究PdMODD基因與鹽和干旱脅迫的應(yīng)答關(guān)系,采用qRT-PCR分析了NaCl和PEG處理下3個(gè)基因在根、莖、葉器官的表達(dá)模式。結(jié)果顯示,NaCl脅迫下,根中PdMODD1、PdMODD2 和PdMODD3的表達(dá)趨勢(shì)基本一致,在3~24 h的表達(dá)量均極顯著高于0 h(CK),其中PdMODD3表達(dá)量最高,在3、6、12、24 h的表達(dá)量分別高達(dá)對(duì)照的398.51、454.57、375.30、314.19倍。在莖中,PdMODD1~3基因均被顯著誘導(dǎo)表達(dá),隨著脅迫時(shí)間增長(zhǎng)表達(dá)趨勢(shì)近似于“N”形,表達(dá)量均在6 h升高至峰值,分別為對(duì)照的38.54、41.46和139.50倍。在葉中,3個(gè)基因的表達(dá)水平均顯著高于對(duì)照,且表達(dá)趨勢(shì)隨脅迫時(shí)間增長(zhǎng)呈倒“V”形,均在6 h出現(xiàn)峰值,表達(dá)量分別為對(duì)照的21.42、16.92、140.31倍(圖6A、6B、6C)。以上結(jié)果表明,PdMODD1、PdMODD2 和PdMODD3基因均能對(duì)鹽脅迫做出應(yīng)答。
對(duì)照0 h的數(shù)值均為0。The value at 0 h treatment is 0.x.相對(duì)表達(dá)量relative expression level。*和**分別表示相對(duì)于0 h在P<0.05和P <0.01水平上表達(dá)差異顯著。* and ** means the significant difference comparing with 0 h at P <0.05 and P <0.01 level.圖6 PdMODD基因在NaCl和PEG脅迫下的相對(duì)表達(dá)量Fig.6 Relative expression of PdMODD genes under NaCl and PEG stress
PEG脅迫下,根中PdMODD1、PdMODD2 和PdMODD3在所有脅迫時(shí)間點(diǎn)的表達(dá)量均顯著高于0 h,且3個(gè)基因表達(dá)趨勢(shì)大致相同,近似于倒“V”形,其中PdMODD1和PdMODD2在6 h表達(dá)量最高,分別是對(duì)照的25.16和15.70倍;PdMODD3在3 h達(dá)峰值,為對(duì)照的353.22倍。在莖中,PdMODD1和PdMODD2在大部分脅迫時(shí)間點(diǎn)未發(fā)生顯著變化,而PdMODD3在整個(gè)脅迫過(guò)程中均顯著上調(diào)表達(dá);在葉中,除PdMODD2在48 h的表達(dá)外,3個(gè)基因均極顯著高于對(duì)照,其中PdMODD1和PdMODD2表達(dá)模式基本一致,在6 h表達(dá)量最高,分別為對(duì)照的37.646和23.56倍,PdMODD3在3 h最高,是對(duì)照的181.11倍(圖6D、6E、6F)。結(jié)果表明PdMODD1、PdMODD2 和PdMODD3可能參與了‘渤豐3號(hào)’楊干旱脅迫應(yīng)答。
已有研究表明,含有EAR基序的轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)劑在植物防御和逆境脅迫過(guò)程中發(fā)揮著重要的調(diào)節(jié)作用[1-2,15-16]。如調(diào)控植物的抗病反應(yīng),在擬南芥中過(guò)表達(dá)NIMIN1增強(qiáng)了植株對(duì)病原體的敏感性[17];過(guò)表達(dá)NRR降低了水稻植株對(duì)病原體的抗性[18]。調(diào)節(jié)植物的鹽和干旱脅迫響應(yīng),如過(guò)量表達(dá)AtERF4導(dǎo)致擬南芥對(duì)干旱更為敏感[19]。最近有研究表明AtERF4還可以負(fù)調(diào)控?cái)M南芥的鐵缺乏反應(yīng)[20];在水稻中過(guò)表達(dá)OsAP2-39基因,增加了植株對(duì)干旱的敏感性,導(dǎo)致種子數(shù)和生物量的下降[21];過(guò)表達(dá)OsDERF1降低了水稻植株對(duì)干旱的耐受性,而敲除OsDERF1的水稻對(duì)干旱耐受性增強(qiáng)[22]。突變水稻OsERF3基因的EAR基序,植株表現(xiàn)出更強(qiáng)的抗旱性[23]。缺失EAR基序的SlERF3(SlERF3ΔRD)在番茄(Solanumlycopersicum)中過(guò)表達(dá)誘導(dǎo)了PR1、PR2、PR5等致病相關(guān)蛋白基因的表達(dá),增強(qiáng)了番茄對(duì)青枯病的耐受性。此外,在擬南芥和番茄中過(guò)表達(dá)SlERF3ΔRD可增強(qiáng)植物的耐鹽性[24]。缺失EAR基序的鋅指蛋白ZFP182在煙草和水稻中的過(guò)表達(dá)均可提高植物對(duì)鹽脅迫的耐受性[25]。通過(guò)對(duì)PdMODD氨基酸保守結(jié)構(gòu)域分析,發(fā)現(xiàn)PdMODD具有保守的EAR基序,因此初步推測(cè)PdMODD基因可能會(huì)在歐美楊逆境脅迫中起重要的調(diào)節(jié)作用。
PdMODD基因均定位于細(xì)胞核,與擬南芥[26]、小麥[27]、唐菖蒲[28]AFP基因相同,表明其可能會(huì)作為轉(zhuǎn)錄調(diào)節(jié)因子在細(xì)胞核中行使功能。通過(guò)系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹(shù)進(jìn)一步研究顯示PdMODD1蛋白與PtAFP2親緣關(guān)系最近,并與AtAFP1、MeAFP2聚成一個(gè)分支,其中GJI數(shù)據(jù)庫(kù)中功能注釋信息顯示PtAFP2和MeAFP2能參與植物的轉(zhuǎn)錄負(fù)調(diào)控,AtAFP1可負(fù)向調(diào)控ABA應(yīng)答[4];PdMODD2蛋白與AtAFP2位于一個(gè)分支,研究發(fā)現(xiàn)AtAFP2與AtAFP1相同,均能通過(guò)EAR結(jié)構(gòu)域與TPL蛋白互作進(jìn)而介導(dǎo)ABI5(ABA-insensitive 5)的轉(zhuǎn)錄負(fù)調(diào)節(jié)ABA應(yīng)答,此外AtAFP1或AtAFP2的突變可導(dǎo)致植株對(duì)ABA和鹽敏感性增加[4,26];PdMODD3與PtAFP3-1親緣關(guān)系最近,并與AtAFP4聚于同一分支,其中PtAFP3-1被預(yù)測(cè)可參與轉(zhuǎn)錄負(fù)調(diào)控,AtAFP4蛋白被報(bào)道在細(xì)胞核中起作用,是ABA和鹽脅迫反應(yīng)的負(fù)調(diào)節(jié)劑[29]。研究表明ABA是植物參與脅迫響應(yīng)的重要激素,可提高植物抗旱耐鹽性[30],因此,綜合以上結(jié)果進(jìn)一步推測(cè)PdMODD可能在楊樹(shù)逆境脅迫中起重要的調(diào)節(jié)作用。
為探究‘渤豐3號(hào)’楊PdMODD基因在鹽和干旱脅迫下的響應(yīng)模式,利用qRT-PCR技術(shù)分析了NaCl和PEG處理下3個(gè)PdMODD基因的表達(dá)特性。結(jié)果顯示,在兩種脅迫下PdMODD1~3在根、莖、葉中主要為顯著上調(diào)表達(dá)模式,說(shuō)明PdMODD1~3能被NaCl和PEG脅迫誘導(dǎo)表達(dá),這與擬南芥AFP[4]和水稻MODD[3]基因在鹽和干旱脅迫下的表達(dá)模式有一定的相似性,推測(cè)PdMODD1~3參與了‘渤豐3號(hào)’楊鹽和干旱脅迫應(yīng)答。
綜上所述,PdMODD1~3為NINJA家族成員,含有3個(gè)保守結(jié)構(gòu)域,其中一個(gè)為轉(zhuǎn)錄抑制基序EAR,定位于細(xì)胞核;3個(gè)基因均具有組織特異性,在葉中表達(dá)量最高,均能被NaCl和PEG脅迫誘導(dǎo)表達(dá),且分別與ABA響應(yīng)負(fù)調(diào)控因子AtAFP1、AtAFP2和AtAFP4位于一個(gè)分支,由此推測(cè)PdMODD1、PdMODD2 和PdMODD3可能會(huì)在‘渤豐3號(hào)’楊對(duì)鹽和干旱脅迫的響應(yīng)中起重要的調(diào)節(jié)作用。但3個(gè)基因是否會(huì)同水稻MODD功能一樣,即作為負(fù)調(diào)控因子參與歐美楊鹽和干旱脅迫響應(yīng),還需進(jìn)一步研究驗(yàn)證。在后續(xù)研究中筆者將繼續(xù)對(duì)PdMODD基因在‘渤豐3號(hào)’楊抗逆過(guò)程中的具體功能和作用機(jī)制進(jìn)行分析,為進(jìn)一步揭示楊樹(shù)抗逆分子機(jī)制、培育優(yōu)良抗逆楊樹(shù)新品種提供理論依據(jù)與候選基因資源。