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    香水白掌的組培快繁技術(shù)研究

    2021-02-26 08:16:20張曉綱霍慧敏曹冬梅
    種子 2021年1期
    關(guān)鍵詞:因素水平

    梁 崢,張曉綱,霍慧敏,張 超,曹冬梅

    (1.山西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院園藝研究所,太原 030001;2.山西大寧隆泰雙創(chuàng)農(nóng)林科技有限公司,山西 大寧 042300)

    香水白掌(Spathiphyllumpatinii)原產(chǎn)于哥倫比亞熱帶雨林,屬天南星科白鶴芋屬多年生觀葉草本。其佛焰苞潔白開展,有微香,植株姿態(tài)清新悅目,葉墨綠挺拔,觀賞期長又極耐陰,非常適合室內(nèi)栽培[1],加之有一定的凈化室內(nèi)甲醛等有害氣體的作用,深受消費(fèi)者歡迎[2-4]。白掌屬植物栽培自20世紀(jì)初應(yīng)用于盆栽觀賞,80年代廣泛流行,目前盆栽白掌的年銷售額位列荷蘭盆花生產(chǎn)的第九位[5]。

    香水白掌的花粉退化嚴(yán)重,栽培不易結(jié)籽[6-7],生產(chǎn)上主要通過分株的方法進(jìn)行繁殖[8]。近年來,白掌類盆花的需求逐年上升,而周期長、數(shù)量少的分株繁殖方式已經(jīng)不能適應(yīng)市場需求,目前已有許多生產(chǎn)商把目光轉(zhuǎn)向增殖系數(shù)更大、種苗質(zhì)量更高的組培快繁生產(chǎn)方式[9-10]。

    關(guān)于白掌類觀葉植物工廠化栽培已有不少報(bào)道[10-15],但針對(duì)香水白掌進(jìn)行的組培快繁技術(shù)報(bào)道鮮見[16]。本研究以香水品種莖段為試材,通過外植體消毒、不定芽的誘導(dǎo)、增殖、生根等試驗(yàn),用統(tǒng)計(jì)分析的方法深入探討相關(guān)技術(shù)要點(diǎn),最終建立香水白掌的最適組培快繁體系,以期為其種苗的規(guī)?;a(chǎn)提供理論依據(jù)和技術(shù)支持。

    1 材料與方法

    1.1 材 料

    供試材料為12 cm盆徑香水白掌,植株生長健壯,無病蟲害,購自太原市鑫隆騰花卉市場。

    1.2 方 法

    1.2.1外植體消毒

    取香水白掌幼嫩莖段,去除葉片,留葉柄,用帶有頂端生長點(diǎn)的莖段作為外植體材料。將莖段切取約1 cm,置于燒杯中,滴加少許洗潔精后流水沖洗0.5~3 h。然后將外植體投入0.05% NaClO處理0~20 min,無菌水沖洗1次。將沖洗后的外植體置超凈工作臺(tái),用75%酒精消毒2~15 min,無菌水沖洗1次。使用0.1% HgCl2消毒5~20 min。無菌水沖洗4次,每次3 min。為探究以上主要步驟中處理時(shí)間對(duì)消毒效率的影響,安排四因素四水平正交試驗(yàn)(表1)。將消毒后的外植體切去莖段下部邊緣部分,留0.5 cm左右,生理向上置入MS培養(yǎng)基上培養(yǎng),每種處理接種20瓶,每瓶3個(gè)莖段,重復(fù)3次。培養(yǎng)溫度25 ℃,光照強(qiáng)度2 000 lx,每天光照12 h,30 d后觀察記錄污染率、褐化率和成活率(成活率(%)=(1-污染率-褐化率)×100%)。試驗(yàn)方案選擇及試驗(yàn)結(jié)果見表5。

    表1 外植體消毒方法的正交因素水平Table 1 Orthogonal factor level of explant disinfection method

    1.2.2初培培養(yǎng)基的篩選

    將經(jīng)過最適外植體消毒方法處理的外植體,接種于含有不同激素配比的初培培養(yǎng)基中,在不同的光照和溫度條件下培養(yǎng)。安排四因素四水平(表2)正交試驗(yàn),探究初培培養(yǎng)條件對(duì)誘導(dǎo)愈傷組織和不定芽的影響。每種處理接種20瓶,每瓶3個(gè)莖段,重復(fù)3次,每日光照12 h,30 d后統(tǒng)計(jì)不定芽和愈傷組織的誘導(dǎo)情況。試驗(yàn)方案選擇及試驗(yàn)結(jié)果見表7。

    表2 初培培養(yǎng)條件的正交因素水平Table 2 Orthogonal factor level of initial culture condition

    1.2.3不定芽的增殖培養(yǎng)

    將優(yōu)化的初培條件下培養(yǎng)的,生長狀況相同的不定芽置入不同激素組合的增殖培養(yǎng)基上。安排四因素四水平(表3)正交試驗(yàn),探究不同培養(yǎng)條件對(duì)不定芽增殖效果的影響。每種處理接種20瓶,每瓶3個(gè)莖段,重復(fù)3次,每日光照12 h,光照強(qiáng)度2 000 lx,30 d后觀察統(tǒng)計(jì)不定芽增殖情況,計(jì)算其增殖系數(shù)。

    表3 不定芽增殖培養(yǎng)條件的正交因素水平Table 3 Orthogonal factor level of adventitious bud proliferation culture

    增殖系數(shù)=(增殖培養(yǎng)后的芽數(shù)/接種芽數(shù))×100%。

    試驗(yàn)方案選擇及試驗(yàn)結(jié)果見表9。

    1.2.4生根培養(yǎng)

    取優(yōu)化的不定芽增殖培養(yǎng)條件下、生長狀況健康一致的幼苗,分別繼代于含有不同濃度大量元素和不同激素組合的生根培養(yǎng)基上。安排四因素二水平(表4)完全隨機(jī)試驗(yàn),探究不同培養(yǎng)條件對(duì)生根效果的影響。每種處理接種20瓶,每瓶3個(gè)幼苗,重復(fù)3次,每日光照12 h,光照強(qiáng)度2 000 lx,30 d后觀察統(tǒng)計(jì)生根情況。試驗(yàn)方案選擇及試驗(yàn)結(jié)果見表10。

    表4 生根培養(yǎng)條件的正交因素水平Table 4 Orthogonal factor level of rooting culture

    2 結(jié)果與分析

    2.1 外植體消毒

    采用L16(45)正交試驗(yàn)進(jìn)行外植體消毒,設(shè)第5列為誤差列,試驗(yàn)方案及結(jié)果見表5。極差分析結(jié)果(表5)表明,所試范圍內(nèi)各因素對(duì)污染率的影響主次順序?yàn)?.1% HgCl2>沖洗>0.05% NaClO>75%酒精。污染率隨0.1% HgCl2處理時(shí)間增加而明顯減小,在15 min水平和20 min水平變化不明顯;隨沖洗時(shí)間增加而減小,2 h水平與3 h水平變化不明顯;隨0.05% NaClO處理時(shí)間增加小幅減??;隨75%酒精處理時(shí)間增加變化不明顯。各因素對(duì)褐化率的影響主次順序?yàn)?.1% HgCl2>75%酒精>0.05% NaClO>沖洗。褐化率隨0.1% HgCl2處理時(shí)間增加而明顯增大;隨0.05%NaClO、沖洗時(shí)間和75%酒精處理時(shí)間變化不明顯。各因素對(duì)成活率的影響主次順序?yàn)?.1% HgCl2>沖洗>75%酒精>0.05% NaClO。成活率隨0.1% HgCl2處理時(shí)間增加先增大后減小,在15 min水平到達(dá)最高值;隨沖洗時(shí)間增加而增大,2 h水平與3 h水平變化不明顯;隨0.05% NaClO和75%酒精處理時(shí)間變化不明顯。最高成活率組合為A 3 B 4 C 4 D 3,即沖洗2 h+0.05% NaClO處理20 min+75%酒精處理20 min+0.1% HgCl2處理15 min。方差分析結(jié)果(表6)表明,0.1% HgCl2對(duì)褐化率的影響顯著(p<0.05),其他因素與指標(biāo)的組合均表現(xiàn)為不顯著。

    表5 外植體消毒方法的極差分析Table 5 Range analysis of explants disinfection methods

    表6 外植體消毒方法的方差分析Table 6 Variance analysis of disinfection methods of explants

    2.2 初培培養(yǎng)基的篩選

    采用L16(45)正交表進(jìn)行培養(yǎng)條件篩選試驗(yàn),設(shè)第5列為誤差列,試驗(yàn)方案及結(jié)果見表7。極差分析結(jié)果(表7)表明,所試范圍內(nèi)各因素對(duì)愈傷組織誘導(dǎo)率的影響主次順序?yàn)?-BA>NAA>溫度>光照。愈傷誘導(dǎo)率隨6-BA濃度增加而增加;隨NAA濃度變化不明顯,但在2 mg·L-1水平出現(xiàn)明顯降低;隨溫度和光照變化不明顯。最大愈傷組織誘導(dǎo)率組合為A 2 B 2 C 1 D 2,即光照1 000 lx+28 ℃+4 mg·L-16-BA+0.1mg·L-1NAA。各因素對(duì)不定芽誘導(dǎo)率的影響主次順序?yàn)楣庹?6-AB>NAA>溫度。不定芽誘導(dǎo)率隨光照強(qiáng)度增加呈先增大后減小趨勢,在2 000 lx水平達(dá)到最高值;隨6-BA濃度增加呈先增大后減小趨勢,在3 mg·L-1水平達(dá)到最高值;隨NAA濃度增加先增大后減小趨勢,在0.05 mg·L-1水平達(dá)到最高值;隨溫度增加先增大后減小趨勢,在25 ℃和28 ℃水平變化不明顯。最大不定芽誘導(dǎo)率組合為A 3 B 2 C 2 D 3和A 3 B 3 C 2 D 3,即光照2 000 lx+25 ℃/28 ℃+3 mg·L-16-BA+0.05 mg·L-1NAA。方差分析結(jié)果(表8)表明,各因素對(duì)愈傷組織和不定芽誘導(dǎo)率的影響均不顯著。

    表7 初培培養(yǎng)條件的極差分析Table 7 Range Analysis of initial culture

    表8 初培培養(yǎng)條件的方差分析Table 8 Analysis of variance of initial culture

    初培試驗(yàn)表明,愈傷組織誘導(dǎo)率均在60%以下,而不定芽誘導(dǎo)率在所試培養(yǎng)條件下能夠達(dá)到(98.89±1.92)%。故選擇不定芽誘導(dǎo)途徑作為初培培養(yǎng)方案較為合適。

    2.3 不定芽的增殖培養(yǎng)

    采用L16(45)正交表進(jìn)行培養(yǎng)條件篩選試驗(yàn),設(shè)第5列為誤差列,試驗(yàn)方案及結(jié)果見表9。極差分析結(jié)果(表9)表明,所試范圍內(nèi)各因素對(duì)不定芽增殖系數(shù)的影響主次順序?yàn)?-BA>Kt>溫度>NAA。不定芽增殖系數(shù)隨6-BA濃度增加而增大,在2 mg·L-1和3 mg·L-1水平變化不明顯;隨Kt濃度增加而增大,在0.2 mg·L-1和0.3 mg·L-1水平變化不明顯;隨溫度升高而增大,在28 ℃和31 ℃水平變化不明顯;隨NAA變化不明顯。最大不定芽增殖系數(shù)組合為A 3 B 3 C 3 D 2,即28 ℃+0.2 mg·L-1Kt+2 mg·L-16-BA+0.2 mg·L-1NAA。各因素對(duì)不定芽苗高的影響主次順序?yàn)镹AA>溫度>6-BA>Kt。不定芽苗高隨NAA濃度增加而增大;隨溫度升高先增大后減小,在28 ℃水平達(dá)到最高值;隨6-BA濃度增加先增大后減小,在1 mg·L-1水平達(dá)到最高值;隨Kt濃度增加而減小。最大不定芽苗高組合為A 3 B 1 C 2 D 1,即28 ℃+1 mg·L-16-BA+0.3 mg·L-1NAA。方差分析結(jié)果(表10)表明,6-BA對(duì)不定芽增殖系數(shù)的影響顯著(p<0.05),其他因素與指標(biāo)的組合均表現(xiàn)為不顯著。

    表9 增殖培養(yǎng)條件的極差分析Table 9 Range Analysis of proliferation culture

    表10 增殖培養(yǎng)條件的方差分析Table 10 Variance analysis of proliferation culture

    2.4 生根培養(yǎng)

    生根培養(yǎng)條件試驗(yàn)(表11)表明,各因素對(duì)生根率的影響主次順序?yàn)椋捍罅吭?NAA>IBA>苗高。最大生根率組合為:A 1 B 2 C 2 D 2和A 2 B 2 C 2 D 2,即苗高2~4 cm+1/2 MS+0.2 mg·L-1NAA+0.2 mg·L-1IBA。方差分析結(jié)果(表12)表明,大量元素對(duì)生根率的影響極顯著(p<0.01),NAA對(duì)生根率的影響顯著(p<0.05),IBA和苗高對(duì)生根率的影響不顯著。

    表11 生根培養(yǎng)條件的極差分析Table 11 Range analysis of rooting culture

    表12 生根培養(yǎng)條件的方差分析

    3 討 論

    外植體消毒方法的試驗(yàn)表明,0.1%HgCl2處理時(shí)間對(duì)于污染率、褐化率和成活率的影響均表現(xiàn)出決定性的作用。延長沖洗時(shí)間對(duì)降低污染率的貢獻(xiàn)在本試驗(yàn)中僅次于0.1% HgCl2,又由于最不容易引起褐化,導(dǎo)致其對(duì)最終成活率的貢獻(xiàn)明顯高于0.05% NaClO和75%酒精。因此在實(shí)際操作中,除了選擇適宜的0.1% HgCl2處理時(shí)間,也應(yīng)重視沖洗時(shí)間對(duì)于消毒的輔助效果。對(duì)于一些幼嫩的外植體,尤其是對(duì)0.1%HgCl2處理相對(duì)敏感的材料,適當(dāng)增加沖洗時(shí)間不僅能夠提升消毒效果,也有助于減輕由于0.1% HgCl2處理時(shí)間難以精確掌握而造成的褐化損失[17-19]。

    后期培養(yǎng)中發(fā)現(xiàn),在最大不定芽增殖系數(shù)組合28 ℃+0.2 mg·L-1Kt+2 mg·L-16-BA+0.2 mg·L-1NAA條件下,多次繼代的香水白掌會(huì)出現(xiàn)不同程度的玻璃化現(xiàn)象。這可能是由于長期在高增殖系數(shù)培養(yǎng)條件下,材料狀態(tài)趨于幼嫩和密集而引起的[20-21]。為了緩解玻璃化現(xiàn)象,需要定期將材料轉(zhuǎn)移至最大不定芽苗高組合28 ℃+1 mg·L-16-BA+0.3 mg·L-1NAA條件下,以增加幼苗的健壯程度。

    生根培養(yǎng)試驗(yàn)的結(jié)果表明,2~4 cm范圍內(nèi)苗高對(duì)生根率的影響很小。這意味著香水白掌在生根培養(yǎng)階段開始前,可能并不需要特意關(guān)注幼苗的健壯程度,幼嫩的小苗可以同時(shí)作為增殖繼代材料和生根煉苗的儲(chǔ)備用苗。

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