李勇慧,于相麗,周曉君
(洛陽(yáng)師范學(xué)院 生命科學(xué)學(xué)院,河南 洛陽(yáng) 471934)
鐵線蓮屬(CLematis L.) 是毛茛科(Ranuncu-Laceae)植物,大約有300多種,河南省的北部、南部和西部山區(qū)是大多數(shù)鐵線蓮分布的地區(qū)[1]。鐵線蓮有較高的藥用價(jià)值,如治療風(fēng)濕、腫瘤,也有利于利尿等,這就使它的經(jīng)濟(jì)價(jià)值也非常高[2]。另外,鐵線蓮屬植物有許多品種,花型多種多樣,顏色艷麗,再加上葉片的修飾,使鐵線蓮具有較高的觀賞價(jià)值,在城市綠化方面被廣泛使用[3-4]。簡(jiǎn)單重復(fù)序列(simple sequence repeat,SSR)亦可稱為微衛(wèi)星(microsatellite),是目前最常用的微衛(wèi)星標(biāo)記之一,在真核生物的基因組編碼區(qū)以及非編碼區(qū)廣泛地分布[5]。可以根據(jù)已知的側(cè)翼序列設(shè)計(jì)出引物用于PCR擴(kuò)增,將所需的衛(wèi)星位點(diǎn)擴(kuò)增出來,最后使用聚丙烯凝膠電泳進(jìn)行跑膠,使實(shí)驗(yàn)結(jié)果更加直觀[6]。SSR分子標(biāo)記技術(shù)相比于其他技術(shù)有許多優(yōu)點(diǎn),如良好的多態(tài)性,穩(wěn)定性好,操作時(shí)難度不大,有較強(qiáng)的重復(fù)性,成本低等[7-8]。同時(shí)它的應(yīng)用前景非常廣泛,近幾年在引物篩選、植物種質(zhì)資源分析等多個(gè)方面都有它的身影。
目前對(duì)鐵線蓮遺傳多樣性的研究大多圍繞著細(xì)胞學(xué)和形態(tài)學(xué)這幾個(gè)方面[9],少數(shù)的有關(guān)于分子方面的研究多集中在ISSR分子標(biāo)記技術(shù)方面,如任夏萌等[10]利用ISSR分子標(biāo)記技術(shù)對(duì)大葉鐵線蓮的種質(zhì)遺傳多樣性進(jìn)行了分析。但近年來SSR技術(shù)廣泛應(yīng)用于各種植物的遺傳多樣性分析中,如吳文強(qiáng)等人[11]用SSR技術(shù)標(biāo)記藜麥基因組相對(duì)位點(diǎn)并進(jìn)行擴(kuò)增,然后用PAGE進(jìn)行檢測(cè),對(duì)其遺傳多樣性進(jìn)行分析,用同樣方法的還有張佳欣等人[12]。鐵線蓮屬植物SSR-PCR反應(yīng)體系的優(yōu)化及引物篩選方面尚未有人進(jìn)行研究。因此,本實(shí)驗(yàn)對(duì)鐵線蓮屬植物SSR-PCR反應(yīng)體系進(jìn)行優(yōu)化研究。
本實(shí)驗(yàn)從洛陽(yáng)市周邊不同區(qū)域的鐵線蓮屬植物中選取粗齒、陜西、太行、大葉和鈍萼五種鐵線蓮,并將其分別用 Tc、Ts、Tt、Td 和Te編號(hào),然后進(jìn)行實(shí)驗(yàn)(見表1)。
1.2.1 DNA提取
采用改良的CTAB法對(duì)這五種鐵線蓮進(jìn)行DNA提取。
1.2.2 檢測(cè)葉片DNA的提取結(jié)果
為了確定DNA是否被提取出來,本實(shí)驗(yàn)將采用瓊脂糖凝膠電泳法對(duì)DNA進(jìn)行檢驗(yàn),通過跑出來的條帶的亮度和清晰度來確定DNA是否被提取出來以及濃度高低。為了使實(shí)驗(yàn)結(jié)果更加準(zhǔn)確,用分光光度計(jì)對(duì)DNA的密度和其A260∶A280的比值來判斷DNA純度。
1.2.3 SSR-PCR反應(yīng)體系的建立與優(yōu)化
從剛提取的DNA中挑選出條帶明顯、亮度高的Ts1、Tc42、Tt51和Te8等4個(gè)DNA作為模板,用編號(hào)為30的引物對(duì)PCR反應(yīng)體系進(jìn)行優(yōu)化。首先優(yōu)化PCR的擴(kuò)增體系,詳情如下:2×pcr mixture 5 μL,DNA 模板0.3 μL/0.5 μL/0.7 μL;正向和反向引物各 0.5 μL。
其次優(yōu)化退火溫度,基于已經(jīng)優(yōu)化好的PCR的擴(kuò)增體系,選擇條帶明顯、亮度高的Ts1、Tc42、Tt51和Te8 4個(gè)DNA作為模板,然后將退火的溫度設(shè)置成51℃、53℃和55℃,篩選出最佳退火溫度。
1.2.4 PCR擴(kuò)增、電泳
用優(yōu)化好的PCR的最佳反應(yīng)體系和反應(yīng)程序,從已經(jīng)提取出來的DNA中選出最好的4個(gè)DNA,Ts1、Tc42、Tt51和Te8作為樣品,再挑選引物進(jìn)行擴(kuò)增。PCR擴(kuò)增體系為:正反引物各 0.5 μL,ddH2O 3.5 μL,2×pcr mixture 5 μL,DNA 模板 0.5 μL,總體系共計(jì) 10.0 μL。PCR的擴(kuò)增程序見表2,低溫保存產(chǎn)物。
表2 PCR擴(kuò)增程序
將電壓設(shè)置成300 V,電流為150 mA,聚丙烯酰胺凝膠電泳3 h,然后進(jìn)行銀染檢測(cè)。
以Ts1、Tc42、Tt51和Te8作為模板,用編號(hào)為30的引物對(duì)DNA模板的濃度梯度進(jìn)行篩選。篩選結(jié)果如圖1所示,表明當(dāng)體系中加入0.3 μL的DNA時(shí),膠片上的條帶不太清晰,當(dāng)體系中加入0.5 μL或者0.7 μL DNA時(shí),膠片上的條帶清晰。
圖1 DNA濃度梯度篩選
以Ts1、Tc42、Tt51和Te8作為模板,將30號(hào)引物的退火的溫度設(shè)置成51℃、53℃和55℃進(jìn)行溫度梯度篩選。篩選結(jié)果如圖2所示,在退火溫度為51℃和55℃時(shí),擴(kuò)增出來?xiàng)l帶不清晰,有拖尾現(xiàn)象,僅當(dāng)53℃時(shí),跑出來的條帶才清晰,即為30號(hào)引物的最佳退火溫度。
圖2 退火溫度梯度篩選
用已經(jīng)篩選出來的PCR最佳反應(yīng)體系和純合程度高的Ts1、Tc42、Tt51和Te8這4個(gè)DNA,對(duì)已有的100條引物進(jìn)行多態(tài)性篩選,從其中選擇出目標(biāo)區(qū)段間有清晰條帶的、多態(tài)性豐富的、穩(wěn)定性好的6條引物,以便用于后期的鐵線蓮種質(zhì)遺傳多樣性分析。篩選出的最佳引物為分別為 CH-10、CH-15、CH-28、CH-30、CH-96、CH-100,最佳退火溫度分別為 53、52、51、53、52、51℃,引物篩選結(jié)果如圖3-圖5所示。
圖3 15、30、67、96、63、56、41 號(hào)引物篩選圖
圖4 42、28、89、80、13、32、10、7、37 號(hào)引物篩選圖
圖5 46號(hào)擴(kuò)增結(jié)果
朱芹等人[13]在優(yōu)化刨花潤(rùn)楠的SSR-PCR體系時(shí)發(fā)現(xiàn)Taq酶的濃度對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果有很大的影響,并著重對(duì)其進(jìn)行優(yōu)化。本實(shí)驗(yàn)則從DNA濃度方面優(yōu)化體系。何仁鋒等[14]人在對(duì)菊花進(jìn)行SSR-PCR體系優(yōu)化時(shí)也曾對(duì)DNA濃度進(jìn)行優(yōu)化,并得出以下結(jié)論:一般而言,PCR擴(kuò)增過程中模板DNA不會(huì)對(duì)PCR的結(jié)果產(chǎn)生多大影響,對(duì)結(jié)果有較大影響的是DNA的濃度,當(dāng)實(shí)驗(yàn)用到DNA濃度較高時(shí),對(duì)實(shí)驗(yàn)的結(jié)果也不會(huì)有很大影響。而本實(shí)驗(yàn)所提取出來的DNA濃度較高,所以篩選最佳濃度時(shí)實(shí)驗(yàn)結(jié)果不太明顯,但由于CTAB法提取的DNA相較于試劑盒法容易降解,再加上實(shí)驗(yàn)做的時(shí)間較長(zhǎng),反復(fù)解凍DNA,使得DNA降解,造成跑膠時(shí)會(huì)出現(xiàn)拖尾現(xiàn)象。
同時(shí)退火溫度也影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果,本實(shí)驗(yàn)參照周利宏[15]在研究百合遺傳多樣性時(shí)的方法,并以30號(hào)引物為例,同樣設(shè)置3個(gè)溫度梯度以確定引物的最佳退火溫度,實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示當(dāng)退火溫度過低即為51℃時(shí),膠片上就會(huì)顯示出多條非特異性條帶,從而使實(shí)驗(yàn)的效果不佳;若退火時(shí)溫度太高即為55℃時(shí),則引物和DNA不能夠特異性地結(jié)合在一起,擴(kuò)增效果也不好,在53℃也就是30號(hào)引物的最佳退火溫度時(shí)才能得到清晰的條帶。最后用篩選出的最佳體系和最佳反應(yīng)程序篩選已有的100條引物,最終篩選出多態(tài)性較好的10號(hào)、15號(hào)、30號(hào)、46號(hào)、96號(hào)和100號(hào)引物,為日后進(jìn)行鐵線蓮種質(zhì)資源分析奠定基礎(chǔ)。