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    膠質(zhì)母細(xì)胞瘤中異常甲基化調(diào)控的蛋白編碼基因識(shí)別研究

    2021-02-05 05:39:58嵇江淮趙瀟瀟李乾鵬李冬果
    關(guān)鍵詞:甲基化探針調(diào)控

    嵇江淮 趙瀟瀟李乾鵬 安 奕 趙 磊 李冬果*

    (1.首都醫(yī)科大學(xué)生物醫(yī)學(xué)工程學(xué)院生物醫(yī)學(xué)信息學(xué)系,北京 100069;2.首都醫(yī)科大學(xué)宣武醫(yī)院麻醉手術(shù)科,北京 100053;3. 國(guó)家老年疾病臨床研究中心,北京 100053)

    膠質(zhì)母細(xì)胞瘤(glioblastoma, GBM)是人類最常見且致死率極高的一種中樞神經(jīng)系統(tǒng)腫瘤,發(fā)生率約占膠質(zhì)瘤的69%[1]。這種腦瘤具有高浸潤(rùn)性,預(yù)后差,患者的中位生存期大約只有一年[2]。近年來,隨著大量的蛋白編碼基因(protein-coding genes, PCGs)被發(fā)現(xiàn),編碼基因表達(dá)的失調(diào)被證明與疾病的進(jìn)程有密切關(guān)系[3-4]。有研究[5]表明GBM中EGFR基因表達(dá)顯著升高,促進(jìn)GBM患者細(xì)胞的凋亡。Meng等[6]發(fā)現(xiàn)TCTN1基因的過表達(dá)促進(jìn)GBM細(xì)胞的增生,并且TCTN1的過表達(dá)可以作為預(yù)測(cè)GBM患者的獨(dú)立預(yù)后因素。這些研究表明PCGs在GBM進(jìn)程中發(fā)揮非常重要的作用,但是這些研究主要關(guān)注PCGs的表達(dá)模式。目前,GBM中絕大部分PCGs的調(diào)控機(jī)制(特別是DNA甲基化調(diào)控機(jī)制)尚不清楚。

    DNA甲基化是表觀遺傳調(diào)控的一種重要模式。在基因啟動(dòng)子處的DNA甲基化對(duì)基因的表達(dá)具有重要的作用,并且參與到許多疾病的進(jìn)程中[7]。一般來說,基因啟動(dòng)子處的高甲基化往往抑制轉(zhuǎn)錄因子的組合并且下調(diào)甚至沉默癌癥抑制基因,基因啟動(dòng)子的低甲基化往往激活致癌基因[8]。研究[9]表明GBM中MGMT基因啟動(dòng)子甲基化和MGMT的表達(dá)具有很強(qiáng)的相關(guān)性。然而,這些研究?jī)H僅分析一些特殊的PCGs的DNA甲基化模式,并沒有系統(tǒng)分析腫瘤中PCGs的DNA甲基化的模式以及全面評(píng)估腫瘤中DNA甲基化對(duì)基因表達(dá)的調(diào)控關(guān)系。

    隨著高通量測(cè)序技術(shù)的發(fā)展,RNA-seq和Infnium 450k等眾多數(shù)據(jù)已經(jīng)應(yīng)用于癌癥分析。本研究系統(tǒng)整合多組學(xué)數(shù)據(jù),通過重新注釋DNA甲基化陣列,系統(tǒng)分析GBM進(jìn)程中PCGs的DNA甲基化調(diào)控模式。本研究將會(huì)幫助理解GBM中DNA甲基化的調(diào)控機(jī)制,為識(shí)別GBM生物標(biāo)志物和潛在的治療靶點(diǎn)提供新的見解。

    1 數(shù)據(jù)來源及方法

    1.1 數(shù)據(jù)的來源,整合和標(biāo)準(zhǔn)化

    GBM的DNA甲基化數(shù)據(jù)來自Infinium HM450k平臺(tái)[10],本研究從TCGA中下載GBM腫瘤樣本的HM450k數(shù)據(jù),從GEO(GSE41826[11-12],其中包含58個(gè)正常膠質(zhì)細(xì)胞樣本)中下載正常樣本的HM450k數(shù)據(jù)。正常數(shù)據(jù)是通過同一平臺(tái)用同樣方法獲得的。GBM表達(dá)譜數(shù)據(jù)來自于TCGA數(shù)據(jù)庫(kù),包括5個(gè)正常樣本數(shù)據(jù)和152個(gè)臨床樣本信息。為了保證數(shù)據(jù)的質(zhì)量,本研究挑選50個(gè)同時(shí)具有DNA甲基化數(shù)據(jù)和表達(dá)譜數(shù)據(jù)的樣本用作進(jìn)一步的分析。人類全基因組的注釋數(shù)據(jù)(V19)收集于GENCODE數(shù)據(jù)庫(kù)[13]。

    對(duì)下載的RNA-seq(counts)數(shù)據(jù)進(jìn)行l(wèi)og2轉(zhuǎn)換并使用R包“edgeR”[14]對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化,最終獲得PCGs的表達(dá)譜數(shù)據(jù)。由于HM450k數(shù)據(jù)存在一定的缺失值,所以,在構(gòu)建甲基化譜之前需要對(duì)含有缺失的數(shù)據(jù)進(jìn)行處理。K最近鄰填充算法 (K-nearest neighbor, KNN) 是用數(shù)據(jù)集中缺失數(shù)據(jù)的k個(gè)最近鄰來估計(jì)缺失值[15]。本研究計(jì)算在所有腫瘤樣本中具有缺失值的探針數(shù)量,并用“DMwR”包中的knnImputation函數(shù)補(bǔ)全剩余的缺失值,以評(píng)估甲基化探針的質(zhì)量。最終有89 512個(gè)探針被移除,獲得392 867個(gè)甲基化位點(diǎn)探針。

    1.2 PCGs甲基化譜的構(gòu)建

    本研究用映射到PCGs啟動(dòng)子區(qū)域探針的甲基化水平來構(gòu)建PCGs的甲基化譜。采用Zhi等[16]的重注釋方法將392 867個(gè)探針映射到PCGs的啟動(dòng)子區(qū)域(轉(zhuǎn)錄開始位點(diǎn)到上游10 kb區(qū)域內(nèi)),使用最接近每個(gè)轉(zhuǎn)錄開始位點(diǎn)的探針來確定PCGs啟動(dòng)子的DNA甲基化水平[17],從而構(gòu)建GBM相關(guān)的PCGs甲基化譜。

    1.3 不同甲基化模式PCGs功能的預(yù)測(cè)

    本研究使用基于線性模型設(shè)計(jì)的R包“l(fā)imma”[18]計(jì)算腫瘤和正常樣本之間的差異甲基化和差異表達(dá)。通過Benjamini-Hochberg方法校正P值。為了全面分析表達(dá)受對(duì)應(yīng)啟動(dòng)子異常甲基化調(diào)控的PCGs,分別將高甲基化的PCGs和低表達(dá)的PCGs及低甲基化的PCGs和高表達(dá)的PCGs取交集,得到兩種具有不同生物學(xué)意義的情況:高甲基化且低表達(dá)的PCGs及低甲基化且高表達(dá)的PCGs。

    為了預(yù)測(cè)不同甲基化模式下PCGs的功能,采用富集分析方法,對(duì)挑選出的PCGs進(jìn)行功能和通路的顯著性分析,使用“clusterProfiler”[19]包來預(yù)測(cè)不同甲基化模式下PCGs的功能。通過Benjamini-Hochberg方法校正P值,如果矯正后的P值≤0.05,該GO項(xiàng)和富集通路就認(rèn)為是顯著的。

    1.4 生存分析

    為了鑒別挑選出的PCGs是否具有良好的預(yù)后效果,本研究基于152個(gè)GBM患者的表達(dá)譜信息,依據(jù)中值將患者分為兩組。Kaplan-Meier生存分析和log-rank檢測(cè)被用來評(píng)估兩組患者的生存差異。

    所有的研究均使用R3.5.1完成。

    2 結(jié)果

    2.1 重注釋Infinium HM 450K陣列并構(gòu)建PCGs的DNA甲基化譜

    為了描繪PCGs的DNA甲基化調(diào)控模式,本研究將甲基化數(shù)據(jù)重新注釋到人類PCGs相關(guān)的啟動(dòng)子區(qū)域,共有125 442個(gè)探針落在14 684個(gè)PCGs啟動(dòng)子區(qū)域,通常每一個(gè)PCG都有幾個(gè)探針落在其啟動(dòng)子區(qū)域,在此僅保留最接近每個(gè)轉(zhuǎn)錄開始位點(diǎn)的探針來確定PCGs啟動(dòng)子的DNA甲基化狀態(tài)。

    2.2 整合差異甲基化和差異表達(dá)的PCGs

    為了能夠有效地識(shí)別GBM相關(guān)的風(fēng)險(xiǎn)標(biāo)志物,研究差異甲基化可能的生物學(xué)意義,基于鑒別出的3 561個(gè)差異甲基化的PCGs,其中高甲基化的PCGs有873個(gè)(24.5%),低甲基化的PCGs有2 688個(gè)(75.5%)。顯然低甲基化的PCGs的數(shù)量遠(yuǎn)遠(yuǎn)多于高甲基化的PCGs的數(shù)量。這些結(jié)果顯示,在GBM的發(fā)生發(fā)展中PCGs呈現(xiàn)為更多的低甲基化模式,并且這種全局的低甲基化可能導(dǎo)致致癌基因的激活和影響基因組的穩(wěn)定性。進(jìn)一步地,本研究鑒別出 6 586 個(gè)差異表達(dá)的PCGs,其中有2 788個(gè)PCGs表達(dá)上調(diào),3 798個(gè)PCGs表達(dá)下調(diào)。

    為了分析異常甲基化對(duì)PCGs表達(dá)的調(diào)控機(jī)制,針對(duì)兩種不同生物學(xué)意義的情況,識(shí)別出240個(gè)高甲基化且低表達(dá)的PCGs及390個(gè)低甲基化且高表達(dá)的PCGs。結(jié)果表明,PCGs在腫瘤樣本和正常樣本中表現(xiàn)出差異甲基化和差異表達(dá)兩種模式。

    2.3 不同甲基化模式下PCGs的富集分析

    對(duì)不同甲基化模式下的PCGs,采用富集分析方法進(jìn)行功能和通路的顯著性分析。結(jié)果顯示,高甲基化的PCGs主要富集在神經(jīng)元系統(tǒng)發(fā)展、細(xì)胞-細(xì)胞信號(hào)傳導(dǎo)等生物過程;低甲基化的PCGs富集在許多與腫瘤進(jìn)程相關(guān)的生物過程,比如細(xì)胞黏附、細(xì)胞遷移、免疫相關(guān)的細(xì)胞增生和血管生成(圖1A、1B)。因此,低甲基化的PCGs可能是影響GBM進(jìn)程的一個(gè)重要模塊。對(duì)于KEGG通路富集分析,高甲基化的PCGs主要富集在GABAergic突觸、胰島素分泌等通路中,而低甲基化的PCGs主要富集在金黃色葡萄球菌感染、補(bǔ)體和凝血級(jí)聯(lián)等通路中(圖1C、1D)。

    圖1 不同甲基化模式下PCGs的富集分析Fig.1 Enrichment analysis of PCGs under different methylation patternsA and B are the GO function analysis of hypermethylated-low expressed PCGs and hypomethylated-highly expressed PCGs,respectively. C and D are KEGG pathway analysis of hypermethylated-low expressed PCGs and hypomethylated-highly expressed PCGs,respectively.The depth of color represents the number of PCGs enriched in the GO item or pathway; PCGs: protein-coding gens.

    2.4 GBM中預(yù)后良好的PCGs的鑒別

    為了評(píng)估這些表達(dá)受對(duì)應(yīng)啟動(dòng)子異常甲基化影響的PCGs是否可以作為GBM的預(yù)后因子,本研究將表達(dá)譜數(shù)據(jù)與臨床信息相結(jié)合,進(jìn)行基因生存分析(圖2),基于生存分析的結(jié)果,獲得了51個(gè)與GBM整體存活顯著相關(guān)的PCGs(P<0.05),如表1所示。

    圖2 SOCS1和AEBP1基因生存分析Fig.2 Survival analysis of SOCS1 and AEBP1 genesA and B represent Kaplan-Meier curves of SOCS1 and AEBP1 genes in GBM, respectively.The red and blue lines at the bottom represent the number of patients who survived.

    表1 預(yù)后良好的PCGsTab.1 PCGs with good prognosis

    3 討論

    DNA甲基化的變化可能破壞癌癥中特定啟動(dòng)子的調(diào)控[20]。近年來,隨著高通量測(cè)序技術(shù)的發(fā)展,表觀遺傳調(diào)控已經(jīng)成為生物醫(yī)學(xué)研究的一大熱點(diǎn)。一項(xiàng)研究[21]表明GBM中B3GNT5、FABP7等13個(gè)基因啟動(dòng)子的甲基化和表達(dá)水平之間呈現(xiàn)負(fù)相關(guān)。

    本研究對(duì)重注釋得到的PCGs甲基化譜進(jìn)行差異甲基化分析,結(jié)果顯示,GBM中多呈現(xiàn)一種低甲基化的模式。為了驗(yàn)證這個(gè)結(jié)果,本研究重新注釋了GBM中l(wèi)ncRNA的甲基化譜,結(jié)果發(fā)現(xiàn)在鑒別出的5 567個(gè)異常甲基化的lncRNAs中高甲基化的有1 214個(gè)(21.8%),低甲基化的有4 353個(gè)(78.2%)。為了評(píng)估是否不同甲基化模式的PCGs對(duì)應(yīng)著不同的生物學(xué)功能,對(duì)這些基因進(jìn)行功能富集分析。結(jié)果顯示低甲基化的PCGs參與了許多與腫瘤發(fā)生及進(jìn)程相關(guān)的生物過程。由此推斷這些低甲基化的PCGs更有可能成為GBM診斷和治療的生物標(biāo)志物。有研究[22-23]表明AEBP1和SOCS1在GBM中過表達(dá),沉默他們的表達(dá)可以抑制GBM細(xì)胞的增生。在本研究中,AEBP1和SOCS1均屬于低甲基化且高表達(dá)的基因,進(jìn)一步地,AEBP1和SOCS1基因表達(dá)水平較低的GBM患者具有更加良好的預(yù)后。結(jié)果表明AEBP1和SOCS1在GBM中表達(dá)的上調(diào)可能是受它們基因啟動(dòng)子的低甲基化調(diào)控,而抑制它們的表達(dá)可以提高GBM患者的生存概率。

    當(dāng)然,由于GBM不同于一般的腫瘤,樣本的獲取是一個(gè)重大的難題。本研究需要進(jìn)一步搜集大規(guī)模樣本進(jìn)行重復(fù)性計(jì)算或者動(dòng)物實(shí)驗(yàn)來驗(yàn)證挖掘出的表達(dá)受異常甲基化調(diào)控的PCGs以及潛在的治療靶點(diǎn)。

    綜上,本研究通過重新注釋DNA甲基化陣列,系統(tǒng)識(shí)別GBM中潛在的表達(dá)受異常甲基化調(diào)控的PCGs,加深對(duì)GBM中PCGs甲基化調(diào)控模式的理解,并對(duì)識(shí)別GBM風(fēng)險(xiǎn)標(biāo)志物和潛在的治療靶點(diǎn)提出了新的認(rèn)識(shí)。

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