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      注射型富血小板纖維蛋白聯(lián)合BMSCs在坐骨神經(jīng)損傷的實(shí)驗(yàn)研究

      2021-01-09 00:20:46王彥生
      中國(guó)當(dāng)代醫(yī)藥 2020年31期
      關(guān)鍵詞:透射電鏡軸突腓腸肌

      葉 放 王彥生 于 寧 許 蕙

      沈陽(yáng)醫(yī)學(xué)院附屬中心醫(yī)院手外5 科,遼寧沈陽(yáng) 110000

      外周神經(jīng)損傷后其后續(xù)影響及功能恢復(fù)的病理生理過(guò)程十分復(fù)雜,神經(jīng)組織的修復(fù)過(guò)程相對(duì)緩慢、再生生理較差[1],而且損傷后發(fā)生局部粘連、組織萎縮和運(yùn)動(dòng)終板退化可能性較大,進(jìn)而導(dǎo)致神經(jīng)功能的損傷修復(fù)受到影響,是目前顯微外科重點(diǎn)與難點(diǎn)問(wèn)題[2]。干細(xì)胞移植作為當(dāng)今顯微外科神經(jīng)修復(fù)治療的新型手段,骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(BMSCs)是目前較為實(shí)用的種子細(xì)胞,尤其在外周神經(jīng)損傷修復(fù)過(guò)程中發(fā)揮重要作用[3]。雖然其臨床應(yīng)用較為廣泛,但其仍存有一定不足,如體外培養(yǎng)歸巢率低,移植后細(xì)胞存活能力欠佳等[4]。注射用富血小板纖維蛋白具有較高的促生長(zhǎng)因子釋放率,從而更有效地誘導(dǎo)BMSCs 的生產(chǎn)與分化[5]。為更好地提高外周神經(jīng)損傷的修復(fù)治療效果,本研究通過(guò)對(duì)大鼠應(yīng)用自體注射型富血小板纖維蛋白聯(lián)合BMSCs 進(jìn)行治療,現(xiàn)報(bào)道如下。

      1 材料與方法

      1.1 主要儀器及試劑

      DMEM 培養(yǎng)基由美國(guó)HyClone 公司提供(生產(chǎn)批號(hào):20180201),十二烷基硫酸鈉聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)配膠試劑盒由上海碧云天生物科技公司提供(生產(chǎn)批號(hào):201811058),CKX41型倒置相差顯微鏡由日本奧林巴斯公司提供,7000型透射電鏡由日本東芝公司提供。

      1.2 研究對(duì)象

      選擇10日齡SD 乳鼠6只,雌雄各半,體重為25~35 g;另外選擇2月齡SD 大鼠24只,雌雄各半,體重195~225 g;均購(gòu)自沈陽(yáng)醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心(合格證號(hào):20191105)。本研究造模及入組動(dòng)物選擇均通過(guò)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理委員會(huì)審核同意,SD 大鼠常溫下適應(yīng)性飼養(yǎng)1 周備用。

      1.3 方法

      1.3.1 大鼠BMSCs 及注射型富血小板纖維蛋白的制備 取6只乳鼠采用離頸法處死,采集由DMEM 培養(yǎng)基從雙側(cè)脛骨干骺端沖洗骨髓,離心管反復(fù)吹打制備細(xì)胞懸液,隨后嚴(yán)格按照密度梯度離心法進(jìn)行細(xì)胞分離、培養(yǎng)和傳代,選擇培養(yǎng)3 周后第4 代純化BMSCs群備用。注射型富血小板纖維蛋白以改良低速離心法進(jìn)行,具體通過(guò)SD 大鼠眼眶采血法采集自體血,置于低速離心管內(nèi)離心3 min后獲取漿液層與紅細(xì)胞層中間的富血小板纖維蛋白層,所制備富血小板纖維蛋白無(wú)需抗凝,但要求在制備成功后15 min 內(nèi)應(yīng)用。

      1.3.2 分組治療 將24只2月齡SD 大鼠隨機(jī)分為觀察組與對(duì)照組,各12只,以改良擠壓損傷法制作大鼠坐骨神經(jīng)損傷模型,先注射3%戊巴比妥實(shí)施腹腔麻醉,隨后雙側(cè)后肢脫毛,無(wú)菌條件下對(duì)實(shí)驗(yàn)側(cè)坐骨神經(jīng)止血鉗上齒擠壓45 s,將坐骨神經(jīng)積壓呈扁薄狀即為模型制備成功。造模后,觀察組與損傷部位局部注射BMSCs 懸液250 μl 及自體富血小板纖維蛋白250 μl,對(duì)照組局部注射生理鹽水500 μl,治療14 d后進(jìn)行相關(guān)結(jié)果分析。

      1.3.3 觀察指標(biāo) 比較治療前后兩組坐骨神經(jīng)功能指數(shù)變化情況;分析兩組治療14 d后大鼠坐骨神經(jīng)軸突透射電鏡圖像結(jié)果;統(tǒng)計(jì)兩組治療14 d后腓腸肌濕質(zhì)量變化情況。坐骨神經(jīng)功能指數(shù)為監(jiān)測(cè)神經(jīng)損傷后恢復(fù)情況的一種無(wú)創(chuàng)檢測(cè)手段,以訓(xùn)練小鼠沿限定軌跡走動(dòng),并通過(guò)后爪不同顏色無(wú)毒染料印跡為標(biāo)準(zhǔn),記錄治療前及治療14 d后兩組實(shí)驗(yàn)大鼠沿軌跡行走指標(biāo),結(jié)合爪長(zhǎng)度、腳趾展開長(zhǎng)度等綜合計(jì)算,計(jì)算公式選擇Bain 公式進(jìn)行,具體為SFI=109.5(ETSNTS)/NTS-38.3(EPL-NPL)/NPL+13.3(EIT-NIT)/NIT-8.8(N:正常足;E:傷側(cè)足;PL:足印長(zhǎng)度;TS:足趾寬度;IT:中間足趾寬度;),其中SFI=0 為正常,SFI=-100為完全損傷;腓腸肌濕質(zhì)量指標(biāo)包括:健側(cè)與實(shí)驗(yàn)側(cè)腓腸肌濕質(zhì)量數(shù)據(jù),并計(jì)算腓腸肌濕質(zhì)量恢復(fù)率,通過(guò)十萬(wàn)分之一精度電子天平秤測(cè)定治療14 d后雙側(cè)腓腸肌濕質(zhì)量,腓腸肌濕質(zhì)量恢復(fù)率=實(shí)驗(yàn)側(cè)(g)/正常側(cè)(g)×100%。

      1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

      采用SPSS 20.0 統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,兩組間比較使用獨(dú)立樣本t 檢驗(yàn),組內(nèi)比較使用配對(duì)t 檢驗(yàn),組間率的比較采用χ2檢驗(yàn),以P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

      2 結(jié)果

      2.1 兩組治療前后坐骨神經(jīng)功能指數(shù)變化的比較

      治療前兩組坐骨神經(jīng)功能指數(shù)比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),治療后兩組坐骨神經(jīng)功能指數(shù)低于治療前,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);且治療后觀察組坐骨神經(jīng)功能指數(shù)低于對(duì)照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(表1)。

      表1 兩組治療前后坐骨神經(jīng)功能指數(shù)變化的比較(±s)

      表1 兩組治療前后坐骨神經(jīng)功能指數(shù)變化的比較(±s)

      組別只數(shù) 治療前 治療后 t 值 P 值觀察組對(duì)照組t 值P 值12 12 85.6±13.2 85.5±13.3 0.018 0.985 5.9±0.3 29.3±1.9 42.141 0.000 20.910 14.491 0.000 0.000

      2.2 兩組治療14 d后大鼠坐骨神經(jīng)軸突透射電鏡圖像

      兩組大鼠坐骨神經(jīng)透射電鏡提示有髓鞘軸突比例情況提示,治療14 d后,大鼠坐骨神經(jīng)透射電鏡提示觀察組髓鞘軸突比例高于對(duì)照組(圖1~2)。

      圖1 對(duì)照組治療14 d后大鼠坐骨神經(jīng)軸突透射電鏡圖(400×)

      圖2 觀察組治療14 d后大鼠坐骨神經(jīng)軸突透射電鏡圖(400×)

      2.3 兩組治療14 d后腓腸肌濕質(zhì)量變化情況的比較

      治療后兩組健側(cè)腓腸肌濕質(zhì)量比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);治療后觀察組實(shí)驗(yàn)側(cè)腓腸肌濕質(zhì)量高于對(duì)照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);治療后觀察組腓腸肌濕質(zhì)量恢復(fù)率高于對(duì)照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)(表2)。

      表2 兩組治療14 d后腓腸肌濕質(zhì)量變化情況的比較(±s)

      表2 兩組治療14 d后腓腸肌濕質(zhì)量變化情況的比較(±s)

      腓腸肌濕質(zhì)量(g)健側(cè) 實(shí)驗(yàn)側(cè)組別只數(shù) 腓腸肌濕質(zhì)量恢復(fù)率(%)觀察組對(duì)照組t 值P 值12 12 0.52±0.02 0.53±0.02 1.225 0.234 0.46±0.01 0.37±0.01 22.045 0.000 88.50±0.03 69.80±0.06 965.664 0.000

      3 討論

      神經(jīng)組織損傷后雖具有一定的組織重塑能力,但隨著微環(huán)境的改變?yōu)槌霈F(xiàn)不可逆性改變[6],進(jìn)而導(dǎo)致神經(jīng)修復(fù)與再生能力被抑制,給目前臨床上針對(duì)外周神經(jīng)損傷的修復(fù)其仍屬于治療難點(diǎn)[7]。以往治療上多以神經(jīng)電刺激等進(jìn)行治療,雖具有一定效果[8],但整體療效有待提高。近年神經(jīng)支架、種子細(xì)胞及神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子等生物工程手段的臨床應(yīng)用,為神經(jīng)組織修復(fù)帶來(lái)巨大突破[9]。

      針對(duì)外周神經(jīng)損傷,本研究制備大鼠坐骨神經(jīng)損傷模型,其中觀察組使用自體注射型富血小板纖維蛋白聯(lián)合BMSCs 進(jìn)行治療,結(jié)果顯示,治療前兩組坐骨神經(jīng)功能指數(shù)比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05);治療后觀察組坐骨神經(jīng)功能指數(shù)低于同組治療前及對(duì)照組治療后,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。證明針對(duì)大鼠坐骨神經(jīng)損傷模型,使用自體注射型富血小板纖維蛋白聯(lián)合BMSCs 進(jìn)行治療,相對(duì)于注射生理鹽水的對(duì)照組,能更好地促進(jìn)坐骨神經(jīng)功能指數(shù)的提高,促進(jìn)坐骨神經(jīng)功能的恢復(fù)。治療14 d后,大鼠坐骨神經(jīng)透射電鏡提示觀察組有髓鞘軸突比例高于對(duì)照組(P<0.05),提示自體注射型富血小板纖維蛋白聯(lián)合BMSCs在治療大鼠坐骨神經(jīng)損傷方面,促進(jìn)損傷神經(jīng)軸突再生具有重要意義。治療14 d后,觀察組腓腸肌濕質(zhì)量高于對(duì)照組,且觀察組腓腸肌濕質(zhì)量恢復(fù)率高于對(duì)照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),進(jìn)一步說(shuō)明針對(duì)大鼠坐骨神經(jīng)損傷模型,自體注射型富血小板纖維蛋白聯(lián)合BMSCs 治療對(duì)促進(jìn)平滑肌細(xì)胞增殖、血管形成等具有重要價(jià)值。

      BMSCs 是一種具有自我更新、多向分化和分泌功能的多能干細(xì)胞[10],以旁分泌集落刺激因子、干細(xì)胞生長(zhǎng)因子、內(nèi)皮細(xì)胞生長(zhǎng)因子等多種細(xì)胞因子進(jìn)而調(diào)節(jié)機(jī)體炎癥反應(yīng),達(dá)到促進(jìn)細(xì)胞修復(fù),組織形成的目的[11-12]。另外,本研究使用的自體富血小板纖維蛋白聯(lián)合BMSCs在神經(jīng)局部鞘內(nèi)注射,更好地為神經(jīng)修復(fù)提供充足營(yíng)養(yǎng),并在15 min 內(nèi)注射,避免了凝膠狀態(tài)[13],加大組織流動(dòng)性,提高了臨床應(yīng)用效果;而且通過(guò)其釋放的堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子,顯著提高BMSCs增殖與分化能力,并促進(jìn)神經(jīng)細(xì)胞的黏附、遷移效應(yīng),提高細(xì)胞外基質(zhì)蛋白水平,進(jìn)而更好地誘導(dǎo)BMSCs 增殖與分化[14-16],促進(jìn)平滑肌細(xì)胞與血管的形成,確保神經(jīng)組織血管的重塑與增殖,達(dá)到修復(fù)受損神經(jīng)的目的[17-18]。

      綜上所述,針對(duì)坐骨神經(jīng)損傷大鼠,使用自體注射型富血小板纖維蛋白聯(lián)合BMSCs 進(jìn)行治療,能有效提高坐骨神經(jīng)功能,促進(jìn)神經(jīng)修復(fù),提高平滑肌與血管再生能力。

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