吳建波, 王小丹
(中國科學(xué)院申扎高寒草原與濕地生態(tài)系統(tǒng)觀測試驗(yàn)站; 山地表生過程與生態(tài)調(diào)控重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,中國科學(xué)院、水利部成都山地災(zāi)害與環(huán)境研究所, 四川 成都 610041)
氮元素作為高寒草地生態(tài)系統(tǒng)主要限制營養(yǎng)元素之一,其含量增加勢必影響土壤物質(zhì)循環(huán)過程,尤其是已經(jīng)適應(yīng)氮限制的土壤物質(zhì)循環(huán)過程[1]。從資源分配理論上來說,土壤氮含量增加會(huì)提高碳和磷相關(guān)土壤酶活性[2-3],然而,高寒草地生態(tài)系統(tǒng)氮添加對(duì)碳水解酶和磷酸酶活性影響呈降低、提高或無影響,結(jié)論并不一致[4-8]。這可能是由于氮添加不僅影響土壤氮含量,還改變土壤pH、提高地上和地下生物量、增加植物組織氮含量、改變高寒草原植物群落組成和微生物數(shù)量與群落組成[9-15]。因此,土壤酶活性可能受到土壤氮有效性、土壤酸化以及植物和微生物群落的相互影響。
土壤氮含量增加會(huì)引起土壤酸化,改變酶分子構(gòu)象直接影響酶活性[8,16-20];土壤氮含量增加提高水解酶的活性,通過改變酶的底物直接降低氧化酶活性[21];土壤氮含量增加直接影響地上和地下生物量以及植物組織氮含量,間接影響土壤酶活性[8,22];土壤氮含量增加會(huì)引起植物和微生物磷限制,植物和微生物通過增加磷水解酶活性緩解磷限制[23-25]。土壤酶活性在氮添加后發(fā)生變化進(jìn)而影響土壤養(yǎng)分循環(huán)過程[8,11,20,23-25]。因此,研究土壤酶活性對(duì)氮增加的響應(yīng)及其影響土壤酶活性主要因素,對(duì)預(yù)測土壤養(yǎng)分循環(huán)以及土壤養(yǎng)分釋放具有重要意義。本研究擬通過對(duì)高寒草原通過添加氮素模擬氮沉降,從土壤-微生物-植物系統(tǒng)分析土壤酶活性在氮添加后變化趨勢及其與環(huán)境因子相互關(guān)系,以期揭示土壤酶變化趨勢及其主要影響因子,為高寒草原土壤物質(zhì)循環(huán)過程適應(yīng)氣候變化提供科學(xué)依據(jù)。
氮添加試驗(yàn)在西藏自治區(qū)那曲市申扎縣中國科學(xué)院高寒草地與濕地生態(tài)系統(tǒng)觀測試驗(yàn)站開展(30°57′ N,88°42′ E,海拔4 675 m)。該區(qū)域氣候?qū)儆诟咴瓉喓畮Ц珊导撅L(fēng)性氣候,年降水量大約為298. 6 mm,降雨主要發(fā)生在5~9月,降水量的季節(jié)和年際變化非常大。申扎縣年均太陽輻射為2 915.5 h,年均溫為0.4℃,最暖月均溫為6~12℃。無霜期短,植物生長期大約120天。年平均風(fēng)速為3.8 m·s-1,冬季多大風(fēng),8級(jí)以上大風(fēng)達(dá)104.3天[26]。土壤類型為高山草原土,土壤含沙量接近77%,土壤pH約為8.2。試驗(yàn)場地自2013年開始圍封,試驗(yàn)草地圍封前屬于中度退化。植物群落以紫花針茅(Stipapurpurea)和青藏苔草(Carexmoorcroftii)為優(yōu)勢種,昆侖蒿(Artemisiananschanica)和弱小火絨草(Leontopodiumnanum)為伴生種,植被覆蓋度大概在30%左右。
試驗(yàn)于2013年6月開始,采用拉丁方區(qū)組設(shè)計(jì),模擬氮沉降量添加氮(N)的量為0 g·m-2(CK),2 g·m-2(N2),5 g·m-2(N5)和 10 g·m-2(N10),共4個(gè)處理,每個(gè)處理設(shè)6個(gè)重復(fù),樣地共劃分24個(gè)面積均為4 m×4 m的固定樣地,樣地之間設(shè)有l(wèi) m寬的緩沖隔離帶(圖1)。用硝酸銨作為模擬氮沉降的氮源,將硝酸銨分兩次在每年的6月和7月添加,將相應(yīng)質(zhì)量的硝酸銨溶解在1 L水中,然后噴灑每個(gè)樣地內(nèi)。在CK樣地內(nèi)噴灑1 L水。
圖1 試驗(yàn)景觀圖Fig.1 The aerial map of experiment
在2017年8月中旬,在每個(gè)樣地內(nèi)選取1 m×1 m的樣方,用剪刀采集地上部植物,并收集凋落物;然后在1 m×1 m的樣方內(nèi)中間選取0.5 m × 0.5 m的樣方,用直徑6 cm土鉆,采用對(duì)角線法采集0~20 cm的土壤,用孔徑2 mm土壤篩將采集土壤中的植物根系挑出,然后將土壤混勻,取1份放入保溫箱內(nèi),帶回實(shí)驗(yàn)室放入冰箱,4℃保存,進(jìn)行土壤理化性質(zhì)、微生物特征和土壤酶活性分析。將地上部帶回實(shí)驗(yàn)室,將其放入烘箱105℃,殺青20 min。將洗凈的根系、凋落物和殺青后的地上部放入烘箱內(nèi),70℃烘干48 h,然后用電子天平稱重(0.01 g)。
土壤pH值采用玻璃電極法按土水比1∶2.5測定[27];土壤有機(jī)質(zhì)含量采用重鉻酸鉀滴定法測定[27];可溶性有機(jī)碳含量利用超純水浸提-有機(jī)碳分析儀(Multi N/C 3100,Analytik,Germany)測定[28]。全氮含量采用半微量凱氏定氮法測定[27];全磷含量采用高氯酸-硫酸-鉬銻抗法比色法測定[26];有效磷含量采用碳酸氫鈉-鉬銻抗法比色法測定[27];銨態(tài)氮、硝態(tài)氮和可溶性總氮含量采用連續(xù)流動(dòng)分析儀(AA3)直接測定[29];土壤可溶性有機(jī)氮含量用可溶性總氮減去硝態(tài)氮和銨態(tài)氮[14];根系纖維素和根系木質(zhì)素含量采用范式纖維素法測定[30]。纖維素酶、蔗糖酶、過氧化氫酶、多酚氧化酶、脲酶和中性磷酸酶活性采用雙抗體一步夾心法酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)試劑盒,依次加入標(biāo)本、標(biāo)準(zhǔn)品、HRP標(biāo)記的檢測抗體,經(jīng)過溫育并徹底洗滌,用底物顯色后,用酶標(biāo)儀在450 nm波長下測定吸光度(OD值),計(jì)算樣品濃度[31]。微生物碳和微生物氮含量采用氯仿熏蒸法測定[32]。細(xì)菌和真菌數(shù)量采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法測定[33]。
土壤酶活性對(duì)不同氮添加水平的響應(yīng)采用單因素方差分析(Duncan’s post-hoc檢驗(yàn),P<0.05);土壤酶活性與植物特征、土壤特征和微生物特征相關(guān)性采用Pearson相關(guān)性分析(雙尾)。單因素方差分析和相關(guān)性分析采用軟件SPSS 21.0(SPSS,Inc.,Chicago,USA)分析。為了消除數(shù)據(jù)的不穩(wěn)定性和異方差性,將植物特征、土壤特征、微生物特征和酶活性數(shù)據(jù)進(jìn)行自然對(duì)數(shù)ln(x+1)轉(zhuǎn)換,然后采用軟件Canoco 5.0 (Microcomputer Power,Ithaca,NY,USA)進(jìn)行冗余分析。
氮添加顯著影響了高寒草原土壤酶活性(表1)。蔗糖酶、纖維素酶、多酚氧化酶和過氧化氫酶活性隨著氮添加濃度增加而顯著降低,纖維素酶活性從3 611.64 U·g-1顯著降到2 152.89 U·g-1(P<0.05);蔗糖酶活性從3.17 U·g-1顯著降到1.87 U·g-1(P<0.05),多酚氧化酶活性從21 013.98 U·g-1顯著降到13 903 U·g-1(P<0.05),過氧化氫酶活性從3.26 U·g-1顯著降到1.84 U·g-1(P<0.05)。但是脲酶和中性磷酸酶活性隨著氮添加濃度增加而顯著增加,脲酶活性從350.92 U·g-1顯著增加到536.23 U·g-1(P<0.05),中性磷酸酶活性從0.42 U·g-1顯著增加到0.66 U·g-1(P<0.05)。
表1 氮添加對(duì)土壤酶活性的影響Table 1 Changing of soil enzyme activitity under different amount of nitrogen addition
氮添加顯著影響了高寒草原植物群落特征(表2)。根系生物量和凋落物量隨著氮添加濃度增加而顯著增加,根系生物量從28.18 g·m-2顯著增加到46.36 g·m-2(P<0.05);凋落物量從0.33 g·m-2顯著增加到6.61 g·m-2(P<0.05)。根系纖維素含量不受氮添加的影響。根系木質(zhì)素含量隨著氮添加濃度增加而顯著降低,從61.68 %顯著降低到37.48%(P<0.05)。
表2 氮添加對(duì)植物特征的影響Table 2 Changes in plant property under different amount of nitrogen addition
氮添加顯著影響了部分土壤特征(表3)。土壤pH、土壤有機(jī)質(zhì)含量、土壤總氮含量和有效磷含量未顯著受到氮添加的影響。可溶性有機(jī)碳含量、硝態(tài)氮含量、銨態(tài)氮含量和可溶性有機(jī)氮含量隨著氮添加量的增加逐漸增加??扇苄杂袡C(jī)碳含量從13.93 mg·kg-1逐漸增加到17.87 mg·kg-1(P<0.05)。硝態(tài)氮含量從9.16 mg·kg-1逐漸增加到26.56 mg·kg-1(P<0.05)。銨態(tài)氮含量從0.63 mg·kg-1逐漸增加到2.37 mg·kg-1(P<0.05)。可溶性有機(jī)氮含量從3.93 mg·kg-1逐漸增加到9.77 mg·kg-1(P<0.05)??偭缀康砑雍箫@著降低,從0.43 g·kg-1逐漸降到0.41 g·kg-1(P<0.05)。
Pearson相關(guān)性分析結(jié)果表明蔗糖酶、纖維素酶、多酚氧化酶和過氧化氫酶活性與土壤可溶性有機(jī)碳含量呈現(xiàn)顯著的負(fù)相關(guān)關(guān)系(表4,分別為:R2=—0.995,P<0.01;R2=—0.984,P<0.05;R2=—0.988,P<0.05;R2=—0.999,P<0.01);蔗糖酶、纖維素酶、多酚氧化酶和過氧化氫酶活性與可溶性有機(jī)氮含量呈顯著負(fù)相關(guān)關(guān)系(表4,分別為:R2=—0.969,P<0.05;R2=—0.966,P<0.05;R2=—0.952,P<0.05;R2=—0.987,P<0.05);蔗糖酶和多酚氧化酶與銨態(tài)氮含量呈顯著負(fù)相關(guān)關(guān)系(表4,分別為:R2=—0.952,P<0.05;R2=—0.970,P<0.05)。脲酶和中性磷酸酶活性與土壤可溶性有機(jī)碳含量呈顯著正相關(guān)關(guān)系(表4,分別為:R2=0.973,P<0.05;R2=0.980,P<0.05);脲酶和中性磷酸酶活性與銨態(tài)氮含量呈顯著正相關(guān)關(guān)系(表4,分別為:R2=0.980,P<0.05;R2=0.975,P<0.05)。
表3 土壤特征對(duì)不同氮添加水平的響應(yīng)Table 3 Changes in soil property under different amount of nitrogen addition
表4 土壤特征與土壤酶活性Pearson相關(guān)性分析Table 4 Correlationship between soil properties and soil enzyme activity by Pearson analysis
Pearson相關(guān)性分析結(jié)果表明蔗糖酶、纖維素酶、多酚氧化酶和過氧化氫酶活性與凋落物量呈顯著負(fù)相關(guān)關(guān)系(表5,分別為:R2=-0.975,P<0.05;R2=-0.982,P<0.05;R2=-0.970,P<0.05;R2=-0.994,P<0.01);纖維素酶、多酚氧化酶和過氧化氫酶活性與根系木質(zhì)素含量呈顯著正相關(guān)關(guān)系(表5,分別為:R2=0.964,P<0.05;R2=0.957,P<0.05;R2=0.963,P<0.05);脲酶和磷酸酶與凋落物量呈顯著正相關(guān)關(guān)系(表5,分別為:R2=0.981,P<0.05;R2=0.981,P<0.05)。
表5 植物特征與土壤酶活性Pearson相關(guān)性分析Table 5 Correlationship between plant properties and soil enzyme activity by Pearson analysis
Pearson相關(guān)分析結(jié)果表明蔗糖酶、纖維素酶、多酚氧化酶和過氧化氫酶活性與微生物碳含量呈顯著的負(fù)相關(guān)關(guān)系(表6,分別為:R2=-0.969,P<0.05;R2=-0.996,P<0.05;R2=-0.987,P<0.05;R2=-0.983,P<0.01)。脲酶和磷酸酶活性與微生物碳含量呈顯著的正相關(guān)關(guān)系(表6,分別為:R2=0.990,P<0.01;R2=0.992,P<0.01)。
表6 微生物特征與土壤酶活性Pearson相關(guān)性分析Table 6 Correlationship between soil microbial properties and soil enzyme activity by Pearson analysis
冗余分析(RDA)結(jié)果表明:第一和二排序軸累計(jì)解釋率分別為98.75%和0.72%(圖2),RDA前2個(gè)排序軸保留了土壤酶活性數(shù)據(jù)總方差的99.47%,即各環(huán)境要素中植物特征3個(gè)因子(根系木質(zhì)素含量、根系纖維素含量和凋落物量)解釋了土壤酶活性特征的99.47%。根系木質(zhì)素含量對(duì)蔗糖酶、纖維素酶、多酚氧化酶和過氧化氫酶活性影響較大,而凋落物量和根系纖維素含量對(duì)脲酶和中性磷酸酶活性影響較大(圖2)。
圖2 土壤酶活性與土壤、微生物和植物特征冗余分析(RDA)Fig.2 Redundancy analysis between soil enzyme activity and soil,plant and microbial properties
氮添加顯著影響了高寒草原土壤酶活性。蔗糖酶和纖維素酶活性在氮添加后顯著降低(P<0.05,表1),這與在高寒草甸研究結(jié)果相一致[4-5]。從相關(guān)性分析可以看出蔗糖酶和纖維素酶與微生物碳和可溶性有機(jī)碳呈顯著負(fù)相關(guān)關(guān)系(表4,6),這可能是由于氮添加增加植物根部生長,增加根系分泌物,微生物會(huì)優(yōu)先利用相對(duì)易分解的底物,從而減少了土壤有機(jī)質(zhì)的分解[34-38]。過氧化氫酶和多酚氧化酶活性在氮添加顯著降低(P<0.05,表1),這與草地生態(tài)系統(tǒng)研究結(jié)果相一致[2,39]。氧化酶對(duì)木質(zhì)素降解、腐殖化、碳礦化和溶解有機(jī)碳輸出具有重要作用[40],相關(guān)性分析表明氧化酶活性與根系木質(zhì)素含量呈顯著的正相關(guān)關(guān)系,氮添加會(huì)降低了根系木質(zhì)素含量(P<0.05,表2),另外氮添加增加了根系生物量和凋落物量,進(jìn)入土壤的都是新鮮的植物殘?bào)w,為酚氧化酶所利用形成腐殖質(zhì)的底物較少[41],從而降低了氧化酶活性[42-43]。土壤脲酶活性在氮添加顯著提高(P<0.05,表1),這與Jian等meta分析結(jié)果一致[24]。相關(guān)性分析結(jié)果表明脲酶活性與銨態(tài)氮的濃度呈正相關(guān)關(guān)系。脲酶主要來自植物根系的分泌物[44],而氮添加促進(jìn)了植株根系的生長,導(dǎo)致根系分泌物增加,增強(qiáng)脲酶活性。另外,微生物喜好低分子量的有機(jī)氮,也會(huì)增加脲酶活性[44,46]。磷酸酶活性在氮添加顯著提高(P<0.05,表1),這與范珍珍等meta分析結(jié)果相一致[25]。相關(guān)性分析結(jié)果表明磷酸酶活性與微生物碳、可溶性有機(jī)碳和銨態(tài)氮含量呈顯著的正相關(guān)關(guān)系,從資源分配理論來說,由于氮添加增加了植物和微生物磷的限制[47-49],植物和微生物提高磷酸酶活性緩解磷限制[11,23,50],增加土壤中可利用的有效態(tài)磷[4,23,39,51]。
通過對(duì)土壤酶活性與植物、微生物和土壤特征冗余分析,結(jié)果表明土壤酶活性主要受到植物特征(凋落物量、根系纖維素含量和根系木質(zhì)素含量)的影響。許多研究表明氮添加導(dǎo)致土壤pH降低,直接或間接影響土壤酶活性[8,16-20,52]。但在本研究中,土壤pH沒有顯著受到氮添加的影響(表3),Pearson分析結(jié)果也表明土壤pH與土壤酶活性不存在顯著相關(guān)關(guān)系。因此,在氮添加后,土壤pH不是影響土壤酶活性的主要因素。
氮添加增加土壤中可利用氮素(銨態(tài)氮)含量(表3),緩解了氮素對(duì)高寒草原植物生長的限制,根系生物量的提高會(huì)增加根系分泌物進(jìn)入土壤中[34-38],同時(shí)顯著增加凋落物量,降低了根系木質(zhì)素含量(P<0.05,表2),這會(huì)改變微生物對(duì)碳源的利用,優(yōu)先利用易分解的碳源和氮源[8,45-46,53-54],導(dǎo)致纖維素酶、蔗糖酶和氧化酶活性降低[35-36,55]。根據(jù)資源分配理論,由于氮添加增加了植物和微生物的磷限制,磷缺乏會(huì)刺激植物磷饑餓反應(yīng)增加磷的吸收,促進(jìn)根系分泌物(包括有機(jī)酸、激素和化感物質(zhì)等[56-58])增加,進(jìn)而引起植物調(diào)節(jié)根系微生物組成,增加磷酸酶活性,例如通過與叢枝菌根真菌及其共生內(nèi)生菌協(xié)作來滿足磷的營養(yǎng)吸收[59-60]。
在高寒草原生態(tài)系統(tǒng)中,氮添加5年后對(duì)土壤pH不存在顯著影響,但是緩解了植物生長氮限制。氮添加增加根系生物量、凋落物量和降低了根系木質(zhì)素含量,增加土壤中易分解的碳資源含量,這導(dǎo)致與碳相關(guān)的水解酶活性(蔗糖酶、纖維素酶活性、多酚氧化酶和過氧化氫酶)下降。根據(jù)資源分配理論,氮添加增強(qiáng)了植物和微生物生長的磷限制,導(dǎo)致磷酸酶活性增加。綜上所述,氮沉降引起的植物特征變化是導(dǎo)致土壤酶活性變異的主要因素。